№ 11 (53), 2008 г.
Аграрный вестник Урала
73
Ветеринария
В данном случае мы представили ковой железах у телят 1 и 1,5-месяч- кими (тимус) процессами и процесса-
предварительные данные по разви- ного возраста, которые характеризу- ми Развития коллоидного зоба (щито-
тию процесса в щитовидной и вилоч- ются воспалительными, аллергичес- видная железа).
Литература
1. Дроздова Л.И., Климов О.Г Морфология щитовидной железы новорожденных телят в различных экологически неблагоприятных зонах Свердловской области // Материалы всероссийской науч.-метод. Конференции патологоанатомов ветеринарной медицины: Сб.науч.тр. - Омск, 2000. - С.187-189.
2. Агеева В.А., Самусев РП. Соотношение коркового и мозгового вещества тимуса в пренатальном периоде онтогенеза И Морфология. - Санкт-Петербург: Эскулап, 2000. - №3. - С.10.
3. Решетников И.С., Владимиров Л.И. Тимус северного оленя. - М.: ИКЦ Академкнига, 2002. - 238 с.
4. Амирова Н.М., Богомолова Н.В., Степанов С.А., Тупикина Е.Б. Морфофункциональная характеристика клеточных и тканевых компонентов щитовидной железы при её патологии // Архив патологии. - М.:Медицина, 2000. - Т.62. - №5. - С. 24-30.
5. Горальский Л.П., Каминская Л.П., Романюк В.Л. Морфологические изменения щитовидной железы у телят с врожденным зобом // Ветеринария. - М.: Колос, 2003. - №2. - С.42-47.
ИЗУЧЕНИЕ НЕКОТОРЫХ СВОЙСТВ ЭПИЗООТИЧЕСКИХ ШТАММОВ ПАСТЕРЕЛЛА МУЛЬТОЦИДА
У Б. ТЛУБЛЕВ,
Западно-Казахстанский аграрно-технический университет им. Жангир хана, Казахстан, г. Уральск
Ключевые слова: Пастерелла мультоцида, эпизоотические штаммы 97-А, 96-В и 97-Д, биохимические свойства.
По данным многих исследователей пастерелла мультоцида представляет собой неподвижные овоиды, хорошо окрашиваемые всеми анилиновыми кра-
сителями, по Грамму - отрицательно. Характерной особенностью данного микроорганизма является биполярность при окрашивании мазков, полученных из ор-
ганов и крови животных. Морфология: в крови и тканях - однородные, а в культурах наблюдается полиморфизм. Кроме овоидов встречаются другие коккообразные формы. Полиморфизм пасте-релл зависит от количества пересевов на искусственных питательных средах. При остром течении болезни в свежевыделенных культурах обнаруживаются капсулы [1].
В своих исследованиях по подбору штаммов для изготовления вакцины против пастереллеза крупного рогатого скота и поливалентной гипериммунной сыворотки против антигенов серовариан-тов А, В и Д пастерелла мультоцида изучали морфологические, тинкториаль-ные, культуральные и биохимические свойства эпизоотических штаммов.
Результаты опытов по изучению культурально-морфологических свойств показали, что все штаммы па-стерелл хорошо растут на МПА и МПБ Хоттингера с добавлением 5-10% сыворотки крови. Жидкие питательные среды через 7 часового культивирования давали равномерное помутнение.
Все культуры - овоидной формы, при окрашивании по Грамму - отрицательные. Среди штаммов наблюдались цепочки, состоящие из 7-8 бактерии. В культурах выделенных из легких павших телят обнаружены нитевидные пасте-реллы. После 2-х кратного пассирования через организм белых мышей они меняли свою первоначальную форму.
При окраске по Романовскому-Гим-зе все изоляты обладали хорошо выраженной биполярностью. Биполярность
Pasteurella multocida, epizootic cultures 97-A, 96-B and 97-D, biochemical properties.
Таблица 1
Биохимические свойства штаммов 97-А, 96-В и 97-Д пастерелла __________________________мул ьто цида____________________________
Штаммы
Признаки 97-А 96-В 97-Д
1 2 3 4
Арабиноза - - -
Глюкоза + + +
Мальтоза - - -
Лактоза - - -
Манноза - - -
1 2 3 4
Ферментация углеводов и спиртов Галактоза + + +
Фруктоза + + +
Раффиноза - - -
Рамноза - - -
Сахароза + + +
Ферментация Т ригалоза + - +
углеводов и спиртов Ксилоза - - -
Крахмал - - -
Сорбит + + +
Маннит + + +
Дульцит - - -
И ндолобразование + + +
Образование сероводорода + + +
Восстановление нитратов в нитриты + + +
Разжижение желатина - - -
Каталаза + + +
Оксидаза + + +
Фосфатаза + + +
Уреаза - - -
Примечание: в числителе - реакция положительная; в знаменателе - отрицательная.
74
Аграрный вестник Урала
№ 11 (53), 2008 г.
Ветеринария
обычно обнаруживалась в мазках из легких и печени павших животных. Особи, обладающие подвижностью, среди эпизоотических штаммов не выявлены.
В МПБ все культуры росли с легким помутнением питательной среды, образование пристеночного кольца и пленки не обнаружены. Обычно, при пересеве штаммов на питательные среды через 4-5 дней бульон становился прозрачным, при легком покачивании слизистый осадок поднимался в виде косичек.
Чистые культуры пастерелл на МПА росли в виде мелких, гладких, прозрачных колоний. При косопроходящем свете колоний слегка флуоресцировали.
Некоторые изоляты образовывали М- и 13- колонии. Их количество увеличивалось в зависимости от срока хранения. Как известно, паетереллы относятся к малоактивным и изменчивым по биохимическим свойствам бактериям. Свежевыделенные штаммы после пересева могут показать иные свойства. Индолообразование является основным свойствам пастерелл. По сообщению некоторых авторов, от круп-
ного рогатого скота и буйволов выделены и индолонеобразующие виды пастерелл. Обычно способность к индолооб-разованию теряют диссоциированные Р- формы пастерелл.
Типичные штаммы пастерелл ферментируют сахарозу, глюкозу, сорбит, манит с образованием кислоты без выделения газа. Реакция на лактозу, дуль-цит, мальтозу, рамнозу, раффинозу и тре-галозу - отрицательная. Штаммы пастерелл в отношении к арабинозе, ксилозе, левулезе и мальтозе показывают изменчивые свойства [2].
По данным В.И. Покровского (1998) к типичным биохимическим свойствам пастерелл относятся: ферментация всеми штаммами маннита, трегалозы, ксилозы, индолообразования и оксидаз-ная активность. Реакция на уреазу, сорбит и лактозу - отрицательная [3].
Все проверенные в ходе работы 898 эпизоотические штаммы по морфологическим, тинкториальным, культуральным и биохимическим свойствам отнесены к пастерелла мультоцида.
По результатам исследования вы-
шеуказанных свойств и изучения ток-сигенности, вирулентности и других показателей для изготовления биологических препаратов против пастереллеза крупного рогатого скота отобраны штаммы 97-А, 96-В и 97-Д. В таблице 1 приведены некоторые биохимические свойства этих штаммов.
Референтные штаммы ферментировали глюкозу, галактозу, сахарозу, манит и сорбит, образовывали индол и сероводород, восстанавливали нитраты до нитрита, показывали каталазную активность, не сбраживали ксилозу, лактозу, мальтозу, арабинозу, маннозу и дульцит.
Для сравнительного анализа ферментативных свойств эпизоотических штаммов были использованы штаммы №8683 (серологический вариант А), №681 (серологический вариант В) и Т-80 (серологический вариант Д) пастерелла мультоцида.
В результате изучения биохимических свойств штаммов 97-А, 96-В и 97-Д, каких либо свойств, отличающих их от эталонных не обнаружены.
Литература
1. Namioka S., Murata М. Antigenic analysis of cultures isolated from various animals//Cornell Vet., - 1961. -V. 51. -No.4. -P. 522-528
2. Радчук H.A. и др. Ветеринарная микробиология и иммунология - М.: ВО «Агропроиздат», 1991.
3. Покровский В.И. Медицинская микробиология. - М.: ГЭОТАР Медицина. 1998.
К ВОПРОСУ О СРОКАХ СТРУКТУРНОФУНКЦИОНАЛЬНОЙ ДИФФЕРЕНЦИАЦИИ
ЯЙЦЕВОДА ИНДЕЕК
Л.Л. ТЕГЗА,
доктор ветеринарных наук, профессор, Костанайский государственный университет им. А. Байтурсынова, Казахстан, г. Костанай
Ключевые слова: индейки, яйцевод, постфетальный онтогенез.
В отношении генеза яйцевода различных видов птиц среди исследователей нет единого мнения. В литературе мы встретили противоречивые сведения о сроках завершения структурнофункциональной дифференциации половых органов индейки. По мнению одних авторов индейка достигает половой зрелости к 180-суточному [1], по мнению других - к возрасту 210 суток [2,3], третьи считают, что формирование репродуктивной системы индейки завершается к 10-11-месячному возрасту [4,5].
Задачей наших исследований было изучение структурно-функциональной дифференциации яйцевода индеек в постфетельном онтогенезе и окончания формирования гистологической структуры яйцевода индейки. Материалом исследований служили ткани яйцевода индеек северокавказской бронзовой породы в возрасте от 1 суток до периода яйцекладки. В опыте использовали клинически здоровых индеек, нормального телосложения,
хорошей упитанности, содержавшихся в одинаковых условиях.
Результаты проведенных нами исследований дают нам основание заключить, что у индеек суточного возраста, как и у птенцов других видов домашних птиц яйцевод еще не дифференцирован на отделы. В нем нет разделения стенки на оболочки. Она (стенка) образована мало дифференцированной волокнистой соединительной тканью, внутренняя поверхность которой выстлана однослойным кубическим эпителием.
Формирование слизистой оболочки яйцевода индейки, как и у цыплят, утят и гусят протекает довольно медленно. Лишь к трехмесячному возрасту в нем на микроскопическом уровне можно определить разделение на отделы [6,7,8].
В результате исследований установлено, что в 3- месячном возрасте начинается закладка желез слизистой оболочки яйцевода индеек. Затем происходит формирование полноценных желез с хорошо выраженными концевыми от-
делами и выводными протоками. Исследователи, изучавшие структурно- функциональную дифференциацию тканей яйцевода утят, цыплят, гусят так же указывают, что в возрасте 90 суток, в яйцеводах исследованных птиц начинается закладка будущих желез слизистой оболочки. Сначала в эпителии появляются скопления крупных стволовых клеток, которые вдаются в подлежащую соединительную ткань. Они постепенно обособляются от эпителиоцитов, перемещаясь вглубь соединительной ткани.
Формирование мышечной оболочки, которая в стенке яйцевода индеек в первые сутки постфетального онтогенеза отсутствует, как и у других видов домашних птиц начинается с десятисуточного возраста [6,7,8]. Сначала в каудальном отделе яйцевода формируется кольцевой слой мышечной оболочки. Затем ее развитие происходит по направлению к краниальному отделу. К 3 месячному возрасту, мышечная оболочка сформирована на протяжении всего
Turkeys oviduct females post-fetal ontogenesis.