Литература: 1. Егоров А.Н., Маклакова Л.П., Рыковский А.С. // Биологоэкологические проблемы заразных болезней диких животных и их роль в патологии сельскохозяйственных животных и людей. Покров, 2002. С. 271-275. 2. Маклакова Л.П., Рыковский А.С. // Сб. науч. тр. ВИГИС. М.: 2005. С.222-223. 3. Мануйлова О. // Охота - национальный охотничий журнал. 2012, №9. С. 44-47. 4. Ромашов В.А. // Ведение заповедного хозяйства в лесостепной зоне СССР. Воронеж, Изд-во: Воронеж. ун-та, 1979. С. 67-72. 5. Рыковский А.С., Маклакова Л.П. // Тр. Института паразитологии РАН. М.: ИПРАН.1999. С. 8892.
Application «Alben Forte» at metastrongilosis wild boars. Romashova
12 2 1 N.B. , Schaveleva O.N. , Romashov B.V. . Voronezh Biosphere Reserve , Voronezh
2
State Agrarian University .
Summary. It is experimentally established that «Alben Forte» is an effective preparation at metastrongilosis wild boars. Preparation doses is 0,8 ml on 5 kg of live weight.
ИЗУЧЕНИЕ АЛЛЕРГЕННОЙ АКТИВНОСТИ И РАЗДРАЖАЮЩИХ СВОЙСТВ ПРАЗИФЕНА
Салгириев И.Р., Мусаев М.Б.
ГНУ ВНИИ гельминтологии им. К.И. Скрябина Россельхозакадемии
Введение. Загрязнение окружающей среды в мире стало реальной угрозой и возникает необходимость проверки каждого лекарственного вещества на наличие аллергенной активности перед тем, как препарат будет применяться для терапии. Аллергию могут вызвать различные химические и лекарственные вещества, в том числе и антигельминтики.
В токсикологии для выявления аллергенных свойств препаратов применяется тест гистаминового шока, который выполняется на морских свинках. Он заключается в том, что в наличие аллергенной активности испытуемого вещества, анафилактический шок наступает у подопытных животных значительно быстрее и протекает более тяжело, чем у контрольных, не получавших препарат.
Материалы и методы. Испытывали антигельминтную пасту празифен, состоящую из действующих веществ празиквантела и фенбендазола, разработанную в ВИГИСе и проявившую высокую эффективность при основных гельминтозах лошадей [ 2].
Опыт провели на 24-х морских свинках массой тела 200-250 г. Двум подопытным (n=6) группам животным за 3 часа до введения гистамина перорально вводили празифен в терапевтической (по ДВ 1,0/10,0 мг/кг) и в три раза увеличенной (3,0/30,0 мг/кг) дозе.
323
Гистамин вводили подопытным (n=6) и контрольным (n=6) животным в дозе 5 мг/кг в 0,5% растворе, подкожно.
У всех животных наблюдали время наступления гистаминового шока и реакцию на его введение.
Действие празифена на слизистую глаза проводили на трех здровых кроликах. Пасту празифена с помощью шприца - дозатора закапывали однократно в конъюнктивальный мешок левого глаза, правый глаз служил контролем.
Поведение животных, состояние глаз и реакцию слизистой оценивали визуально сразу после закапывания и через 15 минут, 1, 24, 48 и 72 часа.
Оценку реакции слизистой глаза выражали в баллах по шкале указанной в «Методических указаниях к постановке исследований по изучению раздражающих свойств и обоснованию предельно допустимых концентраций избирательно действующих раздражающих веществ в воздухе рабочей зоны» [1]. 0 - видимой реакции нет; 1 - легкое покраснение конъюнктивы; 2 -
покраснение конъюнктивы и частично склеры; 3 - резкое покраснение конъюнктивы и всей склеры, гнойный офтальмит.
Результаты. Результаты изучения аллергенной активности празифена сведены в (табл. 1) из полученных данных которой следует, что препарат в указанных дозах не потенцировал эффекта гистамина и, следовательно, не проявил аллергенных свойств.
При нанесении пасты празифена на конъюнктиву глаз кроликов было отмечено лёгкое покраснение на 1 -е сутки, которое начало уменьшатся и на 2-е сутки, покраснение полностью исчезло, скорее всего, это реакция на введении препарата. Других признаков, свидетельствующих о раздражающем действии препарата (отёчность, слезотечение и т.д.) не отмечали.
Из вышеизложенного следует, что празифен не оказывал существенного раздражающего действия на конъюнктиву глаз кроликов.
Таблица
Аллергенная активность празифена (метод гистаминового шока
Доза, мг/кг по ДВ Время введения гистамина после празифена, (час) Время наступления гистаминового шока, (мин.)
ж и в о т н ы е опытные контрольные
1,0/10,0 3,0 20,25±0,21 20,58±0,45
3,0/30,0 3,0 21,20±0,74 20,68±1,47
(Р>0,05)
Заключение. Празифен не проявил аллергеной активности и не оказал существенного раздражающего действия на конъюнктиву глаз.
324
Литература: 1. Методические рекомендации по доклиническому
изучению репродуктивной токсичности фармакологических средств, одобренные фармакологическим комитетом Минздрава России (протокол №8 от 3 июля 1997) и утвержденные Минздравом России 18 декабря 1997. 2.
Мусаев М.Б., Шумакович И.Е., Архипов И.А. //Российский паразитологический журнал. -2009. -№2. —С. 105-108.
АНТИМИТОТИЧЕСКАЯ АКТИВНОСТЬ ПРАЗИФЕНА Салгириев И.Р., Мусаев М.Б.
ГНУ ВНИИ гельминтологии им. К.И. Скрябина Россельхозакадемии
Введение. Бензимидазолы и изоквинолины - вещества, обладающие широким спектром нематодоцидного, цестодоцидного, фунгицидного и противоопухолевого действия. Наряду с высокой антигельминтной эффективностью многие из них проявляют эмбриотропную и антимитотическую активность. При разработке лекарственной формы из данных групп соединений при изучении антигельминтных свойств, проводится и токсикологическая оценка для понимания механизма действия этих групп препаратов.
Материалы и методы. Изучали пасту празифен, проявившую антигельминтный эффект в дозе 1,0/10,0 мг/кг соответственно по празиквантелу и фенбендазолу при основных гельминтозах лошадей [6].
Антимитотическое действие празифена оценивали на 12 белых крысах самцах, массой 180-200 г. Препарат вводили однократно перорально в дозе от ЛД50 (3750 мг/кг по массе препарата) от ЛД50 7500 мг/кг.
Костный мозг убитой декапитацией крысы вымывали в центрифужную пробирку (с 3 мл гипотонического (0,555%-ного) раствора) подогретым до 37°С хлористым калием. Пробирки оставляли в термостате на 6-9 минут при 37°С, далее центрифугировали 5 минут при 1000 об/мин. Надосадочную жидкость сливали, к осадку добавляли фиксатор (3 части метанола : 1 часть ледяной уксусной кислоты) и оставляли на 1-2 минуты. Затем фиксатор сливали и добавляли новый, оставив на 5-7 минут, далее фиксатор еще раз сливали, осадок разбивали постукиванием пальца о пробирку. Затем добавляли 1 мл нового фиксатора и помещали в холодильник на 30 минут. На влажные обезжиренные охлажденные стёкла раскапывали суспензию клеток костного мозга и сушили над пламенем горелки. Окрашивали препараты 10%-ным азур-эозином по Романовскому (С.Е. Ford, J.L. Hamerton, 1956).
Выделение клеток костного мозга и фиксацию проводили через 3, 6 и 24 часа после введения празифена. Данный интервал был выбран в связи с тем, что максимальная концентрация празиквантела и фенбендазола создается в плазме через 3-24 часа после введения [1,2,3,4].
325