CC BY
11
12. Kolesnikov V.I., Chetvertnov V.I. Comparative efficacy of Halokur and Parophor 70 preparations for the treatment of calves with cryptosporidiosis. International Veterinary Bulletin. 2021; 3: 79-83.
13. Krivopushkina E.A. Laboratory diagnosis of helminthiases in animals. Bryansk: Publishing House of the Bryansk State Agricultural Academy, 2013. 40 p.
Галина Николаевна Бобкова, кандидат биологических наук, доцент, olesyabobkova291101@mail.ru, https://orcid.org/0000-0002-8212-0051
Василий Павлович Иванюк, доктор ветеринарных наук, профессор, vpivanuk@mail.ru, https://orcid.org/0000-0001-8439-1632
Елена Андреевна Кривопушкина, кандидат биологических наук, доцент, krivopushkina@yandex.ru, https://orcid.org/0000-0003-2527-3884
Galina N. Bobkova, Candidate of Biology, Associate Professor, olesyabobkova291101@mail.ru, https://orcid.org/0000-0002-8212-0051
Vasily P. Ivanyuk, Doctor of Veterinary Sciences, Professor, vpivanuk@mail.ru, https://orcid.org/0000-0001-8439-1632
Elena A. Krivopushkina, Candidate of Biology, Associate Professor, krivopushkina@yandex.ru, https://orcid.org/0000-0003-2527-3884
Вклад авторов: все авторы сделали эквивалентный вклад в подготовку публикации. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Contribution of the authors: all authors have made an equivalent contribution to the preparation of the publication. The authors declare no conflict of interests.
Статья поступила в редакцию 18.01.2022; одобрена после рецензирования. 07.02.2022; принята к публикации 01.03.2022.
The article was submitted 18.01.2022; approved after reviewing 07.02.2022; accepted for publication 01.03.2022. -♦-
Научная статья
УДК 619:616.995.42:636.92
doi: 10.37670/2073-0853-2022-94-2-218-223
Хейлетиеллёз кроликов, вызванный клещами Cheyletiella parasitivorax (Megnin, 1878), (Trombidiformes: Cheyletidae)
Рамазан Магаметович Акбаев, Илья Дмитриевич Колпаков,
Анастасия Димитриевна Филиппова
Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии -
МВА имени К.И. Скрябина, Москва, Россия
Аннотация. Представлены результаты исследования, направленного на диагностику хейлетиеллёза кроликов. Дано описание клинических признаков, симптомов болезни, определена интенсивность по-ражённости хейлетиеллами животных. Всего было обследовано 36 животных, из которых у 28 особей был диагностирован хейлетиеллёз, вызванный тромбидиформными клещами вида Cheyletiella parasitivorax. Экстенсивность инвазии составила 77,7 %. У 3 кроликов выявлена сильная степень поражённости: количество клещей, извлечённых с обследуемого участка тела животных, составило более 100 экз. У 9 особей установлена умеренная степень поражённости: количество клещей, извлечённых с обследуемого участка тела, было до 100 экз., у 16 животных - слабая степень поражённости, так как с обследуемого участка тела были извлечены единичные экземпляры клещей.
Ключевые слова: кролики, хейлетиеллы, Cheyletiella parasitivorax, клещи.
Для цитирования: Акбаев Р.М., Колпаков И.Д., Филиппова А.Д. Хейлетиеллёз кроликов, вызванный клещами Cheyletiella parasitivorax (Megnin, 1878), (Trombidiformes: Cheyletidae) // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2022. № 2 (94). С. 218 - 223. https://doi.org/10.37670/2073-0853-2022-94-2-218-223.
Original article
Cheyletiellosis of rabbits caused by mites Cheyletiella parasitivorax (Megnin, 1878), (Trombidiformes: Cheyletidae)
Ramazan M. Akbayev, Ilya D. Kolpakov, Anastasia D. Filippova
Moscow State Academy of Veterinary Medicine and Biotechnology -
MVA by K.I. Sc^abin, Moscow, Russia
Abstract. The results of a study aimed at diagnosing cheiletiellosis in rabbits are presented. A description of the clinical signs and symptoms of the disease is given, and the intensity of animals affected by cheiletiella is determined. A total of 36 animals were examined, of which 28 individuals were diagnosed with cheyletiel-
losis caused by trombidiform mites of the Cheyletiella parasitivorax species. The extensiveness of invasion was 77.7 %. In 3 rabbits, a strong degree of infestation was revealed: the number of mites removed from the examined area of the animal's body was more than 100 ind. In 9 individuals, a moderate degree of infestation was established: the number of ticks extracted from the examined area of the body was up to 100 ind., in 16 animals - a weak degree of infestation, since single tick specimens. Keywords: Rabbits, cheyletiella, Cheyletiella parasitivorax, ticks.
For citation: Akbayev R.M., Kolpakov I.D., Filippova A.D. Cheyletiellosis of rabbits caused by mites Cheyletiella parasitivorax (Megnin, 1878), (Trombidiformes: Cheyletidae). Izvestia Orenburg State Agrarian University. 2022; 94(2): 218-223. (In Russ.). https://doi.org/10.37670/2073-0853-2022-94-2-218-223.
Паразитарные болезни сельскохозяйственных животных, в том числе кроликов, широко распространены на территории Российской Федерации [1 - 8] и за рубежом [9 - 12]. Наряду с гельминто-зами и протозоозами у кроликов распространены акарозы, в том числе хейлетиеллёз [13 - 16].
Хейлетиеллёз кроликов - это паразитарная (акарозная) болезнь, вызываемая тромбиди-формными клещами, относящимися к семейству Cheyletidae (Leach, 1815) и виду Cheyletiella parasitivorax (Megnin, 1878) [17, 18].
Впервые клещей хейлетиелл, паразитирующих на кроликах, в 1878 г. обнаружил Мегнин (Megnin). Данный автор назвал обнаруженных клещей Cheyletusparasitivorax [17]. Кроме кроликов, хейлетиеллёзом болеют кошки и собаки [19].
Хейлетиеллы вида Cheyletiella parasitivorax -мелкие овальной формы клещи светло-жёлтого цвета, являющиеся стационарными (постоянными) эктопаразитами кроликов. Самки достигают в длину около 0,45 - 0,5 мм. Самцы мельче самок. Длина тела самцов - примерно 0,32 - 0,34 мм. Локализуются клещи в волосах животных, передвигаясь к коже только для питания. Для хейлетиелл свойственно плетение паутины. Самки клещей, откладывая удлинённо-овальной формы яйца, прикрепляют их к волосу при помощи маточного секрета и затем оплетают паутиной [20].
Патогенез при хейлетиеллёзе кроликов изучен недостаточно. Хейлетиеллы травмируют эпидермис кожи животных, прокалывая её острыми стилетовидными хелицерами, и в последующем питаются тканевой жидкостью и лимфой [18]. Больные животные при массовом паразитирова-нии клещей становятся беспокойными, пытаются облизывать зудящие участки тела, трутся о посторонние предметы, усиливая травмирование кожи [18]. Яркое проявление хейлетиеллёза кроликов - это появление на коже жирной хлопьевидной перхоти и корочек. В начале болезни на поражённых участках тела кожа гипереми-рована, на её поверхности появляются тонкие серого цвета чешуйки [18]. Далее образуются пустулы и мелкие папулы, покрытые корочками тёмно-бордового, практически чёрного цвета. По мере развития болезни количество чешуек увеличивается, они приобретают серо-жёлтый цвет и становятся влажными. В литературе, в особенности в зарубежной, хейлетиеллёз животных часто называют «движущейся перхотью».
По данным некоторых исследователей, хейлетиеллы являются переносчиками вируса миксоматоза кроликов [21].
Диагноз на хейлетиеллёз кроликов устанавливается на основании клинических признаков и подтверждается при обнаружении клещей на разных стадиях развития при микроскопии счёсов с кожно-волосяного покрова, соскобов кожи и скотч-тестов [18].
Материал и методы. Исследование проводили в условиях частного подворья на территории г. Москвы, а также на кафедре паразитологии и ветеринарно-санитарной экспертизы ФГБОУ ВО МГАВМиБ - МВА имени К.И. Скрябина. Паразитологическому обследованию на наличие клещей хейлетиелл подвергли 36 животных.
Для постановки первичного диагноза владельцы фиксировали животных, затем мы тщательно осматривали кожно-волосяной покров кроликов в местах с наибольшей вероятностью локализации хейлетиелл: дорсальная поверхность шеи, лопаток, спины. В последующем материал для исследования с тела кроликов собирали методом счёса с кожно-волосяного покрова тела в чашку Петри при помощи гребня с частыми зубчиками (рис. 1) [22]. Далее собранный материал помещали в чистые сухие баночки, закрывали крышкой и отвозили на кафедру для дальнейших исследований.
Рис. 1 - Гребень для взятия счёсов с кожно-волосяного покрова животных (автор Р.М. Акбаев)
Идентификацию хейлетиелл проводили, изучая собранных эктопаразитов под бинокулярным стереоскопическим микроскопом МБС-9 и бинокулярным микроскопом Микромед-3. Фотографирование клещей осуществляли при помощи цифровой камеры М1МАХ 2 фирмы Xiaomi. В качестве определителя паразитов использовали научную литературу [17, 20, 23].
Интенсивность поражённости животных клещами определяли, подсчитывая хейлетиелл, собранных с участка тела в области спины, который был примерно 100 см2. Далее интерпретировали интенсивность поражённости каждого животного, исходя из числа обнаруженных эктопаразитов, по принятым методикам [22, 24] (табл. 1), а также по клиническим признакам и симптомам проявления болезни.
1. Определение интенсивности поражённости животного эктопаразитами [24].
Интенсивность поражённости животного Количество эктопаразитов, экз.
Слабая До 10
Умеренная До 100
Сильная Более 100
Клинические признаки и симптомы проявления болезни описывали на основании собственных наблюдений и опытов, интерпретируя интенсивность поражённости по количеству эктопаразитов, собранных с участка тела животных, равного 100 см2 (Р.М. Акбаев).
Результаты и обсуждение. За период исследовательской работы нами было обследовано 36 животных, содержащихся в клеточных условиях. По результатам проведённых исследований у 28 кроликов был диагностирован хейлетиеллёз, вызываемый клещами Cheyletiella parcisitivorax (Megnin, 1878) (рис. 2). Таким образом, экстенсивность инвазии (ЭИ) составляла 77,7 %.
Рис. 2 - Имаго Cheyletiella parcisitivorax (А);
яйцо, приклеенное маточным секретом самки к волосу (Б) (автор Р.М. Акбаев)
Интенсивность поражённости (ИП), как уже было нами написано выше, определяли по числу паразитов, извлечённых с тела каждого больного кролика методом счёса с кожно-волосяного покрова при помощи гребня.
В результате проведённых опытов при обследовании животных мы выяснили, что из 28 кроликов с подтверждённым диагнозом хейле-тиеллёз у 3 животных была сильная степень поражённости: количество клещей, извлечённых с обследуемого участка тела, составляло более 100 экз.; у 9 кроликов - умеренная степень по-ражённости: количество клещей, извлечённых с обследуемого участка тела, было до 100 экз. При обследовании оставшихся 16 животных мы установили слабую степень поражённости, так как с обследуемого участка тела были извлечены единичные экземпляры клещей (до 10 экз.).
Слабая интенсивность поражённости животных хейлетиеллами, по нашим наблюдениям, фактически не проявлялась клинически. Симптомы были сглажены. Животные изредка почёсывались, перебирая волосяной покров передними лапками. Количество клещей, собранных с обследуемого участка тела, не превышало 10 экз.
Умеренная интенсивность поражённости животных характеризуется выраженным беспокойством. Шёрстно-волосяной покров кроликов в местах локализации хейлетиелл был взъерошен. Животные часто и подолгу перебирали передними лапками волосяной покров, одновременно облизывая пальцы. Зуд у таких животных умеренный. На коже вследствие зуда и расчёсов образовались ссадины и шелушение эпидермиса. При осмотре поражённых участков кожи имелись папулы, везикулы. Также обнаруживались мелкие и среднего размера чешуйки серого или серо-жёлтого цвета, напоминающие крупную перхоть. При микроскопии волосы на поражённых участках тела были повреждены (сечение волос). Количество хейлетиелл, собранных с обследуемого участка тела, исчислялось десятками, но не превышало 100 экз.
Сильная интенсивность поражённости животных характеризуется выраженным беспокойством, интенсивным зудом и, как следствие, образованием значительного количества папул, везикул, а также расчёсов и глубоких царапин. Кролики часто и подолгу перебирали волосяной покров передними лапами и затем облизывали их, тёрлись о решётки и стенки клеточного оборудования. У больных животных отмечались нарушения целостности волосяного покрова (алопеции) на местах скопления паразитов (рис. 3). Кожа в местах поражения была грубая, неэластичная, покрыта мелкими корочками и чешуйками (рис. 4). Количество хейлетиелл, собранных с обследуемого участка тела, превышало 100 экз.
Рис. 3 - Хейлетиеллёз кролика; умеренная
степень поражённости; поражение кожи животного в области шеи и лопаток, проявляющееся в виде хлопьевидных чешуек серого цвета и частичного выпадения волос (автор Р.М. Акбаев)
Выводы. На основании проведённых научных исследований мы выяснили, что при обследовании 36 кроликов, содержащихся в условиях частного подворья, у 28 был диагностирован хейлетиеллёз, вызванный тром-бидиформными клещами вида Cheyletiella parasitivirax, что составило 77,7 % ЭИ. При этом интенсивность поражённости животных была слабой у 16 особей, умеренной - у 9 и сильной - у 3 кроликов.
Владельцам животных была оказана квалифицированная консультация и рекомендованы эффективные инсектоакарицидные средства для обработки животных и клеточного оборудования [25].
Список источников
1. Маслова Е.Н., Домацкий В.Н. Эффективность «Димципа» при псороптозе кроликов // Проблемы энтомологии и арахнологии. 2002. № 44. С. 107 - 108.
2. Акбаев Р.М. Видовой состав и сезонная численность пухопероедов-возбудителей маллофагоза кур // Ветеринария. 2010. №. 10. С. 31 - 32.
3. Лунева Н.А. К вопросу борьбы с ушным клещом у кроликов // Инновационные тенденции развития российской науки. Красноярск, 2020. С. 80 - 82.
4. Акбаев Р.М. Клинические и лабораторные методы диагностики саркоптоидозов животных. Методическое положение. М. ФГБОУ ВО МГАВМиБ-МВА имени К.И. Скрябина, 2019. 12 с.
5. Илиеш В.Д., Чикунов В.С., Акбаев Р.М. Эймериоз кроликов, осложнённый сочетанной бактериальной инфекцией // Международная учебно-методическая и научно-практическая конференция, посвящённая 140-летию со дня рождения академика Скрябина Константина Ивановича. 15 - 16 ноября 2018 года. М.: ФГБОУ ВО МГАВМиБ -МВА имени К.И. Скрябина, 2018. С. 148 - 152.
Рис. 4 - Хейлетиеллёз кролика; сильная степень поражённости; поражение кожи животного в области лопаток и спины, проявляющееся в виде хлопьевидных чешуек серого цвета и алопеции (автор Р.М. Акбаев)
6. Банколе А., Акбаев Р.М., Генералов А.А. Акари-цидная эффективность водной эмульсии синтетического пиретроида (ДВ цифлутрин) в отношении саркоптоидных клещей Psoroptes cuniculi в условиях in vitro // Международная учебно-методическая и научно-практическая конференция, посвящённая 140-летию со дня рождения академика Скрябина Константина Ивановича. 15 - 16 ноября 2018 года. М.: ФГБОУ ВО МГАВМиБ - МВА имени К.И. Скрябина, 2018. С. 54 - 56.
7. Акбаев Р.М. К вопросу о фауне эктопаразитов птиц в частных птичниках // Ветеринария. 2010. № 8. С. 36 - 40.
8. Методы борьбы с гнусом и иксодовыми клещами в хозяйствах Рязанской области / М.Ш. Акбаев, Ф.И. Василевич, Р.М. Акбаев и др. // Ветеринария. 2004. № 10. С. 29 - 31.
9. A new landscape of rabbit gut microbiota shaped by the infection of precocious parasites of Eimeria intestinalis / C. Li, X. Liu, G. Tao et al. Veterinary parasitology. 2021; 300: 109-110.
10. Xie Y. Global transcriptome landscape of the rabbit protozoan parasite Eimeria stiedae. Parasites and vectors. 2021; 14(1): 1-17.
11. Occurrence of gastrointestinal parasites in slaughter rabbits / K. Szkucik, R. Pyz-Lukasik, K.O. Szczepaniak et al. Parasitology Research. 2014; 113(1): 59-64.
12. Diaz-Saez V. High rates of Leishmania infantum and Trypanosoma nabiasi infection in wild rabbits (Oryc-tolagus cuniculus) in sympatric and syntrophic conditions in an endemic canine leishmaniasis area: epidemiological consequences. Veterinary parasitology. 2014; 202(3-4): 119-127.
13. Лисович В.Ф., Колосова П.В. Хейлетиеллёз у собак, кошек и кроликов (блуждающая перхоть) // Альманах мировой науки. 2016. №. 11-1. С. 51 - 52.
14. Распространение инвазионных заболеваний животных в Краснодарском крае / Л.В. Дробин, Ю.Д. Шевченко, О.Ю. Черных и др. // Тенденции развития науки и образования. 2019. №. 55-3. С. 44 -49.
15. Moxham J.W., Goldfinch T.T., Heath A.C.G. Cheyletiella parasitivorax infestation of cats associated with skin lesions of man. New Zealand Veterinary Journal. 1968; 16(4): 50-52.
16. Barros-Battesti D.M. New record of Cheyletiella parasitivorax (Megnin, 1878) (Trombidiformes: Cheyletidae) from Brazil with an illustrated key to species for the genus. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinaria. 2020; 29: 1881-1882.
17. Волгин В.И. Клещи семейства Cheyletidae мировой фауны. Монография. В серии: «Определители по фауне СССР, издаваемые Зоологическим институтом Академии наук СССР», № 101. Изд. «Наука», Ленингр. отд. Л., 1969. 432 с.
18. Паразитология и инвазионные болезни животных / М.Ш. Акбаев, Ф.И. Василевич, Р.М. Акбаев и др. / под ред. М.Ш. Акбаева. 3-е изд., перераб. и доп. М.: КолосС, 2008. 776 с.
19. Василевич Ф.И., Есаулова Н.В., Акбаев Р.М. Инвазионные болезни и паразиты плотоядных животных. М.: ЗооВетКнига, 2019. 314 с.
20. Бочков А.В. ГЛАВА IV. Паразито-хозяинные отношения акариформных клещей (Acariformes) - постоянных паразитов млекопитающих // Труды Зоологического института РАН. 2016. Т. 320. № S4. С. 160 - 263.
21. Bronswijk J., De Kreek E.J. Cheyletiella (Acari: Cheyletiellidae) of dog, cat and domesticated rabbit, a review. Journal ofMedical Entomology. 1976; 13(3): 315-327.
22. Акбаев Р.М., Пуговкина Н.В. Бовиколёз крупного рогатого скота в животноводческих хозяйствах Московской области // Российский ветеринарный журнал. 2017. № 1. С. 10 - 13.
23. Fonseca V.D., Pereira M.F., Ribeiro S.G., Vieira V.P. Taxonomia, morfologia e ciclo do acaro Cheyletiella, uma revisao de literature // R. cient. eletr. Med. Vet. 2021. P. 47-60.
24. Благовещенский Д.И. Насекомые пухоеды (Mal-lophaga). Фауна СССР М.-Л.: Изд. АН СССР 1959. Т. 1. В. 1. Ч. 1. 202 с.
25. Акбаев Р.М. Дезинсекция и дезакаризация птицеводческих помещений // Птица и птицепродукты. 2011. №. 4. С. 14 - 15.
References
1. Maslova E.N., Domatsky V.N. Efficiency of «Dim-cip» in psoroptosis of rabbits. Problems of entomology and arachnology. 2002; 44: 107-108.
2. Akbaev R.M. Species composition and seasonal abundance of downy feather-eating pathogens of chicken mallophagosis. Veterinary. 2010; 10: 31-32.
3. Luneva N.A. To the question of the fight against ear mites in rabbits // Innovative trends in the development of Russian science. Krasnoyarsk, 2020. Р. 80-82.
4. Akbaev R.M. Clinical and laboratory methods for diagnosing sarcoptoidosis in animals. methodical position. M.: FGBOU VO MGAVMiB-MVA named after K.I. Scri-abin, 2019. 12 p.
5. Ilyesh V.D., Chikunov V.S., Akbaev R.M. Eimeriosis of rabbits, complicated by a combined bacterial infection // International educational-methodical and scientific-practical conference dedicated to the 140th anniversary of the birth of Academician Skryabin Konstantin Ivanovich. November 15-16, 2018. M.: FGBOU VO MGAVMiB-MVA named after K.I. Scriabin, 2018. Р. 148-152.
6. Bankole A., Akbaev R.M., Generalov A.A. Acaricidal efficacy of an aqueous emulsion of a synthetic pyrethroid (DV cyfluthrin) against sarcoptoid mites Psoroptes cuniculi
in vitro // International educational-methodical and scientific-practical conference dedicated to 140th anniversary of the birth of Academician Skryabin Konstantin Ivanovich. November 15-16, 2018. M.: FGBOU VO MGAVMiB -MVA named after K.I. Scriabin, 2018. Р. 54-56.
7. Akbaev R.M. To the question of the fauna of ectoparasites of birds in private poultry houses // Veterinary. 2010. No. 8. P. 36-40.
8. Methods of combating midges and ixodid ticks in the farms of the Ryazan region / M.SH. Akbaev, F.I. Vasilevich, R.M. Akbaev et al. Veterinary. 2004; 10: 29-31.
9. A new landscape of rabbit gut microbiota shaped by the infection of precocious parasites of Eimeria intestinalis / C. Li, X. Liu, G. Tao et al. Veterinary parasitology. 2021; 300: 109-110.
10. Xie Y. Global transcriptome landscape of the rabbit protozoan parasite Eimeria stiedae. Parasites and vectors. 2021; 14(1): 1-17.
11. Occurrence of gastrointestinal parasites in slaughter rabbits / K. Szkucik, R. Pyz-Lukasik, K.O. Szczepaniak et al. Parasitology Research. 2014; 113(1): 59-64.
12. Diaz-Saez V. High rates of Leishmania infantum and Trypanosoma nabiasi infection in wild rabbits (Oryctolagus cuniculus) in sympatric and syntrophic conditions in an endemic canine leishmaniasis area: epidemiological consequences. Veterinary parasitology. 2014; 202(3-4): 119-127.
13. Lisovich V.F., Kolosova P.V. Cheyletiellosis in dogs, cats and rabbits (wandering dandruff). Almanac of world science. 2016; 11-1: 51-52.
14. Distribution of invasive animal diseases in the Krasnodar Territory / L.V. Shevchenko, Yu.D. Drobin, O.Yu. Chernyh et al. Trends in the development of science and education. 2019; 55-3: 44-49.
15. Moxham J.W., Goldfinch T.T., Heath A.C. Cheyletiella parasitivorax infestation of cats associated with skin lesions of man. New Zealand Veterinary Journal. 1968; 16(4): 50-52.
16. Barros-Battesti D.M. New record of Cheyletiella parasitivorax (Megnin, 1878) (Trombidiformes: Cheyletidae) from Brazil with an illustrated key to species for the genus. Revista Brasileira de Parasitologia Veterinaria. 2020; 29: 1881-1882.
17. Volgin V.I. Ticks of the family Cheyletidae of the world fauna. Monograph. In the series: "Guidelines for the fauna of the USSR, published by the Zoological Institute of the Academy of Sciences of the USSR", No. 101. Ed. "Science", Leningrad. otd. L., 1969. 432 p.
18. Parasitology and invasion diseases of animals / M.Sh. Akbaev, F.I. Vasilevich, R.M. Akbaev et al. / ed. M.Sh. Akbaev. 3rd ed., revised. and additional M.: Kolos, 2008. 776 p.
19. Vasilevich F.I., Esaulova N.V., Akbaev R.M. Invasive diseases and parasites of carnivorous animals. M.: ZooVetKniga, 2019. 314 p.
20. Bochkov A.V. CHAPTER IV. Parasite-host relations of acariform mites (Acariformes) - permanent parasites of mammals. Proceedings of the Zoological Institute of the Russian Academy of Sciences. 2016; 320(4): 160-263.
21. Bronswijk J., De Kreek E.J. Cheyletiella (Acari: Cheyletiellidae) of dog, cat and domesticated rabbit, a review. Journal ofMedical Entomology. 1976; 13(3): 315-327.
22. Akbaev R.M., Pugovkina N.V. Bovicolosis in cattle in livestock farms of the Moscow region. Russian veterinary journal. 2017; 1: 10-13.
23. Fonseca V.D., Pereira M.F., Ribeiro S.G., Vieira V.P. Taxonomia, morfologia e ciclo do acaro Cheyletiella, uma revisao de literatura // R. cient. eletr. Med. Vet. 2021. P. 47-60.
24. Blagoveshchensky D.I. Insects lice (Mallophaga). 25. Akbaev R.M. Disinsection and desacarization of
Fauna of the USSR. M. - L.: Izd. AN SSSR. 1959; Vol. 1. poultry premises Poultry and Poultry Products. 2011; 4: B. 1. Part 1. 202 p. 14-15.
Рамазан Магаметович Акбаев, кандидат ветеринарных наук, доцент, acbay@yandex.ru, https://orcid.org/0000-0002-6973-3056
Илья Дмитриевич Колпаков, кинолог, https://orcid.org/0000-0002-2918-1744
Анастасия Димитриевна Филиппова, кинолог, filippova.vet@gmail.com, https://orcid.org/0000-0001-9935-9934
Ramazan M. Akbayev, Candidate of Veterinary Sciences, Associate Professor, acbay@yandex.ru, https://orcid.org/0000-0002-6973-3056
Ilya D. Kolpakov, dnologist, https://orcid.org/0000-0002-2918-1744
Anastasia D. Filippova, dnologist, filippova.vet@gmail.com, https://orcid.org/0000-0001-9935-9934
Вклад авторов: все авторы сделали эквивалентный вклад в подготовку публикации. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Contribution of the authors: all authors have made an equivalent contribution to the preparation of the publication. The authors declare no conflict of interests.
Статья поступила в редакцию 18.03.2022; одобрена после рецензирования. 31.03.2022; принята к публикации 31.03.2022.
The article was submitted 18.03.2022; approved after reviewing 31.03.2022; accepted for publication 31.03.2022.
-Ф-
Научная статья УДК 619:636.4
Влияние комплексного гепатопротекторного средства на факторы неспецифической резистентности поросят при гепатопатологии токсического происхождения
Сергей Сергеевич Борисов, Алексей Владимирович Савинков,
Юлия Александровна Курлыкова, Матвей Михайлович Орлов
Самарский государственный аграрный университет, Самара, Россия
Аннотация. В эксперименте оценивалось влияние кормовой добавки с комплексом биологически активных соединений (L-карнитина гидрохлорида, инозитола, DL-метионина, бетаина) на факторы неспецифической резистентности поросят с функциональными нарушениями печени токсического происхождения. Кормовую добавку задавали поросятам опытных групп с водой в дозе 1 и 2 мл на 1 л воды, животным контрольной группы применяли воду для поения без добавления кормовой добавки. В результате проведённого исследования установлено положительное влияние комплексного гепатопротекторного средства на состояние печени поросят. Лучшие показатели отмечены у поросят, принимавших препарат в дозировке 1 мл на 1 л воды, у которых произошло повышение активности факторов гуморальной резистентности сыворотки крови: бактерицидной - на 20,5 % (P < 0,01), лизоцимной - на 25,5 % (P < 0,001) и бета-лизиновой - на 26,3 % (P < 0,001), а также фагоцитарной активности нейтрофилов: процент фагоцитоза повысился на 53,8 % (P < 0,001) и фагоцитарный индекс - в 3,9 раза (P < 0,001). Показатели, полученные в группе с использованием удвоенной дозировки, в большей мере свидетельствует о стабилизирующем влиянии используемого средства на параметры неспецифической резистентности.
Ключевые слова: функциональные нарушения печени, молодняк свиней, неспецифическая резистентность, биологически активные вещества.
Для цитирования: Влияние комплексного гепатопротекторного средства на факторы неспецифической резистентности поросят при гепатопатологии токсического происхождения / С.С. Борисов, А.В. Савинков, Ю.А. Курлыкова и др. // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2022. № 2 (94). С. 223 - 229.
Original article
The effect of a complex hepatoprotective agent on the factors of nonspecific resistance of piglets in hepatopathology of toxic origin
Sergey S. Borisov, Alexey V. Savinkov, Yulia A. Kurlykova, Matvey M. Orlov
Samara State Agrarian University, Samara, Russia
Abstract. The experiment evaluated the effect of a feed additive with a complex of biologically active compounds (L-carnitine hydrochloride, inositol, DL-methionine, betaine) on nonspecific resistance factors in piglets with functional liver disorders of toxic origin. The feed additive was given to the piglets of the experimental groups with water at a dose of 1 and 2 ml per 1 liter of water, the animals of the control group were
