CC BY
15
Научная статья
УДК 619:616.9-022.6:636.2.
doi: 10.37670/2073-0853-2022-94-2-214-218
Динамика микрофлоры кишечника молодняка крупного рогатого скота при гельминтозах
Галина Николаевна Бобкова1, Василий Павлович Иванюк2, Елена Андреевна Кривопушкина1
1 Брянский государственный аграрный университет, Брянск, Россия
2 Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии -МВА имени К.И. Скрябина, Москва, Россия
Аннотация: В статье представлены результаты анализа данных о формировании паразитарной системы в кишечнике молодняка крупного рогатого скота при гельминтозах. Объектом научно-хозяйственного опыта были бычки в возрасте 6 - 13-месячного возраста. В 6-месячном возрасте животным первой группы экспериментально однократно скормили 200 адолескариевфасциол на голову, второй группы - 350 адолескариевпарамфистом, третьей группы - 15 тыс. инвазионных личинок гемонхом + 15 тыс. личинок нематодир +15 тыс. личинок хабертий (ассоциация нематод). Через 90 суток после экспериментального инвазирования животных дегельминтизировали фенбендазолом с кормом, однократно, индивидуально по 40 мг/кг по ДВ. Бактериологические исследования проводились после убоя животных на 30 - 60 - 90-е сутки инвазии и на 60 - 120-е сутки после дегельминтизации. Предметом исследования было содержимое ободочной кишки в течение 1 часа после убоя животных. Установлено, что при паразитировании фасциол, парамфистом и ассоциаций нематод (гемонхусы + нематодиры + хабертии) в желудочно-кишечном тракте крупного рогатого скота резко увеличивается факультативная микрофлора при значительном уменьшении индигенной, что характерно для дисбактериоза. Выявлено, что дисбактериоз сильно выражен при инвазии фасциолами, умеренно - при инвазии парамфистомами и ассоциацией нематод.
Ключевые слова: крупный рогатый скот, гельминтозы, микрофлора, дисбактериоз.
Для цитирования: Бобкова Г.Н., Иванюк В.П., Кривопушкина Е.А. Динамика микрофлоры кишечника молодняка крупного рогатого скота при гельминтозах // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2022. № 2 (94). С. 214 - 218. https://doi.org/10.37670/2073-0853-2022-94-2-214-218.
Original article
Dynamics of the intestinal microflora of young cattle in helminthosis
Galina N. Bobkova1, Vasily P. Ivanyuk2, Elena A. Krivopushkina2,
1 Bryansk State Agrarian University, Bryansk, Russia
2 Moscow State Academy of Veterinary Medicine and Biotechnology - MVA by K.I. Scryabin, Moscow, Russia
Abstract. The article analyzes the formation of the parasitic system in the intestines of young cattle with helminthiasis. For the experiment, 80 gobies of 6-13 months of age were selected, which were divided into 4 groups. At the age of 6 months, the animals of the first group were experimentally fed once with 200 adoles-cariafascioles per head, the second group - 350 adolescariaparamphists, the third group - 15 thousand invasive larvae of hemonchomas + 15 thousand larvae of nematodes + 15 thousand larvae of habertia (association of nematodes). 90 days after the experimental invasion, the animals were deworming with fenbendazole with food, once, individually at 40 mg / kg for DV. To conduct a bacteriological study, animals were slaughtered, 3 heads from each group on the 30-60-90 day of invasion and on the 60-120 day after deworming. For the study, the contents of the colon were taken within 1 hour after the slaughter of the animals. When parasitizing with fas-ciolas, paramphists and nematode associations (hemonchuses + nematodiruses + habertia) in the gastrointestinal tract of cattle, the facultative microflora sharply increases with a significant decrease in indigenous, which is characteristic of dysbacteriosis, which is strongly pronounced with invasion by fascioli, and moderately - with invasion association of nematodes.
Keywords: cattle, helminthiasis, microflora, dysbiosis.
For citation: Bobkova G.N., Ivanyuk V.P., Krivopushkina E.A. Dynamics of the intestinal microflora of young cattle in helminthosis. Izvestia Orenburg State Agrarian University. 2022; 94(2): 214-218. (In Russ.). https://doi. org/10.37670/2073-0853-2022-94-2-214-218.
В естественных условиях животные часто подвергаются заболеваниям паразитарной этиологии [1 - 13]. Из паразитозов крупного рогатого скота в первую очередь выявляют гельминтозы пищеварительного тракта, которые способны нарушать микробное взаимоотношение в организме хозяина, тем самым создавая различные нарушения функционального характера [5 - 11].
Сразу после рождения животного микроорганизмы заселяют пищеварительный тракт, поэтому
состав микробиоценоза желудочно-кишечного тракта клинически здоровых животных многочисленный и постоянный. Различные патологические состояния инвазионного характера изменяют количественные и качественные характеристики популяций микрофлоры в организме хозяина, нарушая дисбаланс в микробной экосистеме. В результате в желудочно-кишечном тракте развивается дисбактериоз, который отягощает развитие заболевания гельминтозного характера.
Цель исследования - изучить аспекты формирования микропаразитоценозов в кишечнике молодняка крупного рогатого скота при гель-минтозах.
Материал и методы. Динамику микрофлоры кишечника молодняка крупного рогатого скота изучали на 80 бычках 6 - 13-месячного возраста, которых разделили на четыре группы. В 6-месячном возрасте животным I гр. экспериментально однократно скормили по 200 адолескариевфасци-ол на голову, II гр. - по 350 адолескариевпарам-фистом, III гр. - 15 тыс. инвазионных личинок гемонхом + 15 тыс. личинок нематодир + 15 тыс. личинок хабертий (ассоциация нематод). Спустя 90 сут. после экспериментального инвазирования животных дегельминтизировали фенбендазолом с кормом, однократно, индивидуально по 40 мг/ кг по ДВ. Бычки IV гр. были контрольными, их не подвергали заражению.
С целью проведения бактериологического исследования провели убой животных по 3 гол. из каждой группы на 30 - 60 - 90-е сут. инвазии и на 60 - 120-е сут. после дегельминтизации. Для бактериологического исследования брали содержимое ободочной кишки в течение 1 часа после убоя животных. В стерильных условиях готовили ряд последовательных разведений до 10-9, каждое разведение сеяли в объёме по 0,1 мл на МПА (для определения общего числа анаэробов), солевой МПА (стафилококков), на среду Блаурокка (бифидобактерии), на кровяной агар с колистином и налидиксовой кислотой (бактероиды), на среду Гарро (стрептококки), Вильсон -Блера (клостридии), на среду, предложенную ВНИИЖ (состоящую из глюкозы - 0,5, томатного сока - 0,05, агара - 1,5; для определения лакто-бацилл), на среду Эндо - кишечную палочку, на среду Чапека - грибы. Посевы инкубировали в термостате при температуре +37,5 °С в течение 18 - 24 час. в аэробных и анаэробных условиях для определения бактерий, при температуре +20...+22 °С в течение 4 сут. - для грибов.
С целью определения морфологических особенностей микробов, отношения их к окраске по Грамму, проводили микроскопические исследования. Определяя видовую принадлежность микробов у выделенных культур, изучали биохимические и морфологические свойства общепринятыми методами.
У изолированных из кишечника стафилококков, стрептококков, кишечной палочки изучали гемолитические свойства, способность выделять токсины, а также патогенность для белых мышей. Для этого суточные культуры изучаемых видов вводили белым мышам внутрибрюшинно по 500 млн микробных тел. Кроме того, E.coli, выделенные от здоровых и больных животных, типировали моновалентными агглютинирующими сыворотками.
Результаты и обсуждение. Анализируя состав микрофлоры ободочной кишки молодняка крупного рогатого скота 6 - 13-месяч. возраста, установили, что наименьшее число бактерий содержалось у животных 6 - 7-месяч., умеренное - 8 - 9-месяч. возраста, затем количественный состав микробной ассоциации не менялся, а в 12 - 13-месяч. возрасте он стабилизировался. Соотношение индигенной и факультативной микрофлоры у животных в возрасте 6 - 7 мес. составляло 96,2 % : 3,8 %, в 8 - 9 мес. - 97,2 % : 2,8 %, в 12 - 13 мес. - 97,4 % : 2,6 %.
Микробный пейзаж ободочной кишки был представлен стафилококками, которые варьировали от 3,5 ± 0,18 до 4,2 ± 0,19 logKOE в 1 г содержимого, стрептококками - от 1,9 ± 0,18 до
2.5 ± 0,29, кишечной палочкой - от 3,4 ± 0,11 до
4.6 ± 0,38, протеем - от 0,12 ± 0,06 до 0,15 ± 0,09, клостридиями - от 0,13 ± 0,02 до 0,15 ± 0,04, грибами - от 1,14 ± 0,06 до 1,55 ± 0,18, лакто-бациллами - от 7,16 ± 0,27 до 7,81 ± 0,31, би-фидобактериями - от 6,2 ± 0,27 до 7,55 ± 0,42 и бактероидами - от 2,12 ± 0,23 до 2,51 ± 0,24 log КОЕ в 1 г содержимого.
Качественный состав микрофлоры был довольно стабилен у клинически здоровых бычков. В ободочной кишке агельминтных животных выделяли представителей Staphylococcus albus. Из изученных 24 культур 42,3 % были патогенны для белых мышей. Более патогенными штаммами являлись Staph.au-reus - из 26 изученных культур 58 % обладали патогенностью для мышей и Staph.citreus - из 23 культур - 82 %. Staph. saprophyticus и Staph. cereusflavus не вызывали побочных влияний на организм лабораторных животных. За период наблюдений нами были изучены 157 культур стафилококков, из которых 31,2 % были патогенны для белых мышей.
Из 10 видов стрептококков изоляты Streptococcus faecalis, Str. faecium, Str. cinereus, Str. jodophilus, Str. termophilus не обладали патогенностью для белых мышей. Патогенность видов Str. bovis, Str. viridans, Str.epidemicus варьировала в пределах от 25 до 75 %. Необходимо отметить, что виды Str. pyogenes, Str. haemolyticus при вну-трибрюшинном введении вызывали 100%-ную гибель белых мышей.
Из 100 изученных культур кишечника агель-минтных бычков мы изолировали кишечную палочку серогрупп 015, 0101, 0117, 0141, 08, 09, 078, 086. Представители серогрупп 015, 0101, 0141 не обладали патогенностью для белых мышей. 100%-ную гибель лабораторных животных вызывали серогруппы 08, 09, 078 и 086.
Небольшим числом представлены были представители условно-патогенной микрофлоры в ободочной кишке, такие, как протей, клостридии, а также грибы.
Большую роль в балансе микробного пейзажа играет индигенная микрофлора, которую представляли лактобациллы, бифидобактерии и бактероиды. Наименьшее число представителей индигенной микрофлоры встречалось в кишечнике бычков 6 - 9-месяч. возраста, наибольшее -11 - 13-ме сяч. возраста.
Установлено, что дисбаланс микрофлоры кишечника у молодняка крупного рогатого скота при фасциолёзе является более глубоким, чем при парамфистомозе и ассоциации нематод. Так, на 30 - 90-е сут. инвазии в содержимом ободочной кишки суммарное количество стрептококков увеличилось в сравнительном аспекте с показателями здоровых животных в 10,6 раза, кишечной палочки - в 4,7 раза, протея - в 70,2 раза, клостридий - в 9,5 раза, грибов - в 4,2 раза, но уменьшилось стафилококков в 1,8 раза лактобацилл - в 4,9 раза, бифидобактерий - в 4,2 раза, бактероидов - в 3,8 раза. За данный период протекания фасциолёза в острой и хронической фазе соотношение индигенной и факультативной микрофлоры составляло 95,2 % : 4,8 %. Качественный состав микрофлоры также существенно отличался от контрольных значений.
После проведения дегельминтизации фен-бендазолом у переболевших животных состав микробиоценоза значительно улучшился. Однако на 120-е сут. лечения в составе микрофлоры ободочной кишки встречались в большом количестве представители факультативной микрофлоры (стрептококки, кишечная палочка, протей, клостридии). За это время состав индигенной микрофлоры у переболевших животных значительно увеличился, но он все ещё не достигал уровня интактных животных.
При парамфистомозе у экспериментально инвазированных бычков значительное изменение микробиоценоза ободочной кишки наблюдалось через 30 сут. инвазии. Этот период совпадал с развитием острой фазы болезни, когда молодые трематоды паразитируют в толще стенки двенадцатиперстной кишки. В этот период в ободочной кишке больных животных по сравнению с контрольными аналогами общее число стафилококков увеличилось на 1,4 %, стрептококков - на 87,5 %, кишечной палочки - на 63,2 %, протея - в 16,3 раза, клостридий - в 15,8 раза, грибов - в 1,52 раза. В это время уменьшилось количество индигенной микрофлоры: лактобацилл - на 16,2 %, бифидобактерий - на 5,38 %, бактероидов - на 9,72 %, а соотношение облигатной (индигенной) и факультативной микрофлоры у больных животных составляло 97,2 % : 2,7 %.
При хронизации инвазии, когда парамфи-стомы паразитируют в рубце (60 - 90-е сут. инвазии), суммарное общее число стафилококков в ободочной кишке больных животных было больше на 21,6 %, стрептококков - на 160,2 %,
кишечной палочки - на 72,8 %, протея - в 34,2 раза, клостридий - в 25,7 раза, грибов - в 1,4 раза, но меньше было лактобацилл на 59,6 %, бифидобактерий - на 42,3 %, бактероидов - на 28,5 %, чем у здорового молодняка. Соотношение индигенной и факультативной микрофлоры кишечника варьировало в диапазоне 96,2 % : 3,8 %. Качественные изменения в составе микрофлоры были менее выражены, чем при фасциолёзе.
На 120-е сут. после освобождения от парам-фистом состав микробиоценоза ободочной кишки у переболевших животных постепенно улучшался и по многим показателям достигал практически уровня интактных животных.
При ассоциированном течении гельминтов (гемонхусы + нематодиры + хабертии) нарушался дисбаланс в микробной экосистеме у молодняка крупного рогатого скота. Так, на 30 - 60 - 90-е сут. инвазии общее число стафилококков было соответственно на 12,2 - 14,9 - 16,5 %, стрептококков - в 2,6 - 2,9 - 3,3 раза, кишечной палочки - в 1,2 - 1,4 - 1,5 раза, протея - в 12,4 - 21,7 - 22,2 раза, клостридий - в 11,6 - 21,4 - 23,5 раза, грибов - на 12,4 - 18,6 - 22,4 % больше показателей интактных бычков. Что касается индигенной микрофлоры, то количество лакто-бацилл было на 19,2 - 22,4 - 31,7 %, бифидобактерий - на 27,6 - 19,2 - 31,9 %, бактероидов - на 18,3 - 24,8 - 16,2 % меньше показателей контрольных аналогов. Соотношение индигенной и факультативной микрофлоры кишечника животных варьировало в пределах 95,8 % : 4,2 %.
В кишечнике бычков при микстинвазии нематодами все 47 выделенных культур Staph. aureus и 32 культуры Staph. citreus вызывали гибель белых мышей. Далее по патогенности для лабораторных животных были виды Staph. albus (изучены 42 культуры, 24 - патогенны для мышей) и Staph. epidermides (изучены 32 культуры, патогенны 5 культур). Не оказывали патогенное влияние на мышей культуры Staph. saprophyticus (все 32 культуры) и Staph. flavus (все 27 культур).
Из стрептококков в кишечнике крупного рогатого скота непатогенными для белых мышей были культуры Streptococcus faecalis (14), Str. faecium (12), Str. cinereus (10), Str. jodophilus (12), Str. termophilus (2). Высокопатогенными для мышей (100%-ная гибель) оказались культуры Str. haemolyticus (16), Str. bovis (15), Str. viridans (12) и Str. pyogens (15). Менее патогенным был вид Str. epidemicus (9 культур, 33,3 %).
Из кишечника подвергнутых экспериментальному заражению нематодами бычков мы изолировали кишечную палочку. Серогруппы 015 (изучено 16 культур), 0101 (11 культур), 0141 (14 культур) были непатогенными для белых мышей. 100%-ную гибель мышей вызывали следующие серогруппы кишечной палочки: 08 (9 культур),
09 (6 культур), 078 (10 культур), 086 (12 культур), 0117 (6 культур).
После проведённой дегельминтизации микрофлора кишечника у переболевших животных постепенно улучшалась, однако она отличалась от таковых у контрольных, агельминтных животных.
Вывод. При паразитировании в организме хозяина трематод и нематод в его кишечнике резко возрастает факультативная микрофлора, которая представлена стафилококками, стрептококками, кишечной палочкой, протеем, клостридиями и грибами. Это приводит к нарушению колонизации кишечника индигенной микрофлорой (лактобациллами, бифидобактериями, бактероидами и др.), что характерно для дисбактериоза. Дисбактериоз кишечника у бычков сильно выражен при инвазии фасциолами, умеренно - при инвазии парамфистомами и ассоциацией нематод (гемонхами, нематодирами и хабертиями).
Список источников
1. Бибик О.И., Терентьева З.Х. Причины и особенности распространения гельминтозоонозов в городской и сельской местности // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2022. № 1 (93). С. 191 - 197.
2. Оценка эффективности и биобезопасности новой антигельминтной композиции Эхиноцид Ф при лечении кистозного эхинококкоза овец / Р.Б. Биттиров, А.М. Бит-тиров, З.Х. Терентьева и др. // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2021. № 2 (88). С. 181 - 185. https://doi.org/10.37670/2073-0853-2021-88-2-181-185.
3. Домацкий, В.Н. Распространение, терапия и профилактика гельминтозов лошадей в Российской Федерации // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2021. № 3 (89). С. 196 - 199. https://doi. org/10.37670/2073-0853-2021-89-3-196-199.
4. Начева Л.В., Акбаев Р.М. Патоморфология тонкого отдела кишечника овец при хасстилезиозе после терапии антгельминтными препаратами // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2021. № 6 (92). С. 228 - 233. https://doi.org/10.37670/2073-0853-2021-92-6-228-233
5. Абдуллаев Х.С. Формирование паразитарной системы в организме крупного рогатого скота и меры борьбы с паразитозами в Нечернозёмной зоне РФ: авто-реф. дис. ... д-ра ветеринар. наук. Иваново, 2007. 50 с.
6. Байсарова З.Т., Айсханов С.Т. Закономерности формирования паразитоценозов у крупного рогатого скота при стойлово-пастбищном содержании // Российский паразитологический журнал. 2016. Т. 36. Вып. 2. С. 131 - 134.
7. Влияние альбендазола на микрофлору кишечника / И.Г. Гламаздин, Н.Ю. Сысоева, Г.Л. Верховская и др. // Международный научно-исследовательский журнал. 2016. № 11-2 (53). С. 153 - 155.
8. Воздействие неоаскаридозной инвазии на микрофлору тонкого кишечника спонтанно инвазированных телят / Д.А. Долбин, М.Х. Лутфуллин, А.М. Идрисов и др. // Учёные записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. 2013. Т. 216. С. 111 - 114.
9. Волков А.Х. Методы и средства борьбы с ассоциативными инвазионными болезнями крупного рогатого скота: автореф. дис. ... д-ра ветеринар. наук. Иваново, 2001. 46 с.
10. Динамика микрофлоры кишечника у крупного рогатого скота при моно- и микстинвазии трематодами / А.Ю. Гудкова, Ю.Ф. Петров, Х.С. Абдуллаев и др. // Труды ВИГИС. 2006. Т. 42. С. 114 - 120.
11. Иванюк В.П. Формирование паразитарной системы в организме свиней и меры борьбы с парази-тозами в хозяйствах Нечернозёмной зоны Российской Федерации: дис. ... д-ра ветеринар. наук. Иваново, 2006. 320 с.
12. Колесников В.И., Четвертнов В.И. Сравнительная эффективность препаратов галокур и парофор 70 для терапии телят при криптоспоридиозе // Международный вестник ветеринарии. 2021. № 3. С. 79 - 83.
13. Кривопушкина Е.А. Лабораторная диагностика гельминтозов животных. Брянск: Издательство Брянской ГСХА, 2013. 40 с.
References
1. Bibik O.I., Terent'eva Z.Kh. Causes and features of the spread of helminthozoonoses in urban and rural areas. Izvestia Orenburg State Agrarian University. 2022; 93(1): 191-197.
2. Evaluation of the effectiveness and biosafety of the new anthelmintic composition Echinocide F in the treatment of cystic echinococcosis in sheep / R.B. Bittirov, A.M. Bittirov, Z.Kh. Terentyeva et al. Izvestia Orenburg State Agrarian University. 2021; 88(2): 181-185. https:// doi.org/10.37670/2073-0853-2021-88-2-181-185.
3. Domatsky V.N. Distribution, therapy and prevention of helminthiases in horses in the Russian Federation. Izvestia Orenburg State Agrarian University. 2021; 89(3): 196-199. https://doi.org/10.37670/2073-0853-2021-89-3-196-199.
4. Nacheva L.V., Akbaev R.M. Pathomorphology of the small intestine of sheep with hastilesia after therapy with anthelmintic drugs. Izvestia Orenburg State Agrarian University. 2021; 92(6): 228-233. https://doi.org/10.37670/2073-0853-2021-92-6-228-233
5. Abdullaev Kh.S. Formation of the parasitic system in the body of cattle and measures to combat parasitosis in the Non-Chernozem zone of the Russian Federation: abstract dis. ... Dr. Vet. Sciences. Ivanovo, 2007. 50 p.
6. Baysarova Z.T., Aishanov S.T. Patterns of the formation of parasitocenoses in cattle with stall-pasture content. Russian Journal of Parasitology. 2016; 36(2): 131-134.
7. Effect of albendazole on the intestinal microflora / I.G. Glamazdin, N.Yu. Sysoeva, G.L. Verkhovskaya et al. International Research Journal. 2016; 53(11-2): 153-155.
8. Impact of neoascaris infestation on the microflora of the small intestine of spontaneously infested calves / D.A. Dolbin, M.Kh. Lutfullin, A.M. Idrisov et al. Scientific notes of the Kazan State Academy of Veterinary Medicine. N.E. Bauman. 2013; 2166: 111-114.
9. Volkov A.Kh. Methods and means of combating associative invasive diseases in cattle: abstract dis. ... Dr. Vet. Sciences. Ivanovo, 2001. 46 p.
10. Dynamics of intestinal microflora in cattle with mono- and mixed invasion by trematodes / A.Yu. Gudkova, Yu.F. Petrov, Kh.S. Abdullaev et al. Proceedings of VIGIS. 2006; 42: 114-120.
11. Ivanyuk V.P. Formation of the parasitic system in the body of pigs and measures to combat parasitosis in the farms of the Nonchernozem zone of the Russian Federation: dis. ... Dr. Veterinary sciences. Ivanovo, 2006. 320 p.
12. Kolesnikov V.I., Chetvertnov V.I. Comparative efficacy of Halokur and Parophor 70 preparations for the treatment of calves with cryptosporidiosis. International Veterinary Bulletin. 2021; 3: 79-83.
13. Krivopushkina E.A. Laboratory diagnosis of helminthiases in animals. Bryansk: Publishing House of the Bryansk State Agricultural Academy, 2013. 40 p.
Галина Николаевна Бобкова, кандидат биологических наук, доцент, olesyabobkova291101@mail.ru, https://orcid.org/0000-0002-8212-0051
Василий Павлович Иванюк, доктор ветеринарных наук, профессор, vpivanuk@mail.ru, https://orcid.org/0000-0001-8439-1632
Елена Андреевна Кривопушкина, кандидат биологических наук, доцент, krivopushkina@yandex.ru, https://orcid.org/0000-0003-2527-3884
Galina N. Bobkova, Candidate of Вю^у, Associate Professor, olesyabobkova291101@mail.ru, https://orcid.org/0000-0002-8212-0051
Vasily P. Ivanyuk, Doctor of Veterinary Sciences, Professor, vpivanuk@mail.ru, https://orcid.org/0000-0001-8439-1632
Elena A. Krivopushkina, Candidate of Вю^у, Associate Professor, krivopushkina@yandex.ru, https://orcid.org/0000-0003-2527-3884
Вклад авторов: все авторы сделали эквивалентный вклад в подготовку публикации. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Contribution of the authors: all authors have made an equivalent contribution to the preparation of the publication. The authors declare no conflict of interests.
Статья поступила в редакцию 18.01.2022; одобрена после рецензирования. 07.02.2022; принята к публикации 01.03.2022.
The article was submitted 18.01.2022; approved after reviewing 07.02.2022; accepted for publication 01.03.2022. -♦-
Научная статья
УДК 619:616.995.42:636.92
doi: 10.37670/2073-0853-2022-94-2-218-223
Хейлетиеллёз кроликов, вызванный клещами Cheyletiella parasitivorax (Megnin, 1878), (Trombidiformes: Cheyletidae)
Рамазан Магаметович Акбаев, Илья Дмитриевич Колпаков,
Анастасия Димитриевна Филиппова
Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии -
МВА имени К.И. Скрябина, Москва, Россия
Аннотация. Представлены результаты исследования, направленного на диагностику хейлетиеллёза кроликов. Дано описание клинических признаков, симптомов болезни, определена интенсивность по-ражённости хейлетиеллами животных. Всего было обследовано 36 животных, из которых у 28 особей был диагностирован хейлетиеллёз, вызванный тромбидиформными клещами вида Cheyletiella parasitivorax. Экстенсивность инвазии составила 77,7 %. У 3 кроликов выявлена сильная степень поражённости: количество клещей, извлечённых с обследуемого участка тела животных, составило более 100 экз. У 9 особей установлена умеренная степень поражённости: количество клещей, извлечённых с обследуемого участка тела, было до 100 экз., у 16 животных - слабая степень поражённости, так как с обследуемого участка тела были извлечены единичные экземпляры клещей.
Ключевые слова: кролики, хейлетиеллы, Cheyletiella parasitivorax, клещи.
Для цитирования: Акбаев Р.М., Колпаков И.Д., Филиппова А.Д. Хейлетиеллёз кроликов, вызванный клещами Cheyletiella parasitivorax (Megnin, 1878), (Trombidiformes: Cheyletidae) // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2022. № 2 (94). С. 218 - 223. https://doi.org/10.37670/2073-0853-2022-94-2-218-223.
Original article
Cheyletiellosis of rabbits caused by mites Cheyletiella parasitivorax (Megnin, 1878), (Trombidiformes: Cheyletidae)
Ramazan M. Akbayev, Ilya D. Kolpakov, Anastasia D. Filippova
Moscow State Academy of Veterinary Medicine and Biotechnology -
MVA by K.I. Sc^abin, Moscow, Russia
Abstract. The results of a study aimed at diagnosing cheiletiellosis in rabbits are presented. A description of the clinical signs and symptoms of the disease is given, and the intensity of animals affected by cheiletiella is determined. A total of 36 animals were examined, of which 28 individuals were diagnosed with cheyletiel-
