УДК 636.4+636.2:615.37
С. Ю. Смоленцев S. Yu. Smolentsev
Марийский государственный университет, г. Йошкар-Ола Mari State University, Yoshkar-Ola
В. Романюк, С. Винницки V. Romanyuk, S. Vinnitski
Технолого-природоведческий институт, Фалента — Варшава Instytut Technologiczno-Przyrodniczy, Falentach - Warszawie
Г ИСТОЛОГИЧЕСКАЯ КАРТИНА В ПАРЕНХИМАТОЗНЫХ ОРГАНАХ СВИНЕЙ И КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА ПРИ ПРИМЕНЕНИИ ЛЕЧЕБНО-ПРОФИЛАКТИЧЕСКОГО ИММУНОГЛОБУЛИНА
Histologic Pattern in Parenchymatous Organs of Pigs and Cattle When Using Therapeutic Immunoglobulin
Результаты исследований показали, что внутримышечное введение препарата «Лечебно-профилактический иммуноглобулин» бычкам и свиньям из расчета 20 мл на животное, двукратно с интервалом 48 часов не вызывает структурных изменений в печени, почках, селезенке, миокарде, лимфатических узлах и скелетной мускулатуре.
The research findings have shown that intramuscular introduction of a medication “Therapeutic Immunoglobulin” to bull-calves and pigs in the amount of 20ml per animal twice with the interval of 48 hours does not cause structural changes in a liver, kidneys, a spleen, a myocardium, lymph nodes and skeletal muscles.
Ключевые слова: препарат, введение, печень, почки, селезенка, миокард, лимфатический узел, скелетная мускулатура.
Key words: medication, introduction, liver, kidneys, spleen, myocardium, lymph node, skeletal muscles.
В настоящее время проблема иммунной недостаточности у сельскохозяйственных животных выходит на первое место, особенно при переводе хозяйств на промышленную основу и создании комплексов с большой концентрацией поголовья животных на небольшой территории [1; 2; 3]. Это приводит к снижению естественной резистентности организма и появлению различных заболеваний, особенно у молодняка в первые месяцы жизни. Эти обстоятельства настоятельно требуют применения эффективных средств, направленных на устранение иммунодефицитных состояний и повышение резистентности организма животных [4; 5].
Наиболее актуальной в настоящее время является проблема возрастных иммунодефицитов, которые развиваются у животных особенно в неонатальный и молочный периоды [6]. Ослабление естественной резистентности и иммунологической реактивности организма является одной из главных причин распространения и неблагоприятного течения болезней различной этиологии [7; 8; 9].
Целью данного исследования явилось изучение влияния препарата «Лечебно-профилактический иммуноглобулин», разработанного ФГУ «Федеральный центр токсикологической и радиационной безопасности
животных», на гистологическую структуру внутренних органов свиней и бычков.
Материалы и методы. Научно-производственный опыт был проведен в СХА «Искра» Куженерского района, где были сформированы по 2-е группы бычков и свиней по 5 голов в каждой группе. Животным первых групп внутримышечно ввели лечебнопрофилактический иммуноглобулин из расчета 20 мл на животное, двукратно с интервалом 48 часов. Вторые группы служили контролем и содержались на обычном рационе. Через 30 дней провели убой бычков и свиней, для гистологических исследований брали кусочки печени, почек, миокарда, селезенки, лимфатических узлов и скелетной мускулатуры.
Гистологические препараты фиксировались в 10 % нейтральном формалине, обезвоживались в спиртах восходящей плотности, затем были залиты в парафиновые блоки. Гистологические срезы изготавливались толщиной 5-7 микрон, окрашивались гематоксилином и эозином, исследовались в проходящем свете на микроскопе «Leica DM 1000» с использованием масляной иммерсии. Фотографирование осуществлялось с помощью цифровой камеры «Nikon coolpix 4500».
Результаты исследований. Печень имеет дольчатую структуру, а в дольках распределены сосуды.
Красные прослойки соединительной ткани разграничивают дольки, которые на срезе имеют форму неправильных многоугольников. Капсула покрыта мезоте-лием. От капсулы отходят междольковые перекладины, образованные рыхлой соединительной тканью, богатой коллагеновыми волокнами. Соединительная ткань имеется преимущественно по ребрам долек (рис. 1).
Рис. 1 — Печень свиньи, окраска гематоксилином и эозином, х 210
В междольковой ткани у ребер долек встречается триада — разрезы междольковой вены, междольковой артерии и желчного протока, проходящие вместе. В междольковой ткани проходят также собиратель -ные вены, но их разрезы не сопровождаются артериями и протоком. Корковое вещество на препаратах выделяется канальцами, перерезанными в разнообразных направлениях и образующими почечный лабиринт, в котором заметны почечные клубочки (мальпигиевы тельца). В корковом веществе хорошо заметны извитые канальца, есть отрезки радиальных артерий и вен. В мозговое вещество заходят часть петель от нефро-нов, связанных с глубоко расположенными клубочка -ми; но преимущественно мозговое вещество состоит из прямых канальцев собирательных трубочек. Вокруг почечного клубочка расположено множество разрезов извитых канальцев (рис. 2).
Рис. 2 — Печень крупного рогатого скота, окраска гематоксилином и эозином, х 210
Капсула селезенки образована соединительной тканью с примесью гладких мышечных клеток. От капсулы отходят трабекулы. Хорошо выражены лимфа -тические фолликулы селезенки (мальпигиевы тельца), совокупность их составляет белую пульпу. Лимфатические фолликулы представляют собой шарообразные скопления лимфоцитов в ретикулярной ткани, образующей основу селезенки. В фолликулах видны раз -резы центральных артерий. Вся остальная часть паренхимы селезенки — красная пульпа. Пространство между капсулой, трабекулами и мальпигиевыми тельцами занимает красная пульпа; она образована ретикулярной тканью, в которой проходит сеть венозных синусоидных капилляров.
Рассматривая препарат при слабом увеличении, убеждаемся в дольчатом строении органа и в отсутст -вии у железы выводных протоков. Капсула из плотной соединительной ткани. От капсулы отходят междольковые соединительно-тканные прослойки; они сравнительно толсты, благодаря чему железа имеет резко выраженное дольчатое строение. В прослойках соединительной ткани проходят кровеносные и лим -фатические сосуды. От междольковых прослоек отходят внутридольковые прослойки соединительной ткани, а в них проходит густая сеть капилляров, хорошо заметных при сильном увеличении. Основную массу железы составляют железистые пузырьки или фолли -кулы. Они образованы однослойным кубическим эпителием . Разнообразная величина пузырьков зависит преимущественно от плоскости разреза.
Рис. 3 — Лимфатический узел крупного рогатого скота, лимфатический фолликул — переход к периферической зоне, окраска гематоксилином и эозином, х 420
В лимфатических узлах (рис. 3 и 4) четко выделялись мозговая зона, корковая зона. В корковой зоне были сформированы единичные фолликулы, у большей части из них имелся просветленный центр, у других центральная зона была заполнена лимфоцитами и не имела просветления. В фолликулах определялись лимфоциты разного уровня дифференцировки. Имелись малые лимфоциты, в мозговом слое они были
единичные, в периферической зоне более многочисленные. Можно было наблюдать фигуры митоза, причем каких-либо достоверных отличий по расположению и количеству делящихся клеток у контрольных и экспериментальных животных не выявлено.
Рис. 4 — Лимфатический узел свиньи, лимфатический фолликул — центр размножения, окраска гематоксилином и эозином, х 1000
Имеющиеся морфологические признаки являются проявлением динамического состояния лимфатических узлов. Какие-либо структурные отличия у контрольных и опытных животных не обнаружены.
Заключение. Анализируя данные гистоморфологи-ческих исследований, можно сделать вывод, что лечебно-профилактический иммуноглобулин не вызывает изменений в морфологии тканей изученных внутренних органов.
Литература
1. Бороздин Э. К., Клееберг К. В. Физиологические и генетические механизмы устойчивости животных к болезням // Сельскохозяйственная биология. 2007. № 10. С. 86-91.
2. Гугушвили H. H., Шевкопляс В. Н., Терехов В. И. Иммуностимулирующие препараты растительного происхождения // Материалы науч.-практ. конф., посвященной 55-летию Краснодарской НИВС. Краснодар, 2001. С. 77-79.
3. Плящент С. И. Повышение естественной резистентности организма животных — основа профилактики болезней // Ветеринария. 1997. № 6. С. 49-52.
4. Лебенгарц Я. З. Продуктивность, метаболизм, иммунологи -ческая реактивность крупного рогатого скота в зависимости от факторов кормления // Сельскохозяйственная биология. 2002. № 6. С. 96-106.
5. Passsive transferre of immunoglobulin G and preweaning health in holstein calves fed a commercial colostrum replacer / H. Swan, S. Godden, R. Bey, S. Wells, J. Fetrow, H. Chester-Jones // Journal of Dairy Science. Vol. 90. 2007. № 8. Р. 3857-3866.
6. Slanina L., Balun I., Bouda I. Zdrawie a produkcia teliat // Pri-roda. Bratislava. 2010. 387 s.
7. Korhonen H., Marnilla P., Gill H. Milc immunoglobulines and complement // British Journal of Nutrition. Vol. 84. 2009. Issue 1. S. 75-80.
8. Waldmann T. A. Immunotherapy: past, present and future // Nat. Med. № 3. 2003. P. 267-277.
9. Girardin S. E., Travassos L. H., Herve M. Peptidoglycan molecular requirements allowing detection by nod1 and nod2 // Biol. Chem. 2003. P. 417-422.