CC BY
8
В 1-й гоуппе выявляется некоторое преимущество посева в ЛПС перед посевом в ЩПС. Отсутствие значительной конкуренции в этой неингибиторной среде со стороны сопутствующей микрофлоры способствует развитию энтерококков, в то время как в ЩПС, видимо, необходима большая исходная М-концентрация микробных клеток для начала развития; при малом содержании в воде энтерококков эта концентрация может быть недостаточна. Установлено (Г. П. Калина, 1978), что при внесении достаточных доз клеток энтерококков интенсивность развития в ЩПС не ниже, чем в ЛПС, а чаще даже выше.
При несколько большей концентрации БГКП (а можно допустить, что и других сопутствующих микробов) во 2-й группе в 2 сериях из 4 уже наблюдался сдвиг в сторону более высокого индекса энтерококков при посеве в ЩПС, чем в ЛПС. В 3-й группе эта тенденция еще более усиливалась и, за исключением серии, в которой обе среды показали одинаковый результат, в остальных несомненно преимущество посева в ЩПС. Индексы энтерококков после обогащения в ЛПС здесь значительно отставали. Особенно велика разница в последней, наиболее загрязненной группе, где индексы энтерококков после обогащения в ЩПС на 2—3 порядка логарифмов превышают индексы в ЛПС.
Указанные различия были особенно выражены при усреднении индексов по абсолютным величинам с последующим переводом в логарифмы. Если в благополучных по санитарному состоянию водах отмечено лишь некоторое преимущество посева в ЛПС, то, чем в большей степени вода становится в санитарном отношении неблагополучной, тем ярче выявляется преимущество посева в ЩПС. Использование ЛПС значительно снижает индекс энтерококков и не дает истинного представления о степени загрязнения.
а следовательно, н степени санитарного и эпидемиологического неблагополучия.
Индекс энтерококков в источниках централизованного водоснабжения в соответствии с ГОСТом 17.1.3.03—77 определяется (п. 3.2.4) «коли-индексе более 10 000». Следовательно, при санитарном благополучии (коли-индекс в пределах 1000—10 000), т.е. тогда, когда использование ЛПС в качестве первого этапа исследования еще эффективно, индекс энтерококков определять вообще не требуется. Если же возникает необходимость в его определении (т. е. в водах с коли-индексом выше 10 000), применение обогащения в ЛПС резко занижает индекс энтерококков сравнительно с их действительным содержанием, установленным посевом в ингибиторную ЩПС.
На основании изложенного можно считать еще раз доказанным, что использование в качестве среды обогащения для определения индекса энтерококков ЛПС не может быть допущено в качестве одного из методов исследования воды поверхностных водоемов, служащей источником централизованного водоснабжения. В чистых водах такое исследование необязательно, в загрязненных водах, где определение индекса энтерококков необходимо, посев в ЛПС не дает желаемого эффекта и снижает результаты сравнительно с получаемыми при использовании ЩПС.
Литература. Калина Г. П. — Гиг. и сан., 1969,
№ 1, с. 54—57 Калина Г. П. — Там же, 1978, № 12, с. 58—61. Унифицированные методы исследования качества вод. М., 1975, ч. 4.
Поступила 10.09.80
УДК 613.63 + 613.4Я 11:678.74 5.842
Канд. мед. наук Н. К- Стацек
ГИГИЕНИЧЕСКИЕ ИССЛЕДОВАНИЯ МОДИФИЦИРОВАННОГО ПОЛИАКРИЛАМИДА И ТЕКСТИЛЬНЫХ МАТЕРИАЛОВ, АППРЕТИРОВАННЫХ ИМ
ВНИИ гигиены и токсикологии пестицидов, полимерных и пластических масс, Киев
Препаоаты ГПА-I и ГПА-V рекомендуются в качестве аппретирующих составов при окончательной отделке текстильных материалов, используемых для изготовления бытовой одежды (ткани бельевого ассортимента, рубашки, блузы, джинсовые, подкладочные ткани и др.) с целью п и-дания материалам и изделиям несминаемости, стабильности линейных размеров, грязеотталкивающих свойств.
ГПА-V — модифицированный полиакриламид, полученный полимеризацией водного раствора акриламида в присутствии в качестве модификатора аэросила А-175; ГПА-I — модифицированный полиакриламид, полученный полимеризацией водного раствора акриламида в присутствии в качестве модификатора смеси аэросила А-175 и алюмометилсиликоната натрия. ГПА-1 иГПА-V выпускаются в виде 6,5—9% геля. Содержание мономер, в техническом полиакриламиде не должно превышать 1,45%, т. е. 0,1% в 7—8% геле. Полиакриламид-гель содержит до 0,5% гипса (известковый гель) или до 18% сульфата аммония (аммонийный гель).
В качестве аппретирующего состава при окончательной отделке текстильных материалов применяется водный раствор ГПА-V или ГПА-I из расчета 50 г 8% геля 1 л воды, т. е. 0,4% раствор.
В литературе имеются данные о токсичности полимера полиакриламида при внутрибрюшинном введении. LDM при однократном поступлении 3,6—5,3 г/кг. В хроническом эксперименте выявлены выражанные и стойкие структурные изменения в семенниках самцов, повреждаю-
щее влияние на почки, нервную систему, периферическую кровь и печень при суммарной дозе 200 мг/кг. Суммарная доза, вызвавшая пороговые изменения, равна 20 мг/кг. Установлено, что полиакриламид в хроническом опыте вызывает нарушение функции и структуры органов воспроизведения у самцов и оказывает неблагоприятное воздействие на потомство. Не рекомендуется для эндопроте-зирования (Н. М. Перова).
Мономер акрнламид при поступлении в организм через кожу оказывает выраженное разорбтивное действие. Ориентировочная летальная доза при однократном поступлении для крыс 400 мг/кг, пороговая 240 мг/кг. В хроническом опыте акриламид в дозе 5 мг/кг вызывает ряд неблагоприятных изменений нервной системы и печени. Пороговая доза акриламида в хроническом опыте 0,5 мг/кг (Е. Е. Новикова).
Таким образом, полиакриламид и его мономер акриламид могут оказывать отрицательное действие при поступлении в организм через кожные покровы, что весьма важно, так как при контакте одежды, аппретированной раствором полиакриламида, с кожными покровами могут возникать условия для растворения аппретирующего состава выделяющейся потовой жидкостью и проникновения егс через кожу в организм человека.
В связи с этим для решения вопроса о возможности внедрения новых аппретирующих композиций в народно< хозяйство и быт, предупреждения их возможного небла гоприятного влияния на здоровье населения проведено все
стороннее гигиеническое исследование препаратов и тканей одежды, изготовленных с их применением. Нами изучены токсичность и местное действие на кожные покровы препаратов в опытах на крысах и морских свинках. Исследовали миграцию химических веществ из тканей, аппретированных ГПА-1 и ГПА-У, в воздух и водную среду, имитирующую потовую жидкость; местное, резорбтив-ное и сенсибилизирующее действие химических веществ, выделяющихся из тканей в водную среду (на крысах и морских свинках). Определяли физико-гигиенические показатели тканей, обработанных модифицированными по-лиакриламидами. Проводили микробиологические исследования тканей.
_ Результаты санитарно-химического исследования тканей показали, что в моделированных условиях из аппретированных материалов через 1 мес после изготовления и до их выветривания выделялись акриламид, аммиак, диэтиламин, формальдегид и этиленгликоль в концентрациях, не превышающих среднесуточную ПДК и допустимый уровень миграции веществ из строительных полимерных материалов. После выдерживания материалов в течение 2 нед при свободном доступе воздуха в жилище (18— 22 °С) и последующем изучении их в указанных условиях химические вещества либо определялись в концентрациях в 21/2—6 раз ниже первоначальных, либо не обнаруживались. Вероятно, выветривание способствовало удалению из тканей несвязавшихся мономеров и продуктов их превращения (диэтиламин).
В водных вытяжках из аппретированных тканей определяли те же вещества, что и в воздухе. При насыщенности 1 : 10 (г ткани: 1 см3 дистиллированной воды), температуре 37 С, экспозиции I и 3 сут в 1 л среды,имитирующей потовую жидкость, выявлено акриламида 3,5—5,6 мг, аммиака 2—3 мг, диэтиламина 0,5—1 мг, этиленгликоля 18—32 мг, формальдегид не обнаружен. После однократной стирки аппретированных тканей с мылом при 45— 50 С, полоскания и сушки миграция химических веществ из них вереду, имитирующую пот, снижалась в 2 — 21/2 раза.
Результаты токсикологических исследований препарата ГПА-У показали, что у крыс при аппликации в дозах от 1 до 6 г/кг гибели и выраженных явлений интоксикации не возникало, на коже отмечалась реакция в виде разлитой гиперемии. Токсичность и местное действие ГПА-1 и ГпА-У при многократном поступлении через кожу спины изучали с применением доз 500 и 100 мг/кг (концентрации 8 и 4%). При этом 8% препарат вызывал у крыс воспалительную реакцию, которая развивалась с 5—8-го дня_ и характеризовалась выраженной гиперемией, небольшой отечностью; с 17-го дня на фоне гиперемии появлялись папулезные высыпания, мацерация, разрешавшиеся шелушением к 30—35-му дню. Препарат в 4% концентрации вызывал подобные, но менее выраженные изменения, прекращавшиеся к 20-му дню эксперимента. Гибели животных и видимых проявлений интоксикации на протяжении 2 мес опыта не наблюдалось. Суммарная доза воздействия ГПА-1 и ГПА-У через кожу составила 22 и 4,4 г/кг соответственно. ГПА-У при эпикутанном воздействии в дозах 500 и 100 мг/кг через 1 мес вызывал значительное повышение (в I1/!—2 раза по сравнению с контролем) числа лейкоцитов, которое снижалось до уровня контроля после 2 мес аппликации. В лейкоцитарной формуле (через 1 мес) отмечались моноцитоз, относительный и абсолютный нейтро-филез, умеренно выраженная зернистость нейтрофилов. Наряду с этим наблюдались изменения суточного диуреза, повышение содержания хлоридов в моче (через 1 и 2 мес при обеих дозах) и белка в моче (через 2 мес при дозах 500 и 100 мг/кг), изменения каталазного индекса крови (спустя 1 мес при обеих дозах). Отмечено возрастание суммацион-но-порогового показателя через 1 и 2 мес при воздействии препарата из расчета 500 мг/кг (6,65±0,3 В. против 5,5± ±0,09 В. в контроле). Статистически достоверными оказались изменения относительной массы почек спустя 2 мес после воздействия ГПА-У в дозе 500 мг/кг. Изменения, близкие к описанным, наблюдались в аналогичных опытах с ГПА-1. У 6 крыс также проведены хвостовые аппликации
водной вытяжки из материала, аппретированного ГПА-У [полученной в условиях максимальной миграции химических веществ из тканей — при отношении 1 : 10 (г-см3), 3-суточном контакте ткани с водной средой и температуре 37 CJ. Экспозиция опыта — по 2 ч в течение 30 дней. При этом общее состояние животных по сравнению с контрольными, находившимися в аналогичных условиях, не изменялось, явлений раздражения кожи хвостов не наблюдалось. Изменений функционального состояния периферической крови, почек, нервной системы, печени, окислительно-восстановительных ферментов кровн, коэффициен- 9 тов массы органов не выявлено.
Таким образом, токсикологические исследования показали, что препараты ГПА-1 и ГПА-V малотоксичные, ма-локумулирующне соединения, оказывающие выраженное облигатное действие.
Проведены исследования с целью определения способности ГПА-V и химических веществ, выделяющихся из аппретированной ткани, оказывать кожно-раздражающее и сенсибилизирующее действие в эксперименте при эпикутанном поступлении. Морские свинки были разделены на 4 группы по 6 в каждой: животным 1-й группы наносили ГПА-V в чистом виде (8% концентрация), 2-й — ГПА-У в рабочей концентрации, используемой при аппретировании (0,4% водная эмульсия), 3-й — водную вытяжку из ткани, аппретированной 0,4% водной эмульсией препарата, 4-я группа служила контролем. Препарат и водную вытяжку в количестве 0,2—0,5 мл наносили на кожные покровы морских свинок в течение 21 дня с последующей аппликацией и скарификацией разрешающей дозы на противоположный метамер (О. Г. Алексеева и А. Л. Петке-вич). В качестве разрешающей дозы использовали ГПА-У в 4% концентрации и 10% раствор акриламида. У животных 1-й группы с 3—4-го дня возникали явления раздражения, гиперемия, небольшая отечность, которые к 8— 10-му дню уменьшались, а к 14—15-му дню исчезали. У животных 2-й и 3-й групп в течение 21 дня явлений местного действия не наблюдалось. После воздействия разрешающих доз положительной кожной пробы и реакции воспламенения у подопытных свинок не возникало. Изучение биохимических и клеточных реакций, характеризующих патохимическую и иммунологическую фазы аллергического процесса, показало, что в 1-й группе ГПА-V в 8% концентрации на 21-й день сенсибилизации и после применения разрешающей дозы вызывал статистически достоверное снижение гистаминопектического индекса сыворотки крови у большинства животных средние до 13—16% (в контроле он равен 24,8%). Положительными оказались реакции иммунокомпетентных клеток: специфической агломерации лейкоцитов, непрямого теста дегрануляции тучных клеток, реакции дробного высаливания непреци« цитирующего комплекса антиген — антитело (по Николаеву) — у всех или большинства животных после сенсибилизации и разрешающего воздействия. Это указывало на развитие сенсибилизации у животных при аппликации ГПА-V в 8% концентрации.
У 4 из 6 животных 2-й группы после 21 дня аппликации наблюдалась положительная реакция специфической агломерации лейкоцитов. У животных 3-й группы достоверно увеличенным после 21 дня и разрешающего воздействия оказалось количество гистамина; были положительными в оба срока наблюдения реакции специфической агломерации лейкоцитов, дегрануляции тучных клеток и Николаева в разведениях 1 : 20 и 1 : 40 у 2—3 животных.
Результаты проведенных исследований свидетельствовали о возможности развития скрытой сенсибилизации у животных при аппликации модифицированного полиакри-ламида и водных вытяжек из аппретированных им тканей.
Проведено опытное ношение лоскутов тканей, обработанных изучаемыми аппретами, добровольцами (по 5—6 человек в течение 3—6 дней). Изменений кожных покровов, которые могли бы указывать на кожно-раздражающее действие тканей, не наблюдалось. После опытного ношения лоскутов на плечевой поверхности кожи 6 испытуемых и изучения бактерицидной активности кожи (через 5, 10 и 15 мин контакта тест-культуры кишечной палочки с ко-
жей) по методу Н. Н. Клемпарской и Г. А. Шальновой показатель бактерицидных свойств кожи не имел достоверных изменений по сравнению с контролем. Не отмечено существенных изменений количества микрофлоры кожи в смывах и отпечатках с кожи и изучаемых тканей в опыте по сравнению с контролем. Нами изучены физические показатели, характеризующие влажностные, электростатические и теплозащитные свойства, необходимые для гигиенической оценки тканей и суждения о возможном течении процессов теплообмена и субъективных ощущениях у человека при использовании одежды из таких тканей. Установлено, что аппретирование тканей ГПА-1 и ГПА-У ухудшает их влажностные свойства (водоемкость, паро-проницаемость, гигроскопичность и др.) на 1—26% по сравнению с теми же тканями без обработки (на 22—20% снижается паропроницаемость, на 10% — гигроскопичность). Наряду с этим аппретирование не способствует накоплению на поверхности тканей статического электричества. Уровень статического электрического поля аппретированных тканей находится в пределах 0,002 — 0,12 кВ/см.
Выводы. 1. Модифицированный полиакриламид марок ГПА-1 и ГПА-У относится к малотоксичным, мало-кумулирующим соединениям, в 8 и 4% концентрации оказывает выраженное кожно-раздражающее действие.
2. Из тканей, аппретированных ГПА-1 и ГПА-У, в воздух мигрируют акриламид, диэтиламин, аммиак, эти-ленгликоль в допустимых концентрациях; эти вещества в значительных концентрациях содержатся в водных вы-
тяжках. Установлено сенсибилизирующее действие препаратов в 8% концентрации и химических веществ, выделяющихся из аппретированных тканей, которое проявляется изменениями биохимических и иммунологических реакций организма животных.
3. Испытуемые ткани не влияют на состояние микрофлоры кожи при опытном ношении и не оказывают раздражающего действия.
4. Аппретирование тканей ухудшает их сорбционные свойства на 1—26%.
5. ГПА-1 и ГПА-У можно рекомендовать для обработки пальтовых, костюмных, подкладочных тканей. Для решения вопроса об использовании данных аппретов для бельевых тканей необходимо проведение опытного ношения изделий, непосредственно контактирующих с кожей человека, большим числом испытуемых.
Литература. Алексеева О. Г., Петкевич А. Л. — Гиг. и сан., 1972, № 3, с. 64—67.
Клемпарская Н. Н., Шальнова Г. А. Аутофлора как индикатор радиационного поражения организма. М., 1966.
Новикова Е. Е. — Гиг. и сан., 1979, № 10, с. 73—74.
Перова Н. М. Токсикологическое изучение полимеров винилкапролактама и акриламида, предполагаемых к использованию в медицине, и их гигиеническая регламентация. Автореф. дис. канд. М., 1977.
Поступила 02.06.80
УДК 613.6:677.73-051
Кандидаты мед. наук Н. А. Жилова и Н. В. Мезенцева ГИГИЕНА ТРУДА В ПРОИЗВОДСТВЕ КАБЕЛЕЙ И ПРОВОДОВ
I Московский медицинский институт им. И. М. Сеченова
В настоящее время технология получения кабелей и проводов складывается из последовательных взаимосвязанных физико-химических процессов, отдельных механических операций и осуществляется в два этапа: изготовление проволоки и токопроводящих жил (прокат, волочение, скрутка, оплетка) и нанесение на провод или кабель различных покрытий (изоляция, оболочки, защитные покровы и др.) В кабельном производстве в качестве проводниковых материалов наиболее широко используются медь и алюминий. Для получения проволоки слитки этих металлов прокатывают до катанки, которую в свою очередь подвергают травлению и волочению. Из волочильного отделения проволока может поступать сразу в отделения наложения изоляции. Если же она должна наноситься на многопроволочный проводник, то из волочильного отделения подается на крутильные машины, где скручивается в жилы из 7—1300 проволок. Скрутка производится на крутильных машинах: со специальных приспособлений проволока поступает в калибры, скручивается и наматывается на приемные барабаны.
Наложение различных видов покрытий на проволоку, токопроводящую жилу придает проводниковым материалам свойства, позволяющие эксплуатировать кабельные изделия в различных условиях: под водой, в шахтах, пожароопасных помещениях и др. Оборудование, применяемое для этих целей, состоит из самых разнообразных устройств, которые обеспечивают нанесение покрытия: лаковых ванн, стеклообмотчиков, червячных прессов, сушильных печей, печей для расплавления свинца и др. Вместе с тем агрегаты имеют механизмы, одинаковые для любого вида оборудования, — приемные и отдающие устройства, тяговые приспособления, пульт управления. Технологический процесс нанесения изоляции, оболочек, защитных покровов заключается в том, что на движущийся проводник наносится материал определенного вида. Так, для на-
несения изоляции применяют эмальлаки, резину, стекловолокно, пластмассу и др., для получения оболочек — свинец, алюминий н др., для нанесения защитных покровов — проволоку и стальные ленты.
Гигиенические условия труда при изготовлении кабеля определяются характером производственного процесса. Многие технологические операции сопровождаются выделением тепла в рабочие помещения. К группе горячих цехов относятся прокатные цехи, в которых технологический процесс основан на термической обработке металла. Значительная часть тепла выделяется путем инфракрасного излучения, интенсивность которого колеблется в пределах 900—3600 ккал/м2 за 1 ч. Основными источниками выделения тепла в прокатных цехах следует считать нагревательные печи, обжимные клети, нагретые слитки и катанку (В. П. Гребенкина).
Другая группа производственных процессов — нанесение на провод или кабель покрытий — также предусматривает термический нагрев материала, применяемого для нанесения изоляции или оболочек (пластмасса, свинец, резина и др.). Для многих таких цехов весьма характерно воздействие на рабочих нагревающего микроклимата.
В качестве основных источников тепла (лучистого и конвекционного) следует назвать головки прессов, плавильные свинцовые ванны, сушильные печи, провод или кабель, подвергнутый термической обработке и др.
Воздействие на рабочих различных химических веществ наиболее выражено на втором этапе производственного процесса, при нанесении на провод или кабель различных покрытий. Наиболее многообразен химический фактор в цехах, где осуществляется наложение эмалевой и стекловолокнистой изоляции: в воздух рабочей зоны поступают ингредиенты лаков, пары растворителей, продукты термоокислительной деструкции лаков.
