CC BY
45References
1. Veremey, E.I. Primenenie oksidanta torfa pri boleznyakh v oblasti palcev u krupnogo rogatogo skota [An application of oxidant of peat at diseases of fingers in cattle] / E.I.Veremey, V.A.Zhurba //Veterinariya. - 2002. - № 8. - P. 41 -43.
2. Veremey, E.I. Etiopatogenez I sovremennye podkhody k lecheniyu gnoyno-nekroticheskikh processov v oblasti palcev I kopytec u krupnogo rogatogo skota [Etiopathogenesis and current approaches to treatment of purulent-necrotic processes in the area of cattle lingers and hooves ] / E.I.Veremey, V.A.Zhurba, V.A.Lapina //Veterinarny consultant. -2003.-№16.-P. 10-11.
3. Veremey, E.I. Lechenie korov pri gnoyno-nekroticheskikh processakh v oblasti palcev u krupnogo rogatogo skota [Treatment of cows at purulent-necrotic processes in the area of cattle fingers] / E.I.Veremey, V.A.Zhurba, V.A.Lapina // Veterinariya. - 2004. - № 3. - P. 39-41.
4. Profilaktika I lechenie krupnogo rogatogo skota pri gnoyno-nekroticheskikh porazheniyakh tkaney distalnoy chaste konechnostey [Prevention and treatment of cattle in purulent-necrotic affections of the distal part of limbs tissues ] / A.N.EIiseev, Yu.A.KIyuchkov, A.A.Stepanov, A.A.Chertkov//Veterinarnaya patologiya. - 2007. - № 3 (22). - P. 70-72.
5. Maryin, E.M. Ortopedicheskie zabolevaniya u korov [Orthopedic diseases in cows] / E.M.Maryin, VAErmolaev, P.I.Lyaschenko // Aktualnye problem veterinarnoy khirurgii: materialy Mezhdunar. nauch. konf. [Actual problems of veterinary surgery: proceedings from the Int. sci. conf.] - Ulyanovsk: Ulyanovsk State Agricultural Academy, 2011. - P. 95-100.
6. PersaevaN.S.Patogeneticheskayaterapiya gnoyno-nekroticheskikh yazv kopytec u korov [Pathogenetic therapy of purulent-necrotic hooves abscesses in cows] / N.S.Persaeva, F.N.Chekhodaridi // Izvestiya Gorskogo gosudarstvennogo agrarnogo universiteta. - 2014. - Vol. 51, Part 4. - P. 180-184.
7. Chekhodaridi, F. N. Etiopatogeneticheskayaterapiyagnoyno-nekroticheskikhyazvkopytec u korov [Etiopathogenetic therapy of purulent-necrotic hooves abscesses in cows] / F.N.Chekhodaridi, N.S.Persaev, M.S.Gugkaeva // Ippologiya I veterinariya. - 2016. - № 1 (19). - P. 116-120.
УДК: 636.2.053:615.272.6:612.017.1
ГЕМАТОЛОГИЧЕСКИЕ И БИОХИМИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ КОРОВ И ПОЛУЧЕННЫХ ОТ НИХ ТЕЛЯТ ПРИ ИММУНОМОДУЛИРУЮЩЕЙ И ГОРМОНАЛЬНОЙ СТИМУЛЯЦИИ
С.С.Терентьев - аспирант.
ФГБОУВО «Нижегородская государственная сельскохозяйственная академия», г.Н.Новгород (603107,
Нижний Новгород, пр. Гагарина, 97; e-mail: sergei.terentev. [email protected]).
Цель исследования - изучение влияния полиоксидония в сочетании с гормональной стимуляцией синтетическим аналогом эстрона на морфологический и биохимический состав крови коров при введении в последнюю неделю стельности. Для этого были сформированы две группы животных - контрольная и опытная, по 20 коров в каждой. В ходе эксперимента у коров опытной группы на момент отела в крови обнаружен больший рост числа лейкоцитов 48,89% за счет увеличения числа сегментоядерных нейтрофилов в 3,4 раза и небольшого увеличения числа лимфоцитов. В сыворотке крови коров опытной группы на момент отела было больше общего белка, за счет альбуминов, а-глобулинов и у-глобулинов (объем которого увеличился на 75,29%). Первая порция молозива содержала объем иммуноглобулинов на 27,74% больше по сравнению с коровами контрольной группы. Телята, полученные от коров наблюдаемых групп, при рождении имели различия в морфологическом составе крови, а биохимические показатели различались незначительно. Через час после выпойки первой порции молозива в крови телят опытной группы объем у-глобулина увеличился более чем в 2 раза, а на следующие сутки ещё в 6,9 раза. Спустя сутки после отела объем у-глобулинов в сыворотке крови подопытных выше на 59,07% по сравнению с контролем. Таким образом, можно заключить, что описанная стимуляция иммунитета коров-матерей, способствует повышению содержания иммуноглобулинов в молозиве и улучшает состояние организма коров-матерей после отела. На физиологическое состояние телят влияет своевременная выпойка полученного от коров-матерей молозива, что оказывает усиливающее действие на защитные системы организма теленка и увеличивает скорость обменных процессов.
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА: коровы, телята, колостральный иммунитет, азоксимера-бромид, эстрон.
DOI: 10.33632/1998-698Х.2019-3-34-41
34
НАУЧНО-ПРОИЗВОДСТВЕННЫЙ ЖУРНАЛ
№3/2019
ЯА ЕТЕРННЛРНЫЙ
ДИАГНОСТИКА БОЛЕЗНЕЙ, ТЕРАПИЯ И МОРФОЛОГИЯ ЖИВОТНЫХ рач
Основной проблемой молочного животноводства остается получение здорового молодняка. Здоровое потомство с высокой жизнеспособностью можно получить только от здоровой коровы. Необходимо проявить к новорожденным особое внимание в первые часы и дни жизни. Известно, что переболевшие в раннем возрасте животные малопригодны или совсем непригодны для дальнейшего воспроизводства. Пассивная передача материнских антител плодам в утробный период во многом определяется типом плаценты. У жвачных животных син-десмохориальный тип плаценты состоящий из шести слоев и не пропускает антитела [9]. Во многих работах отмечено значение первой порции молозива, полученного от коровы-матери сразу после отела [12, 13]. Оно содержит иммуноглобулины как 1дА, 1дМ, 1д(3, ЮР-1, лактоферрин и лизоцим. А также значительное количество питательных веществ, такие как жирорастворимые витамины, витамин В12 и железо [11, 12], белок. Для создания колострального иммунитета теленка высокого качества важное значение имеет своевременная выпойка молозива. При этом происходит стимуляция роста кишечных эпителиальных клеток [14] и развития кишечных функций. Кроме того теленок теряет способность усваивать иммуноглобулины через кишечник.
Длительность колострального иммунитета непродолжительная. В сыворотке крови теленка 1дМ уже в 3-9-дневном возрасте начинает снижаться, 1дА понижается с 4-6 дня жизни, в то время как 1дб, выполняющие противоинфекционную функцию, уменьшаются лишь к 18-21 дню. По мере исчезновения колостральных антител происходит постепенное формирование собственной иммунной системы организма. Также в этот период жизни теленка устанавливается физиологический уровень бифидо- и лакгофлоры кишечника. До этого времени кишечный микробиоценоз еще окончательно не сформирован и колонизационная резистентность кишечника находится на невысоком уровне [7,8].
Важную роль в организме животного играют женские половые гормоны - эстрогены (эстрон, эстриол, эстрадиол). Структурами-мишенями для эстрогенов являются половые органы - яичники, яйцеводы, матка, влагалище, молочные железы. Эстрогены стимулируют их рост и развитие. Под действием эстрогенов обнаружен рост протоков, долей и альвеол молочных желез [4, 14]. Кроме того, эстрогены участвуют в регуляции обменных процессов, повышают содержание фосфолипидов в крови, увеличивают синтез белков и накопление мышечной ткани, повышают сопротивляемость организма к вредным воздействиям, усиливают регенерацию при повреждении тканей, улучшают высшую нервную деятельность. Молекулярные механизмы биологического действия эстрогенов заключаются в их проникновении в клетки тканей мишеней, где они связываются со специфическим внеядерным белком эстрофилином, образуя гормоно-рецептив-ный комплекс. После активации он транспортируется
в ядро клетки, где в результате связывания с ядерным акцептором изменяется биосинтез РНК и развиваются изменения характерные для ткани чувствительной к гормону, активируется синтез белка [3,4].
Синэстрол является синтетическим аналогом женского полового гормона эстрона. Обладает действием эндогенного эстрона вырабатываемого женским организмом. Синэстрол по эстрогенной активности равноценен фолликулину 10 ООО ЕД. Экскреция производится почками, в зависимости от физиологического состояния (отдельные фазы менструального цикла), возраста и других условий скорость выведения различна. Оптимальные дозы препарата были экспериментально установлены рядом авторов [2,5,10].
Действующим веществом Полиоксидония является азоксимера бромид. Он является истинным им-муномодулятором который: повышает пониженную и снижает повышенную иммунологическую активность; воздействует на фагоциты и на натуральные киллеры; стимулирует выработку И-1Р, И-6, ТМР-а и 3-интерферонов; стимулирует процесс фагоцитоза, при недостаточности гуморального иммунитета - продукцию антител; восстанавливает иммунные реакции при вторичных иммунодефицитных состояниях; увеличивает резистентность организма в отношении локальных и генерализованных инфекций; обладает противовоспалительным действием; является детоксикантом, антиоксидантом, стабилизирует клеточные мембраны.
Материалы и методы. Опыт проведен в условиях СПК «Нижегородец», расположенный в Дальне-константиновском районе Нижегородской области, в летний период (июнь-август) 2018 года. Объектом исследования послужили коровы голштинской породы и полученные от них телята. Предметом исследования стали гематологические и биохимические показатели проб крови, полученных от коров и народившихся от них телят. Из отобранных коров было сформировано две группы по двадцать животных в каждой: контрольная и опытная. Группы формировались из клинически здоровых животных по принципу пар-аналогов. При отборе животных для эксперимента учитывали следующие параметры: количество стельностей (2-3), объем предыдущей лактации, количество осеменений, физиологическое состояние (отбирали клинически здоровых животных). У коров контрольной группы за 3-9 дней до отела были взяты пробы крови для гематологического и биохимического исследования. После этого внутримышечно вводили физиологический раствор объемом 2 мл. У коров опытной группы также, были взяты пробы крови и внутримышечно введен препарат Полиоксидоний в дозе 6 мг, а подкожно - Синэстрол 2% в дозе 1 мл. Непосредственно после отела у коров брали вторую пробу крови, а также пробу молозива для лабораторного исследования. У полученных телят кровь отбирали в первые 30 мин жизни, затем через 1 ч после выпойки молозива и спустя сутки от рождения. Народившимся телятам
выпаивали молозиво от коровы-матери в объеме 2,5 л при помощи дренчер зонда.
Лабораторные исследования крови проводили на гематологическом анализаторе )СГ 2000, Sysmex, Europe, GmbH. Содержание общих иммуноглобулинов молозива (Ig) определяли методом с натрия сульфитом описанном в справочнике «Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики» под редакцией профессора И.П.Кондрахина [6].
Полученный цифровой материал подвергали статистической обработке с использованием общепринятых параметрических методов, степень достоверности определяли по t-критерию Стьюдента с применением пакета прикладных программ Microsoft Excel (2007).
Результаты исследований. Перед выпойкой, полученное от коров-матерей молозиво, проверяли визуально, на предмет мастита, а также колостроме-тром. Если молозиво было не пригодно для употребления теленком, корова и полученный от неё приплод исключали из эксперимента. Дальнейший лабораторный анализ отобранных проб молозива показал, что среднее содержание иммуноглобулинов в молозиве
коров контрольной группы составило 50,9±1,93 мг/мл; в тоже время, этот показатель у опытных животных составил 65,02 ±3,41 мг/мл.
Гематологические показатели крови коров контрольной и опытной групп представлены в таблице 1. Из таблицы видно, что количество лейкоцитов в крови коров опытной группы после отела выросло на 48,89%, в основном за счет увеличения количества сегментоя-дерных нейтрофилов в 2,4 раза. Также незначительно увеличилось количество палочкоядерных нейтрофилов, сегментоядерных нейтрофилов, лимфоцитов и моноцитов. У коров контрольной группы количество лейкоцитов в крови увеличилось на 25,28%, за счет роста числа сегментоядерных нейтрофилов на 77,81%, что на 63,35% меньше, чем у животных опытной группы. А количество лимфоцитов снизилось на 5,61%. В связи с чем, отношение лимфоцитов к сегменто-ядерным нейтрофилам снизилось на 45,56%, что на 11,9% меньше чем у коров опытной группы. В целом гематологические показатели обеих наблюдаемых групп характерны для коров после отела [1,9], но показатели опытной группы более физиологичны.
Таблица 1
Гематологические показатели крови коров
*________Группы и сроки Показатель — До введения препарата После отела
Контрольная подопытная контрольная подопытная
Лейкоциты, тыс/мкл 12,42±3,74 11,29+3,45* 15,56+3,71 16,81+7,92*
Эозинофилы 3,2+2,17 1,8+0,58* 3,2±1,3 0,8+1*
Базофилы 0±0 0±0* 0,4±0,55 0±0*
Миелоциты 0±0 0±0* 0±0 0+0*
Юные нейтрофилы 0±0 0±0* 0±0 0±0*
Палочкоядерные нейтрофилы 3,2±0,84 2,8 ±1* 3,2 ±0,84 2,4±0,58*
Сегментоядерные нейтрофилы 31,6+17,1 33,6±6,43* 44,8+7,79 54,4±0,58*
Лимфоциты 56,8+14,91 59,4+6,93* 43,8±7,33 41,2±4,93*
Моноциты 5,2±1,64 2,4±0,58* 4,6±2,7 3,2±1*
Общее количество лимфоцитов, тыс/мкл 7,3+3,48 6,71±1,08* 6,89+2,38 6,93+2,09*
Лимфоциты/ Сегментоядерные нейтрофилы 1,8+1,01 1,81±0,37* 0,98±0,33 0,77±0,17*
Палочкоядерные нейтрофилы/ Лимфоциты 0,06±0,01 0,05±0,02* 0,07±0,02 0,06±0,04*
Эритроциты, млн/мкл 5,72±0,81 5,82±0,99* 6,28+0,43 6,35±0,6*
Гемоглобин г/л 106±13,95 99,2±0,58* 115+8,69 105,6±4,36*
Средний показатель анизоцитоза, % 17,46±1,62 16,36± 0,35* 16,84±1,68 16,66±0,85*
Гематокрит, % 29,44+3,69 28,26+0,87* 34,7±2,2 32,04±1,95*
Тромбоциты, тыс/мкл 227±58,56 237,6±5,57* 444,8+70,4 364,8+109,22*
Средний объем тромбоцита % 6,26±1,04 5,96±0,56* 6,4±0,31 6,6±0,76*
СОЭ мм/ч 2,6+1,34 1±0* 1,4±0,55 1,2±0,58*
Примечание: *р<0,05.
НАУЧНО-ПРОИЗВОДСТВЕННЫЙ ЖУРНАЛ № 3/2019
ЯА ЕТЕРННЛРНЫЙ
ДИАГНОСТИКА БОЛЕЗНЕЙ, ТЕРАПИЯ И МОРФОЛОГИЯ ЖИВОТНЫХ рач
Биохимическая картина крови коров опытной и контрольной групп представлена в таблице 2. Из неё можно видеть, что у животных опытной группы вырос на 17,42% общий белок сыворотки крови, что на 15,27% больше, чем у животных контрольной группы. Значительный рост произошел благодаря увеличению количества альбуминов: на 12,84%, а-глобулинов на 42,32% и у-глобулинов на 75,29%. Количество р-глобулинов при этом снизилось на
Биохимические по!
27,85%. У животных контрольной группы количество общего белка в сыворотке крови выросло всего на 2,15% за счет незначительного увеличения альбуминов, а- и у-глобулинов. Количество р-гло-булинов понизилось на 13,3%, что меньше, чем у опытных коров на 14,56%. Стоит отметить, что отношение альбумина и глобулина у животных контрольной группы повышается на 5,38%, а у опытных падает на 10,87%.
Таблица 2
стели крови коров
^~^\Группы и сроки Показатель ^^^ До введения препарата После отела
контрольная подопытная контрольная подопытная
ОБС г/л 64,15±8,61 60,79±1,58* 65,53±6,43 71,38±5,56*
Альбумин г/л 30,66+1,42 27,88±1,13* 31,77+1,58 31,46±0,19*
а - глобулин г/л 10,27±1,04 10,61±0,92* 11,54+0,63 15,1 ±1,47*
3 - глобулин г/л 11,43±5,26 9,05±0,24* 9,91 ±3,9 6,53±0,14*
у - глобулин г/л 12,16+2,67 11,21 ±4,0* 11,55+1,92 19,65±7,21*
А/Г отношение 0,93±0,16 0,92+0,12* 0,98±0,15 0,82±0,19*
Примечание: *р<0,05.
В целом биохимическая картина крови наблюдаемых животных типична для отела. Однако у опытных животных происходит значительное увеличение фракции глобулинов, что видно из А/Г отношения, особенно у-глобулинов. В результате чего мы наблюдаем более высокие показатели иммуноглобулинов в молозиве.
Далее рассмотрим гематологические показатели телят, полученных от вышеуказанных коров (табл.3). Стоит отметить, что телята, народившиеся от коров обеих групп, при отеле и в последующие сутки были клинически здоровы. Но некоторые телята (25%) опытной группы принимали уверенную позу стояния в первые 30 мин постнатального периода. А остальные, также как и телята контрольной группы, принимали стоячее положение в течение первых 60-90 мин жизни.
Из данных таблицы видно, что количество лейкоцитов в крови телят контрольной группы ниже, чем у телят опытной группы на 18,6%. При этом через час, после выпойки первой порции молозива их количество незначительно снижается. В тоже время у телят опытной группы количество лейкоцитов незначительно увеличилось. Таким образом, разница между ростом лейкоцитов в опытной группе и падением в контрольной составила 10,82%. Падение числа лейкоцитов в контрольной группе произошло за счет уменьшения количества лимфоцитов (общее количество снизилось на 32,38%), что также отразилось на соотношении лимфоцитов к лейкоцитам. У телят опытной группы через час после выпойки молозива количество лимфоцитов в крови упало на 11,26%, а количество палочкоядер-ных нейтрофилов увеличилось на 8,77%.
Через сутки после отела количество лейкоцитов у животных контрольной группы повысилось на 5,81%, по сравнению с аналогичным показателем в крови, забранной через час после первой выпойки молозива. Рост числа лейкоцитов также невелик и в крови опытных животных (всего 8,57%). Количество лимфоцитов увеличилось на 28,48%, а у опытных животных на 19,5%, но у животных контрольной группы произошло небольшое уменьшение числа остальных лейкоцитов, а у телят опытной группы, напротив, количество эозинофилов, базофилов, миелоцитов, юных нейтрофилов и палочкоядерных нейтрофилов увеличилось слабо (не более чем на 9%).
Из данных таблицы видно, что число эритроцитов в крови телят контрольной группы при рождении несколько ниже, чем у опытных телят. Через час после выпойки молозива эта разница увеличилась до 10% и незначительно увеличилась ещё на следующий день. Те же соотношения можно наблюдать в объеме гемоглобина, гематокрите и среднем показателе анизоцитоза. Подводя итог вышеописанным гематологическим картинам крови телят обоих групп можно сделать вывод, что опытные животные быстрее адаптируются к новой окружающей среде. Их показатели изначально выше и физиологичнее.
Некоторые биохимические показатели сыворотки крови наблюдаемых животных рассмотрим в таблице 4. Из неё видно, что при рождении показателей телят обеих групп различаются незначительно. Объем у-глобулинов через час после выпойки молозива у телят подопытной группы увеличился в 2,3 раза, а у кон-
Таблица 3
Гематологические показатели крови телят
^^^Группы и сроки Показатель ^^^ После отела 1 ч после выпойки Сутки после отела
контрольная опытная контрольная опытная контрольная опытная
Лейкоциты, тыс/мкл 8,6+1,94 10,2+3,64* 7,92+1,14 10,5+3,32* 8,38±0,78 11,4±3,52*
Эозинофилы 1±0,71 1,4±1,15* 0,8±0,45 1,2±0,58* 0,6±0,55 1,2+1*
Базофилы 0±0 0±0* 0+0 0+0* 0±0 0+0*
Миелоциты 0±0 0+0* 0+0 0+0* 0±0 0+0*
Юные нейтрофилы 2,4±0,55 1,8±0* 2,4±0,55 2,2±0,58* 1,4±0,55 2,2±0,58*
Палочкоядерные нейтрофилы 3,8±0,45 3,2+0,58* 3,8±0,45 3,4±0,58* 2,8+0,45 3,4±0,58*
Сегментоядерные нейтрофилы 61,2+9,98 57,4+12,06* 66,2±6,1 60,6+2,65* 66,2±3,96 57,8+2,52*
Лимфоциты 27,8±11,32 33,8±9,54* 20,4±6,99 30,2±5,51* 25,2±4,76 34±4,62*
Моноциты 3,8±2,68 2,6+4,04* 6,4±1,95 2,4±3,06* 3,8+2,77 1,4±0,58*
Общее количество лимфоцитов, тыс/мкл 2,44±1,26 3,64±1,88* 1,65±0,75 3,23±1,2* 2,12±0,52 3,86±1,4*
Лимфоциты/ Сегментоядерные нейтрофилы 0,45+0,27 0,63±0,29* 0,31+0,14 0,5±0,11 * 0,38±0,09 0,63±0,27*
Палочкоядерные нейтрофилы/ Лимфоциты 0,14+0,06 0,1+0,02* 0,19+0,05 0,12+0,03* 0,11+0,02 0,11 ±0,03*
Эритроциты, млн/мкл 7,93±0,42 8,27±1,45* 7,82±0,51 8,61 ±0,65* 7,07±0,88 7,85±0,42*
Гемоглобин г/л 109,4+17,05 124+10,5* 106,6+18,15 131,6+9,07* 98±19,9 108,4±2,52*
Средний показатель анизоцитоза, % 35,84±5,92 40,62±6,95* 34,86±5,75 42,38±2,8* 31,64±7,17 34,38±0,83*
Гематокрит, % 35,84±5,92 40,62±6,95* 34,86±5,75 42,38+2,8* 31,64±7,17 34,38±0,83*
Тромбоциты, тыс/мкл 765,2±269,14 750,8±332,54* 635,2±204,52 778,2±150* 415,4±161,84 404,4±64,73*
Средний объем тромбоцита % 17,4+0,37 16,74+1,22* 17,42±0,34 16,6+1,19* 17,3+0,67 17,28±1,07*
СОЭ мм/ч 1±0 1±0* 1±0 1±0* 1±0 1±0*
Примечание: *р<0,05.
трольных телят - на 77,78% (разница роста составила 152%). На следующие сутки в крови опытных телят объем у-глобулин вырастает ещё в 6,9 раза, а у контрольной группы в 7,4 раза. Несмотря на то, что рост объёма иммуноглобулинов на следующие сутки после рождения интенсивнее у телят контрольной группы, в сыворотке крови опытных телят их объем выше на 59,07%. Через час после выпойки молозива объем Р-глобулинов у животных подопытной группы вырос на 34,67%, что на 30,65% меньше, чем в контрольной группе. На следующие сутки этот показатель практически сравнялся у телят обеих групп, за счет активного увеличения объема в сыворотке крови опытных телят на 82,91% (разница роста составила 21,55%). Объем а-глобулинов, в сыворотке крови телят опытной группы за сутки снизился на 10,82%, основное уменьшение объема фракции сыворотки крови произошло в пери-
од между взятием второй и третьей проб крови. У телят контрольной группы объем а-глобулинов через час после выпойки молозива снизился на 9,44%, а спустя 24 ч увеличился на 5,93%, относительно второго взятия. Таким образом, объем а-глобулинов за первые сутки жизни телят понижается на 4,06%.
Объем альбуминов в сыворотке крови телят опытной группы изначально немного ниже, чем у телят контрольной группы, но за первые сутки жизни увеличивается на 10,98%, что на 6,8% больше, чем в контрольной группе. В итоге объем альбуминов через сутки становится незначительно больше в крови опытной группы животных. Общий белок сыворотки крови при рождении практически равен, но становится на 11,87% больше, чем в крови контрольных телят за счет активного увеличения общей белковой фракции на 59,49% у телят опытной группы в первые сутки жизни.
38
НАУЧНО-ПРОИЗВОДСТВЕННЫЙ ЖУРНАЛ
№3/2019
VA ЕТЕРННЛРНЫЙ
ДИАГНОСТИКА БОЛЕЗНЕЙ, ТЕРАПИЯ И МОРФОЛОГИЯ ЖИВОТНЫХ jf рач
Таблица 4
Биохимические показатели крови телят
Группы ^уИ сроки Показатель4^ После отела 1 ч после выпойки Сутки после отела
контрольная опытная контрольная опытная контрольная опытная
ОБС г/л 40,62±1,78 40,24+0,77* 43,51+5,03 43,44±2,3* 57,37±4,98 64,18±3,47*
Альбумин г/л 18,87±1,94 17,78±0,41* 19,32±1,68 18,38±0,22* 19,35±1,8 19,73±1,52*
а-глобулин г/л 17,48+0,83 18,03+1,44* 15,83+2,03 17,68±1,79* 16,77±2,51 16,08+1,21*
Р-глобулин г/л 3,46+1,04 3,69±1,02* 5,72±0,98 4,97±1,92* 9,23+2,21 9,09+3,48*
у-глобулин г/л 0,81±0,11 0,73±0,12* 1,44±0,41 2,41 ±0,45 12,02±4,77 19,12±4,27*
а/у отношение 0,88+0,13 0,79±0,03* 0,85±0,1 0,74±0,08* 0,52±0,07 0,45+0,04*
Примечание: *р<0,05.
Исходя из вышеописанных изменений в сыворотке крови наблюдаемых животных, делаем выводы. При рождении телята имели близкие по значениям показатели биохимической картины крови, но через час после выпойки молозива от коров матерей мы видим резкое увеличение объема у - глобулинов у опытных телят и ещё более активный рост данного показателя на следующие сутки после рождения. В крови телят контрольной группы увеличение объема у - глобулинов происходило не столь активно. Также, можно заметить плавное уменьшение объема а - глобулинов в крови телят опытной группы, по сравнению со скачкообразным увеличением у контрольных телят. Все изменения в крови телят опытной группы указывают на более активную адаптацию к постнатальному периоду жизни, которые связанны с выпойкой первой дозы качественного молозива от коровы-матери.
Заключение. В результате сочетанного применения Полиоксидония и Синэстрола коровам-матерям за 3-9 дней до отела, у коров опытной группы на момент отела в крови обнаружен больший рост числа лейкоцитов 48,89% за счет увеличения числа сегментоядер-ных нейтрофилов в 3,4 раза и небольшого увеличения числа лимфоцитов. В сыворотке крови коров опытной группы на момент отела было большое количество ОБС, за счет альбуминов, а-глобулинов и у-глобули-
Литература
нов ( объем которого увеличился на 75,29%). Первая порция молозива от коров подопытной группы имело объем иммуноглобулинов на 27,74% больше по сравнению с коровами контрольной группы.
Телята, полученные от коров наблюдаемых групп при рождении, имели различия в морфологическом составе крови, а биохимические показатели различались незначительно. Стоит отметить, что некоторые телята опытной группы (25%) принимали уверенную позу стояния в первые 30 мин постнатального периода. А остальные, также как и телята контрольной группы, принимали стоячее положение в течение первых 60-90 мин жизни. Через час после выпойки первой порции молозива в крови телят опытной группы объем у - глобулинов увеличился в 2,3 раза, а на следующие сутки ещё в 6,9 раза. Спустя сутки после отела объем у - глобулинов в сыворотке крови опытных телят выше на 59,07% по сравнению с контролем.
Таким образом, можно заключить, что использование комбинации Синэстрола 2% и Полиоксидония за 3-9 дней до отела, способствует повышению содержания иммуноглобулинов в молозиве. На состояние телят влияет своевременная выпойка полученного от коров-матерей молозива, что оказывает усиливающее действие на защитные системы организма теленка и увеличивает скорость обменных процессов.
1. Баймишев, М.Х. Инновационные приёмы коррекции репродуктивной функции у высокопродуктивных коров: монография / М.Х.Баймишев С.П.Еремин. - Кинель: РИО Самарской ГСХА, 2017. - 209 с.
2. Морфологические и биохимические показатели крови новорожденных телят после применения синэстрола коровам-матерям / В.И.Великанов [и др.] // Проблемы биологии продуктивных животных. - 2018. - № 4. - С. 56-64.
3. Захурдаева, Л.Д. Эстрогены: биологические и фармакологические эффекты / Л.Д.Захурдаева// Медицинские аспекты здоровья женщин. - 2010. - № 8 (37). - С. 41 -51.
4. Зубович, В.К. Гормональный криз новорожденных / В.К.Зубович. - Минск: Беларусь, 1978. -112 с.
5. Кляпнев, A.B. Физиолого-биохимические показатели крови новорожденных телят при использовании препарата "Синэстрол 2%" в антенатальный период/A.B.Кляпнев // Ветеринарный врач. - 2017. - № 6. - С. 61-68.
ЕГЕПШАРНЫЙ
Врач
6. Кондрахин, И.П. Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики: справочник / И.П. Кон-драхин. - М.: КолосС, 2004. - 520 с.
7. Малашко, В.В. Молозиво. Иммуноглобулины молозива: учеб. для вузов / В.В.Малашко, Н.А.Кузнецов. -Гродно: ГГАУ, 2010.-98 с.
8. Самбуров, Н.В. Молозиво коров, его состав и биологические свойства / Н.В.Самбуров, И.Л.Палаус // Вести. Курской гос. с.-х. акад. - 2014. - № 4. - С. 59.
9. Скопичев, В.Г. Физиология репродуктивной системы млекопитающих: учебное пособие / В.Г.Скопичев, И.О.Боголюбова. - СПб.: Изд-во "Лань", 2007. - 512 е.: ил. - (Учебники для вузов. Специальная литература).
10. Влияние введения глубокостельным коровам синтетического аналога эстрона на становление естественной резистентности у новорожденных телят/Л.В.Харитонов [и др.] // Проблемы биологии продуктивных животных.-2018,-№1,-С. 29-37.
11. Шульга, Н.Н. Динамика иммуноглобулинов в сыворотках крови и молозива коров / Н.Н.Шульга // Ветеринария. - 2006. - № 1. - С. 45-47.
12. Immunoglobulins, growth factors andgrowth hormone in bovine colostrum andthe effects of processing / L. Elfstrand [et al.] // International dairy journal. - 2002. - № 11 (12). - P. 879-887.
13. Delaying colostrum intake by one day has important effects on metabolic traits and on gastrointestinal and metabolic hormones in neonatal calves/U. Hadorn [et al.] //J. Nutr. -1997. - № 127. - P. 2011-2023.
14. Wayne, R.W. Effect of estrogen and progesterone on lactating rat mammar у glands: a light and electron microscope study: dissertation for Doctor of philosophical sciences / R.WWayne. - Ames, Iowa, 1972. -114 p.
HEMATOLOGICAL AND BIOCHEMICAL BLOOD PARAMETERS OF COWS AND CALVES BORN FROM THEM WITH IMMUNOMODULATORY AND HORMONAL STIMULATION
Nizhny Novgorod State Agricultural Academy, Nizhny Novgorod (e-mail: [email protected]).
The aim of the study was to research the effect of azoximer bromide in combination with hormonal stimulation of a synthetic analogue of estrone on the morphological and biochemical composition of the cows' blood when administered in the last week of pregnancy. For this purpose, the control and experimental groups were formed, 20 animals in each. During the experiment, the blood of experimental cows at the time of calving showed a greater increase in the number of leukocytes of 48.89% due to an increase in the number of segmented neutrophils by 3.4 times and a small increase in the number of lymphocytes. In the blood serum of the experimental cows at the moment of calving there was more total protein, due to albumin, a-globulins and y-globulins (the volume of which increased by 75.29%). And the first portion of colostrum contained the volume of immunoglobulins 27.74% more compared with the cows in the control group. Calves born from cows of the observed groups at birth had differences in the blood morphological composition, and the biochemical parameters differed slightly. In an hour after feeding the first portion of colostrum in the blood of calves of the experimental group, the volume of y-globulin increased by more than 2 times, and the next day, it increased another by 6.9 times. One day after calving, the volume of y - globulins in the serum of the experimental cows was 59.07% higher as compared to the control. Thus it can be concluded that the described stimulation of the immunity of cows-mothers increases the content of immunoglobulins in colostrum and improves the state of the cows-mothers organism after calving. The physiological condition of calves is affected by the timely feeding the colostrum obtained from cows-mothers. That has a strengthening effect on the calves' protective systems and increases the rate of metabolic processes.
KEYWORDS: cows, calves, colostral immunity, azoxymere-bromide, estrone.
1. Baymishev, M.Kh. Innovacionnye priyomy korrekcii reproduktivnoy funkcii u vysokoproduktivnykh korov: monografiya [Innovation methods of reproductive function correction in high-productive cows: monograph] / M.H.Baymishev, S.P.Eremin. - Kinel: RIO Samarskoy GSKHA, 2017. - 209 p.
2. Morfologicheskie i biokhimicheskie pokazateli krovi novorozhdennykh telyat posle primeneniya sinestrola korovam-materyam [Morphological and biochemical blood parameters of newborn calves after Sinestrol use to cows-mothers] / V.I.Velikanov [et al.] // Problemy biologii produktivnykh zhivotnykh. - 2018. - № 4. -P. 56-64.
TerentevS.S.-postgraduate.
References
НАУЧНО-ПРОИЗВОДСТВЕННЫЙ ЖУРНАЛ
№3/2019
