CC BY
5
С целью правомерности использования КФС для оценки функционального состояния ОДА мы провели выборочное изучение уровня МК и ПВК в крови и данных реографии сосудов нижних конечностей у 10 испытуемых каждой группы и сопоставили полученные данные с величинами КФС (табл. 3). Как видно из этой таблицы, у испытуемых 1-й группы все изученные показатели соответствовали норме, КФС также находился в пределах нормы и равнялся 0,16±0,12 отн. ед.
В то же время у лиц 2-й группы наряду с заметным возрастанием КФС (до 0,83±0,12 отн. ед.) наблюдались отклонения от нормы и со стороны ряда биохимических и реографических показателей, в частности было достоверно увеличено (до 28,7±2,7 мг%) содержание МК в крови.
В то время как модуль упругости, характеризующий эластичность сосудистой стенки, оставался у студентов этой группы в пределах нормы, РСИ и угод а заметно уменьшились (до 0,99±0,03 отн. ед. и 70,4±1,7° соответственно), что указывает на заметное повышение тонуса крупных сосудов конечности. ДИ же не менялся (35,2±3,6 отн. ед.).
Таким образом, полученные данные свидетельствуют о том, что КФС достаточно объективно отражает функциональное состояние ОДА и коррелирует с динамикой ряда реографических и биохимических показателей при нарушении функции ОДА. Это подтверждает диагностическую ценность ^.ФС и позволяет рекомендовать
его в качестве доступного оперативного показателя оценки функционального состояния ОДМ, а также определения эффективности применения восстановительных и лечебных средств, что было показано в наших исследованиях [5, 8].
ЛИТЕРАТУРА
1. Аганянц Е. К, Герасимова П. В., Плешкань А. В.— В кн.: Биохимические пути повышения эффективности спортивной тренировки. Л., 1974, с. 50—54.
2. Верещако Г. Г.. Тайц Э. М., Нехьядович А. И. — В кн.: Вопросы теории и практики физической культуры и спорта. Минск. 1979, вып. 9, с. 121 — 126.
3. Веселовский В. П.. Новак О. А.. Уразаева 3. В. Профилактика и реабилитация мышечных поражений у спортсменов. Казань, 1978.
4. Гамбурцее В. А. Гониометрия человеческого тела. М., 1973.
5. Денисенко Ю. П., Уразаева 3. В., Новак О. А. и др. — Теор. и практ. физ. культуры, 1982, № 11, с. 53—55.
6. Денисова Е. А. — Сов. мед., 1966, № 4, с. 7—12.
7. Матвейков Г. П., Пшоник С. С. Клиническая реогра-фия. Минск, 1976. ^
8. Новак О. А. Исследование функционального состоян^ опорно-двигательного аппарата и физиологическое обоснование средств восстановления работоспособности у спортсменов. Автореф. дне. канд. М., 1980.
9. Огиенко Ф. Ф. — Сов. мед., 1966, № 4, с. 94—97.
10. Ойвин А. И, — Пат. физиол., 1960, № 4, с. 75—85.
11. Сепетлиев Д. Статистические методы в научных медицинских исследованиях. М., 1968.
12. Стрельников В. П., Лойко А. А., Алашеева В. М. и др. — В кн.: Вопросы теории и практики физической культуры и спорта. Минск, 1979, вып. 9, с. 154—160.
13. Friedemann Т. Е„ Haugen G. Е. — J. biol. Chem., 1943, v. 47, p. 415—442.
14. Ström G. — Acta physiol. scand., 1949, v. 17, p. 440— 456.
Поступила 23.01.84
УДК 613.632.8 + 614.721:615.285.7)-074:543.544
М. А. Клисенко, И. Г. Белашова, Г. А. Хохолькова
ГАЗОХРОМАТОГРАФИЧЕСКОЕ ОПРЕДЕЛЕНИЕ ПЕСТИЦИДОВ ПРИ ИХ СОВМЕСТНОМ ПРИСУТСТВИИ В ВОЗДУХЕ
ВНИИ гигиены и токсикологии пестицидов, полимерных и нластическнх масс, Киев; Ки евский НИИ гигиены труда и профзаболеваний
Принадлежащие к различным классам органических соединений пестициды базудин и фос-фамид, у-изомер ГХЦГ, бетанал (фенилкарба-мат), пирамин (гетероциклическое соединение) применяются в системе комплексной защиты сахарной свеклы. Практические данные, касающиеся сроков и норм применения препаратов [1, 2], свидетельствуют о возможности их совместного присутствия в воздухе рабочей зоны.
Для контроля за содержанием в воздухе перечисленных пестицидов разработан метод анализа их смеси, основанный на предварительном концентрировании аэрозоля и паров этих соединений с помощью бумажного фильтра «синяя лента» и пенополиуретана соответственно, с последующим газохроматографическим определе-
нием на хроматографе «Цвет-106». При разработке методики мы учитывали, что все перечисленные соединения содержат группы, обладающие высоким электронным сродством, что позволяет определять их с помощью детектора по захвату электронов. Хроматографирование на колонках трех типов — неполярной (5 % SE-30 на Chromaton N-AW, 0,250—0,315 мм), полярной (5% ХЕ-60 на Chromaton N-AW-DMCS, 0,250—0,315 мм) и смешанной полярности (5 % SE-30 на Chromaton N-AW и 5% ХЕ-60 на Chromaton N-AW-DMCS) — показало, что наиболее эффективно использование двух последних колонок.
Вследствие различной химической природы перечисленных пестицидов особое внимание уде-^л
лялось разработке способа отбора проб возду-▲¿1. В качестве сорбента для поглощения паров тГестицидов предложен пенополиуретан (ТУ 6-05-1688—79 или ОСТ-6-05-407—75), бесцветный, используемый для бытовых и упаковочных целей. Сорбент измельчают на кусочки размером 2—5 мм и очищают ацетоном (12 ч) и хлороформом (12 ч) в аппарате Сокслета. Высушенным пенополиуретаном заполняют стеклянные гофрированные поглотительные трубки длиной 5 см, диаметром 1 см.
Исследуемый воздух со скоростью 1 л/мин аспирируют через соединенные последовательно фильтродержатель с бумажным фильтром «синяя лента», первую поглотительную трубку с пенополируретаном и вторую поглотительную трубку с пенополиуретаном, смоченным водой (для улавливания паров фосфамида). Для определения '/г ПДК пестицидов в воздухе рабочей зоны достаточно отобрать 10 л воздуха. При ^ранении проб в холодильнике в течение 12 дней потери не превышают 0,5—1 %.
Пестициды с фильтра экстрагируют в течение 1 ч с помощью 10 мл ацетона. Пенополиуретан из первой и второй поглотительной трубок помещают в две разные колбы и на 15 мин заливают 25 мл ацетона и 25 мл хлороформа соответственно. Ацетоновые растворы пробы с фильтра и первой поглотительной трубки объединяют и упаривают в вакууме до объема около 0,5 мл. Раствор пробы с пенополиуретана второй поглотительной трубки пропускают через слой безводного сульфата натрия, растворитель (хлороформ) упаривают досуха в вакууме, остаток растворяют в 0,2 мл ацетона и количественно переносят в смесь растворов пробы с фильтра и первой поглотительной трубки. Общий объем раствора доводят ацетоном до 1 мл. Для анализа берут аликвотную часть (5 мкл) полученного раствора пробы.
^ Анализ осуществлялся при скорости потока ^аза-носителя (азота) на колонке 50 мл/мин при поддувке на детектор 6 л'/ч. Шкала чувствительности амперметра 50-10_|2А, скорость диаграммной ленты 20 см/ч. Анализ проводят на стеклянных колонках: первая длиной 2 м, диаметром 3 мм (5% БЕ-ЗО+б % ХЕ-60 1 : 1), вторая длиной 1 м, диаметром 3 мм (5% ХЕ-60). Температурный режим анализа смеси базудина, у-изомера ГХЦГ, фосфамида и пирамина следующий: 230°С (испаритель), 250°С (детектор), программирование температуры колонки после выхода фосфамида от 190°С до 250 °С. Анализ бетака-ла (вследствие его более низкой термической
Параметры газохроматографичсского определения пестицидов в воздухе
Препарат Время удерживания Диапазон определяемых концентраций, мг/м1
5% ЭЕ-ЗО-Ь 5% ХЕ-60 (1:1) 5 % ХЕ-60
Базудин 1 мин 7 с 1 мин 11 с 0,1—12,0
у-изомер ГХЦГ 2 мин 4 с 2 мин 10 с 0,002—0,50
Фосфамид 5 мин 35 с 6 мин 12 с 0,1—4,0
Пирами» 11 мин 8 с 11 мин 0,02—1,6
Бетамал 1 мин 7 с 2 мин 8 с 0,1 — 12,0
устойчивости и особенностей структуры) выполняется отдельно в следующем температурном режиме: 200°С (испаритель), 140°С (колонка), 200 °С (детектор). Определению не мешают близкие по срокам применения препараты эптам, тиллам и ленацил.
Идентификацию пестицидов проводят по их времени удерживания (см. таблицу). При наличии в одной пробе базудина и батанала, -у-изо-мера ГХЦГ и бетанала идентификацию осуществляют путем хроматографирования аликвотных частей проб с использованием обеих колонок (полярной и смешанной). Количественное определение содержания препаратов в анализируемом объеме пробы проводят по предварительно построенным градуированным графикам зависимости площади пика на хроматограмме (в квадратных миллиметрах) от количества препарата (в нанограммах). Концентрацию каждого пестицида в воздухе вычисляют по общепринятой формуле, учитывая аликвотность анализируемого объема пробы. Стандартные растворы пестицидов в ацетоне концентрации 10 мкг/мл хранят в холодильнике в течение 3 мес. Предел измерения в анализируемом объеме пробы следующий:
0.1.нг для у-изомера ГХЦГ, 1 нг для пирамина, 5 нг для базудина, фосфамида и бетанала. Граница суммарной погрешности определения ±16,3 %.
Метод может быть рекомендован в практику лабораторий санэпидстанций и учреждений, осуществляющих санитарно-химический контроль за применением и производством пестицидов в народном хозяйстве.
ЛИТЕРАТУРА
1. Колесников В. А.. Ермолаева О. Е. — Химия в сельск.
хоз-вс, 1981. № I, с. 50—51.
2. Седых А. С.. Абеленцева Г. М.. Попов П. В. и др —
Там же, 1978, № 2, с. 59—63.
Поступила 20.03.84
ч
