CC BY
17
600 500 400 300 200 100
ль jif' „е>с i / / -rf'
„/Ч* Я- -о* ** <,* to* Л ч,* о»^ ^ $ + ^
- свободные от HCD
Рис. 2 - Динамика живой массы тёлок в зависимости от статуса по HCD
того, как тёлка достигнет 50—60% живой массы от взрослого веса, что составляет 380—400 кг [10]. По результатам нашего исследования можно отметить, что тёлки — носители HCD достигают оптимальной живой массы для первого осеменения только к возрасту 16 мес., тогда как животные, свободные от данной мутации, уже в 13 мес. имеют достаточную живую массу. Можно предположить, что низкий темп роста животного может привести к снижению сроков осеменения, что в свою очередь повлечёт за собой повышение экономических затрат хозяйства. Себестоимость одного дня выращивания тёлок в возрасте 6—16 мес. в хозяйстве, где проводили опыт, составляла 85,5 руб. в день на 1 гол. Соответственно смещение сроков осеменения в среднем на 2 мес. (60 дн.) у тёлок — носителей HCD будет выражаться в экономических потерях с одной головы в размере 5130 руб.
Также одним из не менее важных аспектов является гибель телят в случае рождения гомозиготной особи. Учитывая высокую частоту встречаемости гаплотипа HCD в голштинских стадах, при подборе родительских пар следует учитывать статус животных по HCD, так как если оба родителя будут носителями мутантного аллеля, рождение нежизнеспособного потомства составит 1:4. Это также будет наносить экономический ущерб хозяйствам.
Выводы. Частота встречаемости гаплотипа HCD в исследуемой группе тёлок голштинской породы, имеющих в родословных предков — носителей
данного генетического дефекта, составила 26,7%. Гетерозиготные животные отличаются низкими темпами прироста живой массы в сравнении со сверстницами, а следовательно, позже достигают сроков первого осеменения. Таким образом, с целью снижения экономических потерь в голштинских стадах и своевременного вывода из системы воспроизводства отстающих в развитии тёлок, рекомендуется проводить тестирование ремонтного молодняка, в родословных которых выявлены предки — носители исследуемой мутации на предмет носительства летального генетического дефекта HCD.
Литература
1. Kipp S., Segelke D., Schierenbeck S., Reinhardt F., Reents R., Wurmser C., Pausch H., Fries R., Thaller G., Tetens J., Pott J., Piechotta M., GrUnberg W. A New Holstein Haplotype Affecting Calf Survival // Interbull Bulletin, 2015. № 49. Р. 49-53.
2. Gross J.J., Schwinn A.C., Schmitz-Hsu F., Menzi F., DrogemUller C., Albrecht C., Bruckmaier R.M. Rapid Communication: Cholesterol deficiency-associated APOB mutation impacts lipid metabolism in Holstein calves and breeding bulls // Journal of animal science, 2016. № 94(4). Р. 1761-1766.
3. Колчанов НА Генные сети липидного метаболизма / Н.А. Колчанов, М.И. Воевода, Т.Н. Кузнецова [и др.] // Сибирский научный медицинский журнал. 2006. № 2(120). С. 29-42.
4. Зиновьева Н.А. Дефицит холестерина — новый рецессивный дефект голштинского скота / Н.А. Зиновьева, О.В. Кос-тюнина, В.В. Волкова [и др.] // Молочное и мясное скотоводство. 2016. № 2. С. 5-8.
5. Позовникова М.В., Лихачева Т.Е., Ширяев Г.В. Влияние мутации дефицит холестерина на репродуктивные качества коров голштинизированной чёрно-пёстрой породы // Генетика и разведение животных. 2018. № 2. С. 61-66.
6. Menzi F., Besuchet-Schmutz N., Fragniere, M. Hofstetter S., Jagannathan V., Mock T., Raemy A., Studer E., Mehinagic K., Regenscheit N., Meylan M., Schmitz-Hsu F., DrogemUller C. A transposable element insertion in APOB causes cholesterol deficiency in Holstein cattle // Animal Genetics, 2016. № 47(2). Р. 253-257.
7. Li Y., Fang L., Liu L., Zhang S., Ma Z., Sun D. The cholesterol deficiency-associated mutation in APOB segregates at low frequency in Chinese Holstein cattle // Canadian Journal of Animal Science, 2018. [Электронный ресурс]. URL: http:// www.nrcresearchpress.com/doi/abs/10.1139/CJAS-2017-0108#. XAUjV2gzaUk (Дата обращения 03.12.2018).
8. Van Doormaal B., Beavers L. HCD: Haplotype associated with Cholesterol Deficiency. CanadianDairyNetwork (CDN), 2015. [Электронный ресурс]. URL: https://www.cdn.ca/ images/uploaded/file/HCD%20Update%20Article%20-%20 December%202015.pdf. (Дата обращения 03.12.2018).
9. KaminskiS., Ruse A. CholesterolDeficiency - new genetic defec ttransmitted to Polish Holstein-Friesiancattle // Polish journal of veterinary sciences, 2016. № 19(4). Р. 885-887.
10. Ваттио М. Выращивание телят молочного направления. Орел, 2006. 142 с.
0
HCD
Ферментный состав крови и его взаимосвязь с живой массой у молодняка абердин-ангусской породы
А.Э.Ли, аспирантка, М.А. Дерхо, д.б.н., профессор, ФГБОУ ВО Южно-Уральский ГАУ
Для повышения эффективности скотоводства и совершенствования генетического потенциала местного скота в последние годы в Россию и Республику Казахстан завезено из Голландии, США, Дании и Германии большое количество чистопород-
ных животных, в том числе абердин-ангусской породы, отличающихся неприхотливостью к кормам и условиям содержания, скороспелостью, хорошим иммунитетом, высокими воспроизводительными качествами [1]. В то же время чистопородный скот в новых климатогеографических условиях тяжело приспосабливается к условиям содержания и кормления, что отражается на уровне здоровья, продук-
тивности, сохранности, репродуктивных способностях [2, 3]. Это актуализирует исследования в области экологической физиологии, позволяющие выявить биологические особенности организма в определённых природно-климатических условиях.
Известно, что о процессах жизнедеятельности организма животных можно судить по химическому составу крови, которая обеспечивает поддержание гомеостатического равновесия в клетках органов и тканей благодаря способности циркулировать по кровеносным сосудам, транспортировать питательные вещества и продукты обмена веществ. Хотя биохимический состав крови относительно стабилен, он постоянно изменяется в пределах границ физиологической нормы, отражая уровень воздействия эндо- и экзогенных факторов на активность и направленность обменных и окислительно-восстановительных процессов, что в совокупности определяет функциональное состояние организма в конкретных условиях существования [4—6]. Поэтому по вариабельности параметров крови можно судить о состоянии процессов жизнедеятельности в организме животных.
В последние годы широко изучается биохимический состав крови во взаимосвязи с конституциональными и продуктивными качествами сельскохозяйственных животных. Это даёт возможность определить закономерности становления внутренней структуры организма в ходе постнаталь-ного онтогенеза, а также установить соответствие между развитием различных органов, тканей и систем и биохимическим составом биологических жидкостей в зависимости от вида, породы, пола и направления продуктивности. Несмотря на то, что для многих мясных пород крупного рогатого скота метаболические особенности организма достаточно хорошо изучены [7—10], возрастная изменчивость физиолого-биохимического статуса организма животных абердин-ангусской породы во взаимосвязи с показателями роста до сих пор мало отражена в работах исследователей. Это и определило актуальность темы настоящего исследования.
Цель исследования — оценка возрастной изменчивости ферментного состава крови чистопородного молодняка абердин-ангусской породы в подсосный период во взаимосвязи с приростом живой массы.
Материал и методы исследования. Экспериментальная часть работы выполнена в 2017—2018 гг. на базе животноводческого комплекса крестьянского хозяйства «Сейдахметов» (Костанайская обл., Республика Казахстан). Объектом исследования служили тёлочки и бычки абердин-ангусской породы, из которых по принципу аналогов были сформированы две опытные группы (п = 20). В I гр. вошли бычки, во II — тёлочки. Животных выращивали по технологии мясного скотоводства, они находились в одинаковых условиях кормления и содержания.
Материалом исследования служила кровь, которую брали из подхвостовой вены вакуумным методом в возрасте 1, 3, 6 и 8 мес. В крови определяли каталитическую активность аланинамино-трансферазы (АлАТ), аспартатаминтрансферазы (АсАТ), щелочной фосфатазы (ЩФ), креатинкина-зы (КК) и лактатдегидрогеназы (ЛДГ) с помощью биохимического анализатора Sysmex XS-500i фирмы Sysmex Corporation (Япония) в лаборатории И.В. Смолина (Республика Казахстан, г. Костанай).
Скорость роста животных оценивали по динамике живой массы, которую определяли путём ежемесячного индивидуального взвешивания.
Статистическую обработку данных проводили методом вариационной статистики на ПК с помощью табличного процессора «Microsoft Excel» и пакета прикладной программы «Биометрия» и «Versia».
Результаты исследования. Живая масса бычков и тёлочек опытных групп планомерно изменялась в ходе подсосного периода по мере роста и развития животных. К концу подсосного периода, т.е. в 8-месячном возрасте, она превышала стандарт 1-го класса породы. При этом живая масса тёлочек составляла 204,00+7,35 кг, бычков - 221,90+6,44 кг, отражая соответствие условий содержания и кормления генетическим и биологическим возможностям организма.
Скорость роста организма и, как следствие, формирования клеточной массы генетически детерминирована. При этом интенсивность процесса сопряжена с активностью и направленностью обменных процессов, которая напрямую зависит от биологической активности каталитических белков, т.е. ферментов.
Важную роль в обеспечении метаболического статуса организма животных играют аминотранс-феразы (АлАТ, АсАТ). Данные ферменты катализируют реакции переаминирования, посредством которых взаимосвязаны между собой обмен белков, углеводов и липидов. Активность трансфераз в крови молодняка зависит как от пола животных, так и возраста (табл. 1). Возрастная динамика аминотрансфераз и в группе бычков и тёлочек имела однотипную направленность. На ранних этапах постнатального периода онтогенеза она планомерно увеличивалась, достигая максимума в крови 6-месячных животных (прирост концентрации АлАТ составил 3,97-4,39 раза, а АсАТ — 1,19—1,32 раза), а затем снова снижалась к концу подсосного периода, свидетельствуя о зависимости обмена свободных аминокислот от возраста молодняка. При этом бычки достоверно превосходили тёлочек по уровню ферментативной активности, за исключением 6-месячного возраста, отражая влияние пола на метаболизм аминокислот.
Независимо от возраста активность АсАТ в сыворотке крови животных превосходила уровень АлАТ, о чём свидетельствует значение коэффи-
циента де Ритиса (табл. 1). Наиболее значимы данные различия были в организме 1-месячных животных, а наименее выражены — у 6-месячных. Значит, процессы роста животных абердин-ангусской породы сопряжены с преимущественным использованием углеродных остатков свободных аминокислот в покрытии энергозатрат организма за счёт их окисления в цикле Кребса. Хотелось бы отметить, что начиная с 1-месячного возраста, или в условиях становления функциональной активности желудочно-кишечного тракта и увеличения доли грубых кормов в рационе питания, возрастает значимость анаболической АлАТ в процессах жизнедеятельности организма молодняка. Каталитическое действие фермента позволяет организму дополнительно покрывать свои потребности в глюкозе за счёт её синтеза из аминокислотных остатков, так как процессы роста сопряжены не только с энергозатратами, но и синтезом новых веществ, а глюкоза является не только источником энергии, но и NАDPH+. Следовательно, возраст и пол животных определяют степень использования углеродных остатков аминокислот как в синтезе энергии (посредством АсАТ), так и глюкозы (посредством АлАТ).
Следующим ферментом, играющим важную роль в процессах энергообеспечения процессов жизнедеятельности организма животных, является щелочная фосфатаза. Фермент обеспечивает образование энергии за счёт транспорта фосфатов через плазматические мембраны. Поэтому его активность характеризует интенсивность обмена фосфорорганических соединений, включая и обмен макроэргов.
В крови молодняка опытных групп с возрастом уменьшалась каталитическая активность щелочной фосфатазы. Убыль ферментативной активности в конце подсосного периода у бычков составляла 20,18%, тёлочек — 49,66% (табл. 1). При этом концентрация ЩФ в крови бычков достоверно была выше, чем у тёлочек, независимо от их возраста.
Таким образом, в условиях возрастания роли аминотрансфераз в поддержании энергетического гомеостаза в организме молодняка закономерно снижается роль щелочной фосфатазы, что отражается на динамике каталитической активности фермента в крови.
Об эффективности энергетического обмена можно судить и по активности фермента лактат-дегидрогеназы, играющей важную роль в поддержании уровня глюкозы в крови через регуляцию концентрации лактата и пирувата. При этом пи-руват в организме молодняка, как и всех жвачных животных, является метаболитом, который используется как для окисления и синтеза энергии, так и глюконеогенеза, трансаминирования и липогенеза.
Активность ЛДГ в крови молодняка планомерно возрастала в ходе подсосного периода. Возрастной прирост концентрации фермента составил 19,59—25,52% (табл. 1). При этом тёлочки достоверно превосходили бычков по уровню фермента в крови на 9,69—16,27%.
Молодняк абердин-ангусской породы отличается достаточно высоким уровнем анаэробного гликолиза в клетках организма. Это определяло не только концентрацию ЛДГ в крови, но и обеспечивало синтез пирувата из лактата, устанавливая уровень синтеза глюкозы из пировиноградной кислоты. В ходе развития организма постоянно чередуются процессы роста и дифференциации, что отражается на скорости гликолитических процессов и реакций цикла Кребса [11, 12].
Основываясь на возрастной динамике активности ЛДГ с учётом высокой скорости роста организма молодняка, можно утверждать, что пировиноградная кислота, синтезированная из лактата с участием фермента, использовалась как на глюконеогенез, так и синтез энергии в цикле Кребса. Данные процессы в организме тёлочек имели более высокую интенсивность, чем бычков.
Креатинкиназа — это фермент, катализирующий в мышечных клетках распад креатинфосфата, что
1. Ферментный состав сыворотки крови молодняка абердин-ангусской
породы (п=20; X±Sх)
Показатель Группа Возраст, мес.
1 3 6 8
АлАТ, Е/л бычки (I) тёлочки (II) 18,53±0,19 16,86±0,16* 42,00±0,33 40,00±0,55* 73,66±0,32 74,00±0,33 23,00±0,21 43,00±0,29*
АсАТ, Е/л бычки (I) тёлочки (II) 79,61±1,18 71,79±1,74* 82,32±1,33 74,97±0,39* 94,73±0,52 95,00±0,21 82,00±0,45 86,99±0,39*
Коэф. де Ритиса, усл. ед. бычки (I) тёлочки (II) 4,29±0,15 4,26±0,11 1,96±0,13 1,87±0,16 1,29±0,02 1,28±0,04 3,56±0,19 2,02±0,11*
ЩФ, Е/л бычки (I) тёлочки (II) 515,01±1,05 600,00±4,21* 481,90±1,71 510,00±1,64* 429,96±2,68 424,88±1,13 411,07±1,80 302,00±3,27*
КК, Е/л бычки (I) тёлочки (II) 106,2±1,85 145,00±2,12* 169,87±2,14 194,93±1,70* 189,99±3,49 224,50±3,88* 189,60±6,05 234,30±3,48*
ЛДГ, Е/л бычки (I) тёлочки (II) 1008,57±5,88 1111,30±27,35* 1084,98±15,91 1190,50±32,76* 1100,05±16,12 1279,00±39,38* 1206,12±14,95 1394,93±15,11*
Примечание: *Р<0,05 по отношению к группе бычков
сопровождается высвобождением энергии, использующейся для синтеза мышечных белков и мышечного сокращения.
Каталитическая активность КК в крови молодняка планомерно увеличивалась с возрастом. Прирост концентрации фермента у бычков составлял 78,53%, у тёлочек — 61,58%, как результат увеличения мышечной массы в ходе роста животных в подсосный период. При этом тёлочки превосходили бычков по уровню КК в крови на 14,75—36,53% (табл. 1), отражая половые различия в способности извлекать энергию за счёт распада креатинфосфата.
Это свидетельствует о том, что ферментный состав крови молодняка абердин-ангусской породы зависит в подсосный период от возраста и пола животных.
В последние годы интерьерные показатели широко используются для определения потенциальных возможностей и оценки продуктивных качеств животных, так как величина данных показателей является следствием активности и направленности обмена веществ, составляющего основу роста и развития организма. С этой целью мы определили взаимосвязь концентрации ферментов с живой массой животных, рассчитав соответствующие коэффициенты корреляции по Пирсону.
При этом мы исходили из того, что рост и развитие организма животных — это результат наличия связей между метаболическими потоками, входящими в состав единой взаимосвязанной системы обменных процессов.
Анализ изменчивости значений коэффициентов корреляции между живой массой и активностью ферментов в крови молодняка опытных групп показал, что:
1. Корреляционные связи между изучаемыми признаками как в группе бычков, так и тёлочек, на 75,0% были положительными. Следовательно, живая масса влияет на активность ферментов в крови. Основной причиной является тот факт, что источником ферментов в организме животных служат клетки, в ходе физиологической регенерации
которых каталитические белки поступают в кровь. Возрастной прирост живой массы сопровождается увеличением клеточной массы и прямо отражается на концентрации ферментов как в клетках органов и тканей, так и в составе крови (табл. 2).
2. Сила связи между живой массой и активностью ферментов менее всего была выражена в организме 1-месячных бычков и тёлочек. Это является результатом становления как функций физиологических систем организма, так и обмена веществ.
3. Живая масса в организме бычков и тёлочек, начиная с 6-месячного возраста, достоверно коррелировала с активностью креатинкиназы, что отражало влияние параметра и на количество мышечных клеток, и на их метаболический статус.
4. В группе бычков средние и сильные корреляции составляли 50,0 и 30,0%; в группе тёлочек — 60,0 и 20,0% соответственно. Значит, прирост живой массы и активность ферментов в организме молодняка были взаимосвязаны, определяя направленность изменений признаков в ходе подсосного периода.
Выводы. В организме молодняка абердин-ангусской породы активность ферментов в сыворотке крови зависит от возраста животных, пола, длительности подсосного периода и скорости прироста живой массы. Концентрация ферментов переаминирования в сыворотке крови животных увеличивается до достижения возраста 6 мес. При этом активность АлАТ и АсАТ в крови тёлочек возрастает в 4,38 и 1,32 раза, бычков — в 3,97 и 1,18 раза на фоне преобладания АсАТ над АлАТ, определяя пути использования углеродных остатков аминокислот в организме животных. На фоне планомерного прироста живой массы в ходе подсосного периода происходит увеличение в крови молодняка концентрации креатинкиназы и лактатдегидро-геназы. К концу подсосного периода уровень ферментов в сыворотке крови бычков возрастет в 1,78 и 1,19 раза, у тёлочек — в 1,61 и 1,26 раза, отражая метаболическую активность и количество миоцитов, а также пути использования пирувата.
2. Коэффициенты корреляции активности ферментов сыворотки крови с живой массой (п = 20; X±Sх)
Показатель, Группа Возраст, мес.
Е/л 1 3 6 8
АлАТ бычки тёлочки 0,35±0,33 0,37±0,33 0,77±0,23* 0,71±0,24* 0,56±0,29 0,59±0,28 0,61±0,28 0,77±0,22*
АсАТ бычки тёлочки -0,49 ±0,31 -0,21±0,35 0,53±0,29 0,82±0,20* 0,67±0,26* 0,62±0,28 0,56±0,29 0,56±0,29
ЩФ бычки тёлочки -0,22±0,34 -0,39±0,32 0,67±0,26 0,42±0,34 0,70±0,25 0,42±0,32 0,75±0,23* 0,51±0,30
КК бычки тёлочки -0,25±0,34 -0,21±0,35 0,62±0,28 0,51±0,30 0,72±0,24* 0,78±0,11* 0,81±0,20* 0,75±0,23*
ЛДГ бычки тёлочки 0,20±0,35 0,15±0,35 0,52±0,30 0,13±0,35 -0,67±0,25* -0,19±0,35 -0,44±0,32 -0,54±0,30
Примечание: *Р<0,05
В ходе роста животных снижается каталитическая активность щелочной фосфатазы (у бычков — на 20,18%, тёлочек — на 49,67%), определяя востребованность фосфорорганических соединений в процессах обмена веществ. Живая масса и активность ферментов коррелируют в слабой степени в организме 1-месячных животных как результат формирования функций физиологических систем и их внутриорганизменных взаимосвязей. Однако начиная с 6-месячного возраста, живая масса коррелирует с активностью креатинкиназы (у бычков — r = 0,72—0,81, у тёлочек — r = 0,75—0,78), отражая влияние признака на прирост мышечной массы и метаболический статус клеток.
Литература
1. Тарасов В.М., Габидулин В.М., Шмаков В.Ю. Абердин-ангусская порода мясного скота в России // Вестник мясного скотоводства. 2010. Вып. 63. Т. 3. С. 71—77.
2. Кажгалиев Н., Матакбаев Д. Адаптация завезённых пород мясного скота в условиях северного региона Казахстана // Вестник мясного скотоводства. 2016. № 1(93). С. 27—33.
3. Косилов В.И. Клинические и гематологические показатели чёрно-пёстрого скота разных генотипов и яков в горных условиях Таджикистане / В.И. Косилов, Т.А. Играшев, Б.К. Шабунова [и др.] // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2015. № 2(51). С. 112—115.
4. Дерхо М.А., Середа Т.И., Крайнова Н.В. Биохимический статус коров при лютеиновых кистах яичников // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2017. № 3(65). С. 106-108.
5. Балтабекова А.Ж., Дерхо М.А. Метаболические эффекты тиреоидных гормонов в организме ремонтных бычков казахской белоголовой породы // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2017. № 1(63). С. 100-103.
6. Рахимов И.Х., Дерхо М.А. Влияние технологии содержания на формирование тиреоидного и метаболического статуса у бычков симментальской и чёрно-пёстрой пород // Учёные записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. 2013. Т. 214. С. 336-341.
7. Карсакбаев А.Б., Тюлебаев С.Д., Кадышева М.Д. Влияние возраста и сезона года на гематологические показатели тёлок // Вестник мясного скотоводства. 2009. № 6(62). С. 131-133.
8. Нурбекова А.А., Фомина Н.В., Дерхо М.А. Зависимость мясной продуктивности молодняка герефордской породы от уровня обменных процессов в организме // Сибирский вестник сельскохозяйственной науки. 2009. № 11. С. 61-67.
9. Лукьянов В.Н., Прохоров И.П. Гормональный статус бычков симментальской породы и её помесей с герефордской и шаролезской // Известия Тимирязевской сельскохозяйственной академии. 2015. № 4. С. 77-86.
10. Нурбекова А.А., Фомина Н.В., Дерхо М.А. Биохимические показатели крови как прогнозирующий фактор продуктивности молодняка герефордской породы // Учёные записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. 2008. Т. 192. С. 352-355.
11. АгафоноваА.В. Направленность метаболизма пировиноград-ной кислоты, азотистый обмен и продуктивность бычков, выращиваемых на мясо при различных условиях питания: дис. ... канд. биол. Боровск: ГНУ ВНИИФБиПСХЖ, 2014.
12. Бозымов К.К. Технология производства продуктов животноводства / К.К. Бозымов, Е.Г. Насамбаев, В.И. Косилов [и др.]. Уральск: Западно-Казахстанский аграрно-техни-ческий университет, 2016. Т. 2. 530 с.
Изменение биохимических показателей сыворотки крови коров чёрно-пёстрой породы при скармливании им консервированного сенажа
Р.Р. Исламов, аспирант, ФГБОУ ВО Башкирский ГАУ
Скотоводство является важным источником обеспечения населения страны продуктами питания [1—5]. Реализовать генетический потенциал продуктивности животных в максимальной степени, эффективно использовать корма, сохранить здоровье и воспроизводительную способность возможно лишь при полном обеспечении всего поголовья разнообразными кормами высокого качества [6—10].
Так, одним из представителей группы сочных кормов является сенаж. Известно, что наряду со злаковыми травами большая роль отводится многолетним бобовым культурам, получившим предпочтение из-за высокого содержания белков, причём во всех составляющих растения (семенах, листьях, стеблях) и способности повышать усвояемость низкобелковых кормов. В то же время важно понимать, что любой корм, заготовленный без дополнительных добавок, уступает по питательности исходным кормам [11—14].
В этой связи было принято решение провести сравнительную оценку консервантов Биосиб (производитель ООО ПО «Сиббиофарм», Ново-
сибирская область, г. Бердск) и Силостан (ПВП «БашИнком», Республика Башкортостан, г. Уфа) при заготовке злаково-бобового сенажа.
Действие закваски Биосиб из-за содержащихся в ней гомоферментативных молочно-кислых бактерий направлено на сбраживание углеводов растительного сырья в молочную кислоту, обеспечивая быстрое подкисление сенажируемой массы, а действие пропионовокислых бактерий направлено на образование ацетатов и пропионатов, ингиби-рующих развитие в начальные часы ферментации нежелательной микрофлоры.
Механизм действия закваски Силостан благодаря штамму молочно-кислых бактерий Lactobacillus plantarum, направлен на перевод растительного сахара в органические кислоты, в основном в молочную кислоту, под действием которой грибковая микрофлора лишается источников питания, а низкий рН (4,5 и ниже) блокирует развитие маслянокислых бактерий. Содержащиеся в закваске штаммы бактерий Bacillus subtilis подавляют развитие плесени, гнили, снижается количество продуктов их жизнедеятельности в кормах. Кроме того, данный штамм вырабатывает ферменты, расщепляющие труднопереваримые углеводы,
