CC BY
1
ПРИЛОЖЕНИЕ 1
(СОУГО-19), ранним применением деэскалационных схем АБТ, мони- работы в этом направлении, поиск новых противоэпидемических мер торингом, в т.ч. за состоянием колонизации. Необходимо продолжение и биологических факторов для контроля за возбудителем.
Солопова Г.Г., Кожушная О.С., Воропаев А.Д., Щемелинская Ю.Л., Сацук А.В., Маркова Ж.В.
ЭПИДЕМИОЛОГИЧЕСКОЕ РАССЛЕДОВАНИЕ ВСПЫШКИ КАТЕТЕР-АССОЦИИРОВАННЫХ ИНФЕКЦИЙ КРОВОТОКА,
ВЫЗВАННЫХ PSEUDOMONAS PUTIDA
ФГБУ «НМИЦ ДГОИ имени Дмитрия Рогачева» Минздрава России, г. Москва
Введение. Пациенты, получающие иммуносупрессивную и химиотерапию, относятся к группе высокого риска по развитию инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи (ИСМП). Катетер-ассоциированные инфекции кровотока (КАИК) являются одной из наиболее значимых причин заболеваемости и смертности. Известно, что при соблюдении санитарно-эпидемического режима, в первую очередь техники асептики и гигиенической обработки рук, большую часть ИСМП можно предотвратить.
Цель. Продемонстрировать вспышку КАИК, вызванных одним штаммом Ps. putida, у онкогематологических пациентов и результаты эпидемиологического расследования.
Материалы и методы. Эпидемиологическое расследование включало определение сотрудников, работавших с пациентами, проведение аудита техники работы с центральными венозными катетерами (ЦВК) и растворами для парентерального введения, а также взятие смывов с объектов окружающей среды — емкостей с салфетками для дезинфекции поверхностей, сливов раковин, поверхностей процедурного и манипуляционного кабинетов, поверхностей поста медицинских сестер, емкостей кремов для рук и рук медицинского персонала. Первичный посев клинического материала осуществляли на плотные питательные среды с последующим инкубированием при температуре 37 °C в течение 48 часов. Видовую идентификацию микроорганизмов осуществляли методом времяпролетной масс-спек-трометрии (Bruker Daltonics, Германия). Чувствительность к антибиотикам определяли методом микроразведений в бульоне с помощью микробиологического анализатора Phoenix M50 (BD, США). Исследование клональной структуры изолятов Ps. putida проводили методами RAPD-типирования, MLST, а также методом анализа кривых плавления продуктов ПЦР (HRM-анализ).
Результаты. В одном отделении в течение 8 дней было зарегистрировано 4 эпизода инфекции кровотока, вызванных Ps. putida (у одного из пациентов отмечалась двукратная идентификация патогена из крови с интервалом 7 дней). В соответствии с критериями Центра по профилактике и контролю заболеваемости (CDC), данные случаи были отнесены к КАИК. При исследовании было выделено 7 изолятов Ps. putida, полученных из крови пациентов (n=5) и ёмкостей с салфетками для дезинфекции поверхностей в манипуляционном и кабинете (n=2). У изолятов были определены идентичные белковые спектры и антибио-тикограмма. На основании анализа молекулярно-генетических исследований была установлена принадлежность Ps. putida к одному генотипу и определен сиквенс-тип ST109. По результатам выявленных в ходе аудитов нарушений был предположен следующий механизм инфицирования — контаминация ЦВК с окружающих поверхностей в связи с несоблюдением медперсоналом техники асептики в работе с ЦВК и требований к гигиенической обработке рук. В связи с чем было проведено дополнительное обучение и тренировка навыков персонала.
Заключение. Известно, что Ps. putida широко распространена в окружающей среде и при несоблюдении санитарно-эпидемического режима может привести к развитию ИСМП, особенно у пациентов высокого риска. Сиквенс-тип ST109 Ps. putida не является эпидемически значимым и не имеет широкого распространения. Указанным пациентам была проведена смена ЦВК и на фоне стандартной антибактериальной терапии отмечалось полное излечение. Однако следует подчеркнуть, что при соблюдении должных профилактических мер развития КАИК можно было предотвратить. Внедрение молекуляр-но-генетических методов исследования микроорганизмов позволяет проводить эпидемиологические расследования и является одной из важных стратегий инфекционного контроля.
Фёдорова А.В.1, Хрульнова С.А.1, Фролова И.Н.1, Ветохина А.В.2, Капорская Т.С.2, Молчанова И.В.3, Куцевалова О.Ю.4, Клясова Г.А.1
ЧУВСТВИТЕЛЬНОСТЬ К ДАПТОМИЦИНУ И ХАРАКТЕРИСТИКА ГЕНОВ ВИРУЛЕНТНОСТИ СРЕДИ СИКВЕНС-ТИПОВ ВАНКОМИЦИН-РЕЗИСТЕНТНЫХ ЕШЕЯОСОССШ ЕАЕСЮИ, ВЫДЕЛЕННЫХ ИЗ ГЕМОКУЛЬТУРЫ У БОЛЬНЫХ С ЗАБОЛЕВАНИЯМИ СИСТЕМЫ КРОВИ. РЕЗУЛЬТАТЫ ПРОСПЕКТИВНОГО МНОГОЦЕНТРОВОГО ИССЛЕДОВАНИЯ
'ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр гематологии» Министерства здравоохранения Российской Федерации, г. Москва, 2ГБУЗ «Иркутская ордена "Знак Почета" областная клиническая больница», г. Иркутск, 3ГБУЗ «Челябинская областная клиническая больница», г. Челябинск, 4ФГБУ «НМИЦ онкологии» Минздрава
России, г. Ростов-на-Дону
серийных микроразведений в бульоне. Штаммы VR-E. ¡аесшт оце-«чувствительные
Введение. Ванкомицин-резистентные Е^егососсш ¡аес'шт (VR-E. faecium) входят в число ведущих возбудителей сепсиса у больных ге-мобластозами. Среди VR-E. ¡аеаит выделяют клоны «высокого риска» ^Т16, ST17, ST18, ST78, ST117, ST192 и ST203 и др.) в составе клонального комплекса (СС) 17, ассоциированного с госпитальными вспышками инфекций. Описаны неудачи в лечении инфекций кровотока, вызванных VR-E. ¡аес'шт, в случаях применения даптомицина при значениях минимальной подавляющей концентрации (МПК) 3—4 мкг/мл. Наряду с антибиоти-корезистентностью штаммы Е. ¡агс'шт могут иметь различные гены вирулентности, которые приводят к усугублению инфекционного процесса.
Цель. Изучить чувствительность к даптомици-ну и гены вирулентности среди сиквенс-типов VR-E. ¡агс'шт, выделенных из гемокультуры у больных с заболеваниями системы крови.
Материалы и методы. Были изучены VR-E. $аесшт, выделенные из гемокультуры больных, находившихся на стационарном лечении в 4 лечебных учреждениях России (2002—2021 гг.). Чувствительность к даптомицину у VR-E. /иеаит определяли методом
нивались как «чувствительные дозозависимые» к даптомицину при значениях МПК <4 мкг/мл и «резистентные» — при МПК >8 мкг/мл (CLSI, 2022 г.). Генотипы резистентности к ванкомицину
