CC BY
0
ПРИЛОЖЕНИЕ 1
(СОУГО-19), ранним применением деэскалационных схем АБТ, мони- работы в этом направлении, поиск новых противоэпидемических мер торингом, в т.ч. за состоянием колонизации. Необходимо продолжение и биологических факторов для контроля за возбудителем.
Солопова Г.Г., Кожушная О.С., Воропаев А.Д., Щемелинская Ю.Л., Сацук А.В., Маркова Ж.В.
ЭПИДЕМИОЛОГИЧЕСКОЕ РАССЛЕДОВАНИЕ ВСПЫШКИ КАТЕТЕР-АССОЦИИРОВАННЫХ ИНФЕКЦИЙ КРОВОТОКА,
ВЫЗВАННЫХ PSEUDOMONAS PUTIDA
ФГБУ «НМИЦ ДГОИ имени Дмитрия Рогачева» Минздрава России, г. Москва
Введение. Пациенты, получающие иммуносупрессивную и химиотерапию, относятся к группе высокого риска по развитию инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи (ИСМП). Катетер-ассоциированные инфекции кровотока (КАИК) являются одной из наиболее значимых причин заболеваемости и смертности. Известно, что при соблюдении санитарно-эпидемического режима, в первую очередь техники асептики и гигиенической обработки рук, большую часть ИСМП можно предотвратить.
Цель. Продемонстрировать вспышку КАИК, вызванных одним штаммом Ps. putida, у онкогематологических пациентов и результаты эпидемиологического расследования.
Материалы и методы. Эпидемиологическое расследование включало определение сотрудников, работавших с пациентами, проведение аудита техники работы с центральными венозными катетерами (ЦВК) и растворами для парентерального введения, а также взятие смывов с объектов окружающей среды — емкостей с салфетками для дезинфекции поверхностей, сливов раковин, поверхностей процедурного и манипуляционного кабинетов, поверхностей поста медицинских сестер, емкостей кремов для рук и рук медицинского персонала. Первичный посев клинического материала осуществляли на плотные питательные среды с последующим инкубированием при температуре 37 °C в течение 48 часов. Видовую идентификацию микроорганизмов осуществляли методом времяпролетной масс-спек-трометрии (Bruker Daltonics, Германия). Чувствительность к антибиотикам определяли методом микроразведений в бульоне с помощью микробиологического анализатора Phoenix M50 (BD, США). Исследование клональной структуры изолятов Ps. putida проводили методами RAPD-типирования, MLST, а также методом анализа кривых плавления продуктов ПЦР (HRM-анализ).
Результаты. В одном отделении в течение 8 дней было зарегистрировано 4 эпизода инфекции кровотока, вызванных Ps. putida (у одного из пациентов отмечалась двукратная идентификация патогена из крови с интервалом 7 дней). В соответствии с критериями Центра по профилактике и контролю заболеваемости (CDC), данные случаи были отнесены к КАИК. При исследовании было выделено 7 изолятов Ps. putida, полученных из крови пациентов (n=5) и ёмкостей с салфетками для дезинфекции поверхностей в манипуляционном и кабинете (n=2). У изолятов были определены идентичные белковые спектры и антибио-тикограмма. На основании анализа молекулярно-генетических исследований была установлена принадлежность Ps. putida к одному генотипу и определен сиквенс-тип ST109. По результатам выявленных в ходе аудитов нарушений был предположен следующий механизм инфицирования — контаминация ЦВК с окружающих поверхностей в связи с несоблюдением медперсоналом техники асептики в работе с ЦВК и требований к гигиенической обработке рук. В связи с чем было проведено дополнительное обучение и тренировка навыков персонала.
Заключение. Известно, что Ps. putida широко распространена в окружающей среде и при несоблюдении санитарно-эпидемического режима может привести к развитию ИСМП, особенно у пациентов высокого риска. Сиквенс-тип ST109 Ps. putida не является эпидемически значимым и не имеет широкого распространения. Указанным пациентам была проведена смена ЦВК и на фоне стандартной антибактериальной терапии отмечалось полное излечение. Однако следует подчеркнуть, что при соблюдении должных профилактических мер развития КАИК можно было предотвратить. Внедрение молекуляр-но-генетических методов исследования микроорганизмов позволяет проводить эпидемиологические расследования и является одной из важных стратегий инфекционного контроля.
Фёдорова А.В.1, Хрульнова С.А.1, Фролова И.Н.1, Ветохина А.В.2, Капорская Т.С.2, Молчанова И.В.3, Куцевалова О.Ю.4, Клясова Г.А.1
ЧУВСТВИТЕЛЬНОСТЬ К ДАПТОМИЦИНУ И ХАРАКТЕРИСТИКА ГЕНОВ ВИРУЛЕНТНОСТИ СРЕДИ СИКВЕНС-ТИПОВ ВАНКОМИЦИН-РЕЗИСТЕНТНЫХ ЕШЕЯОСОССШ ЕАЕСЮИ, ВЫДЕЛЕННЫХ ИЗ ГЕМОКУЛЬТУРЫ У БОЛЬНЫХ С ЗАБОЛЕВАНИЯМИ СИСТЕМЫ КРОВИ. РЕЗУЛЬТАТЫ ПРОСПЕКТИВНОГО МНОГОЦЕНТРОВОГО ИССЛЕДОВАНИЯ
'ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр гематологии» Министерства здравоохранения Российской Федерации, г. Москва, 2ГБУЗ «Иркутская ордена "Знак Почета" областная клиническая больница», г. Иркутск, 3ГБУЗ «Челябинская областная клиническая больница», г. Челябинск, 4ФГБУ «НМИЦ онкологии» Минздрава
России, г. Ростов-на-Дону
серийных микроразведений в бульоне. Штаммы VR-E. ¡аесшт оце-«чувствительные
Введение. Ванкомицин-резистентные Е^егососсш ¡аес'шт (VR-E. faecium) входят в число ведущих возбудителей сепсиса у больных ге-мобластозами. Среди VR-E. ¡аеаит выделяют клоны «высокого риска» ^Т16, ST17, ST18, ST78, ST117, ST192 и ST203 и др.) в составе клонального комплекса (СС) 17, ассоциированного с госпитальными вспышками инфекций. Описаны неудачи в лечении инфекций кровотока, вызванных VR-E. ¡аес'шт, в случаях применения даптомицина при значениях минимальной подавляющей концентрации (МПК) 3—4 мкг/мл. Наряду с антибиоти-корезистентностью штаммы Е. ¡агс'шт могут иметь различные гены вирулентности, которые приводят к усугублению инфекционного процесса.
Цель. Изучить чувствительность к даптомици-ну и гены вирулентности среди сиквенс-типов VR-E. ¡агс'шт, выделенных из гемокультуры у больных с заболеваниями системы крови.
Материалы и методы. Были изучены VR-E. $аесшт, выделенные из гемокультуры больных, находившихся на стационарном лечении в 4 лечебных учреждениях России (2002—2021 гг.). Чувствительность к даптомицину у VR-E. /иеаит определяли методом
нивались как «чувствительные дозозависимые» к даптомицину при значениях МПК <4 мкг/мл и «резистентные» — при МПК >8 мкг/мл (CLSI, 2022 г.). Генотипы резистентности к ванкомицину
| ГЕМАТОЛОГИЯ И ТРАНСФУЗИОЛОГИЯ | RUSSIAN JOURNAL OF HEMATOLOGY AND TRANSFUSIOLOGY (GEMATOLOGIYA I TRANSFUSIOLOGIYA) | 2023; ТОМ 68; №2 |
(гапЛ и уапБ) и гены вирулентности (елр, hyl, ала1, су1А и де1Е) определяли с помощью мультиплексной ПЦР. Генотипирование VR-E. faecium проводили методом мультилокусного секвенирования-типи-рования (МЛСТ).
Результаты. С 2002 по 2021 г. было выделено 96 штаммов VR-Б. faecium, у которых гены резистентности vanA составляли 74%, vanБ — 26%. Всего было определено 22 сиквенс-типа ^Т) VR-Е. faecium, все ST принадлежали к эпидемическому клональному комплексу СС17, рис. Доминирующими были ST17 (п=18, 18,7%), ST78 (п=18, 16,7%) и ST80 (п=23, 24%), которые включали 59,4%
Таблица. Гены вирулентности среди 8Т80, 8Т17 и 8Т78 УК-Е. /аесшт
Гены вирулентности
Обнаружены
esp
hyl
asal
gelE
Один ген
Сочетание генов
Сиквенс-типы VR-Я. faecium, п (%)
ST 80, п=23
11 (47,8)*
11 (47,8)*
О*
О
11 (47,8)
ST 17, п=18
15 (83,3)!
13 (72,2)*
8 (44,4)'
0
9(50)
6 (33,3)5
Примечание. *р<0,05
штаммов VR-E. faecium. Гены тпА достоверно реже определяли среди ST17 (п=6, 33,3%) по сравнению с ST78 (п=15, 93,7%, р=0,0003) и ST80 (п=22, 95,7%, р<0,0001). Все VR-E. faecium были чувствительными дозозависимыми к даптомицину. Значения МПК даптомици-на 3—4 мкг/мл были определены у 15,6% (п=15) VR-E. faecium и чаще среди ST80 (30,4%) по сравнению с ST17 (5,6%, р=0,059) и ST78 (6,3%, р=0,1). Гены вирулентности были определены у 19,8% (19 из 96) VR-Е. faecium, причем достоверно реже среди ST80 (47,8%) по сравнению с ST17 (83,3%, р=0,02) и ST78 (100%, р=0,0003), таблица. Сочетание генов вирулентности не было определено у ST80 по сравнению с 8Т17 (33,3%,/>=0,004) и 8Т78 (56,3%, Р=0,0002). Ген вирулентности еёр преобладал у всех V К-/',', /аесшт и значимо чаще был детектирован среди ST78 (100%) в сравнении с ST17 (72,2%, р=0,05) и с ST80 (47,8%, р=0,0004), а ген hyl отсутствовал у ST80.
Заключение. Все 22ST VR-E. faecium принадлежали к эпидемическому клональному комплексу СС17. Доминирующие ST17, ST78 и ST80 следует рассматривать как клоны высокого риска, эндемичные для России. Все VR-E. faecium были чувствительными дозозависимыми к даптомицину. Среди VR-E. faecium ST80 чаще определяли значения МПК даптомицина 3-4 мкг/мл (30,4%), а гены вирулентности, наоборот, детектировали достоверно реже (47,8%). Сочетание генов вирулентности преобладало среди 'VR-E.faeci.um ST78, а среди VR-E. faecium ST17 и ST80 — представление их в моноварианте.
ST 78, п=16
16(100)*
16(100)*
8 (50)=
1 (6,3)
1 (6,3)
7 (43,7)
9 (56,3)=
Фёдорова А.В.1, Фролова И.Н.1, Хрульнова С.А.1, Ветохина А.В.2, Капорская Т.С.2, Молчанова И.В.3, Куцевалова О.Ю.4, Клясова Г.А.1
ЧУВСТВИТЕЛЬНОСТЬ К АНТИМИКРОБНЫМ ПРЕПАРАТАМ PSEUDOMONASAERUGINOSA, ВЫДЕЛЕННЫХ ИЗ ГЕМОКУЛЬТУРЫ У БОЛЬНЫХ С ЗАБОЛЕВАНИЯМИ СИСТЕМЫ КРОВИ. РЕЗУЛЬТАТЫ ПРОСПЕКТИВНОГО
МНОГОЦЕНТРОВОГО ИССЛЕДОВАНИЯ
'ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр гематологии» Министерства здравоохранения Российской Федерации, г. Москва, 2ГБУЗ «Иркутская ордена "Знак Почета" областная клиническая больница», г. Иркутск, 3ГБУЗ «Челябинская областная клиническая больница», г. Челябинск, 4ФГБУ «НМИЦ онкологии» Минздрава
России, г. Ростов-на-Дону
Введение. Pseudomonas aeruginosa — один из наиболее значимых внутрибольничных патогенов, вызывающих инфекции кровотока с высокой летальностью.
Цель. Изучить чувствительность к антимикробным препаратам P. aeruginosa, выделенных из гемокультуры у больных с заболеваниями системы крови.
Материалы и методы. Изучение чувствительности к антимикробным препаратам было проведено среди P. aeruginosa, выделенных с 2003 по 2022 г. из гемокультуры от больных с заболеваниями системы крови и симптомами инфекции, находившихся на стационарном лечении в 4 лечебных учреждениях России. Чувствительность P. aeruginosa к антимикробным препаратам определяли методом серийных микроразведений в бульоне (CLSI, 2022). Для интерпретации результатов чувствительности к антибиотикам были использованы критерии CLSI (2022) — чувствительные (Ч), умеренно резистентные (УР) и резистентные (Р); и EUCAST (2022) — чувствительные при стандартном режиме дозирования (Ч), чувствительные при увеличенной экспозиции (У) и резистентные (Р). Наличие генов
Таблица 1. Чувствительность к антимикробным препаратам P. aeruginosa (п=444)
Антибиотик Категории чувствительности к антимикробным препаратам
Критерии CLSI, и (%) Критерии EUCAST, п (%) МПК50 мкг/мл МПК90 мкг/мл
Ч УР Р Ч У Р
Колистин - 443 (99,8) 1 (0,2) 443 (99,8) 0 1 (0,2) 0,5 1
Амикадин 344(77,5) 17 (3,8) 83 (18,7) 344 (77,5) 0 100(22,5) 2 128
Цефепим 312(70,3) 60 (13,5) 72(16,2) - 312(70,3) 132(29,7) 4 32
Пиперацришнн/ Тазобактам 304(68,5) 93 (20,9) 47(10,6) - 304(68,5) 140(31,5) 8 128
Цефтазидим 263(59,2) 52(11,7) 129(29,1) - 263(59,2) 181 (40,8) 8 128
Меропенем 284(64) 15(3,4) 145(32,6) 284(64) 33(7,4) 127(28,6) 0,5 64
Имипенем 271(61) 10(2,3) 163(36,7) - 281(63,3) 163(36,7) 1 128
металло-Р-лактамаз класса B — МБЛ (групп blaIMp, blaVIM и blaNDM) определяли методом ПЦР среди карбапенем-резистентных штаммов P. aeruginosa.
Результаты. В таблице 1 представлена чувствительность 444 штаммов P. aeruginosa, выделенных с 2003 по 2022 г. из гемокультуры. Гены приобретенных МБЛ были обнаружены у 72 (41,6%) из 173 резистентных к меропенему и/или имипенему P. aeruginosa. Гены группы blaVIM у P. aeruginosa были доминирующими и были определены у 71 (98,6%) из 72 штаммов. В геноме одного штамма были обнаружены гены группы blaIMp (1,4%), гены группы blaNDM не были выявлены. Согласно CLSI для колистина отсутствует категория «чувствительные», и 99,8% P. aeruginosa были представлены как «умеренно резистентные». Доля чувствительных P. aeruginosa по CLSI была выше к амикацину (77,5%), цефепиму (70,3%) и пиперациллину/тазобакта-му (68,5%), чем к антипсевдомонадным карбапенемам (61—64%) и цеф-тазидиму (59,2%). По критериям EUCAST у P. aeruginosa существует категория «чувствительные» только для колистина, амикацина, меропенема, цефтазидима/авибактама и цефтолозана/тазобактама.
Таблица 2. Чувствительность к антимикробным препаратам Р. aeruginosa с продукцией карбапенемаз (п=72) и без продукции карбапенемаз (п=372), критерии CLSI
Антибиотик Категории чувствительности к антимикробным препаратам
Р. aeruginosa с продукцией приобретенных МБЛ, п (%) Р. aeruginosa без продукции приобретенных МБЛ, п (%) Р
Ч УР Р Ч УР Р
Колистин 72(100) 0 - 371 (99,7) 1 (0,3) 1
Амикацин 18(25)* 6(8,3) 48 (66,7) 326(87,6)* 11(3) 35(9,4) >0,0001
Цефетшм 4(5,6)* 35 (48,6) 33 (45,8) 308 (82,8)* 25(6,7) 39(10,5) >0,0001
Пиперациллин/ Тазобактам 5(6,9)* 50(69,4) 17(23,6) 299(80,4*) 43(11,6) 30(8,1) >0,0001
Цефтазидим 0* 23(31,9) 49(68,1) 263(70,7)* 29(7,8) 80(21,5) >0,0001
Меропенем 0* 1 (1,4) 71(98,6) 284(76,3)* 14(3,8) 74 (19,9) >0,0001
Имипенем 0* 0 72(100) 271 (72,8)* 10(2,7) 91 (24,5) >0,0001
Примечание. *р<0,05
