CC BY
93© Л.Г.ПАНТЕЛЕЕВА, 2013 Л.Г.Пантелеева
ЭПИДЕМИОЛОГИЧЕСКИЕ ОСНОВЫ ДЕЗИНФЕКТОЛОГИЧЕСКОЙ ПРОФИЛАКТИКИ ВИРУСНЫХ ИНФЕКЦИЙ
НИИ дезинфектологии, Москва
Приведены эпидемиологические обоснования дезинфектологической профилактики вирусных инфекций. Базовыми являются сведения о выживаемости вирусов на объектах внешней среды, их устойчивости (чувствительности) к действию химических дезинфицирующих средств и физических агентов, механизмы, пути и факторы передачи инфекции. Даны классификация вирусов по устойчивости к химическим дезинфицирующим средствам, а также классификация дезинфицирующих средств по вирулицидной активности. Описаны методические подходы к обоснованиям выбора средств и режимов их применения в целях профилактики ротавирусной, норовирусной инфекций и атипичной пневмонии.
Журн. микробиол., 2013, № 1, С. 109—112
Ключевые слова: эпидемиологические обоснования, дезинфектологическая профилактика, вирусные инфекции, дезинфицирующие средства, устойчивость вирусов, классификация, тест-вирус, суррогатные вирусы
L.G.Panteleeva
EPIDEMIOLOGICAL BASIS FOR DISINFECTOLOGIC PROPHYLAXIS OF VIRAL INFECTIONS
Research Institute of Disinfectology, Moscow, Russia
Epidemiological justifications of disinfectologic prophylaxis of viral infections are given. Basic are data on survival of viruses on environmental objects, their resistance (sensitivity) to effect of chemical disinfection means and physical agents, mechanisms, routes and factors of infection transmission. Classification of viruses by resistance to chemical disinfection means as well as classification of disinfection means by viru-cidal activity is given. Methodical approaches to justification of selection of means and regiments of their application with the aim of prophylaxis of rotavirus, norovirus infection and atypical pneumonia are described.
Zh. Mikrobiol. (Moscow), 2013, No. 1, P. 109—112
Key words: epidemiological justifications, disinfectological prophylaxis, viral infections, disinfection means, virus resistance, classification, test-virus, surrogate virus
Дезинфектология в своей научной и практической деятельности использует достижения многих дисциплин: эпидемиологии, микробиологии (в том числе вирусологии), гигиены, токсикологии, экологии, аналитической, органической и неорганической химии и др. Дезинфектологическая профилактика и борьба с вирусными болезнями базируется на данных о выживаемости вирусов на объектах внешней (включая внутрибольнич-ную) среды, влиянии различных физических и химических факторов на их жизнеспособность.
Опираясь на данные о механизмах, путях и факторах, участвующих в передаче инфекций, дезинфектологическая практика осуществляет неспецифические противоэпидемические мероприятия. С учетом перечисленных выше необходимых сведений, а также их эпидемиологической значимости осуществляется вы-
бор объектов, средств, методов и способов дезинфекции, определяется объем дезинфекционных мероприятий, кратность и длительность их проведения.
Необходимым условием для обоснования необходимости проведения дезинфекционных мероприятий является информация об устойчивости (чувствительности) вирусов — возбудителей инфекционных болезней к действию химических дезинфицирующих средств и физических агентов. При этом основополагающими являются сведения об эво-люционно сложившейся (наследственной) устойчивости вирусов определенных видов к тем или иным неблагоприятным воздействиям, в том числе к дезинфицирующим средствам.
В основу классификации микроорганизмов по устойчивости к химическим дезинфицирующим средствам положена американская
классификация микроорганизмов по рангам устойчивости [9], дополненная М.Г.Шандалой [8]. Согласно этой классификации все микроорганизмы подразделяются на три класса: первый класс — микроорганизмы с высокой устойчивостью, второй класс — со средней, третий класс — с низкой. Кроме того, внутри этих классов микроорганизмы подразделяются на 8 рангов, обозначеных буквами алфавита (А, Б, В, Г, Д, Е, З, И). Ранги внутри каждого класса показывают последовательное снижение устойчивости микроорганизмов к дезинфицирующим средствам.
Самые устойчивые микроорганизмы — прионы, вироиды и споры бактерий относятся к первому классу (ранги А и Б), вирусов среди них нет. Самые слабоустойчивые — вирусы гриппа, герпеса, осповакцины, ВИЧ, парентеральных гепатитов В, С, Д, цитомега-лии и некоторые другие, а также вегетативные формы бактерий. Они включены в третий класс (ранги З и И).
Вирусы гепатита А, полиомиелита, Кок-саки, ЕСНО и норовирусы (ранг Г) отнесены ко второму классу микроорганизмов со средней устойчивостью. В него вошли также Mycoba^erium tuberculosis, грибы родов Trichophyton и Aspergillus (ранг В). В зависимости от качественного и количественного состава композиционных средств возможно изменение порядка взаиморасположения вирусов (ранг Г) и грибов рода Candida (ранг В). В этот же класс (ранги Д, Е) входят рота-вирусы, реовирусы и аденовирусы. Отнесение того или иного вируса к определенному классу и рангу обусловлено, в первую очередь, естественной устойчивостью к действию химических дезинфицирующих средств, анатомическим строением и химическим составом вирусной частицы.
На различиях в чувствительности вирусов к дезинфектантам основана классификация, разработанная Klein M., De Forest A. [12]. Согласно этой классификации все вирусы с учетом их анатомической структуры, химического состава и чувствительности к растворителям липидов разделены на три категории — А, В, С. В категорию А включены липо-фильные вирусы с выраженной чувствительностью, имеющие супракапсидную оболочку (оболочечные, чувствительные к растворителям липидов). В категорию В вошли вирусы со слабой чувствительностью — гидрофильные, не имеющие супракапсидной оболочки (не чувствительные к растворителям липидов).
Авторы этой классификации выделяют также категорию С — частично липофильных
вирусов с умеренной чувствительностью к дезинфицирующим средствам. По наблюдениям Klein M., De Forest А. [12] липофильные вирусы, например, миксовирусы, вирусы герпеса, ВИЧ и др., по чувствительности к гермицидам (дезинфектантам) близки к вегетативным формам бактерий.
Гидрофильные вирусы, безоболочечные, например, полиовирус, вирусы Коксаки, ЕСНО, риновирусы, более устойчивы, чем вегетативные формы бактерий и липофиль-ные вирусы.
Частично липофильные вирусы занимают среднее положение. В эту группу входят умеренные по чувствительности к дезинфицирующим средствам ротавирусы, аденовирусы, реовирусы и SV-40.
При создании новых дезинфицирующих средств, а также при выборе вирулицидов для практического применения нужна классификация дезинфицирующих средств по вирули-цидной активности. Необходимость ее крайне актуальна, но в доступной нам литературе такой классификации найти не удалось. На основе обобщения и анализа результатов собственных исследований [4, 5], а также данных, полученных другими отечественными [1 — 3]
Классификация химических дезинфицирующих средств по вирулицидной активности
1 группа 2 группа 3 группа
Высокая Умеренная Избирательная
вирулицидная вирулицидная вирулицидная
активность активность активность
альдегиды хлорамин; хлоргексидина
(кроме глио- гипохлорит биглюконат;
ксаля); натрия; клатрат диде-
надуксусная гипохлорит цилдиметилам-
кислота; кальция; мония бромида
натриевая и некоторые ЧАС; с мочевиной;
калиевая соли полимерные производные
дихлоризоциа- производные фенола;
нуровой гуанидина; изопропиловый
кислоты; глиоксаль; спирт
анолиты; перекись
дихлордиметил- водорода;
гидантоин; спирт этиловый
диоксид хлора
Минимальная Минимальная Вне зависимо-
концентрация концентра- сти от концен-
рабочих раство- ция рабочих трации рабочего
ров по действу- растворов по раствора не
ющему веще- действующему инактивируют
ству — от сотых веществу — вирусы ранга Г
долей процента от десятых (класс 2)
и выше долей процента
и выше
Инактивируют вирусы классов Инактивируют 2 и 3 (всех рангов) вирусы рангов Д
и Е (класс 2); вирусы ранга И (класс 3)
и зарубежными авторами [9, 10, 14], нами разработана классификация химических дезинфицирующих средств [5] по вирулицидной активности (табл.).
При появлении недостаточно изученных вирусов, имея даже ограниченную информацию об их свойствах, но располагая необходимым набором перечисленных выше сведений, можно определить выбор эффективных средств для проведения дезинфекционных мероприятий.
Так, в 2003 г при появлении опасности завоза в Россию атипичной пневмонии (SARS) необходимо было в очень короткий период времени решить вопрос о выборе и при необходимости применении эффективных средств дезинфекции. Имея сведения о том, что возбудителем SARS является коронави-рус, данными о строении и химическом составе вирусов семейства Coronaviridae, их невысокой устойчивости к действию физических и химических факторов (а значит, к де-зинфектантам), нами была разработана «Временная инструкция по организации и проведению дезинфекционных мероприятий при синдроме острого респираторного заболевания (атипичная пневмония, SARS). Она была утверждена Минздравом России 05.05.03 и действует до настоящего времени. Согласно инструкции в качестве критерия выбора де-зинфектантов предложен полиовирус I типа, вакцинный штамм Sabin (LSc-2ab) — тест-вирус, рекомендованный в России и за рубежом [6] для исследований вирулицидной активности дезинфицирующих средств. Он более устойчив к дезинфектантам, чем коро-навирус, поэтому средства, способные инак-тивировать полиовирус, будут активны и в отношении возбудителя SARS.
Аналогичный подход был выбран при подготовке рекомендаций по дезинфекции в очагах ротавирусной инфекции. В связи с высоким уровнем контагиозности, минимальным количеством вируса (от 101 до 105 вирусных частиц), способным вызвать заболевание [11], улучшением возможностей диагностики ротавирусной инфекции, возникла необходимость в определении средств, методов и объема дезинфекционных мероприятий, выполняемых в очагах этой инфекции, в том числе, в организациях, осуществляющих медицинскую деятельность. В 1989 г. имелись только данные литературы об особенностях строения ротавируса и его химическом составе, принадлежности к семейству Reoviridae и крайне противоречивые сведения об устойчивости ротавируса человека к дезинфицирующим агентам. Имеющаяся информация позволяла
предположить умеренную устойчивость рота-вируса к дезинфицирующим средствам. Поэтому в методические рекомендации «Ротавирусная инфекция» (№15-6/6, утв. МЗ СССР 07.03.89), разработанные сотрудниками нескольких научно-исследовательских институтов, в том числе НИИ дезинфектоло-гии, вошли предложения по выбору средств и режимов их применения, разработанных на более устойчивом тест-вирусе — полиовирусе I типа вакцинном штамме Sabin (LSc-2ab) и эффективных в отношении возбудителей полиомиелита и других энтеровирусных инфекций.
К настоящему времени получены собственные данные [7], характеризующие устойчивость ротавируса человека к химическим и физическим дезинфицирующим агентам. Согласно результатам исследований ротави-рус по устойчивости не превышает тест-вирус. Полученные нами данные подтверждают сформулированные ранее предположения о том, что ротавирус относится к группе микроорганизмов со средней устойчивостью (класс 2, ранг Д) к химическим дезинфицирующим средствам и физическим факторам — УФ-излучению и действию повышенной температуры. С учетом возможных механизмов, путей и факторов передачи ротавирусной инфекции разработаны рекомендации по проведению дезинфекции не только объектов в окружении больного в очаге инфекции, но и воздуха, рук медицинских работников и лиц, ухаживающих за пациентами, камерной дезинфекции постельных принадлежностей. Эти рекомендации включены в новый документ — МУ 3.1.1.2957-11 «Эпидемиологический надзор, лабораторная диагностика и профилактика ротавирусной инфекции», утвержденные Роспотребнадзором в 2011 г.
Возбудитель другой острой кишечной вирусной инфекции, также актуальной для взрослых и особенно детей — норовирус человека — малодоступен для культивирования в практических вирусологических лабораториях. С целью изучения его свойств, в том числе устойчивости к дезинфицирующим агентам, за рубежом выбран и используется в различных экспериментах [15] суррогатный вирус — калицивирус кошек (FCV). FCV и норовирус человека относятся к одному и тому же семейству Caliciviridae. На FCV изучена активность ряда химических дезинфицирующих средств и установлено, что он достаточно резистентен к ним, но не более, чем существующий тест-вирус. Согласно последним данным [13], норовирус человека, в отличие от других устойчивых вирусов, инакти-
вируется не только этиловым, но и изопро-пиловым спиртом, что имеет значение при выборе кожных антисептиков для обеззараживания рук медицинских работников и лиц, ухаживающих за больными в очагах норови-русной инфекции. С учетом механизмов, путей и факторов передачи норовирусной инфекции подготовлены рекомендации по проведению дезинфекции в целях профилактики и борьбы с этой инфекцией, которые включены в МУ 3.1.1.2969-11 «Эпидемиологический надзор, лабораторная диагностика и профилактика норовирусной инфекции». Еще один суррогатный вирус — вируса гепатита В уток используется для изучения виру-лицидной активности средств, выбора наиболее эффективных из них и разработки режимов их применения в целях дезинфекции при парентеральном гепатите В человека. С аналогичным подходом (используя вирусы — возбудители инфекционных болезней, тест-вирусы, суррогатные вирусы) проводятся исследования вирулицидной активности дезинфицирующих средств, разрабатываются режимы дезинфекции эпидемиологически значимых объектов, рекомендации по дезинфекции при вирусных инфекциях в России и за рубежом.
ЛИТЕРАТУРА
1. Беляев А.Л. Выживаемость аденовирусов во внешней среде и их устойчивость к дезинфицирующим агентам. Дис. канд. мед. наук. М., 1967.
2. Замятина Н.А., Элбакян Р.М., Полещук В.Ф. и др. Комплексная оценка вирулицидной активности дезинфектантов на вирус гепатита А. Тр. ИПиВЭ им. М.П.Чумакова. Медицинская вирусология. М., 2006, XXIII, с. 137-141.
3. Крученок ТБ. Устойчивость вирусов гриппа и парагриппа к дезинфектантам из различных групп химических соединений. Автореф. дис. канд. мед. наук. М., 1977.
4. Пантелеева Л.Г. Вирулицидная активность
катионных поверхностно-активных веществ и дезинфицирующих средств на их основе. Дез. дело. 2006, 1: 34-38.
5. Пантелеева Л.Г. Классификация дезинфицирующих средств по вирулицидной активности. Инфекц. бол. 2010, 8 (1): 236-237.
6. Пантелеева Л.Г. Новые методические подходы к изучению и оценке вирулицидной активности дезинфицирующих средств. Гиг. сан. 2010, 5: 36-39.
7. Пантелеева Л.Г Средства и методы дезинфекции при ротавирусной инфекции в лечебно-профилактических учреждениях, других инфекционных очагах. Дез. дело. 2003, 2: 2933.
8. Шандала М.Г. Перспективы и проблемы современной дезинфектологии. Журн. микро-биол. 2003, 3: 119-125.
9. Block S. Disinfection, sterilization, and preservation. Philadelphia, Lippincott, Williams and Wilkins, 2001.
10. Вloomfield S.F., Smith-Burchnell C.A., Dalgleish A.G. Evaluation of hypochlorite-releasing disinfectants against the human immunodeficiency virus (HIV). J. Hospital. Infect. 1990, 15: 273278.
11. Graham D.Y., Dufour G.R., Estes M.K. Minimal infective dose of rotavirus. Arch. Virol. 1987, 92: 261-271.
12. Klein M., De Forest A. The inactivation of viruses by germicides. Chem. Specialists Manuf. Assoc. Proc. 1983, 49: 116-118.
13. Malik Y.S., Macherchandani S., Goyal S.M. Comparative efficacy of ethanol and isopropa-nol against feline calicivirus, a norovirus surrogate. Am. J. Infect. Control. 2006, 34 (1): 31-35.
14. Rheinbaben F. V., Wolf M.H. Handbuch der viruswirksamen desinfektionen. Springer-Verlag Berlin Heidelberg, 2002.
15. Whitehead K., McCue K.A. Virucidal efficacy of disinfectant active against feline calicivirus, a surrogate for norovirus, in a short contact time. Am. J. Infect. Control. 2010, 38: 26-30.
