CC BY
16
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
УДК 616.411-001.4-092.4
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЕ ОБОСНОВАНИЕ ОРГАНОСОХРАНЯЮЩИХ ОПЕРАЦИЙ ПРИ ТРАВМАТИЧЕСКИХ ПОВРЕЖДЕНИЯХ ОРГАНОВ МОШОНКИ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ
ГИАЛУРОНОВОЙ КИСЛОТЫ
С. М. Юлдашев, В. Н. Павлов, А. Г. Хасанов, М. Т. Юлдашев
Башкирский государственный медицинский университет
Авторы приводят результаты экспериментальных исследований по восстановлению целостности при травматических разрывах органов мошонки. При применении прецизионной микрохирургической техники и гиалуроно-вой кислоты при открытой и закрытой травме половых органов достигнуто улучшение результатов заживления и восстановление нормального сперматогенеза без острых воспалительно-деструктивных процессов.
Ключевые слова: травма наружных половых органов, прецизионная микрохирургическая техника, гиалуроновая кислота.
За последние годы наблюдается тенденция к росту мужского бесплодия [1, 5, 7, 11]. Одной из причин является большая частота травмы органов мошонки, сопровождающаяся в 80 % случаев повреждениями яичек [8, 10].
При оказании экстренной помощи пострадавшим с травмой органов мошонки до сих пор превалирует выжидательная хирургическая тактика. Это нередко приводит к развитию грубых морфологических изменений, вплоть до атрофии яичка [2, 3, 12, 13].
Между тем, для определения тактики хирургического или консервативного лечения большое значение имеет ранняя диагностика степени повреждения органов мошонки. Для сохранения травмированных органов мошонки важную роль играют применяемые способы гемостаза и восстановления их целостности.
В литературе имеются сведения о возможности использования гиалуроновой кислоты при травмах различных органов. В этом плане есть необходимость проведения экспериментальных исследований с применением гиалуроновой кислоты при травматических разрывах яичка. Все выше сказанное определяет актуальность поиска новых эффективных методов хирургического лечения травматических повреждений органов мошонки.
ЦЕЛЬ РАБОТЫ
Улучшить результаты хирургического лечения больных с травмой наружных половых органов
путем экспериментальной разработки эффективного метода органосохраняющих операций.
МЕТОДИКА ИССЛЕДОВАНИЯ
Нами проведены 2 серии экспериментов на кроликах породы шиншила весом 3—3,5 кг. Оперативные вмешательства проводились с соблюдением всех правил экспериментов, асептики и антисептики под общим обезболиванием.
I серия экспериментов (контрольная группа)на 6 кроликах.
Подопытным животным производили скро-тотомию слева. В рану выводили левое яичко с придатком. На боковой поверхности яичка наносили скальпелем резаную рану длиной 0,5 см, глубиной 0,2 см и также в области тела придатка 0,5 х 0,1 см. Раны ушивались кетгутом, и под толстую соединительнотканную капсулу яичка и в придаток вводилась дистиллированная вода объемом 0,5 мл. Скрототомию и извлечение кусочков ткани яичка и придатка производили также под общим обезболиванием с соблюдением асептики и антисептики на 7, 14 и 21-е сутки после операции. Для исследования процесса регенерации на гистологических препаратах брали кусочки ткани яичка и придатка, где была нанесена и ушита рана. После соответствующей проводки изготовлены гистологические препараты и окрашены гематоксилином и эозином.
2-2008 БЮЛЛЕТЕНЬ ВОЛГОГРАДСКОГО НАУЧНОГО ЦЕНТРА РАМН
II серия экспериментов (основная группа) на 6 кроликах.
Так же под общим обезболиванием, соблюдением правил асептики и антисептики производили скрототомию слева. В рану выводили левое яичко с придатком. На боковой поверхности яичка наносили скальпелем резаную рану длиной 0,5 см, глубиной 0,2 см, а в придатке 0,5 на 0,1 см. Раны ушивались кетгутом, и под толстую соединительнотканную капсулу яичка и в придаток вводилась 30 %-я гиалуроновая кислота (0,5 мл). Скротото-мию и извлечение кусочков ткани яичка и придатка производили также под общим обезболиванием с соблюдением асептики и антисептики на 7, 14 и 21-е сутки после операции. Для исследования процесса регенерации на гистологических препаратах брали кусочки ткани яичка и придатка, где была нанесена и ушита рана. После соответствующей проводки изготовлены гистологические препараты и окрашены гематоксилином и эозином. Всего изготовлено 350 препаратов.
РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
У контрольной группы животных после введения под толстую соединительнотканную капсулу яичка дистиллированной воды в объеме 0,5 мл отмечаются все признаки острого воспалительного процесса, включая фазу альтерации, экссудации и пролиферацию. Через 7 суток после эксперимента как в яичке, так и в придатке яичка наиболее активно ведут себя нейтрофиль-ные гранулоциты, проявляющие фагоцитарную активность и разрушающие продукты распада клеток и межклеточного вещества. Острое воспаление начинается с артериальной и венозной гиперемии после выделения вазоактивных веществ — медиаторов воспаления после введения жидкости (хемотаксического фактора). Под воздействием повреждающего агента мобилизуется вся иммунная система организма. И уже к 14-му дню опыта ярко проявляется разрушение процесса сперматогенеза в извитых семенных канальцах (рис. 1). При этом малодифференци-рованные клетки, расположенные у самого основания поддерживающих клеток, продолжают делиться митозом. Часть из них начинает дифференцироваться, переходя в фазу роста, увеличивая количество крупных клеток, образуя 2— 3 яруса. Тогда как дальнейшая их пролиферация уже нарушена, к просвету извитых семенных канальцев количество клеток фазы созревания и формирования сперматогенеза резко падает. Боковые цитоплазматические ячейки поддерживающих клеток оказываются пустыми, и их цитоплазматические отростки располагаются свободно. Вполне вероятно, что это результат нарушения гематотестикулярного барьера и,
как результат, аутоиммунной реакции. Все признаки воспалительного процесса охватывают и придаток семенника. В результате повышения проницаемости микрососудов придатка усиливается отек тканей, миграция лейкоцитов в окружающую рыхлую соединительную ткань, то есть развертываются гуморальные и клеточные механизмы защиты. Соответственно, в просвете канальцев придатка семенника мало или полностью отсутствуют сперматозоиды. Через 21 день после эксперимента в яичке и придатке определяются все признаки хронического воспалительного процесса с чрезмерным отложением колла-геновых волокон в органе.
Рис. 1. Отсутствие сперматозоидов в канале придатка на 14-е сутки опыта в контрольной группе животных. Окраска гематоксилином и эозином.
Микрофото. Ок. 10.Об.40.
В основной группе при применении гиалуро-новой кислоты в эксперименте, существенных изменений в мужских половых железах не определяется, за исключением незначительных сосудистых реакций в органе через 7 суток после эксперимента. Однако в сперматогенезе извитых семенных канальцев отклонения не наблюдаются. Вполне вероятно, это связано с сохранением гематоте-стикулярного барьера, так как в гистоструктур-ном отношении комплекс структур яичка сохранен без изменений. Через 14 и 21 день в гистологических препаратах также не выявляются деструктивные процессы, характерные для контрольной группы. В извитых семенных канальцах происходит интенсивный сперматогенез, а в канале придатка семенника содержится большое количество сперматозоидов (рис. 2). Все кровеносные сосуды умеренно полнокровны.
Следовательно, гиалуроновая кислота не обладает токсическим действием на ткани яичка, так как в гистологических препаратах не выявлены деструктивные процессы как в извитых семенных канальцах с гематотестикулярным барьером, так и в придатке яичка. Вероятно, гормональная активность также не нарушена, о чем свидетельствует нормальный сперматогенез.
БЮЛЛЕТЕНЬ ВОЛГОГРАДСКОГО НАУЧНОГО ЦЕНТРА РАМН
2-2008
Рис. 2. Кровеносные сосуды и сперматозоиды в канале придатка семенника на 14-е сутки опыта основной группы животных. Окраска гематоксилином и эозином. Микрофото. Ок.10.Об.40.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
Гиалуроновая кислота не обладает токсическим действием на ткани яичка, так как в гистологических препаратах не выявлены деструктивные процессы как в извитых семенных канальцах с гематотестикулярным барьером, так и в придатке семенника. Нормальный сперматогенез свидетельствует о сохранности гормональной активности.
Применение прецизионной микрохирургической техники при открытой и закрытой травме наружных половых органов позволит улучшить результаты хирургического лечения.
ЛИТЕРАТУРА
1. Аманазаров А. А. Патогенетическое обоснованное лечения закрытых повреждений органов мошонки: дис. ... д-ра мед. наук. — Ашгабад, Челябинск, 1995. — 120 с.
2. Божедомов В. А., Теодорович О. В. // Урология. — 2005. — 1 1. — С. 35—44.
3. Бреслер В. М., Шубин В. М. // Вестн. AMH СССР. — 1971. — 1 1. — С. 87—89.
4. Волков В. Г. // Вест. новых мед. технологий. — 2001. —Т. 8, 1 1. — С. 67—70.
5. Довлатян А. А., Черкасов Ю. В. // Урология.— 2003. — С. 24—35.
6. Миланов Н. О., Боровиков А. М., Ги-лис Я. С. // Урология и нефрология. — 1989.
— 1 6. — C. 54—59.
7. Тарасов Н. И., Аманазаров А. // Урология и нефрология. —1990. — i 1.— C. 55—59.
8. Устинкина Т. И. // Пробл. эндокринологии. — 2002. — Т. 48, 1 3. — C. 37—39.
9. Феняк Ю. Ф., Попов В. П. // Травматические повреждения мочевого пузыря, уретры и наружных половых органов. — Челябинск, 1982.
— С. 71—72.
10. Altarac S. // J. Eur. Urol. — 1994. — 1 25 (2). — Р. 119—123.
11. MulhaE J. P., Gabram S. G, Jacobs L. M. //J. Acad. Emerg. Med. — 1995. — 1 2 (7). — Р. 639—643.
12. McConnell J. D, Peters P. C, Lewis S. E. //J. Urology. — 1982. — Vol. 128. — 1 2. — P. 309—311.
13. Talic R. F. // Scand. J. Urol. Nephrol. — 1999. — 1 33 (2). — Р. 131—132.
УДК: 616.381-002-092.9-074
ОЦЕНКА СОСТОЯНИЯ КРАСНОЙ КРОВИ ПРИ ЖЕЛЧНОМ ПЕРИТОНИТЕ
М. С. Купреева, Э. А. Петросян, А. А. Сухинин, О. А. Терещенко
Краснодарский государственный медицинский университет
Нарушения метаболизма при желчном перитоните приводят к повреждению эритроцитов. Причиной деструктивных процессов является сорбция на мембране клеток токсинов и активизация перекисного окисления липидов. Изменения мембран носит разнонаправленный характер. Цитолитические процессы характерны для «старых» клеток, их разрушение регулирующе действует на перекисное окисление, тормозя его на уровне менее токсичных форм и приводит к появлению в крови молодых эритроцитов. Для более молодых форм характерно повышение жесткости эритроцитарной мембраны, препятствующее полноценному функционированию.
Ключевые слова: желчный перитонит, эритроциты, интоксикация, перекисное окисление липидов.
Нарушения метаболизма, сопровождающие развитие желчного перитонита (ЖП), приводят к развитию эндогенной интоксикации. Одним из последствий ее развития является клеточная дезорганизация [3]. Молекулярные нарушения клеточной мембраны приводят к дезорганизации клеточного метаболизма, потере функциональной компетентности, изменению жизнедеятельности кле-
ток и их гибели [10—13]. Повреждение клеточных мембран определяет все основные патофизиологические и клинические проявления эндо-токсикоза [7, 9].
Основу структурной организации мембран составляет бимолекулярный липидный слой с встроенными мембранными белками. Поэтому дисбаланс переокисления липидов и антиоксидантной защи-
