CC BY
56
водится нерегулярный уход за растениями (обрезка, очистка отмерших ветвей, прореживание). Лишь в центральном районе города некоторые аллеи имеют более или менее ухоженный вид (очистка подстилки, побелка, придание формы кроне). Нерегулярная вырубка старых деревьев не способствует эстетическому восприятию зеленых насаждений в целом на городских улицах.
На пораженных различными патогенами деревьях не проводятся санитарные мероприятия, что тоже наносит вред внешнему виду архитектурно-ландшафтного облика г. Куртамыша. Наиболее востребованы мероприятия, способствующие омоложению скелетных ветвей деревьев, обрезка сухих ветвей, формирование кроны деревьев, побелка стволов, вырубка усохших растений. Такая работа не требует огромных финансовых затрат, но придаст ухоженность внешнему виду города.
Заключение
Декоративная дендрофлора г. Куртамыша включает 37 видов из 27 родов и 15 семейств сосудистых растений в наборе, стандартном для населенных пунктов Курганской области. Экзотических и редких в посадках видов не выявлено. В систематическом отношении половина спектра рассматриваемой дендроф-лоры приходится на деревья; 44,4% - на кустарники, доля полукустарничков невелика (всего 1 вид, 5,6% видового состава дендрофлоры).
Озеленение г. Куртамыша требует специальных плановых разработок, включающих вырубку старых деревьев, высадку новых растений, а также своевременный уход за древесными растениями во всех частях города. При планировании развития зеленого хозяйства города следует обратить особое внимание на интродукцию высокодекоративных видов кустарников и полудревесных растений, слабо используемых сегодня в озеленении города.
Все деревья и кустарники, которые представлены в озеленении города Куртамыша, должны постоянно поддерживаться и находиться в хорошем состоянии вегетативных органов и соответствовать декоративным требованиям. С этой целью можно проводить целый комплекс мероприятий по уходу за надземной частью растений (кроной, ветвями, стволом) и за подземной частью (корневыми системами) в течение всей жизни растения.
Так, например, правильно проведенная обрезка позволяет улучшить общий рост и развитие растения там, где необходимо придать кроне определенную форму, удалить сухие, больные и излишние, загущающие крону ветви. В результате обрезки изменяется соотношение общей массы кроны и корней. Увеличивается количество всасывающих корней, снабжающих растения минеральными веществами и водой.
При проведении обрезки следует учитывать возраст растений. Некоторые виды, такие как лиственница и береза, в молодом возрасте благоприятно «отзываются» на обрезку. Так, береза в молодом возрасте хорошо переносит легкую обрезку; при обрезке ске-
летных сучьев у молодой лиственницы возникает масса молодых побегов, развивающихся из ствола. Дуб выдерживает частичную обрезку верхних частей в молодом возрасте [3].
Необходимо проводить посадку кустарников особенно в тех местах, где произрастают старые деревья, для того чтобы при их вырубке свободное пространство было заполнено.
Подбор растений для современного озеленения должен включать в себя декоративные характеристики видов, неприхотливость растений к городским условиям, а также незначительную стоимость по уходу за растениями [2].
Улучшить условия жизнедеятельности зеленых насаждений в городе, продлить сроки их эффективного функционирования можно, добиваясь сохранения экологического равновесия, гармоничного и целенаправленного развития урбанизированных территорий и природной среды [1].
Список литературы
1. Ерохина В.И. Озеленение населенных мест: Справочник-
М: Стройиздат, 1987. - 480с. с ил.
2. Маргайлик Г.И. Справочник озеленителя,- Минск: Полымя,
1979. - 144 с. с ил.
3. http://www.vashsad.ru/?id=44
4. http://ru. wikipedia.org/wiki/% CA%F3%F0%F2%E0%EC%FB%F8
УДК 577:574.24:591.1
O.M. Плотникова 1-2, H.H. Матвеев2, A.H. Евдокимов 2, A.M. Корепин2
1 Курганский государственный университет
2 Региональный центр экологического мониторинга объектов по уничтожению химического оружия по Курганской области
ЭФФЕКТ ВЛИЯНИЯ МЕТИЛФОСФОНАТА НА БИОХИМИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ КРОВИ ЛАБОРАТОРНЫХ МЫШЕЙ
Аннотация
Показано, что разовое подкожное введение лабораторным мышам метилфосфоновой кислоты (МФК) сопровождалось активацией окисления белков. Содержание продуктов окисления белков было повышено даже через 18 суток после введения МФК. Распределение олигопептидов между плазмой и эритроцитами указывает на достаточную сорбционную емкость эритроцитов по отношению к эндотоксинам. Наблюдалась нормализация маркеров эндогенной интоксикации в виде молекул средней массы и повышение активности супероксиддисмутазы, свидетельствующая о восстановлении адаптационных возможностей организма лабораторных мышей.
Ключевые слова: метилфосфоновая кислота, окислительная модификация белков, холинэстераза, лабораторные мыши.
O.M. Plotnikova12, N.N. Matveev2, A.N. Evdokimov2, Korepin A.M.2
1 Kurgan State University
2 Regional Center of environmental monitoring of storage and CWdistraction facilities in the Kurgan region
EFFECT OF METHYLPHOSPHONIC ACID ON THE BLOOD BIOCHEMICAL INDICES OF LABORATORY MICE
Abstract
It is shown that a single subcutaneous injection of laboratory mice methylphosphonic acid (MPA) was accompanied by the activation of protein oxidation. The content of the oxidation products of proteins were increased even after 18 days after the MPA. Oligopeptides distribution between plasma and red blood cells indicates a sufficient adsorption capacity of red blood cells in relation to endotoxin. Normalization of markers of endogenous intoxication in the form of molecules of average weight and increased activity of superoxide dismutase was being observed, indicating the restoration of adaptation abilities of laboratory mice.
Keywords: methylphosphonic acid, the oxidative modification of proteins, cholinesterase, laboratory mice.
Ведение
Специфические загрязняющие веществ в окружающей среде вызывают необходимость приспосабливаться организмы к новым условиям, что заканчивается адаптацией или срывом адаптивных механизмов. Любые процессы в живом организме, в том числе и адаптивные, протекают в условиях постоянного образования активных форм кислорода, свободных радикалов и работы антиоксидантной системы (АОС). Субстратами АОС являются низкомолекулярные вещества - «ловушки» радикалов -жирорасатворимые витамины, флавоноиды,тиолы, а ферментами-супе-роксиддисмутаза (СОД), глутатионпероксидаза, ката-лаза и др.
Одними из широко распространенных в современном мире специфических загрязняющих веществ с высокой физиологической активностью являются фос-форорганические соединения (ФОС), среди которых в первую очередь инсектициды и гербициды [1 ; 2]. Из группы ФОС особо можно выделить метилфосфонаты [3; 4], которые имеют малополярную фосфор-углеродную связь (С-Р связь) и при ее разрыве могут быть источниками свободных радикалов ('СН3 и «POjl-y. Образовавшиеся радикалы могут стать ловушками радикалов по реакции обрыва цепи радикальных процессов (например, »CHj+'OH = СН3ОН и «POjl-^+'OH = Н3Р04) или источником электронов с образованием супероксидного анион-радикала кислорода 02~ («PO,^ + 02+ Н20 = е + 02 + Н3Р04). Эти процессы могут приводить к интоксикациям и активации АОС организма.
Метилфосфоновая кислота (МФК) и ее соли (ме-
тилфосфонаты) как достаточно устойчивые соединения могут появляться в окружающей среде в результате детоксикации фосфорорганических отравляющих веществ в процессе уничтожения химического оружия [5], а также в результате разложения фосфорсодержащих пестицидов в почве [6].
Имеются данные о влиянии МФК на рост и ферментативную активность растений [7; 8], на биохимические показатели метаболизма в краткосрочном эксперименте [9; 10]. Продолжительное изучение влияния МФК на живые организмы остается актуальным.
Изучение влияния различных доз МФК в краткосрочном эксперименте от 12 часов до 3 суток показало, что МФК оказывает влияние на биохимические показатели метаболизма лабораторных мышей [9; 10], действуя в большей степени на антиоксидантную систему, приводя к окислительной модификации белков.
Целью настоящей работы было изучение в долгосрочном эксперименте динамики изменения показателей, характеризующих работу АОС, активности супероксиддисмутазы, а также активности фермента холинэстеразы, важнейшего показателя белково-об-разующей функции печени и диагностики воздействия ФОС.
ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
При изучении окислительной модификации белков (ОМБ) определяли общий белок и продукты ОМБ в виде альдегидо- и кетодинитрофенилгидразонов (АФГ и КФГ), оценку работы АОС проводили по активности фермента СОД. Для характеристики патологических изменений в организме, которые могут происходить в результате ОМБ, в исследовании определяли маркеры эндогенной интоксикации, которыми являются олигопептиды (ОП), молекулы средней массы (СММ) в плазме и эритроцитах крови. Для оценки бел-ково-образующей функции печени определяли активность холинэстеразы плазмы крови.
Исследования проводили на белых лабораторных мышах линии СБА в возрасте 2-х месяцев массой 24±2 г, которые содержались в стандартных условиях вивария. Животным опытных групп (по 10 особей в каждой) вводили в объеме 0,04 мл подкожно нейтрализованные изотонические растворы МФК в диапазоне высоких доз - 103 мг/кг для определяемых субстратов или 2 и 5 мг/кг для ферментов СОД и холинэстеразы соответственно. Животным контрольных групп (10 особей в 3-х суточном и 20 особей - для усреднения погрешностей текущего содержания животных- в 18-и суточном эксперименте) вводили физиологический раствор.
После умерщвления животных путем декапита-ции для исследования брали цельную кровь, из которой после центрифугирования получали плазму и эри-троцитарную массу крови через 3, 6, 12 и 18 суток после введения растворов МФК.
Все работы с лабораторными мышами проводили согласно принципам гуманного отношения кживотным в соответствии с «Международными рекомендациями по проведению медико-биологических исследований» [11], «Правила лабораторной практики в Российской
Федерации» и «Правилами проведения работ с использованием экспериментальных животных» [12].
Нормальность распределения в совокупности экспериментальных данных в каждой выборке оценивалась по критерию Шапиро-Уилка и обрабатывалась методами непараметрической статистики [13]. Результаты исследования представляли в виде медианы, на основании которой считали различия значений в процентах (%) в опытных группах относительно контрольных групп. Ин-терквартильные размахи представлены в виде 25-го и 75-го процентилей. Достоверность различий между двумя выборками оценивали по \Л/-критерию Вилкок-сона-Манна-Уитни для независимых выборок при уровне значимости при проверке статистических гипотез менее 0,05.
В работе для определения изучаемых биохимических показателей крови лабораторныхмышей использовали общепринятые методы лабораторной диагностики [14], которые были адаптированы к биоматериалу мелких грызунов [15].
Общий белок определяли биуретовым методом Кингслея-Вейксельбаума с регистрацией оптической плотности окрашенных комплексов при длине волны 540 нм. После обработки плазмы крови трихлоруксус-ной кислотой (ТХУ) в супернатанте проводили определение олигопептидов в плазме (ОПпл) спекгрофотомет-рическим методом Лоури [16] при длине волны 750 нм, а в белковом осадке, промытом смесью этилацетата с этанолом и растворенном в подкисленном растворе мочевины, определяли продукты ОМБ по реакции с 2,4-динитрофенилгидразином [17]. Продукты реакции регистрировали при длинах волн 270 нм (АФГ), 363 нм и 370 нм (КФГ), выражая степень окисленной модификации белков в единицах оптической плотности (е.о.п.) на 1 мг белка. ВНСММ в плазме (ВНСММпл) определяли в супернатанте после осаждения крупномолекулярных белков плазмы раствором ТХУ путем регистрации спектра поглощения исследуемого раствора на спектрофотометре фирмы иап\л/ау в ультрафиолетовом диапазоне при 238-298 нм с шагом в 1 нм по методу М.Я. Малаховой [16]. ОП и ВНСММ в эритроцитах (ОПэр и ВНСММэр) определяли аналогично их обнаружению в плазме после промывания эритро-цитарной массы физиологическим раствором и осаж-
дения белков ТХУ в эритроцитарном супернатанте. Активность СОД в эритроцитах определяли по реакции, основанной на способности фермента конкурировать с нитросиним тетразолием (НСТ) за супероксидные анионы (мкмоль НСТ на 109эр/мин), образующиеся в результате аэробного взаимодействия НАДН и феназинметсульфата [14]. Ферментативную активность холинэстеразы определяли методом, основанным на реакции гидролиза бутирилтиохолина [15].
ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
При обсуждении экспериментальныхданных рассматривали изменения биохимических показателей крови лабораторных мышей опытных групп относительно контрольных групп (табл. 1).
Полученные данные по содержанию общего белка в крови лабораторных мышей после введения им растворов МФК указывали на отсутствие значимых изменений: достоверные отличия не превышали 8-9% в течение всего срока эксперимента. На фоне практически нормальных значений для общего белка через 3 суток отмечалось снижение на 72% уровня позднего маркера окислительной деструкции белков (КФГ), а через 18 суток отмечался рост как раннего (АФГ), так и позднего маркеров ОМБ-увеличение содержание АФГ в плазме на 13 и 28% соответственно (рис. 1).
* * * **
1—1
3 сут 6 сут 12 сут 18 сут
время после введения МФК в дозе 2 мг/кг
^^ АФГ ^^КФГ -•- Общий белок
Рис. 1. Изменение содержания АФГ КФГ и общего белка в крови мышей после введения МФК Примечание: здесь и далее уровень значимости достоверных различий: * - р<0,05, ** - р<0,005, *** - р<0,0005; контроль соответствует 100%
Таблица 1
Биохимические показатели крови лабораторных мышей контрольных групп (медиана, 25-й и 75-й процентили)
Изучаемый показатель Контроль (п=10), 3 суток Контроль* (п=20), 6-18 суток
Общий белок, г/л 56,3 (53,5-58,4) 60,9 (60,1-64,0)
Альдегидадинитрофенилгидразоны, е.о.п./г 206 (198-225) 186 (178-195)
Кетодинитрофенилгидразоны, е.о.п./г 22,6 (19,6-25,3) 17,6 (14,0-23,9)
Олигопептиды в плазме, г/л 0,177 (0,162-0,203) 0,208 (0,184-0,259)
Олигопептиды в эритроцитах, г/л 0,137 (0,118-0,142) 0,109 (0,102 -0,118)
Молекулы средней массы плазмы, е.о.п. 6,87 (5,10-6,99) 6,42 (5,14-9,69)
Молекулы средней массы эритроцитов, е.о.п. 9,03 (7,87-9,84) 11,5 (9,87-12,2)
Супероксиддисмутаза, мкМ НСТ»эр/мин 91,8 (67,2-108,5) 79,5 (71,0-91,0)
Активность холинэстеразы, мккат/л 113 (98-121) 97 (75-112)
Примечание: * - ввиду большого временного интервала в 18-суточном эксперименте использовали свою контрольную группу
Таким образом, можно предположить, что МФК в достаточно высокой дозе через непродолжительное время после введения может сохраняться в организме в неизменном виде и выполнять функцию «ловушки» радикалов, что приводит к снижению скорости окислительной модификации белков.
Процессы ОМБ приводят не только к продуктам окисления белков, но и к различным стабильным метаболитам аминокислот и пептидов-олигопептидов и различной природы СММ, которые, в свою очередь, вызывают структурные перестройки белковых молекул [18].
После введения МФК через 3-е суток содержание ОП в плазме было в 1,4-1,9 раза выше контроля и резко снижалось к 6-м суткам, особенно в плазме - в 1,5-2 раза (рис. 2).
140
120
|100 s
60
**
-- ** 1 ***
1 * -И 1
—га J; ' ; 'l SN 1_ьа
* *
3 сут 6 сут 12 сут 18 сут
время после введения МФК □ ОПпл ■ ОПэр аВНСММпл ИВНСММэр
140 120 100 80 60
**
*
п I
* 1—1_1 1_1
*
3 сут 6 сут 12 сут 18 сут
время после введения МФК
□ СОД ПХолинэстераза
Рис. 2. Изменение содержания ОП и СММ в плазме и эритроцитах крови мышей после введения МФК
Данные по содержанию ОП в плазме и эритроцитах крови опытных групп мышей к 18 суткам после введения МФК показали, что не происходило нормализации процессов образования олигопептидов. После введения высоких доз МФК содержание ОП в плазме оставалось на 17-20% ниже нормы и через 12 и 18 суток при повышенном содержании ОП в эритроцитах. Такое распределение ОП между плазмой и эритроцитами, для которых характерны защитные функции, скорее всего указывает на достаточную сорбционную емкость эритроцитов по отношению к эндотоксинам.
На протекание адаптивных процессов в организме мышей опытных групп указывали и другие маркеры эндогенной интоксикации - ВНСММ в плазме и эритроцитах (рис. 2). После введения МФК уровень ВНСММ в плазме и эритроцитах незначительно отличался от нормальныхзначений.
Изменение активности СОД в сроки эксперимента от 3-хдо 18-и суток не всегда коррелировало с изменением содержания в крови опытных групп мышей продуктов ПОБ и маркеров эндогенной интоксикации. Так, после введения мышам высокой дозы МФК через 3 суток повышенная активность СОД, участвующей в утилизации супероксидного анион-радикала кислорода, соответствовала норме альдегидопроизводных и молекул средней массы, пониженному уровню кетопроизводныхбелков (рис. 3). Однако уровень ОП в то же время был повышен на 27-36%. Через 18 суток после введения МФК содержание продуктов ОМБ было достоверно увеличено даже при повышенной активности СОД.
Рис. 3. Изменение активности СОД и холинэстеразы в плазме крови после введения МФК
Активность холинэстеразы в плазме крови после введения мышам раствора МФК была достоверно понижена вплоть до 6 суток на 20-30% (рис. 3). И только на 18 сутки после введения МФК активность холинэстеразы не отличалась от контрольных значений. Снижение активности холинэстеразы может указывать как на участие МФК в обратимом блокировании холинэс-теразного центра, так и на деградацию холинэстеразы или на нарушение процесса биосинтеза этого фермента как белковых молекул.
Таким образом, показано, что разовое подкожное введение самцам лабораторных мышей такого специфического поллютанта, как МФК, провоцирующего в организме состояние окислительного стресса, что сопровождалось активацией окислительной модификации белков, содержание продуктов которой было повышено даже через 18 суток после введения МФК. В то же время распределение олигопептидов между плазмой и эритроцитами указывает на достаточную сорбционную емкость эритроцитов по отношению к эндотоксинам. Наблюдалась и нормализация маркеров эндогенной интоксикации в виде молекул средней массы и повышение активности СОД, свидетельствующая о восстановлении резервно-адаптационных возможностей организма лабораторных мышей.
Полученные результаты предполагают возможность использования таких показателей, как маркеры окислительной модификации белков в виде АФГ и КФГ, олигопептиды и молекулы средней массы в плазме и эритроцитах наряду с активностью СОД и холинэстеразы как информативные показатели для изучения присутствия фосфорорганических соединений типа метилфосфонатов в природных средах.
Список литературы
1. Каган Ю.С. Токсикология фосфорорганических пестици-
дов,- М.: Медицина, 1977,- 293 с.
2. Kafarski P., Leiczak В., Mastalerz P. Phosphonopeptides -
synthesis and biological activity // Beitr. Wirkstofforsch-
1985,- H. 25,- P.3-77.
3. Нифантьев Э.Е. Химия гидрофосфорильных соединений.
M.: Наука, 1983,- 263 с.
4. Пурдела Д., Вылчану Р. Химия органических соединений
фосфора,- М.: Химия, 1972 - 752 с.
5. Мипго N.B., Talmage S.S., Griffin G.D., Waters L.C., Watson
A.P, King J.F., Hauschild V. The Sources, Fate and Toxicity
of Chemical Warfare Agent Degradation, Products //
Environmental Health Perspectives.- 1999,- V. 107,- № 12.
P. 933-974.
6. Кононова C.B., Несмеянова M.A. Фосфонаты и их деграда-
ция микроорганизмами //Биохимия - 2002 - Т. 67, № 2-С. 220-233.
7. Огородникова С.Ю., Гэловко Т.К., Ашихмина Т.Я. Реакции
растений на действие метилфосфоновой кислоты // Теорет. и приклад, экология,- 2007 - № 1- С. 78-93.
8. Серебрякова H.H. Влияние ксенобиотиков на физиологию
и биохимию листостебельных мхов // Вестник Оренбургского государственного университета,- Оренбург.
- 2007,- № 12,- С. 71-75.
9. Плотникова О.М., Матвеев H.H., Корепин A.M. и др.
Биохимические показатели лабораторных мышей в зависимости от времени интоксикации метилфосфо-натом // Теоретическая и прикладная экология,- 2010-№ 1,- С. 81-86.
10. Плотникова О.М., Савинова И.В., Матвеев H.H. и др.
Особенности влияния различных доз метилфосфоновой кислоты на основные биохимические показатели метаболизма лабораторных мышей // Вестник Челябинского государственного педагогического университета.
- Челябинск: Изд-во ЧГПУ, 2011,- № 1,- С. 307-316.
11. Международные рекомендации по проведению медико-
биологических исследований с использованием животных//Ланималогия,- 1993,- № 1,- С. 29.
12. Правила лабораторной практики в Российской Федера-
ции: приложение к приказу МЗ РФ № 267 от 19.06.2003. Правила проведения работ с использованием экспериментальных животных: приложение к приказу МЗ СССР № 755 от 12.03.1977.
13. Гланц С. Медико-биологическая статистика,- М.:
Практика, 1998,- 459 с.
14. Камышников B.C. Справочник по клинико-биохимическим
исследованиям и лабораторной диагностике. - М.: МЕДпресс-информ, 2004,- 920 с.
15. Методика выполнения измерений биохимических показа-
телей в плазме (сыворотке) крови мелких теплокровных животных фотометрическим методом. Свидетельство об аттестации МВИ № 22.11.03.052/2009.
16. Малахова М.Я. Методы биохимической регистрации
эндогенной интоксикации. Сообщение второе // Эфферентная терапия,- 1995 - Т. 1, № 2 - С. 61-64.
17. Вьюшина A.B., Вайдо И.А., Гэрасимова И.Г. и др. Различия
в процессах перекисного окисления белков у крыс, селектированных по порогу возбудимости нервной системы // Бюл. экспер. биол - 2002 - Т. 133, № 3. -С. 292-296.
18. Гобский Ю.И., Беленичев И.Ф., Левицкий Е.Л. и др. Токсико-
логические последствия окислительной модификации белков при различных патологических состояниях (обзор литературы) // Совр. пробл. токсикол - 2005-№ 3. - С. 20-26.
УДК 581.1
Т.А. Лушникова, В.Е. Толчинская Курганский государственный университет
ВЛИЯНИЕ ПРЕПАРАТА «АЛЬБИТ» НА НЕКОТОРЫЕ ФИЗИОЛОГИЧЕСКИЕ И БИОХИМИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ КАРТОФЕЛЯ
Аннотация
В статье показано влияние обработки препаратом «Альбит» на рост, урожайность и содержа-
ние крахмала в клубнях картофеля сорта Розара.
Ключевые слова: картофель, препарат «Альбит», рост, урожайность, крахмал.
Т.А. Lushnikova, V.E. Tolchinskaya Kurgan State University
INFLUENCE OF THE PREPARATION «ALBIT» ON SOME PHYSIOLOGICAL AND BIOCHEMICAL PARAMETRES OF POTATOES
Annotation
In article the influence of the processing by preparation «Albit» on growing, productivity and contents of the starch in tubers of the potatoes of variety «Rozara» is shown.
Keywords: potatoes, preparation «Albit», growing, productivity, starch.
Введение
Картофель - важнейшая продовольственная, техническая и кормовая культура. Благодаря высокому содержанию в клубнях крахмала, белка и витаминов картофель является важным продуктом питания, и его по праву называют «вторым хлебом». Картофель используют в спиртовой, крахмалопаточной, декстриновой, глюкозной, каучуковой и других отраслях промышленности. Картофельный крахмал применяют в пищевой, текстильной, бумажной промышленности. Клубни картофеля - ценный корм для сельскохозяй-ственныхживотных. На корм также используют побочные продукты его переработки (барда, мезга) и засилосованную ботву. В настоящие время картофель выращивают во всех странах мира на площади около 20 млн га. По объёму производства он занимает второе место в мире после зерновых культур, а Россия лидирует по посевным площадям валовым сборам картофеля. Картофель на территории России выращивают в Центральных районах Нечернозёмной зоны, Центрально-Чернозёмных областях, Поволжье, Башкортостане, на Урале, в Сибири, на Дальнем Востоке [1]. В агротехнике возделывания широко используют различные химические препараты, в частности регуляторы роста. Применение этих веществ способствует повышению урожайности, устойчивости растений к стрессовым воздействиям и защите от вредителей и патогенов [2].
Цель настоящей работы - изучить влияние синтетического регулятора роста и развития растений «Альбит» на некоторые физиолого-биохимические показатели картофеля сорта Розара.
1. Методика исследования
Объектом исследования был картофель сорта Розара и химический препарат регулятора роста и раз-
