CC BY
63
УДК 619:598.1
ДИАГНОСТИКА И ЛЕЧЕНИЕ СТОМАТИТА У РЕПТИЛИЙ, СОДЕРЖАЩИХСЯ В ЧАСТНЫХ КОЛЛЕКЦИЯХ ЖИТЕЛЕЙ ГОРОДА КРАСНОЯРСКА
А. В. Мартышин1, Н. М. Ковальчук2
'Красноярский государственный аграрный университет 2Хакасский государственный университет им. Н. Ф. Катанова
В статье представлены данные по диагностике стоматитов у рептилий, содержащихся в частных коллекциях жителей г. Красноярска. Установлен спектр основных условно-патогенных микроорганизмов, участвующих в патологическом процессе. При этом обсуждается своевременная диагностика и правильная стратегия антибактериальной терапии, необходимой для выздоровления экзотических животных.
Ключевые слова: бактериальная микрофлора рептилии, стоматит, микробиологическое исследование, патогенность, антибиотико-чувствительность.
Введение. По сообщениям мировой литературы, стоматиты, в частности инфекционные, очень часто встречаются у рептилий. В основном болеют всеядные типы пресмыкающихся: крокодилы, змеи, реже ящерицы. Наблюдаются стоматиты с различной локализацией воспалительного процесса. В случае поражения слизистой оболочки только языка говорят о глоссите, дёсен - о гингивите, губ - хейлите, нёба - о палатините. По этиологической классификации у рептилий различают: травматический стоматит, инфекционный, специфический [1]. По форме чаще всего наблюдаются язвенный и некротический стоматиты. В большинстве случаев стоматиты протекают остро, иногда хронически. Они могут быть первичными и вторичными, как симптомы заразных и незаразных болезней. Причины травматических стоматитов могут быть следующие: механическая травма, химическое повреждение слизистых оболочек ротовой полости. В запущенной стадии заболевания стоматиты сопровождаются бактериальной инфекцией, ведущим возбудителем которой является синегнойная палочка [2]. Инфекционные стоматиты возникают при инфицировании различной бактериальной микрофлорой. В основном это St. aureus, Str. Pyogenes, а также Escherichia coli, Pseudomonas aerunisa, Proteus [3; 4; 5; 6]. Специфические стоматиты как результат поражения слизистой оболочки полости рта при грибковых заболеваниях, аутоиммунных и стрессовых состояниях встречаются у рептилий крайне редко.
Основной целью работы явилось определение этиологической структуры стоматитов и подбор оптимальной схемы лечения, с учётом антибиотикоустойчивости выделенной микрофлоры у рептилий, содержащихся в частных коллекциях жителей города Красноярска.
Задачи исследования:
- провести общий клинический осмотр ротовой полости рептилий и отбор материала для исследования;
- установить этиологическую роль бактериальных агентов при стоматитах у рептилий;
- дать оценку антибактериальной терапии при инфекционных стоматитах, основываясь на клинической картине заболевания и результатах микробиологического исследования.
Объектом исследования стали 5 крокодиловых кайманов (отряд Crocodilia, семейство Alligatoridae, род Caiman, вид Caiman crocodilus).
Материалом исследования были 5 проб ассоциированной культуры, выделенной со слизистой оболочки ротовой полости 5 кайманов.
Материалы и методы. Для реализации поставленных задач были использованы микробиологические методы исследования: микроскопический метод исследования - приготовление бактериоскопических препаратов, окраска по Граму [7; 8], бактериологический метод исследования - изучение культурально-биохимических свойств [7; 9], биологический метод - изучение факторов патогенности, биопроба на лабораторных животных, тест на чувствительность к антибактериальным препаратам [7; 9; 10; 11; 12; 13]. Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам проводили диско-диффузным методом. Идентификацию бактерий осуществляли с учётом всех изученных свойств микроорганизмов по определителям Бержи и Сидорова [10; 14] Количественный анализ проводили согласно методике, описанной в работе [15].
Результаты исследования. В ветеринарную клинику города Красноярска в мае 2012 года обратились владельцы трёх кайманов. Животные в течение последних трёх месяцев плохо ели или отказывались от корма. В их поведении отмечались вялость, апатия. При санации ротовой полости были выявлены следующие симптомы: слизистая ротовой полости малиновая, с синюшным оттенком, набухшая. На поверхности языка многочисленное количество язв. На слизистых оболочках и кончике языка присутствовал серый налёт и большое скопление гноеродных масс. Животных содержат в небольшом бассейне размером 5 х 4 метра. Корм, в основном, состоял из слаборазмороженного свиного мяса. В корме не исключалось присутствие трубчатых костей. Предварительно был поставлен диагноз - стоматит.
У животных проведено удаление язв и некротизированных участков, с помощью коагулятора были взяты смывы с ротовой полости на микробиологическое исследование. В процессе бактериологического исследования со слизистой оболочки ротовой полости кайманов было выделены следующие микроорганизмы: Streptococcus pyogenes (21 %), Pseudomonas aeruginosa (21 %), Proteus vulgaris (21 %), Staphylococcus aureus (15 %), Escherichia
coli (15 %) И Diplococcus pneumonia (7 %). Результаты бактериологического исследования представлены в таблице 1.
В процессе микробиологического исследования, помимо бактериологического анализа и теста на чувствительность к антибиотикам, в течение 14 дней проводилось изучение патогенных свойств выделенной микрофлоры. Установлена их высокая биологическая активность: пять культур Staphylococcus aureus обладали гиалу-ронидазной, фибринолизиновой, дезоксирибонуклеазной, плазмокоагулазной и гемолитической активностью; три культуры Streptococcus pyogenes также являлись гиалуронидаза-, фибринолизин-, дезоксирибонуклеаза- и нейраминидаза-положительными и проявляли ß-гемолиз; пять культур Diplococcus pneumonia также обладали такими ферментами патогенности, гиалуронидазой, дезоксирибонуклеазой и нейраминидазой, при этом гемолитическая активность выявлялась в виде а-гемолиза.
Патогенные свойства выделенных культур Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa, Proteus vulgaris изучали в биопробе на белых мышах. Заражение животных производили суточной смесью испытуемой культуры (на физиологическом растворе) внутрибрюшинно в дозе 0,5 мл в концентрации 1 х 109 микробных клеток в одном миллилитре. Контрольным животным внутрибрюшинно вводили стерильный физиологический раствор. В ходе эксперимента микрофлорой, выделенной со слизистой ротовой полости, заражено 24 лабораторных животных, из них пало 18 (75 %). Общее количество патогенных культур, выделенных при стоматитах рептилий, составило 6 (75 %). Среди них количество патогенных культур Escherichia coli составило 1 (50 %), Pseudomonas aeruginosa - 3 (100 %), Proteus vulgaris - 2 (66 %).
Таблица 1
Результаты микробиологического исследования слизистой оболочки ротовой полости кайманов
Номер животного Количество проб Выделено культур В том числе
Staphylococcus aureus Streptococcus pyogenes Escherichia coli Pseudomonas aeruginosa Proteus vulgaris Diplococcus pneumonia
кол-во \0 6х кол-во \0 6х кол-во \0 6х кол-во \0 6х кол-во \0 6х кол-во \0 6х
1 1 4 1 25 1 25 - - 1 25 - - 1 25
2 1 3 - - 1 33 - - 1 33 1 34 - -
3 1 3 - - 1 33 1 33 1 33 - - - -
4 1 2 - - - - 1 50 - - 1 50 - -
5 1 2 1 50 - - - - - - 1 50 - -
Всего 5 14 2 15 3 21 2 15 3 21 3 21 1 7
Исследования позволили также установить, что микрофлора, выделенная из ротовой полости при стоматитах рептилий, проявляла высокую антибиотикоустойчивость. Так, в результате анализа антибиотикограммы удалось выявить, что изучаемые микроорганизмы наиболее чувствительны к офлоксацину (ДЗЗР > 18 мм в 98 %) и ципрофлоксацину (ДЗЗР > 21 мм в 97 %), менее чувствительны к гентамицину и цефтриаксону (ДЗЗР > 15 мм в 85 % и ДЗЗР > 21 мм в 70 % соответственно). Меньшую чувствительность проявили колонии к антибиотику амоксиклаву (ДЗЗР > 18 мм в 60 %). Результаты изучения антибиотикоустойчивости представлены в таблице 2.
Таблица 2
Показатели чувствительности культур, выделенных со слизистой оболочки ротовой полости рептилий
(в процентном соотношении)
Вид препарата Количество культур (диметр зоны задержи роста, % соотношение)
устойчивых малочувствительных чувствительных
Офлоксацин ДЗЗР > 14 мм в 0 % ДЗЗР > 15-17 мм в 2 % ДЗЗР > 18 мм в 98 %
Ципрофлоксацин ДЗЗР > 15мм в 1 % ДЗЗР > 16-20 мм в 2 % ДЗЗР > 21 мм в 97 %
Гентамицин ДЗЗР > 12 мм в 1 % ДЗЗР > 13-14 мм в 14 % ДЗЗР > 15 мм в 85 %
Цефтриаксон ДЗЗР > 13 мм в 20 % ДЗЗР > 14-20 мм в10 % ДЗЗР > 21 мм в 70 %
Амоксиклав ДЗЗР > 13 мм 35 % ДЗЗР > 14-17 мм в 5 % ДЗЗР > 18 мм в 60 %
После первичного осмотра и поставленного предварительного диагноза была выбрана стратегия лечения стоматита у рептилий, основу которой составило применение антибактериальных и противоспалительных препаратов. В последующем лечение стоматита у рептилии скорректировано с учётом антибиотикограммы, выделенной при стоматите микрофлоры. По результатам микробиологического исследования и клинических симптомов животных проведено этиотропное лечение:
- антибиотик группы офлоксацин в дозе 6 мг/кг один раз в 48 часов, внутрь, курсом 7 приёмов;
- аскорбиновая кислота в дозе 25 мг/кг, внутрь, ежедневно, в течение 7 дней;
- орошение ротовой полости раствором мирамистина, два раза в день, в течение 7 дней.
Своевременная диагностика и выбор правильной стратегии антибактериальной терапии способствовали выздоровлению рептилий. Скорректированная терапия при лечении данного заболевания основывалась на применении противомикробных препаратов, таких как хлоргексидин, мирамистин и антибиотиков из группы фторхи-нолонов: цифран, офлоксацин и ломефлоксацин, обладающих высоким спектром бактерицидного действия в отношении синегнойной палочки, гноеродного стрептококка и золотистого стафилококка, которые чаще всего встречались в этиологии стоматита у рептилий.
Выводы. Клиническая картина при инфекционном стоматите у рептилий характеризовалась угнетением животного, отказом от корма. При пальпации тканей ротовой полости проявлялась болезенность. Слизистая оболочка отечна, малинового цвета. На поверхности поражённых тканей наблюдалось гнойное отделяемое.
В процессе бактериологического исследования было установлено, что отделяемое слизистой оболочки ротовой полости у рептилий при стоматите контаминировано следующей микрофлорой: Streptococcus pyogenes (21 %), Pseudomonas aeruginosa (21 %), Proteus vulgaris (21 %), Staphylococcus aureus (15 %), Escherichia coli (15 %) и Diplococcus pneumonia (7 %).
Для эффективной антибиотикотерапии при стоматитах рептилий исходили из определения спектра действия препарата, учитывали кратность его применения, массу животного, результаты антибиотико чувствительности и экономическую эффективность. Хороший лечебный эффект получен при применении препарата группы фторхинолонов - офлоксацина, в лечебной дозе 6 мг/кг один раз в 48 часов и антисептического раствора мирамистина путём орошения им воспалённых участков слизистой оболочки ротовой полости три раза в день.
Библиографический список
1. Афтозный стоматит - этиология, патогенез (часть 1) / О. Ф. Рабинович [ и др.] // Стоматология. - 2010. - № 1. - С. 71-74.
2. Беляков, И. М. Болезни зубов / И. М. Беляков, В. А. Лукьяновский. - М.: Изд-во «Нива России», 1996. - С. 115-124.
3. Wiliams, F. The bacterial flora of the mouths of Australian venomous snakes in captivity / F. Wiliams, M. Freeman, E. Kennedy // Med. J Austral. - 1954. - № 2. - P. 190-193.
4. Draper, C. S. Patterns of oral bacterial infection in captive snakes / C. S. Draper, R. D. Walker, H. E. Lawler // J Amer Vet Med Assoc 179: 1223: 1226.
5. Health management of a colony of breeding gaboon vipers (Bitis gabonica rhinoceros) / J. Loarte J. [et al] // 4 th Scientific Meeting Europ. Assoc. of Zoo-and Wildlife Veterinarius (EAZWV), 2002.
6. Glazebrook, J. A survey of the diseases of marine turtles in northern Australia. I. Farmed turtles / J. Glazebrook, R. A Campbell // Diseases of Aquatic Organisms. - 1990. - V. 9. - P. 83-95.
7. Биргер, М. О. Справочник по микробиологическим и вирусологическим исследованиям / М. О. Биргер. - М.: Медицина, 1982. - 464 с.
8. Кисленко, В. Н. Практикум по ветеринарной микробиологии и иммунологии / В. Н. Кисленко. - М.: КолосС, 2005. - С. 64-72, 78-90.
9. Костенко, Т. С. Практикум по ветеринарной микробиологии и иммунологии / Т. С. Костенко, В. Б. Родионова, Д. И. Скородумов. - М.: Колос, 2001. - С. 66-82, 99-109, 291-313.
10. Сидоров, М. А. Определитель зоопатогенных микроорганизмов / М. А. Сидоров, Д. И. Скородумов, В. Б. Федотов; под ред. М. А. Сидорова. - Иваново: МИК, 1995. - 319 с.
11. Воробьёв, А. А. Медицинская и санитарная микробиология / А. А. Воробьёв, Ю. С. Кривошеин, В. П. Широбоков. - М.: Академия, 2003. - 464 с.
12. Лабинская, А. С. Общая и санитарная микробиология с техникой микробиологических исследований / А. С. Лабинская, Л. П. Бликова, А. С. Ещина. - М.: Медицина, 2004. - С. 158-189
13. Покровский, В. И. Стрептококки и стрептококкозы / В. И. Покровский, Н. Н. Брико, Л. А. Ряпис. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2006. - 541 с.
14. Хоулт, Д. Определитель бактерий Берджи. Том 1, 2. / Д. Хоулт. - М.: Мир, 1997. - 900 с.
15. Сбойчаков, В. Б. Санитарная микробиология / В. Б. Сбойчаков. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2007. - С. 23-27.
© Мартышин А. В., Ковальчук Н. М., 2014
УДК: 619.616.053.2
ВЛИЯНИЕ ГЕМАТОЛОГИЧЕСКИХ И БИОХИМИЧЕСКИХ ПОКАЗАТЕЛЕЙ КРОВИ У РАЗНЫХ ПОЛОВОЗРАСТНЫХ ГРУПП КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА ГЕРЕФОРДСКОЙ ПОРОДЫ В РАЗНЫЕ СЕЗОНЫ ГОДА
В. И. Раицкая, В. В. Глушков, Л. Г. Виль
Научно-исследовательский иснтитут аграрных проблем Хакасии РАН
В статье проанализированы изменения некоторых гематологических и биохимических параметров крови у разнополовозрастных групп крупного рогатого скота герефордской породы в разные сезоны года.
Ключевые слова: герефордская порода; крупный рогатый скот мясного направления, гематологические и биохимические показатели крови.
Введение. Весной параметры крови достоверно отличаются от осенних и летних, тогда как в одноимённые сезоны эти параметры весьма близки между собой. Уменьшение числа эритроцитов в крови животных разных половозрастных групп может быть обусловлено неполноценным кормлением в зимний период (за счёт недостатка белков). В зимний период содержание количества эритроцитов в крови у быков-производителей состави-
