Научная статья на тему 'Диагностика и лечение стоматита у рептилий, содержащихся в частных коллекциях жителей города Красноярска'

Диагностика и лечение стоматита у рептилий, содержащихся в частных коллекциях жителей города Красноярска Текст научной статьи по специальности «Ветеринарные науки»

CC BY
295
52
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.
Ключевые слова
БАКТЕРИАЛЬНАЯ МИКРОФЛОРА РЕПТИЛИИ / REPTILES / BACTERIAL MICROFLORA / СТОМАТИТ / МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ / MICROBIOLOGICAL RESEARCH / ПАТОГЕННОСТЬ / PATHOGENICITY / АНТИБИОТИКОЧУВСТВИТЕЛЬНОСТЬ / ANTIBIOTIC SENSITIVITY / DISEASE

Аннотация научной статьи по ветеринарным наукам, автор научной работы — Мартышин Андрей Владимирович, Ковальчук Наталья Михайловна

В статье представлены данные по диагностике стоматитов у рептилий, содержащихся в частных коллекциях жителей г. Красноярска. Установлен спектр основных условно-патогенных микроорганизмов, участвующих в патологическом процессе. При этом обсуждается своевременная диагностика и правильная стратегия антибактериальной терапии, необходимой для выздоровления экзотических животных.

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

Похожие темы научных работ по ветеринарным наукам , автор научной работы — Мартышин Андрей Владимирович, Ковальчук Наталья Михайловна

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

Diagnosis and Treatment of Reptiles Stomatitis in Private Collections in the City of Krasnoyarsk

This article presents information on diagnostics of stomatitis in reptiles found in the private collections city residents. A range of major conventional pathological micro-organisms involved in the pathological process. The article discusses early diagnosis and correct strategy of antibacterial therapy, which is the key to successful recovery of exotic animals.

Текст научной работы на тему «Диагностика и лечение стоматита у рептилий, содержащихся в частных коллекциях жителей города Красноярска»

УДК 619:598.1

ДИАГНОСТИКА И ЛЕЧЕНИЕ СТОМАТИТА У РЕПТИЛИЙ, СОДЕРЖАЩИХСЯ В ЧАСТНЫХ КОЛЛЕКЦИЯХ ЖИТЕЛЕЙ ГОРОДА КРАСНОЯРСКА

А. В. Мартышин1, Н. М. Ковальчук2

'Красноярский государственный аграрный университет 2Хакасский государственный университет им. Н. Ф. Катанова

В статье представлены данные по диагностике стоматитов у рептилий, содержащихся в частных коллекциях жителей г. Красноярска. Установлен спектр основных условно-патогенных микроорганизмов, участвующих в патологическом процессе. При этом обсуждается своевременная диагностика и правильная стратегия антибактериальной терапии, необходимой для выздоровления экзотических животных.

Ключевые слова: бактериальная микрофлора рептилии, стоматит, микробиологическое исследование, патогенность, антибиотико-чувствительность.

Введение. По сообщениям мировой литературы, стоматиты, в частности инфекционные, очень часто встречаются у рептилий. В основном болеют всеядные типы пресмыкающихся: крокодилы, змеи, реже ящерицы. Наблюдаются стоматиты с различной локализацией воспалительного процесса. В случае поражения слизистой оболочки только языка говорят о глоссите, дёсен - о гингивите, губ - хейлите, нёба - о палатините. По этиологической классификации у рептилий различают: травматический стоматит, инфекционный, специфический [1]. По форме чаще всего наблюдаются язвенный и некротический стоматиты. В большинстве случаев стоматиты протекают остро, иногда хронически. Они могут быть первичными и вторичными, как симптомы заразных и незаразных болезней. Причины травматических стоматитов могут быть следующие: механическая травма, химическое повреждение слизистых оболочек ротовой полости. В запущенной стадии заболевания стоматиты сопровождаются бактериальной инфекцией, ведущим возбудителем которой является синегнойная палочка [2]. Инфекционные стоматиты возникают при инфицировании различной бактериальной микрофлорой. В основном это St. aureus, Str. Pyogenes, а также Escherichia coli, Pseudomonas aerunisa, Proteus [3; 4; 5; 6]. Специфические стоматиты как результат поражения слизистой оболочки полости рта при грибковых заболеваниях, аутоиммунных и стрессовых состояниях встречаются у рептилий крайне редко.

Основной целью работы явилось определение этиологической структуры стоматитов и подбор оптимальной схемы лечения, с учётом антибиотикоустойчивости выделенной микрофлоры у рептилий, содержащихся в частных коллекциях жителей города Красноярска.

Задачи исследования:

- провести общий клинический осмотр ротовой полости рептилий и отбор материала для исследования;

- установить этиологическую роль бактериальных агентов при стоматитах у рептилий;

- дать оценку антибактериальной терапии при инфекционных стоматитах, основываясь на клинической картине заболевания и результатах микробиологического исследования.

Объектом исследования стали 5 крокодиловых кайманов (отряд Crocodilia, семейство Alligatoridae, род Caiman, вид Caiman crocodilus).

Материалом исследования были 5 проб ассоциированной культуры, выделенной со слизистой оболочки ротовой полости 5 кайманов.

Материалы и методы. Для реализации поставленных задач были использованы микробиологические методы исследования: микроскопический метод исследования - приготовление бактериоскопических препаратов, окраска по Граму [7; 8], бактериологический метод исследования - изучение культурально-биохимических свойств [7; 9], биологический метод - изучение факторов патогенности, биопроба на лабораторных животных, тест на чувствительность к антибактериальным препаратам [7; 9; 10; 11; 12; 13]. Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам проводили диско-диффузным методом. Идентификацию бактерий осуществляли с учётом всех изученных свойств микроорганизмов по определителям Бержи и Сидорова [10; 14] Количественный анализ проводили согласно методике, описанной в работе [15].

Результаты исследования. В ветеринарную клинику города Красноярска в мае 2012 года обратились владельцы трёх кайманов. Животные в течение последних трёх месяцев плохо ели или отказывались от корма. В их поведении отмечались вялость, апатия. При санации ротовой полости были выявлены следующие симптомы: слизистая ротовой полости малиновая, с синюшным оттенком, набухшая. На поверхности языка многочисленное количество язв. На слизистых оболочках и кончике языка присутствовал серый налёт и большое скопление гноеродных масс. Животных содержат в небольшом бассейне размером 5 х 4 метра. Корм, в основном, состоял из слаборазмороженного свиного мяса. В корме не исключалось присутствие трубчатых костей. Предварительно был поставлен диагноз - стоматит.

У животных проведено удаление язв и некротизированных участков, с помощью коагулятора были взяты смывы с ротовой полости на микробиологическое исследование. В процессе бактериологического исследования со слизистой оболочки ротовой полости кайманов было выделены следующие микроорганизмы: Streptococcus pyogenes (21 %), Pseudomonas aeruginosa (21 %), Proteus vulgaris (21 %), Staphylococcus aureus (15 %), Escherichia

coli (15 %) И Diplococcus pneumonia (7 %). Результаты бактериологического исследования представлены в таблице 1.

В процессе микробиологического исследования, помимо бактериологического анализа и теста на чувствительность к антибиотикам, в течение 14 дней проводилось изучение патогенных свойств выделенной микрофлоры. Установлена их высокая биологическая активность: пять культур Staphylococcus aureus обладали гиалу-ронидазной, фибринолизиновой, дезоксирибонуклеазной, плазмокоагулазной и гемолитической активностью; три культуры Streptococcus pyogenes также являлись гиалуронидаза-, фибринолизин-, дезоксирибонуклеаза- и нейраминидаза-положительными и проявляли ß-гемолиз; пять культур Diplococcus pneumonia также обладали такими ферментами патогенности, гиалуронидазой, дезоксирибонуклеазой и нейраминидазой, при этом гемолитическая активность выявлялась в виде а-гемолиза.

Патогенные свойства выделенных культур Escherichia coli, Pseudomonas aeruginosa, Proteus vulgaris изучали в биопробе на белых мышах. Заражение животных производили суточной смесью испытуемой культуры (на физиологическом растворе) внутрибрюшинно в дозе 0,5 мл в концентрации 1 х 109 микробных клеток в одном миллилитре. Контрольным животным внутрибрюшинно вводили стерильный физиологический раствор. В ходе эксперимента микрофлорой, выделенной со слизистой ротовой полости, заражено 24 лабораторных животных, из них пало 18 (75 %). Общее количество патогенных культур, выделенных при стоматитах рептилий, составило 6 (75 %). Среди них количество патогенных культур Escherichia coli составило 1 (50 %), Pseudomonas aeruginosa - 3 (100 %), Proteus vulgaris - 2 (66 %).

Таблица 1

Результаты микробиологического исследования слизистой оболочки ротовой полости кайманов

Номер животного Количество проб Выделено культур В том числе

Staphylococcus aureus Streptococcus pyogenes Escherichia coli Pseudomonas aeruginosa Proteus vulgaris Diplococcus pneumonia

кол-во \0 6х кол-во \0 6х кол-во \0 6х кол-во \0 6х кол-во \0 6х кол-во \0 6х

1 1 4 1 25 1 25 - - 1 25 - - 1 25

2 1 3 - - 1 33 - - 1 33 1 34 - -

3 1 3 - - 1 33 1 33 1 33 - - - -

4 1 2 - - - - 1 50 - - 1 50 - -

5 1 2 1 50 - - - - - - 1 50 - -

Всего 5 14 2 15 3 21 2 15 3 21 3 21 1 7

Исследования позволили также установить, что микрофлора, выделенная из ротовой полости при стоматитах рептилий, проявляла высокую антибиотикоустойчивость. Так, в результате анализа антибиотикограммы удалось выявить, что изучаемые микроорганизмы наиболее чувствительны к офлоксацину (ДЗЗР > 18 мм в 98 %) и ципрофлоксацину (ДЗЗР > 21 мм в 97 %), менее чувствительны к гентамицину и цефтриаксону (ДЗЗР > 15 мм в 85 % и ДЗЗР > 21 мм в 70 % соответственно). Меньшую чувствительность проявили колонии к антибиотику амоксиклаву (ДЗЗР > 18 мм в 60 %). Результаты изучения антибиотикоустойчивости представлены в таблице 2.

Таблица 2

Показатели чувствительности культур, выделенных со слизистой оболочки ротовой полости рептилий

(в процентном соотношении)

Вид препарата Количество культур (диметр зоны задержи роста, % соотношение)

устойчивых малочувствительных чувствительных

Офлоксацин ДЗЗР > 14 мм в 0 % ДЗЗР > 15-17 мм в 2 % ДЗЗР > 18 мм в 98 %

Ципрофлоксацин ДЗЗР > 15мм в 1 % ДЗЗР > 16-20 мм в 2 % ДЗЗР > 21 мм в 97 %

Гентамицин ДЗЗР > 12 мм в 1 % ДЗЗР > 13-14 мм в 14 % ДЗЗР > 15 мм в 85 %

Цефтриаксон ДЗЗР > 13 мм в 20 % ДЗЗР > 14-20 мм в10 % ДЗЗР > 21 мм в 70 %

Амоксиклав ДЗЗР > 13 мм 35 % ДЗЗР > 14-17 мм в 5 % ДЗЗР > 18 мм в 60 %

После первичного осмотра и поставленного предварительного диагноза была выбрана стратегия лечения стоматита у рептилий, основу которой составило применение антибактериальных и противоспалительных препаратов. В последующем лечение стоматита у рептилии скорректировано с учётом антибиотикограммы, выделенной при стоматите микрофлоры. По результатам микробиологического исследования и клинических симптомов животных проведено этиотропное лечение:

- антибиотик группы офлоксацин в дозе 6 мг/кг один раз в 48 часов, внутрь, курсом 7 приёмов;

- аскорбиновая кислота в дозе 25 мг/кг, внутрь, ежедневно, в течение 7 дней;

- орошение ротовой полости раствором мирамистина, два раза в день, в течение 7 дней.

Своевременная диагностика и выбор правильной стратегии антибактериальной терапии способствовали выздоровлению рептилий. Скорректированная терапия при лечении данного заболевания основывалась на применении противомикробных препаратов, таких как хлоргексидин, мирамистин и антибиотиков из группы фторхи-нолонов: цифран, офлоксацин и ломефлоксацин, обладающих высоким спектром бактерицидного действия в отношении синегнойной палочки, гноеродного стрептококка и золотистого стафилококка, которые чаще всего встречались в этиологии стоматита у рептилий.

Выводы. Клиническая картина при инфекционном стоматите у рептилий характеризовалась угнетением животного, отказом от корма. При пальпации тканей ротовой полости проявлялась болезенность. Слизистая оболочка отечна, малинового цвета. На поверхности поражённых тканей наблюдалось гнойное отделяемое.

В процессе бактериологического исследования было установлено, что отделяемое слизистой оболочки ротовой полости у рептилий при стоматите контаминировано следующей микрофлорой: Streptococcus pyogenes (21 %), Pseudomonas aeruginosa (21 %), Proteus vulgaris (21 %), Staphylococcus aureus (15 %), Escherichia coli (15 %) и Diplococcus pneumonia (7 %).

Для эффективной антибиотикотерапии при стоматитах рептилий исходили из определения спектра действия препарата, учитывали кратность его применения, массу животного, результаты антибиотико чувствительности и экономическую эффективность. Хороший лечебный эффект получен при применении препарата группы фторхинолонов - офлоксацина, в лечебной дозе 6 мг/кг один раз в 48 часов и антисептического раствора мирамистина путём орошения им воспалённых участков слизистой оболочки ротовой полости три раза в день.

Библиографический список

1. Афтозный стоматит - этиология, патогенез (часть 1) / О. Ф. Рабинович [ и др.] // Стоматология. - 2010. - № 1. - С. 71-74.

2. Беляков, И. М. Болезни зубов / И. М. Беляков, В. А. Лукьяновский. - М.: Изд-во «Нива России», 1996. - С. 115-124.

3. Wiliams, F. The bacterial flora of the mouths of Australian venomous snakes in captivity / F. Wiliams, M. Freeman, E. Kennedy // Med. J Austral. - 1954. - № 2. - P. 190-193.

4. Draper, C. S. Patterns of oral bacterial infection in captive snakes / C. S. Draper, R. D. Walker, H. E. Lawler // J Amer Vet Med Assoc 179: 1223: 1226.

5. Health management of a colony of breeding gaboon vipers (Bitis gabonica rhinoceros) / J. Loarte J. [et al] // 4 th Scientific Meeting Europ. Assoc. of Zoo-and Wildlife Veterinarius (EAZWV), 2002.

6. Glazebrook, J. A survey of the diseases of marine turtles in northern Australia. I. Farmed turtles / J. Glazebrook, R. A Campbell // Diseases of Aquatic Organisms. - 1990. - V. 9. - P. 83-95.

7. Биргер, М. О. Справочник по микробиологическим и вирусологическим исследованиям / М. О. Биргер. - М.: Медицина, 1982. - 464 с.

8. Кисленко, В. Н. Практикум по ветеринарной микробиологии и иммунологии / В. Н. Кисленко. - М.: КолосС, 2005. - С. 64-72, 78-90.

9. Костенко, Т. С. Практикум по ветеринарной микробиологии и иммунологии / Т. С. Костенко, В. Б. Родионова, Д. И. Скородумов. - М.: Колос, 2001. - С. 66-82, 99-109, 291-313.

10. Сидоров, М. А. Определитель зоопатогенных микроорганизмов / М. А. Сидоров, Д. И. Скородумов, В. Б. Федотов; под ред. М. А. Сидорова. - Иваново: МИК, 1995. - 319 с.

11. Воробьёв, А. А. Медицинская и санитарная микробиология / А. А. Воробьёв, Ю. С. Кривошеин, В. П. Широбоков. - М.: Академия, 2003. - 464 с.

12. Лабинская, А. С. Общая и санитарная микробиология с техникой микробиологических исследований / А. С. Лабинская, Л. П. Бликова, А. С. Ещина. - М.: Медицина, 2004. - С. 158-189

13. Покровский, В. И. Стрептококки и стрептококкозы / В. И. Покровский, Н. Н. Брико, Л. А. Ряпис. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2006. - 541 с.

14. Хоулт, Д. Определитель бактерий Берджи. Том 1, 2. / Д. Хоулт. - М.: Мир, 1997. - 900 с.

15. Сбойчаков, В. Б. Санитарная микробиология / В. Б. Сбойчаков. - М.: ГЭОТАР-Медиа, 2007. - С. 23-27.

© Мартышин А. В., Ковальчук Н. М., 2014

УДК: 619.616.053.2

ВЛИЯНИЕ ГЕМАТОЛОГИЧЕСКИХ И БИОХИМИЧЕСКИХ ПОКАЗАТЕЛЕЙ КРОВИ У РАЗНЫХ ПОЛОВОЗРАСТНЫХ ГРУПП КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА ГЕРЕФОРДСКОЙ ПОРОДЫ В РАЗНЫЕ СЕЗОНЫ ГОДА

В. И. Раицкая, В. В. Глушков, Л. Г. Виль

Научно-исследовательский иснтитут аграрных проблем Хакасии РАН

В статье проанализированы изменения некоторых гематологических и биохимических параметров крови у разнополовозрастных групп крупного рогатого скота герефордской породы в разные сезоны года.

Ключевые слова: герефордская порода; крупный рогатый скот мясного направления, гематологические и биохимические показатели крови.

Введение. Весной параметры крови достоверно отличаются от осенних и летних, тогда как в одноимённые сезоны эти параметры весьма близки между собой. Уменьшение числа эритроцитов в крови животных разных половозрастных групп может быть обусловлено неполноценным кормлением в зимний период (за счёт недостатка белков). В зимний период содержание количества эритроцитов в крови у быков-производителей состави-

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.