CC BY
4
ля»), подключили аспиратор к всасывающей трубе двигателя автомобиля.
К входному отверстию ротора воздуходувки присоединена резиновая трубка, по которой через два распределительных крана (в открытом положении), один из которых на всасывающей трубе двигателя, другой в корпусе аспиратора, двигателем в рабочем режиме создается разрежение, которое обеспечивает протягивание воздуха через ротаметры в большом диапазоне скоростей.
Схема подключения аспиратора к эжекцион-ной системе двигателя прилагается (см. рисунок).
Переоборудование аспиратора М-822 не требует больших материальных затрат и может быть проведено в основном силами специалистов лабораторий и водительского состава.
Усовершенствованная аспираторная приставка может быть использована в работе лаборатории санитарной службы, ведомственных лабораторий для отбора проб воздуха на территории предприятий, для подфакельных наблюдений, а также в работе лабораторий системы Госком-гидромета.
Поступила 28.04.87
Краткие сообщения
УДК 615.285.7.0994-614.72:615.285.7]:613.155.3
Р. У. Убайдуллаев, Ф. К■ Идиятуллина, H.A. Макейчева, P.A. Касымов
БИОЛОГИЧЕСКОЕ ДЕЙСТВИЕ АКРЕКСА И ОБОСНОВАНИЕ ЕГО ПРЕДЕЛЬНО ДОПУСТИМОЙ КОНЦЕНТРАЦИИ В АТМОСФЕРНОМ ВОЗДУХЕ
Узбекский НИИ санитарии, гигиены и профзаболевании, Ташкент
Акрекс относится к ядохимикатам комплексного действия, которые применяются на растениях и животных в качестве инсектицидов, фунгицидов, гербицидов, акарици-дов. Он является ннтро- и хлорпроизводным фенола. В основе механизма действия акрекса и всех веществ его группы лежит способность нарушать обмен веществ в клетке, в частности разобщать процессы окислительного фосфорили-рования с потерей богатых энер-ией соединений: ЛТФ и др. [I]. Намечающееся интенсивное применение нового пестицида акрекса в сельском хозяйстве страны и особенно в хлопкосеющих республиках создает возможности поступления его в воздух населенных мест и воздействия на организм человека.
Биологические эффекты ингаляционного поступления акрекса в организм в условиях населенных мест изучены крайне недостаточно. Нет данных о резорбтивном действии, влиянии на биохимические процессы в организме, систему крови. Отсутствует норматив содержания акрекса в воздухе населенных мест. Настоящее сообщение содержит результаты экспериментального обоснования ПДК акрекса в атмосферном воздухе.
Резорбтивнос действие акрекса изучали на беспородных белых крысах-самцах. Эксперименты проводили в 100-литровых затравочных камерах. Каждая группа содержала по 15 животных. Всего использовано 8 групп животных — 4 опытных и 4 контрольных.
Содержание препарата контролировали хроматографи-ческим методом, разработанным Т. X. Саидовой и 111. М. Мирзасвым (5]. Метод определения акрекса основан на газожидкостной хроматографии с применением детектора электронного захвата (ДЭЗ) и термоионного детектора (ГИД). Предусмотрен отбор проб с концентрированием. Предел измерения в воздухе (при отборе 80 л) ДЭЗ 0,008 мг/м3, ТИД 0.016 мг/м3.
Экспериментальное обоснование ПДК акрекса в атмосферном воздухе проводили с использованием зависимости концентрация — время [2]. Животных подвергал-и воздей-
ствию 4 концентраций акрекса: 30, 6, 1 и 0,2 мг/м3. Влияние вещества оценивали по следующим показателям: сум-мационно-пороговому показателю (СПП), активности хо-линэстеразы и альдолазы в крови, содержанию гемоглобина и эритроцитов в крови. Кроме того, вели наблюдение за массой тела и поведением животных.
Длительность экспериментов определялась временем появления статистически достоверных изменений изучаемых показателей на 25—30 % по сравнению с контролем.. Экспериментальные данные наносили на сетку с логариф-4* мическим масштабом. Полученные при этом прямые служили основанием для определения класса опасности вещества. При установлении класса опасности акрекса исходили из принципа лимитирующего показателя, т. е. класс опасности определяли по тому показателю, по которому угол наклона прямой концентрация — время был наибольшим.
Исследования показали, что непрерывное ингаляционное воздействие акрекса приводило к изменению общего состояния животных, их внешнего вида и поведения. Однако эти изменения зависели от концентрации и времени воздействия. Первые внешние признаки интоксикации появились у животных со 2-го часа ингаляции препарата в концентрации 30 мг/м3. При этом отмечалась адинамия животных, они слабо реагировали на подачу пищи и воды, у части животных выявлялось учащение дыхания, а у двух крыс — нарушение координации движений. У животных, вдыхавших акрекс в концентрации 6 мг/м3, также отмечено изменение в поведении, которое выражалось в основном в потере аппетита и малой подвижности.
Воздействие концентрации 30 мг/м3 не приводило к изменению динамики массы тела животных. Концентрации 6,1 и 0,2 мг/м3 вызывали снижение прироста массы тела по сравнению с контролем соответственно на 8,3, 11,1 и 8,5 %.
При изучении СПП выявлены достоверные изменения во всех опытных группах в интервале времени от 3 до
&
«
Время наступления статистически достоверных изменений биологических показателей у животных при непрерывном воздействии различных концентраций акрекса
Концент- Активность холинэстеразы цельной крови Содержание гемоглобина в крови СПП
рация, мг/м3 время, ч % отклонения от контроля время, ч % отклонения от контроля время, ч % отклонения от контроля
30,0 6,0 1,0 0,2 9 23 100 490 26,1 30,6 33,1 26,9 9 40 135 600 25,5 26,4 26,8 25,7 3 16 190 1850 25,0 27.6 32,4 29.7
1850 г. Полученные данные свидетельствуют о нарушении функционального состояния центральной нервной системы. Исследования показали, что чем меньше была воздействую-
Рщая концентрация, тем позднее наступали сдвиги (см. таблицу).
Статистически достоверные эффекты на всех уровнях воздействующих концентраций получены и при изучении активности холинэстеразы крови. Однако следует отметить, что биохимические изменения у крыс наступали в более поздние сроки (через 9 ч), в то время как по СПП они были обнаружены уже через 3 ч ингаляции.
Динамическое изучение показателей состояния подопытных животных позволило установить, что время наступления изменения содержания гемоглобина в крови колеблется в зависимости от уровня воздействия от 9 до 600 ч.
Изученные концентрации акрекса не оказали существенного влияния на активность альдолазы в сыворотке крови и содержание эритроцитов в крови.
Углы наклона прямых концентрация — время по различным тестам составили: по СПП 131°, содержанию гемоглобина 140°, активности холинэстеразы 143°. Наибольший угол наклона прямой (1433) получен при изучении активности холинэстеразы целыгой крови. Этот показатель оказался наиболее чувствительным при оценке токсического действия акрекса и принят за основной при определении класса опасности вещества. Акрекс в отношении развития хронического отравления при его непрерывном поступлении в организм следует отнести ко 2-му классу (3).
С использованием полученных на логарифмической сет-
*
УДК 612.6.052:575.224.231.014.46:615.917:547.562.2
ке прямых концентрация — время установлены пороги действия акрекса по изменению СПП, снижению активности холинэстеразы в крови, а также уменьшению содержания гемоглобина в крови для разных сроков экспозиции (24, 720 и 2880 ч). Поскольку пороговые концентрации не могут быть приняты в качестве гигиенических регламентов, для перехода от пороговых концентраций к недействующим использовали коэффициенты запаса, разработанные М. А. Пинигиным [3. 4]. Так, пороговые концентрации для различных периодов времени (24, 720 и 2880 ч) по наступлению статистически достоверного изменения (на 25—30 %) активности холинэстеразы цельной крови составили 8, 0,09 и 0,016 мг/м3 соответственно. Согласно номограмме, предложенной М. А. Пинигиным, углу наклона кривой концентрация—время 143° соответствует коэффициент запаса 7. Недействующая концентрация при продолжительности воздействия 2880 ч (120 сут) составляет 0,0022 мг/м3. Полученные аналогичным путем недействующие концентрации для указанного периода воздействия составили: по наступлению статистически достоверного снижения СПП — 0,022 мг/м3, а по снижению содержания гемоглобина — в крови — 0,046 мг/м3.
С учетом полученных результатов в качестве среднесуточной ПДК акрекса в атмосферном воздухе нами была рекомендована величина 0,002 мг/м3, которая утверждена Минздравом СССР.
Литература
1. Медведь Л. И.Ц Гигиена применения, токсикология пестицидов и клиника отравления. — Киев, 1968.— Вып. 6. — С. 36—54.
2. Пинигин М. А. // Материалы научных исследований по гигиене атмосферного воздуха, гигиене воды и санитарной охране водоемов. — М., 1972. — Т. 1. — С. 4—14.
3. Пинигин М. А. Биологическая эквивалентность в решении методических задач гигиенического регламентирования атмосферных загрязнений: Автореф. дне. ... д-ра биол. наук. — М., 1977.
4. Пинигин М. Л. // Состояние и перспективы развития гигиены окружающей среды. — М., 1985.— С. 77—88.
5. Саидова Т. X., Мирзаев Ш. М., Убайдуллаев Р. Методические указания на хроматографическое определение акрекса в атмосферном воздухе. — Ташкент, 1983.
Поступила 1205.87
Л. В. Китаева, П. Я. Шварцман
ТОКСИКО-ГЕНЕТИЧЕСКАЯ ОЦЕНКА ФОРМАЛЬДЕГИДА ПРИ ИНГАЛЯЦИОННОМ ВОЗДЕЙСТВИИ
Ленинградский санитарно-гигиенический медицинский институт
Изучению общетоксического действия формальдегида (ФА) посвящено значительное число работ. Вместе с тем мутагенная активность ФА, выявленная в опытах на дрозофиле [3], у млекопитающих и человека изучена мало, особенно при его ингаляционном воздействии. Показано, что при длительном ингаляционном воздействии ФА вызывает нарушения фолликуло- и гаметогенеза у крыс, сопровождающиеся изменением раннего эмбрионального развития [1]. Внутрибрюшинное введение ФА самцам мышей приводит к повышению преимплантационных летальных повреждений при отсутствии аберраций хромосом в спер-матогониях [6]. В исследованиях не обнаружено достоверное увеличение числа хромосомных аберраций в клетках костного мозга и селезенки [8]. Результаты цитогене-тического обследования людей, имеющих профессиональный контакт с ФА, носят противоречивый характер.
Целью настоящей работы явилось изучение цитогекётн-ческой активности ФА в клетках костного мозга крыс после длительного ингаляционного воздействия. Эксперименты выполнены на самках крыс линии Вистар. Подопытных животных содержали в затравочных камерах для динамического ингаляционного воздействия (кроме выходных дней) в течение 4 мес. Концентрации ФА в камерах контролировали весовым методом, они составляли 0,5 мг/м3 (ПДК в воздухе рабочей зоны) и 1,5 мг/м3. Животных забивали через 48—72 ч после последнего воздействия. Препараты готовили по стандартной методике. На каждое животное анализировали по 100 метафаз. Анализ метафаз-ных пластинок проводили на зашифрованных препаратах. Учитывали все типы хромосомных аберраций, клетки с содержанием от 40 до 43 хромосом; пробелы в число аберраций не включали. Статистическую обработку результатов проводили с использованием критерия х2 Для клеток с аберра-
