CC BY
42КОРМА И КОРМЛЕНИЕ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ
ЖИВОТНЫХ
УДК 636.934.23:591.111 DOI: 10.24411/0023-4885-2020-10202
БИОХИМИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ СЫВОРОТКИ КРОВИ СЕРЕБРИСТО-ЧЁРНОЙ ЛИСИЦЫ ПРИ ПРИМЕНЕНИИ АНТГЕЛЬМИНТНЫХ СРЕДСТВ И СЕРОСОДЕРЖАЩЕЙ КОРМОВОЙ ДОБАВКИ
1 1 2 А.И. Сапожникова , К.В. Есепёнок , Е.Г. Квартникова
1ФГБОУ ВО МОСКОВСКАЯ ГОСУДАРСТВЕННАЯ АКАДЕМИЯ ВЕТЕРИНАРНОЙ МЕДИЦИНЫ И БИОТЕХНОЛОГИИ-МВА
ИМЕНИ К.И. СКРЯБИНА 2
2фгбну научно-исследовательский институт пушного
ЗВЕРОВОДСТВА И КРОЛИКОВОДСТВА ИМЕНИ В.А. АФАНАСЬЕВА
электронный адрес: [email protected]
В статье представлены результаты сравнительного биохимического анализа показателей крови молодняка серебристо-черной лисицы, получавшего перорально новый антгельминтик на основе авер-мектина Ниацид-гранулы плюс и традиционно используемый в зверохозяйстве антгельминтик Альба-мелин, в сочетании с серосодержащей кормовой добавкой Биоактивный кератин в различных концентрациях. Определены такие основные индикаторы обменных процессов у молодняка, как содержание общего белка, альбумина, аспартатаминотрансферазы и аланинаминотрансферазы, щелочной фосфата-зы, креатинина и мочевины, глюкозы и альфа-амилазы. Установлено положительное влияние препарата Ниацид-гранулы плюс в сочетании с Биоактивным кератином в дозировке 0,2% от основного рациона на биохимические показатели крови убойного молодняка серебристо-чёрной лисицы к четырёхмесячному возрасту с последующим незначительным ростом и стабилизацией значений к окончанию эксперимента, подтверждающее целесообразность их использования в условиях зверохозяйств.
Ключевые слова: серебристо-черная лисица, физиологическое состояние, кровь, сыворотка крови, общий белок, альбумин, ферменты крови, креатин, мочевина, глюкоза, альфа-амилаза
Кровь играет исключительно важную роль во всех процессах, протекающих в организме пушных зверей в процессе их роста и развития, так как осуществляет постоянную взаимосвязь между его отдельными системами и органами [1]. Исследователи [2, 3] сходятся во мнении, что
биохимический состав крови - один из наиболее четких индикаторов функционального состояния организма пушного зверя, быстро и точно реагирующий как на любую патологию, так и на введение в корм различных лекарственных препаратов, биодобавок [4-6].
Целью настоящего исследования была оценка физиологического эффекта сочетанного использования антгельминтика на основе авермектина Ниацид-гранулы плюс и серосодержащей кормовой добавки Биоактивный кератин в сравнении с антгельминтиком Альбамелин, используемым в зверохозяйстве при выращивании молодняка серебристо-черной лисицы.
Материалы и методы
Лабораторные исследования проведены на базе кафедр ФГБОУ ВО «Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии - МВА имени К.И. Скрябина»: товароведения, технологии сырья и продуктов животного и растительного происхождения имени С.А. Каспарьянца, химии имени профессоров С.И. Афонского, А.Г. Малахова. Научно-хозяйственный опыт проведен в зверохозяйстве АО «Племенной зверосовхоз «Салтыковский».
Объектами исследования на отдельных этапах работы служили:
• противопаразитарные препараты - Альбамелин (Завод «Ветеринарные препараты» АО) и Ниацид-гранулы плюс (ООО «НПО «Экобиовет»») [5];
• Биоактивный кератин в качестве серосодержащей кормовой добавки, полученный из шерстяного очёса овец согласно патенту [7];
• 120 голов убойного молодняка серебристо-чёрной лисицы клеточного разведения (самцы), полученные в АО «Племенной зверосовхоз «Салтыковский» для проведения научно-хозяйственного опыта по изучению влияния противо-гельминтных препаратов Альбамелин и Ниацид-гранулы плюс и кормовой добавки Биоактивный кератин на физиологический статус убойного молодняка серебристо-черной лисицы;
• Образцы крови убойного молодняка серебристо-черной лисицы.
Антгельминтик Альбамелин, традиционно используемый в хозяйстве, добавляли в основной рацион два дня подряд - по 150 мг/кг массы животного в утреннее кормление в смеси с небольшим количеством корма; антгельминтик
Ниацид-гранулы плюс - двукратно (ДВ 200 мкг/ гранула на 1 кг массы животного с интервалом 10 дней, начиная с первого дня опыта); серосодержащую кормовую добавку Биоактивный кератин в количестве 0,1%, 0,2% и 0,5% от суточной нормы белка - шестью циклами, включающими пятидневные курсы с десятидневными перерывами) [8].
Для контроля влияния препаратов на физиологическое состояние молодняка серебристо-чёрной лисицы анализировали сыворотку крови по биохимическим показателям. Забор крови осуществляли: до начала научно-хозяйственного опыта (в возрасте двух месяцев), через две недели после начала применения препаратов, через два месяца после начала применения препаратов (в возрасте четырёх месяцев) и по окончании научно-производственного опыта (в возрасте семи месяцев).
Биохимический анализ показателей белкового обмена включал определение в сыворотке крови общего белка (ОБ), альбумина (Alb), печеночных ферментов - аланинаминотрансфе-разы (АЛТ), аспартатаминотрансферазы (АСТ), щелочной фосфатазы (ЩФ) конечных продуктов белкового метаболизма - креатинина и мочевины, из показателей углеводного обмена - определяли глюкозу и фермент амилазу (таблица). При проведении биохимических исследований были определены следующие показатели: общий белок, альбумин, глюкозу, креатинин и мочевину определяли по общепринятым методикам [7], аспартатаминотрансферазу (АСТ) и аланинами-нотрансферазу (АЛТ) - динитрофенилгидрази-новым методом [8], щелочную фосфатазу - методом Боданского А. [9].
Результаты и обсуждение
Белки плазмы крови являются чувствительным показателем состояния организма при паразитарных заболеваниях [10]. Уменьшение количества белка в сыворотке крови указывает на гипопротеинемию у животных после крово-потерь, при заболеваниях почек, алиментарной дистрофии и авитаминозах, циррозах печени и раневом истощении [11, 12]. Данные по биохимическим показателям крови представлены в таблице.
Таблица. Динамика биохимических показателей крови серебристо-черной лисицы (Vulpes vulpes Z.), дни (n=120) Table. Dynamics of the blood chemistry values of the silver-black fox (Vulpes vulpes L.), days (n=120)
Характеристика
группы/
Group
characteristics
Общий белок, г/л / Total protein, g/1
Показатели крови/ Blood chemistry values Альбумин, г/л /Albumin, g/1
Щелочная фосфатаза, ед /Alkaline phosphatase, units
Сроки, дни / Duration, days
14
60
210
14
60
210
14
60
I(ОР+А)
56,8 ±3,8
57,0 ± 3,6
57,6 ±3,8
59,1 ±2,6
25,7 ± 1,4
26,6 ± 1,6
27,0 ±2,5
27,0 ±2,4
74,3 ±6,1
77,1 ±4,8
77,8 ± 4,3
II (ОР+А+БК (0,1%)
56,4 ± 3,5
57,1 ±3,8
61,1 ±3,9
62,7 ± 2,4
25,4 ±1,9
26,8 ± 1,7
27,6 ± 2,6
27,6 ±2,1
75,1 ±5,7
78,3 ± 4,2
78,5 ±5,6
III (ОР+А+БК (0,2%)
55,6 ±3,7
56,7 ± 3,4
63,9 ±5,3
64,6 ± 4,5
24,6 ± 1,2
26,7 ± 2,4
27,4 ± 2,0
27,4 ± 1,8
74,5 ±3,9
75,8 ±5,8
76,3 ± 3,9
IV (ОР+А+БК (0,5%)
56,7 ±4,1
57,3 ±4,1
63,5 ±4,6
64,3 ± 3,8
25,7 ±2,0
26,9 ±2,1
27,3 ±2,0
27,3 ± 2,0
76,9 ± 4,8
79,6 ±6,1
79,8 ±4,8
V(OP+Hrn)
56,6 ±3,8
57,6 ± 4,2
64,1 ±4,8
65,0 ±3,9
25,6 ±0,9
26,1 ±2,0
27,9 ±2,4
28,8 ±2,6
74,1 ±6,4
76,1 ±4,8
76,8 ± 7,0
VI (ОР+НГП+БК (0,1%)
56,2 ±3,9
58,3 ±4,7
64,9 ± 5,5
65,4 ±4,7
25,3 ±1,:
27,2 ± 1,7
28,9 ±2,7
29,2 ±2,8
76,8 ±4,8
77,9 ± 4,4
78,4 ± 6,4
VII (ОР+НГП+БК (0,2%)
56,2 ±4,2
59,2 ±4,8
66,4 ± 5,3
68,2 ± 5,6
25,3 ± 1,8
27,9 ±2,1
29,6 ±2,2
31,7 ±2,6
76,4 ± 4,5
78,7 ±2,9
79,3 ± 5,7
VIII (ОР+НГП+БК (0,5%)
55,7 ±4,1
58,6 ±4,6
65,5 ±5,1
67,9 ±4,2
24,8 ± 1,4
28,4 ±2,6
30,2 ±2,6
31,9 ±2,8
75,9 ± 5,3
78,2 ±3,8
78,9 ±6,8
IX (ОР+ИЗ)
54,7 ±3,9
55,6 ±3,0
56,0 ±2,9
54,6 ±2,7
24,8 ± 1,9
24,8 ±0,9
25,4 ±2,1
24,6 ± 1,8
73,8 ±6,1
76,1 ±3,7
77,8 ±4,8
X (ОР+ БК (0,1%)
55,4 ±3,1
55,9 ±3,2
56,7 ± 3,6
55,4 ±3,1
24,6 ± 1,2
25,4 ± 1,1
25,8 ± 1,8
25,0 ± 1,4
75,1 ±6,2
77,3 ±4,1
78,2 ±3,9
XI (ОР+БК (0,2%)
56,6 ±4,2
56,9 ± 3,4
57,4 ± 3,7
56,2 ± 3,4
25,7 ±2,1
26,7 ± 1,8
25,4 ±2,1
25,6 ± 1,6
79,4 ± 7,0
78,1 ±5,1
79,8 ±4,7
XII (ОР+БК (0,5%)
56,1 ±3,9
56,8 ±4,0
57,2 ± 3,9
56,1 ±4,2
25,3 ±1,7
26,2 ± 1,6
26,1 ±2,4
25,7 ± 1,9
77,5 ± 6,6
80,2 ±3,3
82,4 ± 3,4
Примечание. OP - основной рацион; A - Альбамелин; БК - Биоактивный кератин; НГП - Ниацид-гранулы плюс; ИЗ - интактные звери Note. OP - main ration; А - Albamelin; БК - bioactive keratin; НГП - Niacid-granules plus; ИЗ - intact animals_
Характеристика группы / Group characteristics Показатели крови / Blood chemistry values
AJIT, ед ALT, units ACT, ед AST, units Мочевина, ммоль/л Urea, mmol/1
Сроки, дни / Duration, days
0 14 60 210 0 14 60 210 0 14 60 210
1 5 6 7
I (ОР+А) 179,3 ± 8,8 176,2 + 7,8 177,8 + 6,8 170,8 + 7,4 116,8+10,1 118,2+10,2 119,0+10,0 117,4 + 7,4 2,5 + 0,5 2,3 + 0,6 2,3 + 0,7 1,7+0,7
II (ОР+А+БК (0,1%) 179,0 ± 6,2 177,5 + 6,9 170,4 + 7,0 173,9 + 6,8 115,7+ 11,2 116,3 + 10,0 117,1 + 9,4 114,7+5,2 2,4 + 0,6 2,1 + 0,5 2,2 + 0,8 1,9 + 0,6
III (ОР+А+БК (0,2%) 180,2 + 6,9 176,6 + 8,0 175,3 + 6,5 164,4 + 7,4 117,8 + 7,4 118,4+8,8 119,4 + 6,4 117,0 + 6,9 2,4 + 0,5 2,3 + 0,7 2,1 + 0,5 2,0 + 0,6
IV (ОР+А+БК (0,5%) 181,3 + 7,8 178,4 + 7,5 176,1 + 8,0 171,8 + 6,9 117,5 + 8,6 117,9 + 9,4 118,5 + 9,8 116,4 + 7,1 2,0 + 0,8 2,1 + 0,6 2,2 + 0,7 2,0 + 0,9
V(ОР+НГП) 179,7+8,4 172,1 + 9,2 158,7 + 6,1 157,2 + 6,7 119,5 + 9,6 120,5 + 10,3 121,0 + 7,8 119,8 + 7,6 2,3 + 0,5 2,2 + 0,7 2,3 + 0,8 2,1 + 0,5
VI (ОР+НГП+БК (0,1%) 178,9 + 8,2 169,6 + 8,7 155,0 + 5,8 156,3 + 5,8 118,2+ 11,0 121,1 + 10,6 121,9 + 8,1 120,3 + 6,0 2,4 + 0,4 1,9 + 0,5 1,8 + 0,9 1,6 + 0,6
VII (ОР+НГП+БК (0,2%) 180,6 + 6,8 171,2 + 6,3 156,3 + 6,3 154,9 + 4,6 119,3 + 8,5 122,8+ 10,7 123,4 + 9,4 120,7 + 7,3 2,1 + 0,6 2,0 + 0,9 2,5 + 0,8 1,9 + 0,8
VIII (ОР+НГП+БК (0,5%) 180,5 + 6,6 168,3 + 8,6 154,7 + 6,7 156,8 + 5,7 118,9+10,4 120,0 + 9,7 120,7+ 10,0 118,6 + 6,8 2,0 + 0,8 1,8 + 0,8 1,7 + 0,6 1,7 + 0,9
IX (ОР+ИЗ) 179,5 + 5,8 182,4 + 7,1 184,8 + 8,4 186,7 + 7,9 116,5 + 9,7 117,6 + 8,6 117,4 + 6,1 118,4+5,8 2,4 + 0,7 2,6 + 0,6 3,0 + 0,9 2,8 + 0,5
X (ОР+ БК (0,1%) 179,7+8,5 180,3 + 9,0 180,7 + 7,7 185,2 + 6,7 115,9+10,8 116,3 + 9,8 116,1 + 7,4 117,3 + 6,1 2,3 + 0,6 2,4 + 0,8 2,8 + 0,6 2,6 + 0,7
XI (ОР+БК (0,2%) 181,1 + 7,5 181,9 + 7,7 180,8 + 7,0 184,1 + 6,5 116,6+ 11,0 116,9 + 9,1 116,7+8,9 116,7 + 7,4 2,5 + 0,6 2,7 + 0,7 3,0 + 0,9 2,8 + 0,7
XII (ОР+БК (0,5%) 182,0 + 8,0 179,8 + 6,2 181,2 + 8,0 183,4 + 7,9 116,2 + 7,4 118,1 + 10,8 118,0 + 9,7 118,5 + 9,2 2,3 + 0,8 2,7 + 0,9 2,9 + 0,7 2,6 + 0,6
Примечание. ОР - основной рацион; А - Альбамелин; БК - Биоактивный кератин; НГП - Ниацид-гранулы плюс; ИЗ - интактные звери Note. OP - main ration; A - Albamelin; БК - bioactive keratin; НГП - Niacid-granules plus; ИЗ - intact animals
« о
43
S fa
S
43
S ti fC
X
s
fe
о о ti er о
s
о 00 ÜQ
0 H Cd
01 I I
er
N
s 00
X er
Я
Характеристика группы / Group characteristics Показатели крови / Blood chemistry values
Креатинин, ед/л Creatinine, un/1 Глюкоза, Ммоль/л Glucose, mmole/1 а-амилаза, ед/л Amylase, un/1
Сроки, дни / Duration, days
0 14 60 210 0 14 60 210 0 14 60 210
1 8 9 10
I (ОР+А) 63,8 + 4,1 65,9 + 3,5 67,6 + 6,0 66,3 + 5,8 3,3 + 0,2 3,3 + 0,2 3,4 + 0,3 4,8 + 0,3 435,8 + 28,1 438,4 + 26,0 500,4 + 38,5 532,8 + 50,1
II (ОР+А+БК (0,1%) 64,2 + 3,8 64,9 + 4,0 65,4+5,7 66,1 + 5,1 3,2 + 0,3 3,7 + 0,3 4,2 + 0,4 5,0 + 0,3 441,2 + 25,6 446,7 + 25,0 502,5 + 35,9 534,9 + 48,5
III (ОР+А+БК (0,2%) 65,1 + 6,1 65,1 + 2,9 67,6 + 6,4 67,9 + 4,9 3,1 + 0,2 3,4 + 0,3 4,7 + 0,3 5,7 + 0,3 435,4 + 29,0 436,3 + 27,6 504,9 + 40,5 540,1 + 44,2
IV (ОР+А+БК (0,5%) 63,4 + 5,3 65,2 + 3,2 67,3 + 6,1 66,6 + 4,7 3,3 + 0,2 3,5 + 0,2 4,4 + 0,3 5,6 + 0,2 436,9 + 37,2 437,2 + 36,8 510,6 + 41,0 538,4 + 46,4
V (ОР+НГП) 64,7 + 4,9 65,4 + 4,1 68,1 + 6,4 67,7+5,1 3,3 + 0,3 3,8 + 0,3 4,7 + 0,4 5,4 + 0,3 440,3 + 25,1 442,6 + 27,8 515,5 + 35,9 551,8 + 46,7
VI (ОР+НГП+БК (0,1%) 64,3+ 3,2 65,3 + 3,6 68,5 + 5,4 68,1 + 6,0 3,2 + 0,2 4,0 + 0,2 4,9 + 0,4 5,6 + 0,4 441,4 + 32,2 445,8 + 31,5 521,4 + 48,0 562,3 + 50,6
VII (ОР+НГП+БК (0,2%) 64,8 + 4,8 65,8 + 3,9 68,7 + 4,2 68,4 + 6,3 3,2 + 0,3 4,4 + 0,3 5,2 + 0,4 6,7 + 0,5 438,9 + 24,5 439,0 + 22,8 520,8 + 39,5 520,8 + 39,5
VIII (ОР+НГП+БК (0,5%) 63,9 + 5,6 65,3 + 4,2 68,4 + 3,9 68,7 + 6,3 3,1 + 0,2 4,0 + 0,3 5,7 + 0,5 6,8 + 0,4 437,4 + 29,0 442,7 + 30,4 526,5 + 45,6 564,1 + 52,0
IX (ОР+ИЗ) 65,2 + 3,9 60,5 + 2,7 57,4 + 3,1 58,9 + 5,8 3,2 + 0,3 3,1 + 0,2 2,7 + 0,2 2,9 + 0,3 436,7 + 21,8 437,1 + 22,5 498,2 + 32,7 510,7 + 36,6
X (ОР+ БК (0,1%) 65,4 + 5,8 61,6 + 2,4 58,3 + 3,7 58,7+5,7 3,1 + 0,3 3,0 + 0,2 3,0 + 0,2 2,8 + 0,2 440,6 + 34,1 445,9 + 36,5 499,2 + 34,0 508,9 + 39,4
XI (ОР+БК (0,2%) 64,6+ 4,6 60,7 + 3,0 57,9 + 3,5 58,6 + 4,5 3,3 + 0,2 3,2 + 0,3 3,0 + 0,2 3,2 + 0,3 441,4 + 38,0 441,5 + 30,5 498,7 + 39,7 414,4 + 41,9
XII (ОР+БК (0,5%) 63,9 + 3,7 59,8 + 2,6 57,7 + 3,5 58,2 + 4,9 3,3 + 0,3 3,1 + 0,2 2,9 + 0,2 2,8 + 0,3 439,8 + 29,4 446,5 + 39,2 500,6 + 40,8 510,1 + 44,2
Примечание. ОР - основной рацион; А - Альбамелин; БК - Биоактивный кератин; НГП - Ниацид-гранулы плюс; ИЗ - интакгные звери Note. OP - main ration; A - Albamelin; БК - bioactive keratin; НГП - Niacid-granules plus; ИЗ - intact animals
Согласно нашим данным, количество общего белка в крови во всех экспериментальных группах до начала эксперимента варьировало в пределах 54,7-56,8 г/л, что ниже значений, приведённых в литературе [2, 13]. Это дает основание предполагать наличие гипопротеинемии, причиной которой могло быть присутствие гельминтов в организме двухмесячных щенков.
Обработка зверей только противогельминт-ными препаратами в начале опыта (группы I и V) и сравнение полученных данных с результатами контроля показали, что содержание общего белка в крови животных группы I, где использовали Альбамелин, к концу опыта выросло на 4,05%, тогда в группе V после антгельминтной обработки препаратом Ниацид-гранулы плюс -на 14,8%. При этом у интактных зверей содержание общего белка не изменилось.
Анализ содержания общего белка в крови зверей, которым помимо антгельминтиков на протяжении всего опыта в корм добавляли Биоактивный кератин в количестве 0,1% от массы корма (группы II и VI), показал, что оно увеличилось на 13,4 и 15,6%, соответственно, тогда как в группе X осталось на прежнем уровне.
Анализ содержания общего белка в крови зверей из групп III и VII показал, что использование наряду с антгельминтиками Биоактивного кератина в количестве 0,2% от массы корма привело в конце опыта к увеличению ОБ на 16,2 и 21,4%, соответственно, тогда как у зверей из группы XI этот показатель остался неизменным. Аналогичную картину наблюдали при использовании совместно с антгельминтиками Биоактивного кератина в концентрации 0,3%. Так, в группе IV ОБ увеличился на 13,4%, в группе VIII - на 21,9%. Что касается использования Биоактивного кератина в количестве 0,5% от массы корма в чистом виде (группа XII), то он существенного влияния на содержание ОБ не оказывает.
Обобщая представленные выше результаты в целом, следует подчеркнуть, что пониженное содержание ОБ в крови щенков серебристо-чёрной лисицы до начала дегельминтизации, по всей вероятности, обусловлено токсическим влиянием продуктов жизнедеятельности гельминтов на функциональные системы организма хозяина, а также их механическим воздействием на его органы и ткани, в частности, на же-
лудочно-кишечный тракт и печень. Применение антгельминтных препаратов Альбамелин и Ниацид-гранулы плюс оказывает губительное действие на обменные процессы, нервную и мышечную системы паразита, что приводит к гибели гельминта.
После дегельминтизации происходит постепенная нормализация белкового обмена [11, 12]. Тем не менее, следует отметить, что хотя антгельминтик Альбамелин показал более низкий лечебный эффект про сравнению препаратом Ниацид-гранулы плюс, параметры ОБ после дегельминтизации приблизились к норме. Использование параллельно с антгельминтиками Биоактивного кератина в концентрации 0,2% от массы корма позволило максимально усилить эффективность воздействия каждого из проти-вопаразитарных препаратов. Однако синерги-ческий эффект от совместного использования Ниацид-гранулы плюс и Биоактивного кератина оказался выше. Повышение концентрации Биоактивного кератина добавляемого в корм зверей до 0,5% от массы корма в ходе эксперимента не выявило существенных преимуществ в пользу увеличения дозировки данной биодобавки. Использование Биоактивного кератина в чистом виде привело к крайне незначительному увеличению содержания ОБ по сравнению с контролем. Очевидно, уровень патологических изменений не позволяет белку активно включиться в обменные процессы.
Анализ содержания глюкозы в крови зверей из групп III и VII показал, что использование наряду с антгельминтиками Биоактивного кератина в концентрации 0,2% от массы корма привело в конце опыта к увеличению данного показателя в 1,84 и 2,09 раза, соответственно, тогда как у зверей из группы XI этот показатель осталось на прежнем уровне, что свидетельствует о наличии паразитов в организме зверей, нарушениях в работе желудочно-кишечного тракта и других проявлениях патологии.
Аналогичную картину наблюдали при использовании Биоактивного кератина в концентрации 0,5% совместно с антгельминтиками. Так, в группе IV уровень глюкозы увеличился в 1,7, а в группе VIII - в 2,19 раза. Что касается использования Биоактивного кератина в концентрации 0,5% от массы корма в чистом виде
(группа XII), то содержание глюкозы в крови к завершению опыта снизилось на 17,8% по сравнению с исходными данными. Использование Биоактивного кератина в чистом виде не оказало существенного влияния на уровень глюкозы в крови серебристо-чёрной лисицы по сравнению с контролем.
Полученные результаты подтверждают предположение об усилении эффекта действия антгельминтика и кормовой добавки при совместном использовании в соответствии с разработанной схемой применения.
Что касается содержания главного белка крови альбумина - показателя, говорящего об эффективности работы печени, а именно, синтезе белков, отвечающих за поддержание онко-тического давления в плазме крови, в также выполняющих транспортные функции - перенос гормонов, кислот, жиров, билирубина, кальция и других веществ с током крови - его уровень у двухмесячных щенков серебристо-чёрной лисицы в самом начале опыта во всех экспериментальных группах находился в пределах 24,6-25,7 г/л, что соответствовало минимальным значениям нормы.
С учётом вышеизложенного, мы оценили эти цифры как показатель, свидетельствующий о наличии скрытых хронических патологий, а также патологий в начале развития, не имеющих ещё явных симптомов.
Обработка щенков серебристо-чёрной лисицы только антгельминтными препаратами (группы I и V) в начале опыта и контроль содержания альбумина в их крови по сравнению с аналогичным показателем у интактных животных (группа IX) показал, что к концу опыта в группе I, где использовали Альбамелин, данный показатель увеличился на 5,05%, а в группе V после антгельминтной обработки препаратом Ниацид-гранулы плюс - на 12,5%. При этом у интактных зверей содержание альбумина практически не изменилось.
Мониторинг концентрации альбумина в крови зверей, которым дополнительно к дегельминтизации на протяжении всего опыта добавляли к основному рациону Биоактивный кератин в количестве 0,1% от массы корма (группы II и VI) показал, что она увеличилась на 8,7 и 15,4%, соответственно, тогда как в группе X дан-
ный показатель остался на прежнем уровне.
Анализ содержания альбумина в крови убойного молодняка из групп III и VII показал, что использование наряду с антгельминтиками Биоактивного кератина в количестве 0,2% от массы корма привело в конце опыта к его увеличению на 11,4% и 26,1%, соответственно, тогда как у зверей из группы XI этот показатель не претерпел изменений.
Аналогичную картину наблюдали при совместном использовании антгельминтиков и Биоактивного кератина в количестве 0,5% от массы корма по разработанной схеме. Так, в группе IV концентрация альбумина в крови выросла на 6,2 %, а в группе VIII - на 26,2%. Что касается использования Биоактивного кератина в количестве 0,5% от массы корма в чистом виде (группа XII), то он существенного влияния на содержание альбумина не оказывает.
Обобщая в целом результаты, полученные по альбумину, следует подчеркнуть, что гипо-альбуминемия крови щенков серебристо-чёрной лисицы до начала дегельминтизации, по всей вероятности, обусловлена нарушениями работы печени, недостаточным поступлением в организм белка с кормом, энтеропатиями тонкого кишечника под влиянием продуктов жизнедеятельности гельминтов.
Активность сывороточных ферментов -очень чувствительный и тонкий критерий патологического состояния организма. Они особенно тонко реагируют на патологические воздействия и во многих случаях являются первыми показателями нарушения гомеостаза
Согласно нашим данным, во всех экспериментальных группах количество АЛТ в крови двухмесячных щенков серебристо-чёрной лисицы до начала эксперимента варьировало в пределах от 178,9 до 182,0 ед./л, что почти в 3 раза превышает норму, приведённую в литературе. Это указывает на наличие в печени двухмесячных щенков патологических процессов, причиной которых могло быть присутствие гельминтов в их крови. Обработка зверей только противогель-минтными препаратами в начале опыта (группы I и V) приводит к снижению АЛТ в крови ин-тактных зверей на 5,0 и 14,3%, соответственно, и к увеличению значения данного показателя в контрольной группе на 3,9%.
Полученные результаты однозначно указывают на преимущество использования антгель-минтика Ниацид-гранулы плюс по сравнению с Альбамелином.
Анализ уровня АЛТ в крови зверей, которым помимо антгельминтиков на протяжении всего опыта в корм добавляли Биоактивный кератин в количестве 0,1% от массы корма (группы II и VI) показал, что он снизился на 3% и 12,6%, соответственно, тогда как в группе X повысился на 4,0%.
Анализ уровня АЛТ в крови зверей из групп III и VII показал, что использование наряду с антгельминтиками Биоактивного кератина в количестве 0,2% от массы корма привело в конце опыта к снижению данного показателя на 8,8 и 14,2 %, соответственно, тогда как у зверей из группы XI он остался практически на прежнем уровне, увеличившись всего лишь на 1,7%, что указывало на наличие паразитов в организме зверей и нарушениях в работе печени.
Аналогичную картину наблюдали при использовании совместно с антгельминтиками Биоактивного кератина в количестве 0,5% от массы корма. Так, в группе IV уровень АЛТ снизился на 5,2%, в группе VIII - на 13,1%. Что касается использования Биоактивного кератина в количестве 0,5% от массы корма в чистом виде (группа XII), то уровень АЛТ в крови к завершению опыта снизился на 0,8% по сравнению с исходными данными. Использование Биоактивного кератина в чистом виде не оказало существенного влияния на уровень АЛТ в крови серебристо-чёрной лисицы по сравнению с контролем.
Согласно нашим данным, до начала эксперимента уровень АСТ в крови двухмесячных щенков серебристо-чёрной лисицы во всех экспериментальных группах варьировал в пределах от 115,7 до 119,5 ед./л, что соответствовало нижнему порогу нормы, и дало нам основание считать эти цифры показателем, указывающим на наличие патологических процессов в печени или недостаток витамина Вб, который участвует в транспорте аспартата. Возможно, это является проявлением присутствия гельминтов в организме щенков.
Обработка зверей в начале опыта только противогельминтными препаратами (группы I и
V) и сравнение полученных данных об уровне АСТ с уровнем АСТ в крови интактных зверей (группа IX) указывают на то, что уровень АСТ к концу опыта в экспериментальных группах и контрольной группе не претерпел каких-либо достоверных изменений.
Тем не менее, у зверей из группы V, где применяли Ниацид-гранулы плюс, уровень АСТ в крови был на 2,04% выше, чем в группе I, где использовали Альбамелин.
Анализ уровня АСТ в крови зверей, которым на протяжении всего опыта в корм помимо антгельминтиков добавляли Биоактивный кератин в концентрации 0,1% от массы корма (группы II и VI) показал, что в группе II он снизился на 0,9%, тогда как в группах VI и X повысился на 1,8 и 1,2%, соответственно.
Анализ уровня АСТ в крови зверей из групп III и VII показал, что использование наряду с антгельминтиками Биоактивного кератина в количестве 0,2% от массы корма не привело к изменению данного показателя в группах III и XI в конце опыта, тогда как у зверей в группе VII он увеличился всего лишь на 1,17%, что указывает на наличие незначительных положительных сдвигов в сторону нормализации содержания АСТ в крови пушных зверей при совместном использовании Биоактивного кератина и антгель-минтика Ниацид-гранулы плюс.
Активность щелочной фосфатазы (ЩФ) у 2-месячных щенков серебристо-чёрной лисицы во всех группах до начала эксперимента варьировала в пределах от 73,8 до 79,4 ед./л. Согласно данным литературы [9 10], уровень ЩФ в крови молодняка должен быть выше, чем у взрослых зверей, что связано с более интенсивным процессом развития тканей и органов. Кроме того, присутствие в организме молодняка гельминтов может сказаться на развитии патологических процессов в печени и соответственно, на повышенном содержании ЩФ в крови [13-15].
Обработка зверей в начале опыта только противогельминтными препаратами (группы I и V) и сравнение данных об активности у них ЩФ с активностью ЩФ в крови интактных зверей (группа IX) указывают на то, что уровень ЩФ к концу опыта в группах I и V увеличился на 6,6 и 6,0%, соответственно, тогда как в контрольной группе он составил 13,0%, т.е., стал в 2 раза
выше, чем в опытных группах, что указывает на наращивание интенсивности патологических процессов при отсутствии лечения.
При анализе активности ЩФ в крови зверей, которым помимо антгельминтиков на протяжении всего опыта в корм добавляли Биоактивный кератин в концентрации 0,1% от массы корма (группы II и VI) было установлено, что в группах II и VI она увеличилась на 6,6 и 7,3%, соответственно, тогда как в группе X данный показатель повысился на 12%.
Анализ активности ЩФ в крови зверей из групп III и VII показал, что при использовании наряду с антгельминтиками Биоактивного кератина в концентрации 0,2% от массы корма она увеличилась в конце опыта на 10,5 и 6,9%, соответственно, а при использовании Биоактивного кератина в чистом виде, без антгельминтиков, активность ЩФ в крови зверей из группы XI увеличилась на 6,9%, также, как и в группе VII.
При использовании совместно с антгель-минтиками Биоактивного кератина в количестве 0,5% от массы корма, активность ЩФ в крови зверей из групп IV и VIII выросла на 5,9 и 7,2 %, соответственно, а в группе XII - на 10,6%. Тот факт, что на конечном этапе исследований активность ЩФ в экспериментальных группах примерно в 2 раза ниже, чем в опытной, следует рассматривать как положительное явление. Очевидно, антгельминтики в сочетании с Биоактивным кератином тормозят развитие патологических процессов в печени, интоксикацию организма зверей продуктами жизнедеятельности гельминтов, что ведет к снижению активности ЩФ в крови. При этом Биоактивный кератин в концентрации 0,5% от массы корма не способен существенно затормозить дегенеративные процессы, происходящие в желудочно-кишечном тракте серебристо-чёрной лисицы, в отличие от кератина в концентрации 0,2% от массы корма.
Креатинин - это конечный продукт белкового обмена, который позволяет судить о состоянии мышечной системы зверя и его почек. Это вещество представляет собой неотъемлемую часть остаточного азота. Согласно нашим данным, содержание креатинина в крови двухмесячных щенков серебристо-чёрной лисицы варьировало в пределах 63,4-65,4 ед/л. Эти цифры мы рассматривали как референсные значения
при сравнении с остальными данными [4].
Обработка зверей в начале опыта только противогельминтными препаратами (группы I и V) и сравнение данных об их уровне креати-нина с данными об уровне креатинина в крови интактных зверей (группа IX) указывают на то, что к концу опыта уровень креатинина в группах I и V увеличился на 3,9 и 5,0%, соответственно, тогда как при отсутствии лечения он снизился на 9,7%, что указывает на наращивание интенсивности патологических процессов.
Тем не менее, у зверей из группы V, где применяли Ниацид-гранулы плюс, уровень кре-атинина в крови был несущественно выше, чем в группе I, где использовали Альбамелин.
Анализ уровня креатинина в крови зверей, которым помимо антгельминтиков на протяжении всего опыта в корм добавляли Биоактивный кератин в количестве 0,1% от массы корма (группы II и VI) показал, что в группах II и VI он повысился на 3,0 и 5,9%, соответственно, тогда как в группе X понизился на 10,2%. Полученные результаты в очередной раз подтверждают преимущества сочетанного использования Ниацид-гра-нулы плюс и Биоактивного кератина.
Анализ уровня креатинина в крови зверей из групп III и VII показал, что использование наряду с антгельминтиками Биоактивного кератина в концентрации 0,2% от массы корма привело к концу опыта к повышению данного показателя в группах III и VII на 4,3 и 5,5%, соответственно, тогда как у зверей в группе XI он снизился на 9,3%, что указывало на наличие незначительных положительных сдвигов в сторону увеличения содержания креатинина в крови пушных зверей при использовании Биоактивного кератина.
При использовании совместно с антгель-минтиками Биоактивного кератина в концентрации 0,5% от массы корма, в группах IV и VIII уровень креатинина в крови зверей повысился на 4,9 и 7,5%, соответственно, при использовании Биоактивного кератина в чистом виде в концентрации 0,5% он наоборот снизился на 9,1%.
Полученные результаты свидетельствуют о выраженном влиянии Биоактивного кератина в концентрации 0,2% от массы корма при его применении как совместно с антгельминтиками, так и в чистом виде, на уровень содержания креати-нина в крови серебристо-чёрной лисицы.
Мочевина - главный компонент остаточного азота, конечный продукт азотистого метаболизма, синтезирующийся в печени после дезаминирования (окисления) избыточных аминокислот. Согласно нашим данным, содержание мочевины в крови двухмесячных щенков серебристо-чёрной лисицы варьировало в пределах 2,0-2,5 ммоль/л. Эти цифры были ниже показателей, указываемых в литературе в качестве физиологической нормы (3,5-9,2 ммоль/л), поэтому мы сочли эти значения показателем, указывающим на нарушение азотистого равновесия вследствие распада белков и наличия патологических процессов [14, 15].
Обработка зверей в начале опыта только противогельминтными препаратами (группы I и V) и сравнение данных об уровне мочевины в их крови с данными об уровне мочевины в крови интактных зверей (группа IX) указывают на то, что уровень мочевины к концу опыта в группах I и V снизился, на 32,0 и 8,7%, соответственно, тогда как при отсутствии лечения он вырос на 16,6%, что указывает на наращивание интенсивности патологических процессов.
Причём, у зверей из группы V, где применяли Ниацид-гранулы плюс, уровень мочевины в крови снизился меньше, чем в группе I, где использовали Альбамелин.
При анализе уровня мочевины в крови зверей, которым помимо антгельминтиков на протяжении всего опыта в корм добавляли Биоактивный кератин в количестве 0,1% от массы корма (группы II и VI) было установлено, что в группах II и VI он снизился, на 20,8 и 33,3%, соответственно, тогда как в группе X вырос на 13,0%. Полученные результаты в очередной раз подтверждают преимущества сочетанного использования Ниацид-гранулы плюс и Биоактивного кератина.
Анализ уровня мочевины в крови зверей из групп III и VII показал, что использование наряду с антгельминтиками Биоактивного кератина в концентрации 0,2% от массы корма привело к концу опыта к снижению уровня мочевины в группах III и VII на 16,7 и 9,5%, соответственно, тогда как у зверей в группе XI он повысился на 13,0%.
При использовании совместно с антгель-минтиками Биоактивного кератина в концентра-
ции 0,5% от массы корма в группе IV уровень мочевины в крови зверей не изменился, в группе VIII снизился на 15,0%, при использовании Биоактивного кератина в чистом виде в концентрации 0,5% от массы корма он наоборот повысился на 13,0%.
Из углеводов сыворотки крови глюкоза является наиболее важным биохимическим показателем, характеризующим энергетические запасы организма. Кроме того, она косвенно свидетельствует и об его антистрессовом состоянии.
До начала дегельминтизации уровень глюкозы в крови щенков серебристо-чёрной лисицы был понижен, и составлял 3,1-3,3 ммоль/л.
После дегельминтизации происходит постепенная нормализация уровня глюкозы в крови. Следует отметить, что уровень глюкозы в крови щенков серебристо-чёрной лисицы в обоих случаях применения противогельминтных препаратов (группы I и V) повысился, приближаясь к норме. По сравнению с контролем (группа IX) он возрос, в 1,7 и 1,9 раза, соответственно. Однако эффект от использования Альбамелина по данному показателю был ниже по сравнению с препаратом Ниацид-гранулы плюс на 12,5%. При этом уровень глюкозы в крови интактных зверей к концу опыта снизился на 0,3%.
Анализ уровня глюкозы в крови зверей, которым помимо антгельминтиков на протяжении всего опыта в корм добавляли Биоактивный кератин в концентрации 0,1% от массы корма (группы I и VI) показал, что он увеличился, в 1,56 и 1,75 раза, соответственно, тогда как в группе X понизился на 10,3%.
Альфа-амилаза - гидролитический фермент углеводного обмена, который катализирует распад гликогена и крахмала, синтезируется в поджелудочной железе, слюнных железах, эпителии тонкого кишечника [14, 15]. Определение активности альфа-амилазы имеет важное значение в диагностике заболеваний поджелудочной железы [15].
Согласно полученным нами результатам, активность альфа-амилазы в крови двухмесячных щенков серебристо-чёрной лисицы варьировало в пределах 435,4-441,4 ед/л, т.е. было повышено. Возможно, это связано с нарушением проницаемости гистогематических барьеров.
Обработка зверей в начале опыта только
противогельминтными препаратами (группы I и V) и сравнение данных об уровне альфа-амилазы в их крови с количеством альфа-амилазы в крови интактных зверей (группа IX) указывают на то, что к концу опыта активность фермента в группах I и V увеличилась на 22,3 и 26,3%, соответственно, тогда как в контрольной группе она увеличилась только на 16,0%, что указывает на наращивание интенсивности патологических процессов при отсутствии лечения.
Тем не менее, у зверей из группы V, где применяли Ниацид-гранулы плюс, активность альфа-амилазы в крови была на 4,0% выше, чем в группе I, где использовали Альбамелин.
Анализ активности альфа-амилазы в крови зверей, которым на протяжении всего опыта в корм помимо антгельминтиков добавляли Биоактивный кератин в концентрации 0,1% от массы корма (группы II и VI) показал, что в группах II и VI она возросла на 21,2 и 27,4% соответственно, тогда как в группе X - на 15,5%. Полученные результаты в очередной раз подтверждают преимущества сочетанного использования Ниацид-гра-нулы плюс и Биоактивного кератина.
Анализ активности альфа-амилазы в крови зверей из групп III и VII показал, что использование наряду с антгельминтиками Биоактивного кератина в концентрации 0,2% от массы корма привело в конце опыта к увеличению данного показателя на 24,0 и 18,7%, соответственно, тогда как у зверей в группе XI он снизился на 6,2%, что указывало на наличие незначительных положительных сдвигов в сторону нормализации активности альфа-амилазы в крови пушных зверей при применении Биоактивного кератина.
При использовании Биоактивного кератина в концентрации 0,5% от массы корма совместно с антгельминтиками активность альфа-амилазы в крови зверей групп IV, VIII и XII увеличилась на 23,2, 28,3 и 16,0%, соответственно.
Полученные результаты свидетельствуют о выраженном влиянии Биоактивного кератина в концентрации 0,2% от массы корма при его применении как с антгельминтиками, так и в чистом виде, на активность альфа-амилазы в крови серебристо-черной лисицы.
Заключение
Результаты биохимических исследований косвенно свидетельствуют о наличии паразитов и токсических продуктов их жизнедеятельности в организме двухмесячных щенков серебристо-чёрной лисицы. Показано максимальное положительное влияние препарата Ниацид-гра-нулы плюс в сочетании с Биоактивным кератином в дозировке 0,2% от основного рациона на биохимические показатели крови убойного молодняка серебристо-чёрной лисицы к четырехмесячному возрасту с последующим незначительным ростом и стабилизацией значений.
Список литературы
1. Inoue H., Clifford D.L., Vickers T.W., Coonan T.J., Garcelon D.K., Borjesson D.L. Biochemical and hematologic reference intervals for the endangered island fox (Urocyon littoralis). J Wildi Dis, 2012, v. 48 (3), pp. 583-592 (doi: 10.7589/0090-3558-48.3.583)
2. Санжиева С.Е., Мантатова Н.В., Раднатаро-ва В.Д. Морфологические и биохимические показатели крови серебристо-черных лисиц. Аграрный вестник Урала, 2010, №4 (70), стр. 96-97
3. Zhan Y.M., Yasuda J., Too K. Reference data on the anatomy, hematology and biochemistry of 9-month-old silver foxes. Jpn J Vet Res, 1997, v. 45 (1), pp. 13-90
4. Зырянова Н.А. Влияние витаминно-мине-ральной подкормки на физиологические показатели молодняка серебристо-черных лисиц. Вестник АПК Ставрополья, 2018, №2 (30), стр. 82-85 (doi: 10.31279/2222-93452018-7-30-82-85)
5. Zhang T., Zhong W., Sun W., Wang Z., Sun H., Fan Y., Li G. Effects of dietary fat: carbohydrate ratio on nutrient digestibility, serum parameters, and production performance in male silver foxes (Vulpes vulpes) during the winter fur-growing period. Canadian Journal of Animal Science, 2017, 97(2): 199-206 (doi: 10.1139/CJAS-2015-0167)
6. Василевич Ф.И., Сапожникова А.И., Есе-пенок К.В., Мирзаев М.Н., Гордиенко И.М. Повышение качества шкурок серебри-
сто-черной лисицы при применении анти-гельминтного препарата "Ниацид-гранулы плюс" и кормовой добавки "Биоактивный кератин", Методические положения, ФГБОУ ВО МГАВМиБ - МВА имени К.И. Скрябина, Москва, Россия, 2019
7. Сапожникова А.И., Каспарьянц С.А., Ме-сропова Н.В., Гордиенко И.М. Способ получения кератина. A.c. 2092072 (РФ) МКИ6 А 23 К 1/10. № 95117245-13. Заявл. 06.10.95. Опубл. 10.10.97. Бюл. № 28
8. Сапожникова А.И., Есепенок К.В., Косовский Г.Ю., Тинаева Е.А., Мирзаев М.Н., Квартникова Е.Г., Новиков Б.В., Чекалова Т.М. Физиологический статус и качество шкурок у молодняка серебристо-черной лисицы (Vulpes vulpes L.) при применении про-тивопаразитарного препарата Ниацид-грану-лы плюс с биоактивным кератином как кормовой добавкой. Сельскохозяйственная биология, 2019, 6(54): 1154-1166 (doi: 10.15389/ agrobiology.2019.6.1154rus)
9. Кондрахин И.П., Курилов Н.В., Малахов А.Г. и др. Клиническая лабораторная диагностика в ветеринарии. Москва, СССР, 1985
10. Лисицына А.А., Белоновская О.С., Азарнова Т.О., Зайцев С.Ю. Практикум по биохимии: Методические указания к практическим занятиям, МГАВМиБ им. К.И. Скрябина, Москва, Россия, 2011
11. Балакирев Н.А., Перельдик Д.Н., Домский И.А. Содержание, кормление и болезни клеточных пушных зверей. Санкт-Петербург, Россия, 2013
12. Березина Ю.А., Беспятых О.Ю., Кокори-на А.Е. Изменение биохимического профиля крови серебристо-черной лисицы в постнатальном онтогенезе. Известия НВ АУК, 2019, № 3(55), стр. 252-258. DOI: 10.32786/2071-9485-2019-03-32
13. Тебенькова Т.В., Сухих О.Н., Кокорина А.Е., Березина Ю.А., Беспятых О.Ю. Белковый обмен у доместицированных лисиц (Vulpes vulpes L.) разных генотипов в постнатальном онтогенезе. Международный вестник ветеринарии, 2018, №4: 115-119
14. Хиггинс К. Расшифровка клинических лабораторных анализов. Москва, Россия, 2008
15. Берестов В.А. Клиническая биохимия пушных зверей. Петрозаводск, Россия, 2005
VALUES OF THE SILVER-BLACK FOXES BLOOD BIOCHEMISTRY AT FEEDING WITH ANTHELMINTICS AND SULFUR-CONTAINING FEED
ADDITIVE
AI Sapozhnikova1, KV Esepenok1, EG Kvartnikova2
*FSEI HE MSAVMB-MVA, MOSCOW, RUSSIAN FEDERATION
2FSB SI NIIPZK, RODNIKI, RUSSIAN FEDERATION
e-mail: [email protected]
The article presents the results of a comparative biochemical analysis of blood biochemistry values of young silver-black fox, who received orally a new anthelmintic based on avermectin Niacid-granules plus and the anthelmintic Albamelin traditionally used in animal husbandry, in combination with sulfur-containing feed additive Bioactive keratin in various concentrations. The following main indicators of metabolic processes in young animals were determined: total protein, the levels of albumin, aspartate aminotransferase (AST) and alanine aminotransferase (ALT), alkaline phosphatase, creatinine and urea, glucose and alpha-amylase. The experiments show the maximum positive effect of Niacid-granules plus in combination with Bioactive kera-
tin in a dosage of 0.2% of the main diet on blood biochemical blood parameters of slaughtered young four month-old silver-black foxes with subsequent slight increase and stabilization to the end of the experiment. The results tell about the possibility of their use in animal husbandry.
Keywords: silver-black fox, physiological state, blood, blood serum, total protein, albumin, blood enzymes, creatine, urea, glucose, alpha-amylase
References
1. Inoue H., Clifford D.L., Vickers T.W., Coonan T.J., Garcelon D.K., Borjesson D.L. Biochemical and hematologic reference intervals for the endangered island fox (Urocyon littoralis). J Wildi Dis., 2012, v. 48 (3), pp. 583-592 (doi: 10.7589/0090-3558-48.3.583)
2. Sanzhieva SE, Mantatova NV, Radnatarova VD. Morphological and biochemical blood factors in the silver-black foxes. Ural Agrarian Bulletin, 2010, №4 (70), pp. 96-97 (in Russ)
3. Zhan Y.M., Yasuda J., Too K. Reference data on the anatomy, hematology and biochemistry of 9-month-old silver foxes. Jpn J Vet Res, 1997, v. 45 (1), pp. 13-90
4. Zyryanova NA. The effect of vitamin-mineral supplements on physiological indices of young animals of silver-black foxes. Agricultural Bulletin of Stavropol Region, 2018, №2 (30), pp. 82-85 (doi: 10.31279/2222-9345-2018-7-30-8285) (in Russ)
5. Zhang T., Zhong W., Sun W., Wang Z., Sun H., Fan Y., Li G. Effects of dietary fat: carbohydrate ratio on nutrient digestibility, serum parameters, and production performance in male silver foxes (Vulpes vulpes) during the winter fur-growing period. Canadian Journal of Animal Science, 2017, 97(2): 199-206 (doi: 10.1139/CJAS-2015-0167)
6. Vasilevich FI, Sapozhnikova AI, Esepenok KV, Mirzaev MN, Gordienko IM. Use of an anthelmintic "Niacid granules plus" and a feed additive "Bioactive keratin" for improvement in quality of the pelts of the silver-black foxes, Guidance notes, FSEI HE MSAVMB-MVA, Moscow, Russian Federation, 2019 (in Russ)
7. Sapozhnikova AI, Kasparyanz SA, Mesropo-va NV, Gordienko IM. A method for keratin producing. I.c. 2092072 (RF) MKH6 A 23 K 1/10. № 95117245-13. Appl. 06.10.95, publ. 10.10.97. Bul. № 28 (in Russ.)
8. Sapozhnikova AI, Esepenok KV, Kosovsky GYu, Tinaeva EA, Mirzaev MN, Kvartnikova EG, Vovikov BV, Chekalova TM. Physiological status and quality of the pelts of the young silver-black foxes (Vulpes vulpes L.) receiving an anthelmintic "Niacid granules plus" and a feed additive "Bioactive keratin". Agricultural Biology, 2019, 6(54): 1154-1166 (doi: 10.15389/agro-biology.2019.6.1154rus) (in Russ)
9. Kondrakhin IP, Kurilov NV, Malakhov AG. et al. Laboratory Investigations in Veterinary. Moscow, USSR, 1985
10. Lisitsyna AA, Belonovskaya OS, Azarnova TO, Zaytsev SYu. Laboratory course in biochemistry: Laboratory operations manual, FSEI HE MSAVMB-MVA, Moscow, Russian Federation, 2011
11. Balakirev NA, Pereldik DN, Domsky IA. Management of the caged fur animals, their feeding and diseases. Saint Petersburg, Russia, 2013 (in Russ)
12. Berezina YuA, Bespyatykh OYu, Kokorina AE. Changes in the biochemical profile of the silver-black fox during the postnatal ontogenesis. Bulletin of NV AUK, 2019, № 3(55), pp. 252258. DOI: 10.32786/2071-9485-2019-03-32 (in Russ.)
13. Tebenkova TV, Sukhikh ON, Kokorina AE, Berezina YuA, Bespyatykh OYu. Protein metabolism in the domesticated foxes (Vulpes vulpes L.) of different genotypes in postnatal ontogenesis разных генотипов в постнатальном онтогенезе. International Veterinaty Bulletin, 2018, №4: 115-119 (in Russ.)
14. Higgins Ch. Understanding Laboratory Investigations. Moscow, Russia, 2008 (in Russ.)
15. Berestov VA. Clinical biochemistry of the fur animals. Petrozavodsk, Russia, 2005 (in Russ.)
