CC BY
2
С. 5
10. Кукес В. Г., Сыркина Е. А. // Сов. мед.— 1983.— N° 10 С. 79—82.
11. Мазур Н, А. // Там же.— 1985.—№ 4.-
12. Орлов В. Н., Шпектор А. В. // Там же. № 7.— С. 95—97.
13. Столбу н Б. МКолесникова А. В., Павловская H.A. и др. // Гиг. труда.— 1986.— № 8.— С. 9—13.
11.
- 1988.
14. Сумароков А. В., Соболь Ю. С., Смирнова Т. М. Метод длительной регистрации и автоматизированного анализа ЭКГ свободнопередвигающегося человека с использованием отечественного аппаратурного медицинского комплекса «Лента МТ»: Метод, рекомендации.— М., 1984.
15. Holter N. J. П Science.— 1961.— Vol. 134.— P. 1214—1220.
Поступила 27.06.89
Ш
В. С. ЖУРКОВ. А. М. ДУГАМ, 1991
УДК 579.842.14:579.253].07
В. С. Журков, А. М. Дуган
АНАЛИЗ СПОНТАННОГО ФОНА МУТИРОВАНИЯ SALMONELLA TYPHIMURIUM
НИИ общей и коммунальной гигиены им. А. Н. Сысина АМН СССР, Москва
Метод БаИпопеПа/микросомы (тест Эймса) широко используется в токсикологии для выявления мутагенной активности как отдельных соединении, так и суммарных химических загрязнений объектов окружающей среды. Необходимым показателем контроля за штаммами-тесторами служит уровень спонтанного мутирования. В литературе отмечены существенные колебания среднего числа колоний ревертантов, выросших на чашках с контрольной питательной средой: для штамма ТА 1535 от 11,7 [5] до 42 [3], для ТА 1538 от 10 [5] до 37,7 [2], для ТА 100 от 84 [6] до 159 [2], для ТА 98 от 18 [5] до 51 [2]. Эти различия, вероятно, связаны с особенностями хранения штаммов, схемами проведения экспериментов и т. д. Ряд авторов [2, 4] указывают на зависимость количества колоний ревертантов от используемой системы метаболической активации.
Цель настоящей работы — оценить колебания количества колоний ревертантов в контрольных вариантах эксперимента для тесторных штаммов ТА 1535, ТА 1538, ТА 98 и ТА 100, а также изучить влияние на этот показатель системы метаболической активации.
, %
Распределение результатов опытов по среднему числу колоний ревертантов на чашку для Б. typhimurium разных штаммов
Среднее число колоний ревертантов на чашку
Вариант опыта
ТА 1535
5 9,9 8 17
10—14,9 21 13
15—19,9 7 5
20 и более 2 3
Все го... щ 38 38
Минимальное значение 7,3 7,3
Максимальное значение 24 23,3
Среднее число колоний (х) 12,4 11,6
Стандартное отклонение (о) 3,7 4,1
х±2 о 4,0—19,8 3,4-19,8
ТА 1538
5—9,9 10 5
10—19,9 16 22
20—29,9 10 13
30 и более 9 - 5
Beer о... 45 45
Минимальное значение 6,6 7,3
Максимальное значение 42 39
Среднее число колоний (х) 19,3 18,7
Стандартное отклонение (О) 9,5 8,5
х±2 о 0,3 38,3 1,7 35,7
Обобщены данные контрольных вариантов экспериментов, проведенных в НИИ общей и коммунальной гигиены им. А. Н. Сысина АМН СССР в период с 1979 по 1984 г. с наиболее распространенными штаммами S. typhimurium
ТА 1535, ТА 1538, ТА 100 и ТА 98. Эксперименты проведены по стандартной методике [1]. В опытах использована фракция 9000 g печени самцов крыс линии Вистар (масса 180— 220 г), которым трехкратно внутрибрюшинно вводили фенобарбитал в дозе 80 мг/кг. В каждом опыте исследовали вариант с полной (фракция 9000 g + кофакторы) и неполной (фракция 9000 g) системой метаболической активации (МС+ и МС— соответственно).
Для оценки спонтанного фона мутирования проанализированы колебания среднего числа колоний ревертантов на чашку при использовании полной и неполной систем метаболической активации. Со штаммом ТА 1535 поставлено 38 экспериментов (см. таблицу). Среднее число колоний ревертантов на чашку колебалось для вариантов с МС+ от 7,3 до 24, МС— от 7,3 до 23,3. Статистические распределения результатов опытов при МС+ и МС— были сходными
Среднее число Вариант опыта
колонии ревертантов
§ § на чашку МС+ МС—
ТА 98
10—19,9 0 1
20—29,9 4 3
30—39,9 6 4
40 49,9 7 6
50 59,9 11 12
60 69,9 8 15
70 79,9 5 0
80 и более 1 1
Beer о... 42 42
Минимальное значение 23,6 15,6
Максимальное значение 92 94,3
Среднее число колоний (л:) 53,9 52,8
Стандартное отклонение (а) 15,7 15,3
х±2 а 22,5-85,3 22,2-83,4
ТА 100
40—49,9 1 3
50—59,9 2 11
60 69,9 17 4
70 79,9 11 14
80 и более 10 9
В сего...
Минимальное значение Максимальное значение Среднее число колоний (х) Стандартное отклонение (а) х±2 а
41
46,6 89,6 74,3 9,7 54,9—93,7
41
41,6 92 68,2 12,2 43,8—92,6
(х2=5,18; р>0,05). Общая средняя величйна числа колоний для данного штамма равна 12.
Распределение результатов контрольных вариантов 45 опытов со штаммом ТА 1538, представленное в таблице, свидетельствует, что среднее число колоний ревертантов колебалось от 6,6 до 42 в вариантах с МС+ и от 7,3 до 39 в вариантах с МС—. Распределения результатов опытов по среднему числу колоний в контрольных вариантах при МС-}- и МС— были сходными (^2=4,15; р>0,05). Общая средняя величина составила 40,5 колонии на чашку для всех вариантов опытов.
Данные по 42 опытам со штаммом ТА 98 (см. таблицу) указывают на то, что среднее число колоний на чашку в вариантах с МС + колебалось от 23,6 до 92, с МС— от 15,6 до 94,3. Распределение результатов опытов по этому показателю при МС+ и МС— было сходным (х2=0,48; р>0,05). Общая средняя величина числа колоний ревертантов на чашку для всех вариантов опыта составила 53,3.
Со штаммом ТА 100 поставлен 41 опыт (см. таблицу). Среднее число колоний ревертантов на чашку варьировало для вариантов с МС+ от 46,6 до 89,6, с МС— от 41,6 до 92. Распределение результатов опытов по этому показателю для обоих типов метаболической активации было сходным (х2= = 0,52; р>0,05). Общее среднее число колоний ревертантов на чашку для штамма ТА 100 составило 70.
Полученные результаты указывают на отсутствие влияния состояния системы метаболической активации на число колоний ревертантов для всех изученных штаммов Б. 1урЫтигшт. Хотя эмпирическое распределение числа колоний ревертантов
для всех, штаммов в вариантах с MC-j- и МС— отклонялось от нормального, 90 % всех значений этого показателя было в пределах х±2а. Мы считаем, что колебания среднего числа колоний ревертантов в пределах значений х±2а можно принять за нормальные колебания спонтанного уровня для каждого штамма: для ТА 1535 от 3 до 20 колоний на чашку, ТА 1538 от 2 до 38; ТА 98 от 23 до 85, ТА 100 от 44 до 94. Любые отклонения среднего числа колоний ревертантов на чашку в контроле за установленные пределы свидетельствуют о возможных методических ошибках. В этом случае необходимо проводить проверку генотипа штамма.
Литература
1. Тест-система оценки мутагенной активности загрязнителей среды на Salmonella: (Метод, указания) / Фонштейн Л. М., Калинина Л. М., Полухина Г. Н. и др.— М., 1977.— С. 1—52.
2. Bonin M. A., Farquharson J. В., Baker R. S. U. // Mutât. Res.— 1981.— Vol. 84.— P. 21—34.
3. Brown J. P., Ditrich P. S.} Bakner С. M. // Ibid.— 1979.— Vol. 66.— P. 181 — 185.
4. Brown J. P. // Ibid.— 1980.—Vol. 75.— P. 243—277.
5. Chu К. СPatel A. H., Lin R. E. et al. // Ibid.— 1981.— Vol. 85.— P. 119—132.
6. Mitchell /. de G. // Ibid.— 1978.—Vol. 54.—P. 1 — 16.
Поступила 10.01.89
Л. С. ДЖИНДОЯН, M. Ю. ТАРАСОВ, 1991 УДК 613.636:616.9-078
Л. С. Джиндоян, М. Ю. Тарасов
ВЕРОЯТНОСТНАЯ ОЦЕНКА РИСКА ИНФИЦИРОВАНИЯ ПЕРСОНАЛА ПРИ РАБОТЕ
С ИНФЕКЦИОННЫМ МАТЕРИАЛОМ
НИИ микробиологии Министерства обороны СССР, Киров
Организация и проведение лабораторной работы с инфекционным материалом связаны с рядом профессиональных особенностей, которые определяют специфические условия, требующие обязательного учета и регламентации в интересах обеспечения безопасности работающего персонала [3, 5, 6].
Определенным вкладом в решение проблемы являются научно-методические разработки отдельных ее аспектов, в частности касающиеся оценки надежности инженерных систем и оборудования, обеспечивающих защиту работающего персонала и окружающей среды от профессиональных вредностей биологической природы [2, 4, 7—9]. Как известно, для предотвращения возможного инфицирования персонала при работе с инфекционным материалом в процессе лабораторных исследований используют специальные инженерные устройства и комплексные санитарно-технические системы профессиональной техники безопасности (ПТБ) [3, 4, 7—9].
Анализ имеющейся литературы по вопросу о защите персонала и окружающей среды при работе с инфекционным материалом позволяет выделить в качестве принципиально важного аспекта разработку научно обоснованных подходов к оценке требуемой эффективности и надежности различных средств и систем защиты персонала и окружающей среды [4].
Очевидно, что в реальных условиях необходимо учитывать не только надежность функционирования защитного оборудования и его элементов, но и эффективность всех элементов системы ПТБ, которая должна гарантировать исключение попадания инфекционного материала в среду рабочих помещений и окружающую среду [7].
В свете изложенного актуальной является разработка методического подхода к оценке реально существующего риска инфицирования персонала при его работе с инфекционным материалом в реальной лаборатории.
Для решения поставленной задачи рассмотрим следующую простейшую модель.
Предположим, что в лабораторном помещении осуществляются исследовательские манипуляции в боксе с инфекционным материалом. Данный материал может попасть в рабочую среду лаборатории различными путями: с воздушными потоками из бокса (турбулизация потоков из-за манипуляций оператора; неабсолютная герметичность бокса); с жидкими и твердыми отходами при передаче их из бокса.
Снижение концентрации аэрозолированного инфекционного материала будет происходить в процессе его возможного распространения в лаборатории (в случае несанкционированного выноса) и в различном оборудовании систем ПТБ (системы вентиляции, передаточные устройства, санитарные пропускники, средства индивидуальной защиты и т. п.). При этом следует учитывать как естественные процессы снижения концентрации инфекционного материала (седиментация, инактивация под воздействием различных факторов среды рабочего помещения), так и снижение ее за счет применения, например, средств индивидуальной защиты.
Для формализации рассмотренной модели и оценки риска инфицирования персонала целесообразно использовать элементы теории графов [1]. С этой целью можно построить граф (см. рисунок) возможного распространения инфекционного материала, в котором исходной точкой будет сам инфекционный материал, а конечной — работающий персонал. Ребра
данного графа показывают возможный путь распространения инфекционного материала, а вершины характеризуют' процессы, приводящие к снижению концентрации инфекционного материала как в оборудовании и элементах системы ПТБ, так и за счет естественных процессов инактивации.
Теория графов позволяет использовать хорошо разработан-
