АКТУАЛЬНЫЕ ВОПРОСЫ ЛАБОРАТОРНОЙ ДИАГНОСТИКИ ИНФЕКЦИОННОГО ЭПИДИДИМИТА БАРАНОВ НА ТЕРРИТОРИИ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ Текст научной статьи по специальности «Ветеринарные науки»

DOI: 10.25690/VETPAT.2021.10.84.009 УДК: 616.9: 616.98: 616-097

Нурлыгаянова Г. А., Белоусов В. И., Варенцова А. А., Шарыпов А. С., Грудев А. И., Шубина Е. Г.

АКТУАЛЬНЫЕ ВОПРОСЫ ЛАБОРАТОРНОЙ ДИАГНОСТИКИ ИНФЕКЦИОННОГО ЭПИДИДИМИТА БАРАНОВ НА ТЕРРИТОРИИ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ

Ключевые слова: возбудитель, Brucella ovis, методы исследования, больные животные, проблемы диагностики.

Резюме: В работе представлены результаты серологических и бактериологических исследований материалов от овец на инфекционный эпидидимит баранов, выполненных в государственных ветеринарных лабораториях субъектов Российской Федерации в 2019 году. Всего в течение 2019 года проведено 384 735 серологических исследований сывороток крови баранов и овец в реакции длительного связывания комплемента (РДСК) с целью выявления специфических антител на инфекционный эпидидимит. Положительно реагирующие особи выявлены в 13 регионах Российской Федерации (0,04 %). Наибольшее количество серологических исследований на инфекционный эпидидимит выполнено в Республике Дагестан (56 387) и выявлено наибольшее число положительно реагирующих (75), что составило 43,8 % от всех положительных случаев в Российской Федерации. По результатам комплексной бактериологической диагностики 216 абортированных плодов и 24 проб (образцов) патологического материала от овец на бруцеллёз, включая инфекционный эпидидимит баранов, выполненных в государственных ветеринарных лабораториях субъектов Российской Федерации в 2019 году, культура возбудителя болезни не выделена. Проведение массовой серологической диагностики болезни в реакции длительного связывания комплемента (РДСК) позволяет выявлять положительно реагирующих животных и контролировать эпизоотическую ситуацию по инфекционному эпидидимиту баранов в субъектах Российской Федерации.

Введение

В настоящее время на территории Российской Федерации (далее - РФ) циркулируют пять видов возбудителя рода Brucella, являющихся источником болезни людей и животных: В. abortus (основной хозяин крупный рогатый скот), В. melitensis (мелкий рогатый скот), В. suis (свиньи), В. canis (собаки) и В. ovis (бараны) [1].

Виды бруцелл В. abortus, В. melitensis, В. suis и В. canis вызывают у животных заболевание бруцеллёзом, В. оvis - инфекционный эпидидимит баранов (далее - ИЭ) [2].

Возбудитель ИЭ характеризуется специфически выраженным тропизмом, поражает половые органы половозрелых особей мужского пола основного хозяина - баранов. Чаще заболевают ИЭ взрослые бараны-производители и бараны-пробники, овцематки менее восприимчивы к возбудителю, практически не заболевает молодняк до 12 месяцев, в тоже время возможно бессимптомное течение болезни. Порода значения не имеет. Основные клинические признаки болезни у баранов - эпидидими-

ты и орхиты, у овцематок - аборты и яловость. Продолжительность инкубационного периода от 3 до 17 недель [3, 4].

Согласно официально утвержденных Всемирной ассамблеей делегатов на 87-й Генеральной сессии инфестаций и инфекций, общих для животных разных видов, в список болезней МЭБ (май 2019 г.) включены:

болезни, вызванные возбудителями B. abortus, B. melitensis и B. suis (главы 1.3 и 8.4);

эпидидимит овец (возбудитель B. ovis) (главы 1.3 и 14.6).

В соответствии с Общими положениями Кодекса МЭБ присутствие возбудителя болезни доказывают:

а) путем выделения возбудителя рода Brucella в пробе от животного;

б) или положительным результатом диагностического исследования и выявления эпизоотической связи со случаем болезни.

По современным сведениям, B. ovis не патогенна для человека [5].

Цель работы - изучить и проанализиро-

вать результаты бактериологических и серологических исследований биологического и патологического материала от овец на инфекционный эпидидимит баранов, выполненных в государственных ветеринарных лабораториях субъектов Российской Федерации в 2019 году.

Материалы и методы исследований

Источниками информации послужили статистические данные годовых отчетов по форме 4-вет. за 2019 год, представленные государственными ветеринарными лабораториями субъектов Российской Федерации в ФГБУ «Центральная научно-методическая ветеринарная лаборатория» (ФГБУ ЦНМВЛ) в соответствии с Приказом Мин-сельхоза России от 02.04.2008 № 189, ред. от 27.09.2011 г.

Нами изучены и обобщены результаты комплексной лабораторной диагностики инфекционного эпидидимита животных бактериологическими методами и в реакции длительного связывания комплемента на холоде (РДСК). Также изучены и проанализированы материалы пояснительных записок, прилагаемых к годовым отчетам.

Результаты и обсуждение

В государственных ветеринарных лабораториях Российской Федерации диагностика инфекционного эпидидимита баранов осуществляется в соответствие с ГОСТ 33675-2015 «Животные. Лабораторная диагностика бруцеллеза. Бактериологические методы», введён в действие 01.01.2017 г. и «Наставлением по диагностике инфекционной болезни овец, вызываемой бру-

целла овис (инфекционный эпидидимит баранов)», утв. МСХ и П СССР Главным управлением ветеринарии с государственной ветеринарной инспекцией 13.11.1991 г.

Согласно нормативных документов диагностика болезни проводится комплексно и включает клинические и аллергические исследования поголовья животных в хозяйствах, лабораторные исследования материалов бактериологическими и серологическими методами.

Клинический метод - один из основных методов прижизненной диагностики заболевания у овец, инфицированных В. оу1б, позволяющий обследовать животных в хозяйствах. Клинические признаки, характерные для ИЭ, появляются только на определенной стадии болезни и не являются специфичными только для этой болезни овец. При подозрении на заболевание животных ИЭ с целью уточнения и постановки диагноза используются лабораторные методы диагностики.

Специалистами государственной ветеринарной службы Российской Федерации проводится отбор проб (образцов) биологического и/или патологического материалов в следующих случаях: по плану про-тивоэпизоотических мероприятий, в период постановки животных на карантине, при подозрении на заболевание бруцеллёзом (включая инфекционный эпидидимит баранов), наличии клинических признаков болезни (орхито-эпидидимит, аборт, яловость и др. признаки), также в других случаях.

Отбор материала (проб/образцов) и их количество для лабораторной диагности-

Пол животного Наименование материала (образца)

для прижизненной диагностики от трупов овец, в том числе убитых с диагностической целью

Баран содержимое секвестров придатков семенники с придатками

сперма лимфатические узлы

кровь (сыворотка крови) -

Овцематка абортированные плоды с плодовыми оболочками содержимое полости матки

выделения из половых органов, взятые после аборта измененные участки рогов матки

кровь (сыворотка крови) яичники

Таблица 1. Перечень материалов (образцов), подлежащих лабораторному исследованию на инфекционный эпидидимит баранов

ки инфекционной болезни овец, вызываемой В. ovis, осуществляется в соответствии с нормативными документами, регламентирующими диагностику болезни.

Для прижизненной диагностики и массового обследования животных объектом исследования является сыворотка крови. Значительно в меньших количествах исследуются абортированные плоды с плодовыми оболочками и патологический материал, образцы спермы и содержимое секвестров придатков. От абортировавших овцематок в лабораторию направляют целиком абортированные плоды с плацентой, выделения из половых органов в первые дни после аборта (табл. 1).

В особых случаях в хозяйстве проводится диагностический убой животных, если субъект РФ относится к «благополучной зоне» по бруцеллёзу, включая инфекционный эпидидимит. В этом случае от баранов в испытательную лабораторию направляют: целиком семенники вместе с придатками, кроме того, целиком парные лимфатические узлы - паховые, глубокие тазовые, подколенные, коленной складки. От овцематок - целиком парные яичники, содержимое полости матки и участки рогов матки.

Бактериологическое исследование является методом «золотого стандарта», в связи с тем, что точное диагностирование основывается на индикации и идентификации возбудителя. Однако бактериологический метод трудоемкий и продолжительный по времени (до 30 суток), требует наличия в лаборатории необходимых условий и особых навыков у специалистов [6].

С целью обнаружения возбудителя В. ovis применяются методы и тесты, как при диагностике бруцеллёза животных. Для заражения лабораторных животных при постановке биологической пробы используют материал, поступивший для бактериологического исследования. Бруцеллы вида овис обнаруживают микроскопией мазков из исходного материала, чистую культуру выделяют на питательных средах. Имеются некоторые отличия, обусловленные биологическими свойствами возбудителя В. ovis [7].

Так, для роста субкультур требуется обогащенная питательная среда. Для этого к плотным и жидким обычным питательным средам, используемым для культивирования бруцелл, добавляют до 20 % сыворотки крови крупного рогатого скота или овец. Другой отличительной особенностью роста бруцелл вида овис явля-

ется необходимость в углекислом газе или азоте, в связи с чем посевы инкубируют в анаэробных условиях. Выделенные культуры бруцелл идентифицируют по тинкто-риальным свойствам, морфологическим и культуральным признакам [8].

В соответствии с ГОСТ 33675-2015 проводится дифференциация видов и биова-ров рода Brucella путем определения: в потребности для роста на питательных средах в сыворотке крови животных, потребности в углекислом газе, способности некоторых биоваров вырабатывать сероводород, расти на средах с красителями - основным фуксином и тионином, чувствительности к бактериофагу Тб.

С помощью «Набора компонентов для серологической дифференциации бру-целл», включающего R- и S-бруцеллёзные агглютинирующие сыворотки, проводится типизация агаровой культуры. Типичная культура возбудителя ИЭ находится в R-форме, поэтому агглютинирует только с R-бруцеллёзной сывороткой при отрицательной РА со стандартной S-сывороткой.

В таблицах 2 и 3 представлены результаты комплексных бактериологических исследований абортированных плодов и патологического материала от овцепого-ловья на бруцеллёз (включая инфекционный эпидидимит баранов), выполненных государственными ветеринарными лабораториями субъектов Российской Федерации в 2019 году.

"Материалы, представленные в таблице 2, свидетельствуют, что в бактериологические отделы государственных ветеринарных лабораторий субъектов Российской Федерации в 2019 году поступило 216 плодов от абортировавших овцематок для проведения исследований на бруцеллёз (включая инфекционный эпидидимит). По результатам комплексных бактериологических исследований ни в одном случае возбудитель бруцеллёза (включая инфекционный эпидидимит) не выделен.

Наибольшее количество абортированных плодов исследовано в Республике Дагестан (106), что составляет 49,1 % от общего количества проб, исследованных в региональных лабораториях.

Из материалов, представленных в табл. 3, видно, что всего в течение 2019 года в государственных ветеринарных лабораториях субъектов Российской Федерации исследовано 24 пробы патологического материала от мелкого рогатого скота на бруцеллёз (включая инфекционный эпи-дидимит баранов). По результатам комп-

Таблица 2. Результаты бактериологических исследований абортированных плодов от овец на бруцеллёз (включая инфекционный эпидидимит баранов), выполненных в Российской Федерации в 2019 г.

Наименование субъекта Кол-во проб Проведено исследований Получено положительных результатов

Патоло-гоанато-мических Световая микроскопия Бакте-риоло-гических Биоло-гичес-ких

Всего по Российской Федерации, в том числе: 216 211 216 216 216 -

Амурская область 2 2 2 2 2 -

Астраханская область 1 1 1 1 1 -

Республика Башкортостан 1 1 1 1 1 -

Владимирская область 1 1 1 1 1 -

Воронежская область 2 - 2 2 2 -

Нижегородская область 2 1 2 2 2 -

Республика Дагестан 106 106 106 106 106 -

Калужская область 2 2 2 2 2 -

Курская область 1 1 1 1 1 -

Самарская область 1 - 1 1 1 -

Липецкая область 3 3 3 3 3 -

Республика Марий Эл 2 2 2 2 2 -

Оренбургская область 1 1 1 1 1 -

Пензенская область 6 6 6 6 6 -

Приморский край 3 3 3 3 3 -

Свердловская область 11 11 11 11 11 -

Томская область 1 - 1 1 1 -

Республика Тыва 45 45 45 45 45 -

Читинская область 21 21 21 21 21 -

Карачаево-Черкесская Республика 4 4 4 4 4 -

лексной бактериологической диагностики ционный эпидидимит) ни в одном случае не возбудитель бруцеллёза (включая инфек- выделен.

Таблица 3. Результаты бактериологических исследований патологического материала от овец на бруцеллёз (включая инфекционный эпидидимит баранов) в Российской Федерации в 2019 г.

Проведено исследований Получено

Наименование Кол-во Патоло- световая Бактери- Биоло- положи-

субъекта проб гоанато- микро- ологичес- гичес- тельных

мических скопия ких ких результатов

Всего по

Российской Федерации, в 24 19 24 24 24 -

том числе:

Республика Бурятия 1 1 1 1 1 -

Воронежская область 3 - 3 3 3 -

Ивановская 2 2 2 2 2

область

Липецкая область 5 3 5 5 5 -

Свердловская область 2 2 2 2 2

Ставропольский край 7 7 7 7 7 -

Республика Тыва 3 3 3 3 3 -

Ярославская область 1 1 1 1 1 -

Серологическое исследование. В Российской Федерации реакция длительного связывания комплемента на холоде (РДСК) является основным методом серологической диагностики инфекционного эпидидимита баранов. Серологическая диагностика заключается в выявлении специфических антител в сыворотке крови баранов и овец к антигенам из бруцелл вида В. оуи. В течение 2019 года на территории страны серологические исследования проводились только в реакции длительного связывания комплемента. Для постановки РДСК отечественной биологической промышленностью выпускается «Набор специфических компонентов для диагностики болезни овец, вызываемой В. оу18 (инфекционный эпидидимит баранов)», в состав набора входят: антиген овисный для РДСК, позитивная сыворотка и 2 серии негативной сыворотки.

В лабораторной диагностической практике для диагностики ИЭ имеется другой серологический тест - реакция непрямой гемагглютинации (РНГА), обеспечивающий выявление больных животных в течение одного рабочего дня. В 2019 году исследования в РНГА не проводились в свя-

зи с приостановкой выпуска диагностического препарата ООО НПФ «Биоцентр», г. Омск.

В табл. 4 представлены результаты серологической диагностики инфекционного эпидидимита баранов в реакции длительного связывания комплемента (РДСК), выполненных в государственных ветеринарных лабораториях субъектов Российской Федерации в 2019 году.

Анализ материалов, представленных в таблице 4, показал, что всего в государственных ветеринарных лабораториях Российской Федерации проведено 384 735 исследований проб сывороток крови баранов и овец в реакции длительного связывания комплемента (РДСК), по результатам испытаний выявлена 171 положительная проба (0,04 %).

По сведениям отечественных исследователей на территории Республики Дагестан в течение многих лет сохраняется эпизоотическое неблагополучие по бруцеллёзу крупного и мелкого рогатого скота, а также по инфекционному эпидидими-ту баранов [9]. В Республике Дагестан численность поголовья овец и коз в сельскохозяйственных предприятиях и крестьян-

Таблица 4. Результаты серологических исследований баранов и овец в РДСК на инфекционный эпидидимит в Российской Федерации в 2019 г.

Наименование субъекта Проведено исследований, проб Всего положительных (абс.) В %

Всего по Российской Федерации, в том числе: 384 735 171 0,04

Астраханская область 29 788 16 0,05

Нижегородская область 15 783 18 0,1

Республика Дагестан 56 387 75 0,1

Республика Калмыкия 14 217 5 0,03

Свердловская область 3 945 2 0,05

Тамбовская область 1 429 1 0,07

Забайкальский край 15 984 25 0,2

Республика Хакассия 12 724 10 0,08

Белгородская область 81 1 1,2

Саратовская область 333 1 0,3

Челябинская область 19 534 14 0,07

Новосибирская область 414 1 0,2

Кабардино-Балкарская Республика 162 2 1,2

ских хозяйствах в 2018 и 2019 гг. составила 5 062 054 и 5 187 967 голов соответственно.

В 2019 году в стране наибольшее количество исследований проведено в Республике Дагестан - 56 387 проб, что составляет 14,6 % от общего количества серологических исследований, выполненных в Российской Федерации. Наибольшее число положительно реагирующих особей также выявлено в Республике Дагестан (75), что составило 43,8 % от всех положительных случаев в Российской Федерации.

В Республике Дагестан положительно реагирующие животные выявлены в 3 районах (зонах). Больные животные были изолированы из отар и убиты. Проведены ветеринарно-санитарные мероприятия. Отары исследованы до получения двукратных отрицательных результатов.

На научно-производственной базе ФГБУ ЦНМВЛ (г. Москва) в 2019 году исследовано в РДСК 414 проб сыворотки крови от овец из Новосибирской области Искитимского района (табл. 4). Положительно реагировала одна проба в титре 1:5 (+++), что составило 0,2 % к исследованным.

Выводы

Результаты исследований свидетельствуют, что серологические исследования в реакции длительного связывания комплемента (РДСК) являются основным массовым тестом, позволяющим выявлять положительно реагирующих особей и контролировать эпизоотическую ситуацию по инфекционному эпидидимиту баранов на территории Российской Федерации.

В целях повышения эффективности бактериологической диагностики и выявления возбудителя болезни необходимо:

1. Подвергать строгому учету все случаи абортов, рождения слабого и нежизнеспособного потомства. Направлять на исследования абортированные плоды в свежем, а не загнившем виде. Истечения из матки следует отбирать в первые дни после аборта стерильным тампоном в стерильную одноразовую посуду. Материал, направляемый в диагностическую лабораторию, должен быть доставлен на испытание не позже 48 часов с момента отбора проб с соблюдением температурного режима, его объем должен быть достаточным для выполнения методики.

2. Питательные среды и диагностические препараты перед использованием должны проходить в лаборатории вну-трилабораторный контроль качества с использованием контрольных штаммов, а также изучения стерильности каждой серии [10, 11].

3. Строго соблюдать требования нормативных документов по диагностике бруцеллёза, включая инфекционный эпидиди-мит баранов: часть посевов инкубировать в обычной атмосфере воздуха (для роста бруцелл), другую часть - с повышенным содержанием углекислого газа или азота (для роста бруцелл вида овис).

4. В качестве биологической модели наряду с морскими свинками использовать белых мышей (для выделения бруцелл) и кроликов (для бруцелл вида овис), обладающих достаточно высокой чувствительностью к бруцеллам.

5. Исследовать одновременно абортированный плод (бактериологическими методами) и сыворотку крови (серологическими методами), при получении отрицательного результата первичного серологического исследования повторить испыта-

ния через 15-30 дней на нарастание титра специфических антител.

Требуют разработки и внедрения в лабораторную практику новых диагностических препаратов и тест-систем, позволяющих проводить специальные исследования с целью раннего выявления особей, инфицированных бактериями рода Brucella [12, 13].

В отечественной диагностической практике имеются тест-системы для проведения исследований на бруцеллёз животных молекулярно-генетическим методом (ПЦР). Однако с помощью этих диагностических наборов выявляется только родовой возбудитель Brucella spp., видовая принадлежность не определяется.

Для объективного анализа эпизоотической ситуации по инфекционному эпи-дидимиту на территории Российской Федерации субъектовым ветеринарным лабораториям необходимо оформлять самостоятельный отчет по инфекционному эпидидимиту баранов в разделе 1. «Бактериологические исследования» по образцу раздела 4. «Серологические исследования» (форма 4 вет).

Библиографический список:

1. Дентовская С. В. Возбудитель бруцеллёза / С. В. Дентовская // Микробиологический контроль качества пищевой продукции [коллективная монография] ред. А. Ю. Поповой и И. А. Дятлова - М.: Изд-во Династия, 2020. - С. 272-284.

2. Триленко П. А. Бруцеллёз сельскохозяйственных животных / П. А. Триленко. - Л.: Колос, 1976.

- 280 с.

3. Аракелян П. К. Оптимизация противобруцел-лёзных мероприятий при заболеваниях, вызываемых у овец бруцеллами видов шеШе^в и оу1в: автореф. дис. ... д-ра вет. наук / П. К. Аракелян.

- Омск, 1997. - 38 с.

4. Ветеринарные правила осуществления профилактических, диагностических, ограничительных и иных мероприятий, установления и отмены карантина и иных ограничений, направленных на предотвращение распространения и ликвидацию очагов бруцеллёза (включая инфекционный эпи-дидимит баранов). Приказ Министерства сельского хозяйства РФ от 08 сентября 2020 г. № 533.

5. СП 3.1.7.2613-10 Профилактика бруцеллёза: Санитарно-эпидемиологические правила. - М.: Федеральный центр гигиены и эпидемиологии Роспотребнадзора, 2010. - 27 с.

6. Микробиологическая диагностика бактериальных болезней / Д. И. Скородумов [и др.]. - М.: Изографъ, 2005. - 656 с.

7. Дегтяренко Л. В. Разработка и совершенствование средств, методов диагностики бруцеллёза животных и инфекционного эпидидимита баранов: автореф. дис. . д-ра вет. наук / Л. В. Дегтя-

ренко. - Новосибирск, 2005. - 44 с.

8. Косилов И. А. Инфекционный эпидидимит баранов / И. А. Косилов, П. К. Аракелян, С. К. Димов, А. С. Донченко и др. // ред. И. А. Косилова. - Новосибирск, 2005. - 128 с.

9. Микаилов М. М. Об эпизоотической ситуации по бруцеллёзу животных в Республике Дагестан и мерах по ее стабилизации / М. М. Микаилов, О. Ю. Юсупов, А. А. Халиков, Э. А. Яникова и др. // Ветеринарная патология. - 2019. - № 3 (69). - С. 5-11.

10. Диагностические препараты. Каталог продукции. - Оболенск: ФБУН ГНЦПМБ, 2016. - Изд-во А-Принт Протвино. - 106 с.

11. МУК 4.2.2316-08. Методические указания. Методы контроля бактериологических питательных сред. - М., 2008. - 67 с.

12. Нурлыгаянова Г. А. Бактериологическая и серологическая диагностика бруцеллёза животных в Российской Федерации, 2014-2018 годы / Г. А. Нурлыгаянова, В. И. Белоусов, А. А. Варенцова, А. С. Шарыпов Е. Г. Шубина и др. // Ветеринарная патология. - 2020. - № 3 (73). - С. 17-24.

13. Huber B. Development of a PCR assay for typing and subtyping of Brucella species / B. Huber, H. C. Scholz, N. Lucero, H. J. Busse // Int. J. Med. Microbiol. - 2009. - № 26. - Р. 563 - 573.

14. Renee M. Tsolis et al. Genome degradation in Brucella ovis corresponds with narrowing of its host range and tissue tropism. May 13. - 2009. https://doi. org/10.1371/journal.pone.0005519

References:

1. Dentovskaya S. V. Vozbuditel brutsellyoza [The produktsii [kollektivnaya monografiya] red. A. Yu.

causative agent of brucellosis] / S. V. Dentovskaya Popovoy i I. A. Dyatlova - M.: Izd-vo Dinastiya,

// Mikrobiologicheskiy kontrol kachestva pischevoy 2020. - S. 272-284.

2. Trilenko P. A. Brutsellyoz selskohozyaystvennyih zhivotnyih [Brucellosis of agricultural animals] / P. A. Trilenko. - L.: Kolos, 1976. - 280 s.

3. Arakelyan P. K. Optimizatsiya protivobrutsellyoznyih

meropriyatiy pri zabolevaniyah, vyizyivaemyih u ovets brutsellami vidov melitensis i ovis [Optimization of anti-brucellosis measures for diseases caused in sheep by brucella species

melitensis and ovis]: avtoref. dis____d-ra vet. nauk / P.

K. Arakelyan. - Omsk, 1997. - 38 s.

4. Veterinarnyie pravila osuschestvleniya profilakticheskih, diagnosticheskih, ogranichitelnyih i inyih meropriyatiy, ustanovleniya i otmenyi karantina i inyih ogranicheniy, napravlennyih na predotvraschenie rasprostraneniya i likvidatsiyu ochagov brutsellyoza (vklyuchaya infektsionnyiy epididimit baranov) [Veterinary rules for the implementation of preventive, diagnostic, restrictive and other measures, the establishment and cancellation of quarantine and other restrictions aimed at preventing the spread and elimination of foci of brucellosis (including infectious ram epididymitis)]. Prikaz Ministerstva selskogo hozyaystva RF ot 08 sentyabrya 2020 g. # 533.

5. SP 3.1.7.2613-10 Profilaktika brutsellyoza: Sanitarno-

epidemiologicheskie pravila [Prevention of brucellosis: Sanitary and epidemiological rules]. - M.: Federalnyiy tsentr gigienyi i epidemiologii Rospotrebnadzora, 2010. - 27 s.

6. Mikrobiologicheskaya diagnostika bakterialnyih bolezney [Microbiological diagnosis of bacterial diseases] / D. I. Skorodumov [i dr.]. - M.: Izograf', 2005. - 656 s.

7. Degtyarenko L. V. Razrabotka i sovershenstvovanie

sredstv, metodov diagnostiki brutsellyoza zhivotnyih

i infektsionnogo epididimita baranov [Development and improvement of means, methods for diagnosing brucellosis in animals and infectious epididymitis of rams]: avtoref. dis. ... d-ra vet. nauk / L. V. Degtyarenko. - Novosibirsk, 2005. - 44 s.

8. Kosilov I. A. Infektsionnyiy epididimit baranov [Infectious epididymitis of sheep] / I. A. Kosilov, P. K. Arakelyan, S. K. Dimov, A. S. Donchenko i dr. // red. I. A. Kosilova. - Novosibirsk, 2005. - 128 s.

9. Mikailov M. M. Ob epizooticheskoy situatsii po brutsellyozu zhivotnyih v Respublike Dagestan i merah po ee stabilizatsii [About the epizootic situation on brucellosis of animals in the Republic of Dagestan and measures for its stabilization] / M. M. Mikailov, O. Yu. Yusupov, A. A. Halikov, E. A. Yanikova i dr. // Veterinarnaya patologiya. - 2019. - # 3 (69). - S. 5-11.

10. Diagnosticheskie preparatyi. Katalog produktsii [Diagnostic drugs. Product Catalog]. - Obolensk: FBUN GNTsPMB, 2016. - Izd-vo A-Print Protvino. - 106 s.

11. MUK 4.2.2316-08. Metodicheskie ukazaniya. Metodyi kontrolya bakteriologicheskih pitatelnyih sred [Methodical instructions. Methods for monitoring bacteriological culture media]. - M., 2008. - 67 s.

12. Nurlyigayanova G. A. Bakteriologicheskaya i serologicheskaya diagnostika brutsellyoza zhivotnyih v Rossiyskoy Federatsii, 2014-2018 godyi [Bacteriological and serological diagnosis of animal brucellosis in the Russian Federation, 2014-2018] / G. A. Nurlyigayanova, V. I. Belousov, A. A. Varentsova, A. S. Sharyipov E. G. Shubina i dr. // Veterinarnaya patologiya. - 2020. - # 3 (73). - S. 17-24.

13-14. Vide supra.

DOI: 10.25690/VETPAT.2021.10.84.009

Nurlygayanova G. A., Belousov V. I., Varentsova A. A., Sharypov A. S., Grudev A. I., Shubina E. G.

TOPICAL ISSUES OF LABORATORY DIAGNOSTICS OF OVINE INFECTIOUS EPIDYDYMITIS IN THE RUSSIAN FEDERATION

Key words: pathogen, Brucella ovis, research methods, sick animals, diagnostic problems.

Abstract: The paper presents the results of serological and bacteriological studies of materials from sheep for ovine infectious epididymitis of sheep, performed in state veterinary laboratories of the constituent entities of the Russian Federation in 2019. In total, during 2019, 384 735 serological studies of blood sera from rams and sheep were carried out in order to identify specific antibodies for infectious epididymitis in the reaction of long-term complement binding (RLCB). Positively reacting animals were found in 13 regions of the Russian Federation (0.04 %). The largest number of serological tests for infectious epididymitis was carried out in the Republic of Dagestan (56 387) and the largest number of positively reacting animals, was revealed (75), which amounted to 43.8 % of all positive cases in the Russian Federation. According to the results of complex bacteriological diagnostics of 216 aborted fetuses and 24 samples of pathological material from sheep for brucellosis, including ovine infectious epididymitis, performed in state veterinary laboratories of the constituent entities of the Russian Federation in 2019, the culture of the pathogen was not isolated. Conducting mass serological diagnostics of the disease in the reaction of long-term complement binding (RLCB) makes it possible to identify positively reacting animals and control the epizootic situation of ovine infectious epididymitis in the constituent entities of the Russian Federation.

Сведения об авторах:

Нурлыгаянова Гульнара Ахметовна, канд. вет. наук, ведущий научный сотрудник отдела координации научно-исследовательских работ ФГБУ «Центральная научно-методическая ветеринарная лаборатория»; д. 23, ул. Оранжерейная, г. Москва, Россия, 111622; тел.: +7 (999) 491-01-58; e-mail: nurlygayanova-ga@mail.ru

Белоусов Василий Иванович, доктор вет. наук, профессор, главный научный сотрудник отдела координации научно-исследовательских работ ФГБУ «Центральная науч-

но-методическая ветеринарная лаборатория»; д. 23, ул. Оранжерейная, г. Москва, Россия, 111622; тел.: +7 (495) 700-01-37; e-mail: science@cnmvl.ru

Варенцова Алиса Алексеевна, канд. биол. наук, начальник отдела координации научно-исследовательских работ ФГБУ «Центральная научно-методическая ветеринарная лаборатория»; д. 23, ул. Оранжерейная, г. Москва, Россия, 111622; тел.: +7 (495) 700-01-37; e-mail: science@cnmvl.ru

Шарыпов Андрей Сергеевич, канд. вет. наук, научный сотрудник отдела координации научно-исследовательских работ ФГБУ «Центральная научно-методическая ветеринарная лаборатория»; д. 23, ул. Оранжерейная, г. Москва, Россия, 111622; тел.: +7 (495) 700-0137; e-mail: science@cnmvl.ru

Грудев Артём Игоревич, младший научный сотрудник, и. о. заместителя руководителя лаборатории - заведующего химико-токсикологическим отделом Московской испытательной лаборатории ФГБУ «Центральная научно-методическая ветеринарная лаборатория»; д. 23, ул. Оранжерейная, г. Москва, Россия, 111622; e-mail: grutem@ya.ru

Шубина Елена Геннадьевна, канд. хим. наук, старший научный сотрудник химико-токсикологического отдела Московской испытательной лаборатории ФГБУ «Центральная научно-методическая ветеринарная лаборатория»; д. 23, ул. Оранжерейная, г. Москва, Россия, 111622; тел.: +7 (977) 322-57-41; e-mail: cnmvl@cnmvl.ru

Author affiliation:

Nurlygayanova Gulnara Akhmetovna, Ph. D. in Veterinary Medicine, Leading Researcher of the Department for Coordination of Research Works of the Federal State Budgetary Institution (FSBI) «Central Scientific and Methodical Veterinary Laboratory»; house 23, Oranzhereinaya str., Moscow city, Russia, 111622; phone: +7 (999) 491-01-58; e-mail: nurlygayanova-ga@mail.ru Belousov Vasily Ivanovich, D. Sc. in Veterinary Medicine, Professor, Chief Researcher of the Department for Coordination of Research Works of the FSBI «Central Scientific and Methodical Veterinary Laboratory»; house 23, Oranzhereinaya str., Moscow city, Russia, 111622; phone: +7 (495) 700-01-37; e-mail: science@cnmvl.ru

Varentsova Alisa Alekseevna, Ph. D. in Biology, Head of the Department for Coordination of Research Works of the FSBI «Central Scientific and Methodical Veterinary Laboratory»; house 23, Oranzhereinaya str., Moscow city, Russia, 111622; phone: +7 (495) 700-01-37; e-mail: science@cnmvl.ru

Sharypov Andrey Sergeevich, Ph. D. in Veterinary Medicine, Researcher of the Department for Coordination of Research Works of the FSBI «Central Scientific and Methodical Veterinary Laboratory»; house 23, Oranzhereinaya str., Moscow city, Russia, 111622; phone: +7 (495) 70001-37; e-mail: science@cnmvl.ru

Grudev Artyom Igorevich, junior Researcher, acting Deputy Head of the Laboratory -Head of the Chemical and Toxicological Department of the Moscow Testing Laboratory of the FSBI «Central Scientific and Methodical Veterinary Laboratory»; house 23, Oranzhereinaya str., Moscow city, Russia, 111622; phone: +7 (495) 700-01-37; e-mail: grutem@ya.ru

Shubina Elena Gennad'evna, Ph. D. in Chemistry, Senior Researcher of the Chemical and Toxicological Department of the Moscow Testing Laboratory of the of the FSBI «Central Scientific and Methodical Veterinary Laboratory»; house 23, Oranzhereinaya str., Moscow city, Russia, 111622; phone: +7 (977) 322-57-41; e-mail: ktyfvbn@mail.ru

ВЕТЕРИНАРНАЯ КЛИНИКА

ЦЕНТР

344068, г. Ростов-на-Дону, ул.Фурмановская, д.106/43

(863)2926537 www.vetcentr.com