CC BY
133
ОРИГИНАЛЬНАЯ СТАТЬЯ
Удельный вес мочи у клинически здоровых молодых домашних хорьков (Mustela furo)
Цели: определить значения удельного веса мочи у клинически здоровых домашних хорьков и выяснить возможную связь с полом, техниками забора проб, степенью обезвоживания и результатами анализа мочи.
Методы: в данное исследование было включено 69 хорьков обоих полов в возрасте до года. Исследование каждого животного включало клинический осмотр, клинический анализ крови, биохимический анализ крови, микроскопию осадка мочи, исследование мочи тест-полосками и определение плотности мочи ручным рефрактометром. Для определения диапазона значений удельного веса и проверки их связи с полом, способом отбора пробы, гематокритом, общим белком плазмы и результатами анализа мочи проводили статистический анализ.
Результаты: удельный вес мочи различался в зависимости от пола: у самок он был ниже (Р < 0,001). Не было выявлено значимой корреляции между удельным весом мочи, гематокритом, общим белком и результатом анализа мочи тест-полосками. Средний удельный вес мочи в данном исследовании был 1,051 у некастрированных сам-
ВВЕДЕНИЕ
Хорьки - популярные домашние животные, которых заводит все больше людей [25]. У домашних хорьков встречаются разнообразные заболевания мочевыводящих путей, служащие поводом для визита в клинику; при этом и ветеринарные врачи, и владельцы стремятся обеспечить животных наилучшим лечением [7, 17]. Однако несмотря на значительные достижения в ветеринарии хорьков, нормы удельного веса мочи у этих животных никогда не определялись [7]. Параметры, использующиеся для оценки способности почечных канальцев концентрировать или разбавлять клубочковый фильтрат, включают осмо-лярность, осмоляльность и удельный вес [6, 18]. Ос-моляльность отражает общую концентрацию растворимых веществ в количестве частиц в растворе на единицу массы раствора (мОсмоль/кг) [18, 29]. Осмо-лярность выражает число частиц на единицу объема раствора (мОсмоль/л) [24, 29]. Удельный вес мочи определяют как соотношение массы определенного объема мочи к массе равного объема дистиллированной воды при той же температуре [29]. Удельный вес возрастает с повышением концентрации растворенных веществ, однако он зависит также от числа, размера и массы частиц [24, 29]. Так как определение осмо-
цов (СО ± 9; диапазон 1,034-1,070) и 1,042 у некастрированных самок (СО ± 8; диапазон 1,026-1,060).
Клиническая значимость: результаты этого исследования позволят клиницистам точнее оценить способность этих животных к концентрации мочи путем сравнения полученных результатов определения удельного веса с данными, полученными в этой когорте клинически здоровых животных.
D. Eshar, N.R. Wyre* and D.C. BrownT
Journal of Small Animal Practice (2012) 53, 115-119 DOI: 10.1111/j.1748-5827.2011.01173.x Принято: 23 ноября 2011
VetExotics, Кфар Хаораним, Израиль * Факультет клинической ветеринарии - Филадельфия, Университет Пенсильвании, ветеринарная школа и f центр ветеринарных клинических исследований, университет Пенсильвании, 3900 Delancey Street, Philadelphia, PA 19104, США Текущий адрес D. Eshar: Avian and Exotics Service, Ontario Veterinary College Health Sciences Centre, University of Guelph, Guelph, Ontario N1G2W1, Canada
лярности мочи требует специализированного и относительно дорогого оборудования, оно редко применяется в клинической практике [6]. Рефрактометрия является косвенным методом определения удельного веса мочи путем измерения ее показателя преломления [4]. Показатель преломления представляет собой соотношение скорости распространения света в воздухе и исследуемом растворе (т. е. в моче). Изменение скорости вызывает отклонение (преломление) пути светового луча. Степень преломления пропорциональна числу и типу частиц (химической структуре молекулы и числу двойных связей), растворенных в моче [4].
По опубликованным данным, и у животных [6, 29], и у людей [27] удельный вес мочи легко определяется с помощью простого и недорогого рефрактометра, часто использующегося в клинической практике [24]. Кроме того, определение удельного веса мочи помогает оценить наличие полиурии, потерю растворимых веществ с мочой и степени обезвоживания организма и функцию почек [24, 29].
Данное исследование было проведено, чтобы определить значения удельного веса мочи у клинически здоровых домашних хорьков и изучить возможную связь с полом, методом отбора пробы, обезвоживанием (гематокрит / общий белок сыворотки) и результатами анализа мочи с помощью тест-полосок.
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
Животные
Для исследования было отобрано 69 домашних хорьков, принадлежащих частным владельцам и поступивших в клинику для плановой кастрации в период с августа 2009 по декабрь 2010 г. Все хорьки были не старше 12 месяцев и не имели заболеваний в анамнезе. Анализ мочи проводили в рамках предоперационного обследования; владельцы дали свое согласие на участие в исследовании после подробного объяснения разных способов сбора мочи и возможных рисков.
Клиническое обследование
Все животные перед операцией прошли полное клиническое обследование, включавшее общий клинический осмотр, клинический анализ крови и полный биохимический анализ крови. Животных, включенных в исследование, оценивали как здоровых, если все результаты укладывались в указанные пределы нормы. Хорькам обеспечивали доступ к корму и воде вплоть до прибытия в клинику Затем корм и воду убирали за три часа перед операцией, хорьков держали при комнатной температуре и до отбора мочи не вводили каких-либо жидкостей.
Организация эксперимента
Животных распределяли в группы случайным образом в соответствии с принципами двойного слепого исследования. Мочу собирали естественным способом либо путем цистоцентеза после премеди-кации (0,2 мг/кг буторфанола в/м и 0,2 мг/кг мида-золама в/м). Мочу, полученную естественным образом, собирали в стерильный контейнер при мочеиспускании или путем осторожного ручного массажа мочевого пузыря. Цистоцентез проводили в положении животного лежа на спине после удаления шерсти с брюшной стенки и обработки 70 % раствором изопропилового спирта. Мочу отбирали через иглу 25G, надетую на шприц объемом 5 мл, под контролем узи.
Исследование мочи
Анализ мочи включал исследование тест-полоской, микроскопию осадка и измерение удельного веса сразу после отбора. Исследование тест-полосками (Multistix 10G; Байер) выполняли в соответствии с рекомендациями производителя. Вкратце, полоску погружали в мочу, стряхивали избыток и учитывали результаты через 60 секунд. Оценка интенсивности цвета, соответствующей содержанию различных растворенных веществ, производилась в соответствии с цветовой шкалой, предоставленной производителем.
Удельный вес мочи измеряли ручным рефрактометром (ATAGO MASTER-SUR/Na Urine S.G. Clinical Ref-ractometer; ATAGO Co. Ltd.), который имеет функцию автоматической компенсации температуры в пределах от 10 до 30 °С и шкалу от 1,000 до 1,060 с ценой
деления 0,001. Перед исследованием каждого образца рефрактометр тщательно очищали и калибровали с дистиллированной водой до показания 1,000.
Статистический анализ
Статистический анализ проводили с помощью коммерческого программного обеспечения ^а1а версии 11; 81а1аСогр). Для определения нормальности распределения использовали асимметрию и коэффициент эксцесса непрерывных переменных. Данные с нормальным распределением выражали как средние значения ± СО. Данные с распределением, отличным от нормального, выражали через медиану и диапазон. На основании нормальности распределения данных для сравнения удельного веса у разных полов (самцов по сравнению с самками) и при разных способах сбора мочи (цистоцентез и естественный) использовали критерий Стьюдента. Категорийные данные выражали как частоты, а для сравнения между группами использовали точный критерий Фишера. Корреляция между удельным весом мочи, гематокритом и концентрацией общего белка в сыворотке оценивалась с помощью поправки Бонферрони, применявшейся к вычисленным уровням значимости. Для всех сравнений за статистическую значимость принимали Р < 0,05.
РЕЗУЛЬТАТЫ
В исследование были включены результаты анализа мочи всех 69 некастрированных хорьков (24 самцов и 45 самок), медиана возраста - 7 месяцев (диапазон 4-12 мес). Результаты измерения удельного веса, определения состава мочи, метод сбора мочи, результаты определения гематокрита и общего белка плазмы 69 хорьков представлены в табл. 1 и 2. В целом наблюдаемый диапазон удельного веса мочи у хорьков в данном исследовании составил 1,026-1,070. У самок удельный вес был значительно ниже (Р < 0,001), чем у самцов (табл. 1); средний удельный вес у самцов составил 1,051 ± 0,009 (95 % ДИ 1,047-1,055; диапазон 1,034-1,070), а у самок - 1,042 ± 0,008 (95 % ДИ 1,040-1,045; диапазон 1,026-1,060).
У 41 хорька образцы мочи собирали путем цисто-центеза (13 самцов и 28 самок), а у 28 - естественным образом (11 самцов и 17 самок). Значимых различий в результатах измерения удельного веса мочи, собранной путем цистоцентеза и естественным способом, не обнаружено. Также не обнаружено значимой связи между удельным весом мочи, гематокритом и концентрацией общего белка.
Анализ мочи с помощью тест-полосок показал следовую концентрацию белка (< 0,3 г/л) в 80 % (55 из 69 животных) образцов мочи. Среди самцов было больше животных с положительной реакцией на белок в моче (92 %, или 22 из 24 животных) по сравнению с самками (73 %, или 33 из 45 ж:ивотных), однако различие не было статистически значимым. Микроскопия осадка мочи не показала цилиндров или каких-либо
Таблица 1. Удельный вес мочи, рН мочи, гематокрит и общий белок сыворотки у 24 самцов и 45 самок хорьков из настоящего исследования
Показатели Самцы Самки
Среднее ± СО Диапазон Среднее± СО Диапазон
Удельный вес* 1,051 ± 0,009 1,034-1,070 1,042 ± 0,008 1,026-1,060
рН 6,0 ± 0,03 5,0-6,5 6,1 ± 0,5 5,0-7,5
Гематокрит (%) 49,2 ± 3,4 44-56 48,5 ± 3,7 42-58
Общий белок (г/л) 0,068 ± 0,06 0,056-0,078 0,066 ± 0,03 0,057-0,073
*Р < 0,001.
Таблица 2. Способ сбора мочи и результаты анализа мочи тест-полосками у хорьков из настоящего исследования
Показатели Самцы (n = 24) Самки (n = 45)
Частота % Частота %
Цистоцентез 13 54 28 62
Естественный способ 11 46 17 38
Белок* 22 92 33 73
Кровь1 11 46 17 38
Билирубин* 3 13 8 18
* У всех хорьков с положительной реакцией на белок в этом исследовании концентрация белка была следовой (< 0,3 г/л).
1 У всех хорьков с положительной реакцией на кровь в этом исследовании концентрация крови была следовой (< 10 эритроцитов/мкл).
* Все результаты определения билирубина в этом исследовании соответствовали (+1).
аномальных клеток. В образцах, собранных путем цис-тоцентеза, вероятность обнаружения эритроцитов при микроскопии была выше (Р < 0,001) (12 из 39 животных, или 31 %) по сравнению с образцами, полученными естественным путем (0 из 30). Других значимых различий между самцами и самками и разными способами отбора мочи не обнаружено.
Ни в одном из образцов не обнаружено значительной гематурии, однако тест-полоски показали следы крови в 41 % (28 из 69 животных) образцов, отобранных у 11 самцов (6 путем цистоцентеза и 5 естественным способом) и 17 самок (9 путем цисто-центеза и 8 естественным путем). Микроскопия мочи показала эритроциты в 43 % (12 из 28) образцов с «гематурией», все из которых были получены цис-тоцентезом. Между самцами и самками, а также способами отбора мочи не было обнаружено значимых различий. Анализ тест-полосками показал билирубин (+1) в 16 % образцов (11 из 69 животных) (табл. 2) без значимых различий между самцами и самками.
Результаты данного исследования описывают диапазон значений удельного веса мочи у хорьков. Определение удельного веса - основной компонент полного анализа мочи, и его определение у клинически здоровых хорьков имеет решающее значение для правильного клинического обследования животных данного вида. Группа хорьков, представленная в этом исследовании, неоднородна, имеет самое разнообразное происхождение, и, следовательно, в ней представлена широкая популяция домашних хорьков (за пределами США), таким образом, исключена теоретическая погрешность, связанная с исследованием одной линии лабораторных животных для установления нормального диапазона. Число животных в настоящем исследовании достаточно велико для достоверной оценки нормального интервала, поскольку минимальная рекомендуемая для этой цели выборка составляет 40-80 животных [1].
Пределы удельного веса в настоящем исследовании выше, чем описанные для собак (1,005-1,045) и кошек (1,35-1,060) [6, 18]. Однако имеются также работы [5, 19, 29], описывающие диапазон значений удельного веса мочи у собак (1,001-1,075) и кошек (1,001-1,085),
сходный с описанным в нашем исследовании. Это позволяет предположить, что животные с большим удельным весом мочи, чем в норме, обезвожены [29]; однако у хорьков в нашем исследовании, имевших высокий удельный вес мочи, не было обнаружено признаков обезвоживания во время клинического осмотра и анализа крови. Значимой связи между удельным весом мочи и гематокритом / концентрацией общего белка не обнаружено.
Было обнаружено значимое различие удельного веса мочи у самок по сравнению с самцами в сторону уменьшения (табл. 1). В образцах мочи от 73 % самок и 92 % самцов был обнаружен белок, который способствует повышению удельного веса [10]. Белок - распространенный компонент, обнаруживаемый в моче хорьков [9, 28], что может быть обусловлено относительно высоким систолическим артериальным давлением и более толстыми стенками внутрипочеч-ных артерий [28]. Показано, что у крыс тестостерон повышает артериальное давление, повреждение почек и выведение белка с мочой [32]; он также может обусловливать значимое различие удельного веса у некастрированных и кастрированных самцов и самок хорьков, наблюдаемое в нашем исследовании. Однако исследование на крысах проводилось на генетически измененных животных, и эти результаты могут оказаться неприменимыми к здоровым хорькам. Хотя протеинурия часто встречается у клинически здоровых хорьков, в качестве возможных дифференциальных диагнозов следует рассматривать заболевания мочеполового тракта и алеутскую болезнь [9, 16].
Анализ с помощью тест-полосок показал наличие в моче и других компонентов, в том числе крови и билирубина, но без значимой связи с удельным весом. Следы крови обнаружены у 46 % (11 из 24) самцов и 38 % (17 из 45) самок, общая частота составила 41 % (28 из 69) животных, включенных в исследование. Гематурия в образцах мочи самцов и самок хорьков, полученных естественным образом, описывалась ранее [28]. У некастрированных самок гематурия может быть обусловлена течкой [28], а у людей и лошадей сперма может давать ложноположительные результаты [20]. Возможные причины истинной
ОБСУЖДЕНИЕ
гематурии включают ятрогенную травму (катетеризацию, аспирацию) и заболевания мочеполового тракта [9, 12, 13, 16]. Ятрогенная травма в результате давления на мочевой пузырь или аспирации может объяснить гематурию в настоящем исследовании, однако предыдущие исследования на собаках и кошках показали, что сбор мочи путем осторожного массажа мочевого пузыря редко приводит к гематурии, видимой под микроскопом [8]. Кроме того, в некоторых случаях причиной могла быть ятрогенная травма в результате цистоцентеза, однако значимой разницы в числе проб с гематурией, полученных цистоцентезом и естественным образом, не обнаружено.
Временная гематурия, вызванная физическими нагрузками, - распространенное явление у атлетов [11]. Возможно, что у молодых хорьков в данном исследовании, известных своей «гиперактивной» природой, могли быть симптомы, сходные с таковыми у людей-атлетов. Бессимптомная гематурия, видимая под микроскопом, часто обнаруживается у людей (и детей, и взрослых) с гипертензией [15, 26]. Возможно, что микроскопическая гематурия у этих и других бессимптомных хорьков [28] могла быть обусловлена высоким систолическим давлением. У людей встречается гематурия, обнаруживаемая тест-полосками, в отсутствии эритроцитов в осадке мочи; это вызвано окислением реактива в тест-полоске [22]. Дезинфицирующие средства на основе окислителей также способны давать ложноположительный результат при исследовании на гематурию [24].
В настоящем исследовании не было обнаружено значимой связи гематурии, обнаруживаемой тест-полосками, с удельным весом мочи. Исследование природы наблюдаемой гематурии выходило за рамки настоящего исследования; ее все еще предстоит установить.
Значимой связи билирубинурии, обнаруживаемой тест-полосками, с удельным весом мочи не обнаружено. Билирубинурия в отсутствии сопутствующей гипербилирубинемии в настоящем исследовании уже описана у хорьков [28]. Легкая билиру-бинурия считается нормой у собак, но не у кошек [24]. В качестве реактивов для тест-полосок используются соли диазония, более чувствительные к конъюгированному билирубину, чем к свободному [24]. Полагают, что конъюгированный билирубин свободно фильтруется почками, поэтому билируби-нурия может предшествовать билирубинемии [24]. Билирубинемия в отсутствии заболевания печени считается нормой у хорьков [12]. Значимой связи рН мочи по результатам измерения тест-полосками с удельным весом в настоящем исследовании не обнаружено. В большинстве случаев рН мочи был 6,0, общие пределы от 5,0 до 7,5 (табл. 1), значимой связи с удельным весом не выявлено. В качестве нормального предела рН мочи у хорьков приводится значение 6,5-7,5 [30]; однако рН мочи может варьи-
ровать в зависимости от рациона [21]. Хорьки, получающие высококачественный рацион на основе мяса, обычно имеют рН мочи 6,0 [21], а получающие рацион с высоким содержанием растительных белков - более высокие значения (т. е. щелочную мочу) [16]. Хорьков в настоящем исследовании кормили высококачественными кормами для котят или специализированным готовым кормом для хорьков на основе мяса, таким образом, моча большинства животных была кислой, а отклоняющиеся результаты могли быть обусловлены погрешностью анализа тест-полосками [23], различиями килотно-ще-лочного равновесия в крови или непостоянством рациона [24].
Ограничения этого исследования включают (1) сбор мочи после голодной диеты, (2) нахождение животных под седацией, (3) сбор мочи только в утренние часы, (4) то, что все хорьки были некастрированными и (5) были в возрасте не старше 12 месяцев. Известно, что удельный вес мочи собак выше по утрам, чем по вечерам [31], следовательно, у хорьков также возможны различия удельного веса в зависимости от времени суток, которые не оценивались в настоящем исследовании. Кроме того, важным фактором может оказаться возраст, поскольку способность к концентрации мочи, как у животных, так и у человека, снижается с возрастом [2, 3, 14, 31].
Результаты этого исследования открывают двери для многих будущих перспективных исследований. Можно сравнить значения удельного веса мочи в разное время суток, чтобы выяснить, изменяются ли они так же, как у собак. Кроме того, в ходе таких исследований можно анализировать белок в моче на протяжении 24-часового периода, чтобы подтвердить различие в протеинурии у самцов и самок хорьков. Кроме того, в ходе будущих исследований необходимо сравнить значения удельного веса мочи у хорьков разных возрастных групп, а также у кастрированных и некастрированных.
Это первая публикация, описывающая значения удельного веса мочи у клинически здоровых хорьков. Как можно предположить по результатам этого исследования, нормальные пределы удельного веса мочи у хорьков от 1,034 до 1,070 для некастрированных самцов и от 1,026 до 1,060 для некастрированных самок. Результаты настоящего исследования помогут клиницистам, работающим с домашними хорьками с различными основными заболеваниями, точнее оценить способность этих животных к концентрации мочи в сравнении с нашей когортой клинически здоровых животных.
Конфликт интересов
Ни один из авторов данной статьи не состоит в финансовых или личных взаимоотношениях с другими лицами или организациями, которые могли бы повлиять на достоверность информации или содержание данной работы.
Литература
1. Archer J. Diagnostic laboratory tests and reference intervals // Journal of Small Animal Practice, 2010, 51, 459-460.
2. Beck N. & Yu B.P. Effect of aging on urinary concentrating mechanism and vasopressin dependent cAMP in rats // American Journal of Physiology, 1982, 243, F121-F125.
3. Bengele H.H., Mathias R.S., Perkins J.H. & Alexander E.A. Urinary concentrating defect in the aged rat // American Journal of Physiology,1981, 240, F147-F150.
4. Chadha V., Garg U. & Alon U.S. Measurement of urinary concentration: a critical appraisal of methodologies // Pediatric Nephrology, 2001, 16, 374-382.
5. Dibartola S.P. Disorders of sodium and water: hypernatremia and hyponatremia. In: Fluid Therapy in Small Animal Practice. Eds S. P. DiBartola. W. B. Saunders, Philadelphia, PA, USA, 1992, pp. 57-88.
6. Dossin O., Germain C. & Braun J.P. Comparison of the techniques of evaluation of urine dilution/concentration in the dog // Journal of Veterinary Medicine, Series A, 2003, 50, 322-325.
7. Fisher P.G. Exotic mammal renal disease: diagnosis and treatment // Veterinary Clinics of North America: Exotic Animal Practice, 2006, 9, 69-96.
8. Forrester S.D. Diagnostic approach to hematuria in dogs and cats // Veterinary Clinics of North America: Small Animal Practice, 2004, 34, 849-866.
9. Fox J.G. Normal clinical and biologic parameters. In: Biology and Diseases of the Ferret. 2nd edn. Eds J.G. Fox. Lippincott Williams & Wilkins, Philadelphia, PA, USA, 1998, p. 200.
10. George J.W. The usefulness and limitations of hand-held refractometers in veterinary laboratory medicine: an historical and technical review // Veterinary Clinical Pathology, 2001, 30, 201-210.
11. Grossfeld G.D., Wolf J.S. Jr, Litwan M.S., Hricak H., Shuler C.L., Agerter D.C. & Carroll P.R. Asymptomatic microscopic hematuria in adults: summary of the AUA best practice policy recommendations // American Family Physician, 2001, 63, 1145-1154.
12. Hillyer E.V. Ferrets: Urogenital system. In: Saunders Manual of Small Animal Practice. Eds S.J. Birchard and R.G. Sherding. W. B. Saunders, Philadelphia, PA, USA, 1994, pp. 1341-1344.
13. Hoefer H.L. Rabbit and ferret renal disease diagnosis. In: Laboratory Medicine: Avian and Exotic Pets. Eds A. M. Fudge. W.B. Saunders, Philadelphia, PA, USA, 2000, pp. 311-318.
14. Lindeman R.D., Lee T.D. Jr, Yiengst M.J. & Shock N.W. Influence of age, renal disease, hypertension, diuretics, and calcium on the antidiuretic responses to suboptimal infusions of vasopressin // Journal of Laboratory and Clinical Medicine, 1966, 68, 206-223.
15. McDonald M.M., Swagerty D. & Wetzel L. Assessment of microscopic hematuria in adults // American Family Physician, 2006, 73, 1748-1754.
16. Mitchell M.A. & Tully T.N. Jr. Ferrets. In: Manual of Exotic Pet Practice. Eds M.A. Mitchell and T.N. Tully, Jr. W.B. Saunders, St. Louis, MO, USA, 2009, pp. 345-374.
17. Orcutt C.J. Ferret urogenital diseases // Veterinary Clinics of North America: Exotic Animal Practice, 2003, 6, 113-138.
18. Osborne C.A. & Stevens J.B. Urine specific gravity, refractive index, or osmolality: which one would you choose? In: Urinalysis: A Clinical Guide to Compassionate Patient Care. Eds C.A. Osborne and J.B. Stevens. Bayer Corporation, Leverkusen, Germany, 1999, pp. 73-85.
19. Osborne C.A., Stevens J.B., Lulich J.P., Ulrich L.K., Bird K.A. & Swanson L.L. A clinician’s analysis of urinalysis. In: Canine and Feline Nephrology and Urology. Eds C.A. Osborne and D.R. Finco. Lippincott Williams & Wilkins, Baltimore, MD, USA, 1995, pp. 136-205.
20. Prober L.G., Johnson C.A., Olivier N.B. & Thomas J.S. Effect of semen in urine specimens on urine protein concentration determined by means of dipstick analysis // American Journal of Veterinary Research, 2010, 71, 288-292.
21. Quesenberry K.E. & Orcutt C. Basic approach to veterinary care. In: Ferrets, Rabbits, and Rodents: Clinical Medicine and Surgery. 2nd edn. Eds K.E. Quesenberry and J.W. Carpenter. W.B. Saunders, St. Louis, MO, USA, 2004, pp. 13-23.
22. Rao P.K. & Jones J.S. How to evaluate ‘dipstick hematuria’: what to do before you refer // Cleveland Clinic Journal of Medicine, 2008, 75, 227-233.
23. Raskin R.E., Murray K.A. & Levy J.K. Comparison of home monitoring methods for feline urine pH measurement // Veterinary Clinical Pathology, 2002, 31, 51-55.
24. Reine N.J. & Langston C.E. Urinalysis interpretation: how to squeeze out the maximum information from a small sample // Clinical Techniques in Small Animal Practice, 2005, 20, 2-10.
25. Shepherd A.J. Results of the 2006 AVMA survey of companion animal ownership in US pet-owning households // Journal of the American Veterinary Medical Association, 2008, 232, 695-696.
26. Stapleton F.B. Asymptomatic microscopic hematuria: time to look the other way? // Archives of Pediatrics & Adolescent Medicine, 2005, 159, 398-399.
27. Stuempfle K.J. & Drury D.G. Comparison of 3 methods to assess urine specific gravity in collegiate wrestlers // Journal of Athletic Training, 2003. 38, 315-319.
28. Thornton P.C., Wright P.A., Sacra P.J. & Goodier T.E. The ferret, Mustela putorius furo, as a new species in toxicology // Laboratory Animals, 1979, 13, 119-124.
29. Watson A.D.J. Urine specific gravity in practice // Australian Veterinary Journal, 1998, 76, 392-398.
30. Williams C.S.F. Practical guide to laboratory animals. Mosby, St Louis, MO, USA, 1976, p. 207.
31. Van Vonderen I.K., Kooistra H.S. & Rijnberk A. Intra- and interindividual variation in urine osmolality and urine specific gravity in healthy pet dogs of various ages // Journal of Veterinary Internal Medicine, 1997, 11, 30-35.
32. Yanes L.L., Sartori-Valinotti J.C., Iliescu R., Romero D.G., Racusen L.C., Zhang H. & Reckelhoff J.F. Testosterone-dependent hypertension and upregulation of intrarenal angiotensinogen in Dahl salt-sensitive rats // American Journal of Physiology: Renal Physiology, 2009, 296, F771-F779.
