CC BY
42
3. Динамика показателей естественной резистентности подопытных телят, % (X±Sx)
Группа Показатель
лизоцимная активность бактерицидная активность фагоцитарная активность комплементарная активность
в начале опыта в конце опыта в начале опыта в конце опыта в начале опыта в конце опыта в начале опыта в конце опыта
Контрольная I опытная II опытная III опытная 17,80±0,40 17,60±0,44 17,20±0,62 17,90±0,54 18,60±36 21,79±0,42* 22,81±0,38* 21,30±0,40* 34,30±0,52 34,14±0,52 34,18±0,60 34,32±0,58 36,60±0,34 43,20±0,38* 44,89±0,42* 42,50±0,32* 50,62±1,12 49,98±0,92 50,22±1,02 50,74±1,18 54,12±0,98 59,72±0,98* 60,19±0,96** 58,42±0,90* 13,30±0,26 13,22±0,39 13,25±0,32 13,40±0,44 14,72±0,22 20,45±0,28* 23,08±0,26** 20,12±0,30*
Примечание: * - Р<0,05; ** - Р<0,01
0,81 ммоль/л, или на 3,0%, фосфора — на 0,238 ммоль/л, или на 11,2%, резервная щёлочность — на 2,99%, концентрация общего белка — на 2,15 г/л, или на 3,38%.
Важным показателем воздействия различных факторов на организм животных является уровень его естественной резистентности (табл. 3).
Анализ данных таблицы 3 свидетельствует, что в процессе опыта произошли положительные сдвиги в уровне естественной резистентности у телят опытных групп по отношению к контрольным животным. Так, у молодняка I опытной гр. лизоцимная активность сыворотки крови телят повысилась на 3,19%, бактерицидная — на 6,60%, фагоцитарная — на 5,60%, комплементарная — на 5,73%. У животных II опытной гр. повышение величины изучаемых показателей составляло соответственно 4,21; 8,29; 6,07; 8,36% (Р<0,05), а III опытной гр. — 2,70; 5,9; 4,30; 5,40%.
Улучшение параметров микроклимата, гематологических показателей, уровня естественной резистентности положительно сказалось на интенсивности роста телят. Так, среднесуточный прирост живой массы молодняка I опытной гр. повысился на 11,25%, II опытной гр. — на 15,39%, III опытной гр. — на 7,95% по сравнению с контролем.
Вывод. Применение аэроионизации и про-биотика Лактобактерин не только гигиенически целесообразное, но и практически эффективное мероприятие. Под влиянием аэроионизации улуч-
шилось санитарное состояние микроклимата и повысился уровень естественной резистентности организма телят. Комплексное воздействие аэроионизации и пробиотика Лактобактерин проявлялось синергизмом и оказывало более благоприятное действие на организм телят, чем их раздельное применение.
Литература
1. Комарова Н.К., Косилов В.И. Снижение сроков преддо-ильной подготовки нетелей с использованием лазерного излучения // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2014. № 2 (46). С. 126—129.
2. Косилов В.И., Комарова Н.К., Востриков Н.И. Молочная продуктивность коров разных типов телосложения после лазерного облучения БАТ вымени // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2014. № 3 (47). С. 107-110.
3. Смирнов А.М. Оценка ветеринарно-санитарной и экологической безопасности на крупных предприятиях по производству продукции животноводства // Материалы международной науч.-практич. конф. Чебоксары, 2010. С. 1-3.
4. Дементьев Е.П., Казадаев В.А., Лободин П.В. Оценка применения аэроионизации и биологических стимуляторов при выращивании телят // Вестник Башкирского государственного аграрного университета. 2012. № 4. С. 31-33.
5. Цепелева Е.В., Галямшин Р.Р. Опыт применения аэроионизации при вакцинации телят против ротовирусной инфекции // Материалы всероссийской науч.-практич. конф. Уфа, 2012. С. 103-104.
6. Андреева А.В., Николаева О.Н., Кадырова Д.В. Влияние пробиотиков на морфологические показатели крови // Морфология. 2010. № 4. С. 18.
7. Косилов В.И., Миронова И.В. Эффективность использования энергии рационов коровами чёрно-пёстрой породы при скармливании пробиотической добавки Ветоспорин-актив // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2015. № 2 (52). С. 179-182.
8. Петрова С.Г., Алексеев И.А. Рост и развитие телят при использовании пробиотической добавки к корму «Бацелл» // Ветеринарный врач. 2012. № 6. С. 54-57.
Содержание белков в крови свиноматок после применения гамавита и гипофизина Ла Вейкс для стимуляции воспроизводительной функции
И.В. Изакар, аспирант, Н.В. Безбородов, д.б.н, профессор ФГБОУ ВО Белгородский ГАУ;В.Н. Загорельский, к.с.-х.н., А.М. Божко, к.б.н, ЗАО «Троицкое»
Результаты ранее проведённых исследований свидетельствуют, что содержание белков у свиноматок отмечается в виде закономерной связи с репродуктивной функцией [1—7].
В этой связи целью исследования было изучение динамики белков после применения пептидных препаратов гамавита и гипофизина Ла Вейкс для стимуляции воспроизводительной функции у свиноматок после отъёма поросят.
Материал и методы исследования. Исследование по выявлению механизмов действия и эффективности применения иммуномодулятора гамавита и
утеротоника гипофизина Ла Вейкс для стимуляции обменных процессов и воспроизводительной функции у свиноматок после родов было проведено на поголовье животных в условиях свинокомплекса ЗАО «Троицкое» Белгородской области в зимне-весенний период. Для опыта были подобраны свиноматки крупной белой породы + дюрок + ландрас по шестому опоросу массой 180 кг, которых распределили в группы по принципу аналогов. Гамавит представляет собой комплексный физиологически сбалансированный водный раствор, содержащий плаценту денатурированную эмульгированную человека, нуклеинат натрия, набор аминокислот, витаминов, солей. Рекомендуется к использованию в качестве детоксиканта, метаболика, биогенного стимулятора, иммуномодулятора и адаптогена. Гипофизин Ла Вейкс содержит в качестве синтетического действующего начала карбетоцин (1-дезамино-1-монокарбо-2-(0-метил)-тирозин— окситоцин) в количестве 0,07 мг, действие которого аналогично окситоцину (утеротоник), но более продолжительное. Для проведения исследований было сформировано четыре группы свиноматок (п = 40) сразу после родов (рис.). Свиноматкам I гр. в 1-е сут. после опороса вводили внутримышечно 4 раза гамавит в дозе 10 мл/гол/сут в 1, 3, 5, 7-е сут. и гипофизин, только в начале курса (в 1-е сут.) однократно в дозе 1 мл/гол/сут. Особям II гр.
препараты вводили аналогичным курсом начиная с 15 сут. после родов — в 15, 17, 19 и 22-е сут. Аналогам III гр. гамавит и гипофизин вводили в тех же дозах, но начиная с 20-х сут. после родов — в 20, 22, 24 и 26-е сут. IV гр. была контрольной и объединяла интактных животных. У 5 свиноматок в каждой группе проводили взятие крови из ушной вены четыре раза за весь период исследований (в 1, 15, 21, 26-е сут.) для проведения лабораторных биохимических исследований крови.
В сыворотке крови свиноматок изучали по общепринятым методикам [5] количественные характеристики следующих показателей: общего белка, альбуминов, глобулинов — а, р и у. Полученный цифровой материал обработан статистически при определении достоверности разницы между показателями взятия крови внутри групп (последующие по сравнению с предыдущими) использовали аргумент Стьюдента.
Результаты исследования. Динамика содержания общего белка в сыворотке крови свиноматок (табл.) исследуемых групп после родов характеризовалась постепенным повышением его количества к 5-м сут. после отъёма поросят (26-е сут.) и наличием периода снижения его уровня перед отъёмом поросят. Превышение количества общего белка к 21-м и 26-м сут. после родов по сравнению с его первоначальным значением на 2-е сут. после родов
Роды
I гр.
кровь
л
гамавит+гипофизин
_К_
А
кровь
отъем
А
кровь
л
0 1 II гр.
кровь
3
Роды
X
5
7
15
21
22
кровь кровь * к
^ гамавит + гипофизин
А
26 сут.
кровь
л
0 1 3 III гр.
кровь Роды Л
X
15
кровь
21 22 отъём
26 сут.
кровь
гамавит + гипофизин
А
0 1
15
20 21 22
26 су'
5
7
5
7
IV (контроль) гр.
кровь
Роды
0 1 3 Рис. - Схема исследований
кровь
отъем
.А
_1_
кровь
л
15
20 21 22
26 сут.
5
7
Содержание белков в сыворотке крови свиноматок (X±Sx)
Показатель Группа Взятия крови после родов, (сут.)
1 (1-е) 2 (15-е) 3 (21-е) 4 (26-е)
1 2 3 4 5 6
Общий белок, г/л I 77,00±1,58 87,30±2,38 р2-1<0,01 81,40±2,21 р3-1>0,05 р3-2>0,05 90,10±2,06 р4-1<0,001 р4-2>0,05 р4-3<0,01
II 77,20±1,69 88,10±1,67 р2-1<0,001 81,50±2,35 р3-1>0,05 р3-2<0,05 83,40±1,33 р4-1<0,01 р4-2<0,05 р4-3>0,05
III 73,20±1,17 88,0±2,71 р2-1<0,001 83,40±1,83 р3-1<0,001 р3-2>0,05 91,40±0,88 р4-1<0,001 р4-2>0,05 р4-3<0,001
IV (контроль) 75,7±1,97 83,3±2,06 р2-1<0,05 82,40±2,48 р3-1<0,05 р3-2>0,05 84,00±2,95 р4-1<0,05 р4-2>0,05 р4-3>0,05
Альбумины, % I 37,70±3,16 27,90±3,63 р2-1>0,05 38,20±3,33 р3-1>0,05 р3-2>0,05 24,03±4,82 р4-1<0,05 р4-2>0,05 р4-3<0,05
II 36,20±2,69 31,70±1,88 р2-1>0,05 38,40±2,38 р3-1>0,05 р3-2<0,05 27,10±2,40 р4-1<0,05 р4-2>0,05 р4-3<0,01
III 44,80±3,80 35,30±3,79 р2-1 >0,05 39,10±2,09 р3-1>0,05 р3-2>0,05 26,60±2,21 р4-1<0,001 р4-2>0,05 р4-3<0,001
IV (контроль) 37,0±3,17 34,5±3,51 р2-1>0,05 32,20±2,99 р3-1>0,05 р3-2>0,05 28,30±3,79 р4-1>0,05 р4-2>0,05 р4-3>0,05
Глобулины- а, % I 19,50±0,62 19,50±1,56 р2-1>0,05 17,40±1,03 р3-1>0,05 р3-2>0,05 16,80±1,22 р4-1>0,05 р4-2>0,05 р4-3>0,05
II 20,90±0,53 20,60±1,31 р2-1>0,05 18,00±1,25 р3-1<0,05 р3-2>0,05 17,60±1,20 р4-1<0,05 р4-2>0,05 р4-3>0,05
III 18,40±0,92 20,10±1,98 р2-1>0,05 17,90±0,95 р3-1>0,05 р3-2>0,05 21,90±0,82 р4-1<0,05 р4-2>0,05 р4-3<0,01
IV (контроль) 17,0±0,99 18,2±0,99 р2-1>0,05 20,00±0,49 р3-1<0,05 р3-2>0,05 19,80±0,90 р4-1>0,05 р4-2>0,05 р4-3>0,05
Глобу-лины-Р, % I 14,0±1,15 14,90±1,71 р2-1>0,05 14,90±1,79 р3-1>0,05 р3-2>0,05 15,40±1,01 р4-1>0,05 р4-2>0,05 р4-3>0,05
II 12,90±0,55 14,40±0,86 р2-1>0,05 14,30±0,80 р3-1>0,05 р3-2>0,05 14,90±0,82 р4-1>0,05 р4-2>0,05 р4-3>0,05
III 13,60±0,76 15,00±0,84 р2-1>0,05 12,90±0,53 р3-1>0,05 р3-2<0,05 16,50±0,58 р4-1<0,01 р4-2>0,05 р4-3<0,001
IV (контроль) 15,6±0,79 15,3±0,72 р2-1>0,05 14,40±1,16 р3-1>0,05 р3-2>0,05 12,90±0,60 р4-1<0,05 р4-2<0,05 р4-3>0,05
Продолжение таблицы
1 2 3 4 5 6
Глобу-лины-у, % I 28,00±2,97 36,30±3,84 р2-1>0,05 28,00±2,40 р3-1>0,05 р3-2>0,05 46,50±4,50 р4-1<0,01 р4-2>0,05 р4-3<0,01
II 27,20±3,28 31,80±1,59 р2-1>0,05 28,00±1,60 р3-1>0,05 р3-2>0,05 38,80±1,82 р4-1<0,01 р4-2<0,01 р4-3<0,001
III 22,40±3,25 25,70±2,26 р2-1>0,05 45,30±2,54 р3-1<0,001 р3-2<0,001 35,20±1,94 р4-1<0,01 р4-2<0,01 р4-3<0,01
IV (контроль) 30,4±2,87 30,4±2,85 р2-1 >0,05 32,20±2,92 р3-1>0,05 р3-2>0,05 37,40±3,34 р4-1>0,05 р4-2>0,05 р4-3>0,05
было наибольшим у свиноматок III гр. — соответственно на 13,9 и 24,8%, а наименьшее — у животных II гр. (5,5 и 8,0%). В сыворотке крови свиноматок I гр. эти значения составили на 21-е и 26-е сут. исследования 5,7 и 17,0%, а IV (контроль) гр. — 8,8 и 10,9% соответственно. В крови аналогов IV (контроль) гр. на 1-е сут. после родов концентрация альбуминов составила 37,0+3,17%, что соответствовало норме. На 15-е сут. исследования также была отмечена тенденция снижения содержания альбуминов до 34,5+3,51%, которое практически не менялось и на 21-е сут. после родов.
На 26-е сут. после родов установлена дальнейшая тенденция снижения (на 12,2%) концентрации белков до 28,30+3,79%, что было недостоверно меньше (на 23,6%) их значения в 1-е сут. после родов. В сыворотке крови свиноматок IV (контроль) гр. количество а-глобулинов в 1-е сут. после родов было равно 17,0+0,99%. В дальнейшем до конца исследований (26-е сут.) изменения концентрации белков были малозначимыми и составили 19,80+0,90%. Таким образом, у животных I и II гр. количество а-глобулинов снижалось на 5-е сут. после отъёма поросят соответственно на 13,9 и 15,8% (Р<0,05), у особей III гр., наоборот, установлено повышение белков по отношению к их первоначальному значению на 19% (Р<0,05). В сыворотке крови свиноматок IV (контроль) гр. первоначальный уровень ß-глобулинов составил 15,6+0,79%. На 15-е и 21-е сут. особых изменений в количестве белков не было установлено, а к 26-м сут. отмечалось снижение ß-глобулинов до 12,90+0,60%, что было меньше первоначального значения на 17,4% (Р<0,05). Выявленные изменения в содержании ß-глобулинов у свиноматок характеризуют процессы активизации защитных сил организма, которые в наибольшей степени были выражены у животных III гр., где к 5-м сут. после отъёма поросят и активизации половой цикличности гамавитом и гипофизином уровень ß-глобулинов повысился в наибольшей степени — на 21,3% (Р<0,01). В сыворотке крови аналогов IV
(контроль) гр. концентрация у-глобулинов на 1-е сут. после родов находилась в пределах нормы и составляла 30,4+2,87%. В дальнейшем на 15-21-е сут. после родов количество белков не имело существенных изменений и к концу исследований к 5-м сут. после отъёма поросят составило 37,40+3,34%, что превышало первоначальный их уровень на 23,0%.
В динамике белков сыворотки крови свиноматок исследуемых групп были отмечены общие закономерности, например достоверное повышение к 5-м сут. после отъёма поросят по сравнению с состоянием перед отъёмом (21-е сут.): количества общего белка I гр. — на 10,7; II — 2,3; III —9,6 и IV (контроль) —1,9%; у-глобулинов в I гр. — на 66,0; III —38,5 и IV— 16,1% и снижение альбуминов в
I гр. на 37,1; II - 29,4; III - 32,0 и IV - 12,2%. Кроме того, отмечено снижение а-глобулинов в сыворотке крови свиноматок I гр. на 3,7 и II — на 2,3%, а в крови аналогов III гр., наоборот, повышение этих белков на 22,3% и в IV (контроль) гр. — без изменений. Неизменное состояние отмечено по ß-глобулинам в крови аналогов I и
II гр. В сыворотке крови животных III гр. в эти сроки было установлено повышение ß-глобулинов на 27,9%, IV (контроль) гр. — снижение на 10,5%.
Отмеченные изменения показали, что имеется незначительное повышение сверх нормы к 5-м сут. после отъёма поросят количества общего белка у свиноматок I и III гр. соответственно на 6,0 и 7,5%. Это, очевидно, связано с одновременным снижением альбуминов в крови животных этих групп, которое было наибольшим. Уровень сывороточных альбуминов к 5-м сут. после отъёма поросят по сравнению с нормой понизился у свиноматок I гр. на 31,4; II - на 22,6; III - на 24,0 и IV - на 19,2% соответственно.
Изменение содержания а-глобулинов, которое было отмечено только у свиноматок III гр. к 5-м сут. после отъёма, характеризовалось повышением по отношению к значению перед отъёмом на 22,3% и несколько (на 9,5%) превысило физиологически
нормальные значения. Такое повышение этой фракции белков возможно из-за незначительной дегидратации организма свиноматок [5].
У свиноматок I, II и IV (контроль) гр. уровень ß-глобулинов через 5 сут. после отъёма поросят не изменился по отношению к его значению перед отъёмом (21-е сут.). А у свиноматок III гр. отмечено повышение его количества к этому времени на 27,9%, что соответствовало нижней границе физиологической нормы. У аналогов IV (контроль) гр. количество этого белка после отъёма было ниже нормы на 20,0%, что, очевидно, свидетельствует об имеющихся воспалительных процессах. Таким образом, отмеченные изменения в динамике ß-глобулинов в крови животных III гр. характеризуют стимулирующее действие применяемых биокорректоров гамавита и гипофизина Ла Вейкс на 20-26-е сут. после родов по снижению возможных нарушений физиологического состояния организма у свиноматок после отъёма поросят.
Содержание у-глобулинов в сыворотке крови свиноматок I, II, IV (контроль) гр. на 5-е сут. после отъёма поросят по отношению к его значениям перед отъёмом характеризовалось повышением их количества. Это превышение составило у особей I, II и IV (контроль) гр. соответственно в 1,8; 1,5 и 1,4 раза от нормы. У свиноматок III гр., наоборот, было отмечено снижение к этому времени количества у-глобулинов на 22,3%, что превышало норму в 1,3 раза. Учитывая то, что количество у-глобулинов повышается при наличии воспалительных процессов [6], снижение их в крови свиноматок III гр. свидетельствует о положительном влиянии применяемых биокорректоров на процессы формирования защитно-приспособительных механизмов после отъёма поросят, что также будет
обеспечивать и своевременное восстановление воспроизводительной функции в этот период.
Вывод. Применение пептидных биокорректоров гамавита и гипофизина Ла Вейкс свиноматкам после родов стимулирует нейроэндокринные взаимосвязи в организме, активизирует обменные процессы и повышает воспроизводительную функцию. Применение после родов внутримышечно гамавита в дозе 10 мл/гол/сут на 20, 22, 24, 26-е сут. и ги-пофизина Ла Вейкс на 20-е сут. однократно в дозе 1 мл/гол (III гр.) способствовало оплодотворению 95,0% свиноматок в течение 6 сут. после отъёма поросят, получению в среднем 14 поросят на одно животное при 2,5% животных с ММА. В группе интактных свиноматок (IV гр.) оплодотворилось 75,0%, получено 10 поросят, а наличие ММА было у 11 (27,5%) животных.
Литература
1. Полянцев Н.И., Кшакова Е.В. Современный взгляд на природу синдрома ММА свиноматок и основополагающие принципы борьбы с ним // Свиноводство. 2007. № 3. С. 30—33.
2. Семенов В.В., Сердюков Е.И. Стимуляция воспроизводительных функций свиней биотехнологическими способами // Технология животноводства. 2009. № 1—2. С. 23—26.
3. Рачков И.Г. Интенсификация воспроизводства и повышение продуктивности свиней с использованием биотехнологических приёмов: автореф. дисс ... докт. с.-х. наук. Ставрополь, 2012. 30 с.
4. Пищулин В.А. Применение биологически активных веществ для повышения продуктивности свиней: автореф. дисс . канд.с.-х.н. Краснодар, 2000. 20 с.
5. Косилов В.И., Перевойко Ж.А. Воспроизводительные качества свиноматок крупной белой породы при сочетании с хряками разных линий // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2014. № 6 (50). С. 122—126.
6. Перевойко Ж.А., Косилов В.И. Биохимические показатели крови хряков и свиноматок крупной белой породы // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2014. № 5 (49). С. 196-199.
7. Перевойко Ж.А., Косилов В.И. Воспроизводительная способность свиноматок крупной белой породы и её двух-трёхпородных помесей // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2014. № 6 (50). С. 161-163.
Влияние металлотоксикоза и вибрационного стресса на состояние углеводного обмена в организме мышей
М.А. Дерхо, д.б.н, профессор, Т.И. Середа, к.б.н, ФГБОУ ВО Южно-Уральский ГАУ
В основе токсического действия кадмия на организм животных лежит его способность активировать реакции окисления с последующим развитием оксидативного стресса, для которого характерно разобщение процессов тканевого дыхания и окислительного фосфорилирования [1]. Метаболический статус, формирующийся в условиях оксидативного стресса, определяет характер реализации физиологических, иммунных, эндокринных, биохимических и ментальных функций организма животных [2—4], а также его адаптационных возможностей.
Установлено, что процессы биохимической адаптации, развивающиеся в организме животных
после воздействия разнообразных стресс-факторов, протекают в две стадии:
— первая стадия — стадия срочной адаптации (продолжительность минуты/часы), характеризуется быстрой мобилизацией поверхностных адаптационных резервов организма в условиях гипоксии. Хотя по направленности биохимических процессов она является катаболической, но в живом организме развивается гипоэнергетическое состояние;
— вторая стадия — стадия долгосрочной адаптации, состоит из двух фаз. Первая фаза по сути протекающих в организме биохимических процессов тоже является катаболической, идёт за счёт сверхмобилизации легкодоступных адаптационных резервов, что помогает, во-первых, купировать неблагоприятные метаболические сдвиги после действия стресс-факторов и, во-вторых, создаёт
