CC BY
163
ч-л, за 15 сут. до родов — 1,81—1,83, через сутки после отёла — 1,75—1,76 и через 10 сут. — 1,82—1,84 ммоль/ч-л.
У суточных телят контрольной группы активность изучаемого фермента была 2,05+0,0016 ммоль/ч-л, мес. — 2,08+0,023 ммоль/ч-л, что соответствовало значениям животных опытной группы (рис. 2).
Выводы. Внутримышечное введение коровам перед родами Витадаптина в указанной дозе способствует улучшению минерального обмена у животных за счёт повышения в крови количества кальция, фосфора и магния.
Литература
1. Топурия Г.М., Топурия Л.Ю., Бибикова Д.Р. Биохимические показатели крови хряков на фоне применения гувитана-С // Аграрный вестник Урала. 2014. № 6. С. 51—54.
2. Топурия Л.Ю., Семёнов С.В., Топурия Г.М. Физиологический статус организма свиней при использовании в рационе
лигногумата-КД-А // Ветеринария Кубани. 2014. № 3. С. 15-17.
3. Бабичева ИА., Никулин В.Н. Эффективность использования пробиотических препаратов при выращивании и откорме бычков // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2014. № 1 (45). С. 167-168.
4. Топурия Л.Ю. Экологически безопасные лекарственные средства в ветеринарии // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2004. № 1 (4). С. 121-122.
5. Донник И.М., Шкуратова И.А. Влияние гувитана-С на состояние иммунного статуса хряков // Ветеринария Кубани. 2014. № 3. С. 17-19.
6. Донник И.М., Шкуратова И.А, Невинный В.К. Применение Витадаптина в животноводстве. Екатеринбург, 2008. 38 с.
7. Порваткин И.В. Показатели обмена веществ у телят при включении в рацион пробиотика олин // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2013. № 2 (40). С. 99-102.
8. Донник И.М., Шкуратова И.А. Влияние гермивита на минеральный обмен у молодняка крупного рогатого скота // Ветеринария Кубани. 2015. № 1. С. 13-15.
9. Кондрахин И.П., Архипов А.В., Левченко В.И. Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики. М.: КолосС, 2004. 520 с.
Содержание липидов в крови коров при стимуляции воспроизводительной функции биорегуляторными пептидами
С.Ф. Тютрина, аспирантка, Н.В. Безбородов, д.б.н, профессор, АНО ВО Белгородский УКЭП
Уровень обменных процессов у животных служит основным фактором оптимального протекания всех физиологических изменений в организме [1]. В связи с этим своевременная коррекция обменных процессов в пределах физиологически нормальных значений позволяет в значительной мере оптимизировать воспроизводительную функцию и повысить эффективность отрасли молочного скотоводства [2—10].
Целью исследования было определение динамики изменений некоторых липидных показателей в крови коров после стимуляции воспроизводительной функции иммуномодулятором Риботан и утеротоником Гипофизин Ла Вейкс.
Материал и методы исследования. Исследование было проведено в ЗАО «Племзавод «Разуменский» Белгородской области на коровах красно-пёстрой голштинской породы в зимний стойловый период. Содержали животных в типовых коровниках. Применяли сбалансированный по основным питательным компонентам рацион кормления, тип кормления характеризовался как силосно-концентратный. Среднегодовой удой по стаду коров на племзаводе составлял 5500 кг молока. Формирование подопытных групп-аналогов коров проводили согласно данным учёта воспроизводства стада и физиологического состояния животных.
Риботан, содержащий в 1,0 мл в качестве действующего вещества комплекс низкомолекулярных полипептидов и фрагментов дрожжевой
РНК, утверждён к применению как иммуномоду-лирующее средство Россельхознадзором в 2012 г. Действие препарата Гипофизин Ла Вейкс, который содержит карбетоцин (1-дезамино-1-монокарбо-2-(0-метил)-тирозин-окситоцин) в количестве 0,07 мг, аналогично утеротонику окситоцину, но более продолжительно и разносторонне.
Коровам I гр. (n = 20) внутримышечно вводили иммуномодулятор Риботан в дозе 5,0 мл/гол/сут в течение 3 сут. (2—4-е сут.) после родов. Вместе с Риботаном им в первые сутки однократно внутримышечно вводили утеротоник Гипофизин Ла Вейкс, также в дозе 5,0 мл/гол. Животные II гр. (n=20) получали препараты в аналогичных дозах, но на 30-32-е сут. после родов. Аналогам III гр. (n=20) инъецировали Риботан и Гипофизин Ла Вейкс на 60-62-е сут. после родов. В IV контрольную (к) гр. (n=20) входили интактные животные. У 5 коров из каждой группы брали кровь из яремной вены для проведения лабораторных биохимических исследований. По общепринятым методикам определяли содержание триацилглицеролов, холестерола, фос-фолипидов и p-липопротеидов в крови коров [5]. Полученный цифровой материал обрабатывали статистически с использованием информационных технологий и пакета прикладных программ Microsoft office excel методом вариационной статистики с использованием критерия Стъюдента.
Результаты исследования. Изменения в динамике триглицеридов, происходящие под влиянием изучаемых препаратов, характеризовались прежде всего повышением их количества в сыворотке крови коров всех групп в течение 90 сут. после родов
(табл.). Эти изменения происходили от первоначально низких значений на 2-е сут. после родов (ниже нормы в среднем в 2 раза) до нормальных на 90-е сут. исследования. При этом наиболее достоверными были изменения в крови животных II гр., что, очевидно, отражает стимулирующие обменные процессы в печени под воздействием низкомолекулярных пептидов Риботана.
Установлено, что количество холестерина в сыворотке крови коров всех групп повышалось к 30-м сут. исследования после родов независимо от применения препаратов. Но к 90-м сут. установленный уровень содержания холестерина достоверно снизился только у животных II гр., оставаясь при этом в пределах нормы. Снижение концентрации холестерина, очевидно, связано со стимулирующим нейро-эндокринную регуляцию действием низкомолекулярных пептидов Рибота-на и затрат свободного холестерина в крови для синтеза стероидных гормонов.
Полученные результаты динамики фосфоли-пидов свидетельствуют, что у коров всех групп на 2-е сут. после родов уровень их содержания был ниже нормы в среднем в 1,5 раза, что, как видно, связано с интенсивными обменными процессами в период беременности и родов. В дальнейшем в сыворотке крови животных всех групп отмечалась одинаковая тенденция повышения количества фосфолипидов к 90-м сут., которая связана с восстановлением уровня обменных процессов и не зависит от применения биокорректоров.
Учитывая то, что фосфолипиды локализуются в мембранах клеток и являются структурными компонентами клеточных органелл, а выполняемая ими роль сводится к активации ферментных реакций, их увеличение в крови до нормы к концу исследований у всех животных отражает особенности становления обменных процессов и
активизацию физиологических реакций организма в этот период.
Первоначальное содержание (на 2-е сут. после родов) р-липопротеидов в сыворотке крови коров всех групп находилось в пределах нормальных значений. В последующем у особей I—III групп к 90-м сут. исследования наблюдалось снижение количества р-липопротеидов от первоначального уровня в среднем на 21,7%. Наибольшее их снижение отмечено в крови коров II гр. — на 33,4%, где повышенный расход ЛПОНП+ЛПНП, возможно, связан с повышением участия белков на восстановление репродуктивной функции и лактации животных в этот период.
Выводы. Заметные изменения в содержании ли-пидных компонентов в основном были отмечены по триглицеридам, холестерину и р-липопротеидам в сыворотке крови коров НИ опытных групп. Непосредственно (в течение 30 сут.) после введения биокорректоров достоверные изменения установлены у животных I гр. по содержанию холестерина, II гр. — триглицеридов и холестерина, III гр. — р-липопротеидов. Направленность изменений была схожей с недостоверными изменениями этих показателей в остальных группах. В результате увеличения синтеза у коров II гр. эндогенные триглицериды доставлялись в периферические клетки для обеспечения потребностей последних в энергии, а эндогенный холестерол — для биосинтеза мембран клеток и гормонов, что обеспечивает стимулирующий индукцию и протекание половой цикличности характер действия применяемых биокорректоров.
Отмеченные стимулирующие липолиз и ли-погенез свойства применяемых Риботана и Ги-пофизина характерны для низкомолекулярных пептидов, входящих в состав этих биокорректоров. Повышение уровня холестерина у коров II гр.
Динамика содержания липидов в крови коров (Х+Бх)
Показатель Группа Взятие крови после родов
1 (2-е сут.) 2 (30-е сут.) 3 (60-е сут.) 4 (90-е сут.)
Триглицериды, мкмоль/л (норма 0,22-0,60 мкмоль/л) I II III IV (к) 0,12±0,01 0,11±0,01 0,13±0,02 0,19±0,02 0,17±0,02 0,16±0,01 0,19±0,02 0,17±0,01 0,19±0,04 0,22±0,01* 0,20±0,02 0,23±0,02 0,23±0,05 0,30±0,03* 0,27±0,02 0,25±0,01
Холестерол, ммоль/л (норма 1,3-4,42 ммоль/л) I II III IV (к) 2,26±0,17 3,2±0,35 2,4±0,24 2,8±0,33 4,1±0,53* 5,6±0,6* 6,48±0,95** 5,2±0,66* 4,86±0,64** 3,4±0,24** 5,14±0,93 6,0±0,55 5,2±0,73 2,4±0,24** 2,8±0,49 4,9±0,15
Фосфолипиды, ммоль/л (норма 2,2-3,23 мкмоль/л) I II III IV (к) 1,5±0,06 1,5±0,03 1,4±0,05 1,6±0,04 1,5±0,05 1,5±0,04 1,5±0,03 1,4±0,05* 2,1±0,03 2,3±0,03 1,7±0,06 2,2±0,04 2,6±0,05 2,6±0,05 2,5±0,05 2,4±0,05
Р-липопротеиды, ммоль/л (норма 1,2-1,4 ммоль/л) I II III IV (к) 1,5±0,08 1,5±0,05 1,6±0,04 1,5±0,03 1,2±0,07 1,1±0,04 1,6±0,05 1,2±0,05 1,1±0,06 1,4±0,05 1,0±0,04 1,4±0,03 1,3±0,02 1,0±0,03** 1,3±0,09* 1,5±0,05
Примечание: * — Р<0,05; ** — Р<0,01; *** — Р< 0,001 (по сравнению с предыдущим значением показателя внутри группы)
и его эфиров в крови является следствием активизации синтетической способности печени для последующего синтеза стероидных гормонов, индуцирующих половую цикличность. Кроме того, достоверные изменения к 90-м сут. Р-липопротеидов могут отражать стимуляцию процессов перехода жирных кислот, синтезируемых в печени, в эфиры и далее в кровь в виде ЛПНП (Р-липопротеидов), являющихся основным источником энергии, например при становлении полового цикла.
Более высокая эффективность стимуляции воспроизводительной функции отмечена у животных II гр/ (п=20), где количество оплодотворённых коров в течение 90 сут. после родов составляло 75,0%, что было больше, чем в I, III и IV (к) гр., соответственно на 13,4; 20,0 и 20,0%, а индекс осеменения и количество послеродовых заболеваний меньше, чем в IV (к) гр., соответственно на 19,1 и 20,0%.
В связи с вышеизложенным рекомендуется введение внутримышечно иммуномодулятора Риботан в дозе 5,0 мл/гол/сут в течение 3 сут. на 30-32-е сут. после родов вместе с утеротоником Гипофизин Ла Вейкс в дозе 5,0 мл/гол внутримышечно однократно в начале курса.
Литература
1. Жаров А.В., Жарова Ю.П. Адаптационные механизмы регуляции гомеостаза у животных в норме и при патологии: сб. науч. трудов. М., 2010. С. 123-127.
2. Ивашкевич О.П. Нарушение обмена веществ при субинволюции матки у коров // Профилактика незаразных болезней у коров. Таллин, 1998. С. 93-94.
3. Хмылов А.Г. Физиологическое обоснование биотехнических методов регуляции репродуктивной функции молочных коров: автореф. дисс. ... канд. биол. наук. Н. Новгород, 2006. 25 с.
4. Томитова Е.А. Морфофункциональная характеристика половой системы продуктивных животных при различных физиологических состояниях, под воздействием экзогенных половых гормонов и их влияние на оплодотворяемость коров: автореф. дисс. ... докт. вет. наук. Улан-Удэ, 2012. 39 с.
5. Кондрахин И.П. Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики. М.: КолосС, 2004. 520 с.
6. Косилов В.И., Мироненко С.И.,Жукова О.А. Гематологические показатели тёлок различных генотипов на Южном Урале // Вестник мясного скотоводства. 2009. Т. 1. № 62. С. 150-158.
7. Губайдуллин Н.М., Зайнуков Р.С., Миронова И.В. Гематологические показатели коров-первотёлок бестужевской породы при использовании алюмосиликата глауконита // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2008. № 1 (17). С. 111-113.
8. Крылов В.Н., Косилов В.И.. Показатели крови молодняка казахской белоголовойт породы и её помесей со светлой аквитанской // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2009. № 2 (22). С. 121-125.
9. Willard M.D. Small Animal Clinical Diagosis by Laboratory Methods. 3rd ed. Philadelphia, Saunders, 1999.
10. Endo T., Higashino K., Hada T. еt al. Structures of the Asparagine-linked Oligosas-charides of an Alkaline Phosphatase, Kasahara Isozyme, Purified from FL Amnion Cells // Cancer Resaarch. 1990. № 50. P. 1079-1084.
Макроморфология тощей кишки овец северокавказской породы в постнатальном периоде онтогенеза
В.А. Порублев, д.б.н., профессор, Т.И. Боташева, аспирантка, ФГБОУ ВО Ставропольский ГАУ
Овцеводство - одна из важнейших отраслей животноводства, имеющая большое народнохозяйственное значение. Овцеводство является незаменимым источником сырья для лёгкой промышленности и высококачественных продуктов питания. Для успешного развития отрасли необходимо глубокое и всестороннее изучение организма животных, его видовых особенностей и адаптивной изменчивости.
В этой связи морфологические исследования отдельных органов и систем организма овец представляют большое теоретическое и практическое значение.
Знание морфологии кишечника и его сосудистого русла поможет лучше разобраться в процессах кишечного пищеварения, а также в деталях патогенеза кишечных заболеваний.
Морфологию кишечника и его кровеносного русла жвачных животных изучали многие отечественные и зарубежные учёные [1-8]. Вместе с тем до сих пор остаются неизученными макро-морфологические параметры тощей кишки овец
северокавказской породы в постнатальном периоде онтогенеза, что стало целью нашего исследования.
Материал и методы исследования. Материал для исследования отбирали от животных в СПК «Восток» Ставропольского края (Степновский р-н, п. Верхнестепной), в количестве 80 гол. Были сформированы четыре возрастные группы молодняка — новорождённые, в возрасте 1 мес., 4-месячные и 18-месячные, по 20 гол. в каждой.
Материал был получен от клинически здоровых животных после их эвтаназии согласно «Правилам проведения работ с использованием экспериментальных животных» путём обескровливания в соответствии с Международной конвенцией защиты животных (гл. II, ст. 11).
В работе были применены следующие методы исследования: препарирование, морфометрия, макрофотографии и статистический. Длину, внутренний диаметр кишки, внутренний объём, объём стенки, полный объём, площадь слизи -стой оболочки, массу, плотность стенки тощей кишки определяли по методикам, предложенным П.В. Груздевым и В.А. Порублевым [3, 4]. Макрофотосъёмку осуществляли при помощи цифрового фотоаппарата Canon Digita lIXUS 850 IS. Цифровые
