CC BY
224
XXI век - время агробиотехнологии
П.Н. ХАРЧЕНКО,
директор Всероссийского НИИ
сельскохозяйственной
биотехнологии,
академик РАСХН
Б.Ф. ВАНЮШИН,
заместитель директора,
член-корреспондент РАН
Расширенное производство продовольствия наряду с обеспечением здоровой экологии является важнейшей проблемой любой нации, так кактрадиционное сельское хозяйство даже с использованием передовых агротехнических приемов не способно справиться с этой жизненно необходимой задачей. Для этого нужны принципиально новые подходы, которые и предлагает биотехнология. Именно агро-биотехнология в сочетании с традиционными генетикой и селекцией позволяет относительно быстро конструировать и целенаправленно создавать хозяйственно-ценные сорта растений и породы животных.
Сельскохозяйственному производству России необходимы отечественные холодостойкие, соле-устойчивые, устойчивые к засухе, патогенам и вредителям сорта, обеспечивающие надежный ежегодный урожай. Со вступлением России в ВТО эта проблема будет еще острее из-за конкуренции с иностранными поставщиками разнообразного генетического материала, который к тому же потребует дорогостоящих проверок и испытаний. Во многом неоправданный и нанесший ущерб сельхозпроизвод-ству опыт бездумного и легкомысленного внедрения иностранных сортов и пород животных нам уже хорошо известен.
Агробиотехнология призвана решать важные задачи, от которых во многом зависит будущее сельхоз-производства. К сожалению, работающих в этом направлении научных центров в России еще очень
мало. Одним из них является Всероссийский институт сельскохозяйственной биотехнологии (ВНИИСБ) РАСХН в Москве.
Он был создан в 1974 г. как Всесоюзный институт прикладной молекулярной биологии и генетики и лишь позднее переименован во ВНИИСБ. Его первым директором с 1974 по 1980 гг. был академик ВАСХНИЛ Н.В. Турбин. С 1980 по 1999 гг. институт возглавлял академик ВАСХНИЛ и РАСХН Г.С. Муромцев, а с 1999 г. им руководит академик РАСХН П.Н. Харченко.
Институт является крупным научным центром, известным в мире своими фундаментальными исследованиями и важными прикладными разработками в области молекулярной биологии, генетики и сельскохозяйственной биотехнологии. Он координировал деятельность многих институтов-соисполнителей различной ведомственной подчиненности по биотехнологии, в частности по проекту «Биотехнология сельскохозяйственных растений» в рамках государственной научно-технической программы «Высокоэффективные процессы производства продовольствия», а с 1987 г. выполнял функции головной
организации по проблеме «Создание и применение регуляторов роста растений, дефолиантов и гаме-тоцидов».
Главное направление исследований института - разработка методологий современной сельскохозяйственной биотехнологии с получением новых эффективных приемов, методов и средств конструирования, создания и размножения новых продуктивных и устойчивых к биогенным и абиотическим стрессам растений и животных.
Основной научный девиз института - от информационных биологически важных макромолекул к целому трансгенному организму. И это не только девиз, но и реальная стратегия научных изысканий и прикладных исследований института, включающая в себя всю необходимую цепь работ - поиск соответствующих генов и генетических маркеров, анализ структуры генов и геномов, синтез отдельных элементов геномов, коструирование и создание специфических векторов со специально созданными уникальными генетическими конструкциями, собственно трансгеноз (трансформация растений) и, в конечном итоге -получение, анализ, испытание и раз-
2 Защита и карантин растений № 10, 2012
множение хозяйственно ценных трансгенных растений. Именно этот целостный, многоступенчатый и многообразный путь новых биотехнологий в институте служит залогом и обязательным условием создания исходных перспективных форм сельскохозяйственных растений с улучшенными хозяйственными характеристиками.
Исследования ведутся в рамках задания 04.04 «Разработать и усовершенствовать методы молекулярной селекции (генной, хромосомной и клеточной инженерий) для создания новых форм культурных растений с высокой продуктивностью и устойчивостью к неблагоприятным факторам среды» Программы фундаментальных и приоритетных прикладных исследований Рос-сельхозакадемии по научному обеспечению АПК РФ на 20112015 гг. Кроме того, институт работает по контрактам с Минобрнаукой, Минсельхозом, а также по международным грантам и грантам РФФИ.
Направления исследований охватывают широкий круг проблем. Передовые фундаментальные исследования удачно сочетаются с прикладными, и это уже привело к решению ряда важных конкретных задач современной агробиотехно-логии.
В России обычно теряется около половины урожая еще до его уборки (примерно 20 % из-за сорняков, 14 % из-за вредителей и разных патогенов). Чтобы справиться с этой проблемой, нужны новые устойчивые к патогенам сорта, но времени на долгий традиционный генетико-селекционный путь их получения нет. Выход - в разумном сочетании и использовании классических селекционных методов генно-инженерных технологий с целью получения трансгенных растений с необходимыми свойствами. К сожалению, в стране это направление недооценивается и пока еще не имеет должной законодательной поддержки. Между тем в мире резко
растет использование разных трансгенных (ГМО) культур. Их успешно применяют в сельском хозяйстве США, Бразилии, Аргентины, Китая, Индии и Южной Африки. Например, в США доля трансгенной, в том числе устойчивой к гербицидам, сои составляет около 90 %, а рапса и кукурузы - более 50 % от всей товарной продукции этих культур.
Наряду с этим в агробиотехноло-гии заметное место занимает проблема создания растительных биореакторов или биофабрик по производству белков, гормонов, разнообразных биологически активных веществ, ценных кормовых и пищевых добавок, вакцин, в том числе и съедобных.
Особое место и значение имеют работы института в области защиты растений, идентификации вирусных и других инфекций, получении устойчивых к ним трансгенных растений.
Созданы разнообразные уникальные векторные конструкции для целевой трансформации растений, с помощью которых получены трансгенные растения табака, томата, капусты, рапса, моркови с повышенной устойчивостью к грибным заболеваниям, а также растения табака, томата, арабидопсиса и рапса, несущие полную или частичные нукле-отидные последовательности к ДНК антигрибного пептида SmAmp2 из мокрицы (Stellaria media). Полученные трансгенные растения рапса сорта Ратник более толерантны к патогену Helminthosporium sativum, чем нетрансгенные. Трансгенные растения Arabidopsis thaliana и табака с генами антимикробных пептидов Amp1-3 из мокрицы неплохо растут на инфекционном фоне с этим патогеном. Созданы и испытывают-ся трансгенные растения картофеля сорта Скороплодный с геном антимикробных пептидов AMP из мокрицы.
Это многообещающий путь создания устойчивых к патогенам ра-
Руководство института (слева направо): заместители директора В.В. Сосницкий, Б.Ф. Ванюшин, директор института П.Н. Харченко, заместитель директора В.Н. Киселев, заведующая отделом научного прогнозирования и планирования НИР В.И. Елинова, ученый секретарь С.А. Меликова
стений. Особенно перспективна трансформация растений кластерами генов, сообщающими растению устойчивость сразу к нескольким патогенам и вредителям. В Китае, например, уже создан сорт риса Золотой водопад с комплексной устойчивостью к болезням.
Системную устойчивость трансгенных растений к разным фитопа-тогенам удается повысить внедрением в геном растений генов, отвечающих за синтез хитин-связываю-щих белков. В результате такой трансформации получены трансгенные растения томата линии ЯЛФ, устойчивые к бактериальной черной пятнистости в условиях закрытого грунта. Заметно увеличивается устойчивость к патогенам после введения в геном растений гена, кодирующего белок тауматин, улучшающего вкус томатов. Трансгенный озимый рапс сорта Северянин, при трансфомации которого использовали ген ктИР тауматин-подобного белка из киви, устойчив к ряду грибных патогенов. Получены трансгенные морковь и земляника с геном тауматина II, устойчивые к грибным патогенам, хризантемы с генами с1-эндотоксина, устойчивые к насекомым. Разработана новая современная система экспресс-диагностики устойчивости пшениц к гельминтоспориозу и фу-зариозу на ранних стадиях развития растений. Проходят полевые испытания трансгенные морковь, устойчивая к гербицидам и болезням (фузариоз, антракноз), земляника с улучшенным вкусом и повышенной устойчивостью к серой гнили.
Для разработки эффективных мер борьбы с патогенами, в том числе и вирусной природы, прежде важно их найти и идентифицировать. В институте впервые из декоративных растений, произрастающих на Дальнем Востоке, выделены два новых изолята вируса огуречной мозаики. Источником этого опасного заболевания для многих культур служат орхидеи, в том чис-
ле и ввозимые из соседних стран. Нами созданы соответствующие праймеры, позволившие идентифицировать новые для дальневосточного региона изоляты вируса группы 1В. Разработаны молекулярные маркеры устойчивости рапса к вирусу желтухи.
С помощью метода полимераз-ной цепной реакции (ПЦР) идентифицированы штаммы вируса Шар-ки слив - опасного широко распространенного в мире патогена. Вызываемые им заболевания косточковых практически не поддаются излечению и наносят огромный ущерб производству слив. В садах интенсивного типа Краснодарского края этот вирус был идентифицирован в 20 % протестированных растительных образцов. В растениях обнаружена моновирусная инфекция штаммами PPV-D и PPV-M. Штамм W (Winona) выявлен в более чем 25 % исследованных растений, что позволяет позиционировать его как автохтонный российский штамм вируса Шарки. Совместно с Институтом биоорганической химии РАН получены и проходят испытания трансгенные растения сливы, устойчивые к вирусу Шарки. Есть все основания полагать, что это послужит кардинальным решением проблемы защиты косточковых от этой вирусной инфекции.
Несмотря на то, что метод культуры меристематических тканей с последующей регенерацией растений из каллусных клеток служит традиционным способом оздоровления картофеля, он все же не позволяет полностью избавиться от некоторых вирусов и вироидов. Так, например, в меристемных растениях картофеля обнаружен рекомбинан-тный некротический штамм вируса PVY-NTN, возбудителя особо опасной инфекции - некротической кольцевой пятнистости клубней картофеля (Potato tuber necrotic ringspot disease (PTNRD)). В каллусных культурах был обнаружен М вирус картофеля. Получить свобод-
ный от этого вируса картофель удалось в результате обработки черенков антисмысловым олигонуклео-тидом к мРНК белка оболочки этого вируса. Такая РНК-технология может быть хорошим способом получения безвирусного картофеля, по крайней мере в культуре ткани.
Разработана система универсальной ПЦР-диагностики фитови-русов, основанная на принципе гомологии высококонсервативных участков генома.
Открыт и полностью охарактеризован вирус, названный Х вирусом шалота (ХВШ), он выделен в новую таксономическую группу фитовиру-сов, названную алексивирусами; полностью или частично определены структуры геномов нескольких фитовирусов.
Представляют значительный интерес работы по увеличению системной устойчивости растений к неблагоприятным условиям среды (в том числе и к патогенам). Известно, что заражение растений разными вирусными и грибными болезнями сопровождается резким увеличением окислительного статуса растения. Модуляция окислительного статуса может сказываться на толерантности растений к инфекции. В институте получены трасгенные растения томата с включением в геном гена, кодирующего фермент супероксиддисмутазу (Fe-SOD), которые оказались более толерантными к грибным инфекциям, чем исходные.
Важным элементом в селекции картофеля является создание долговременной устойчивости к фито-фторозу. Разработанная в институте технология ДНК маркеров позволяет ускорить поиск новых генов и источников долговременной устойчивости у ранее не исследованных дикорастущих сородичей картофеля. В результате созданы и испытаны 10 маркеров, пригодных для ускорения селекции картофеля на устойчивость к фитофторозу путем интрогрессии генов устойчивости
из дикорастущих видов S. bulboca-stanum, S. demissum и S. stoloni-ferum. Обнаружение и наличие соответствующих ДНК маркеров хорошо согласуются с лабораторной и полевой устойчивостью картофеля к фитофторозу. Эти маркеры позволяют распознавать нужный генетический материал дикорастущих сородичей в селекционных источниках и после скрещивания осуществлять отбор перспективных по устойчивости форм на стадии сеянцев. Они служат для поиска новых R генов устойчивости к фитофторозу и их переноса в сорта картофеля методами половой или соматической гибридизации и генной инженерии. Созданы 18 маркеров геномов A, B и C Brassica для работы с генетическими коллекциями и оценки подлинности семенного материала разных культур. Маркеры генома B и его отдельных хромосом удобны для анализа расщепляющихся популяций при интрогрессивной селекции на устойчивость рапса к черной ножке, засухе, холоду и осыпаемости семян.
Отработаны методики эффективной агробактериальной трансформации многих культур, в том числе томатов, белокочанной капусты, рапса, картофеля и др. В результате, кроме упомянутых трансгенных устойчивых к патогенам растений, получены и другие растения с хозяйственно ценными характеристиками - трансгенная пшеница, кло-новые подвои яблони и груши, слива, морковь с геном bar, устойчивые к гербицидам, пшеница с геном ва-куолярного антипортера ячменя, устойчивая к солевому стрессу, томаты пролонгированного хранения (с выключенным геном синтеза этилена), земляника, томаты, морковь (с геном тауматина II) с улучшенным вкусом.
Отрабатываются технологии по созданию люцерны, трансформированной генами съедобных вакцин, безнаркотической конопли (с выключенным синтезом ТГК мето-
дом РНК интерференции), ряски, трансформированной съедобной вакциной птичьего гриппа для био-фарминга. Разрабатываются методы создания c/s-генных растений на основе растительных генов и регуляторных элементов с удалением селективных маркеров. Работы по трансформации растений проводятся в кооперации с ИБХ им. М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН.
В институте проводятся исследования по созданию трансгенных растений томата с оптимизированными параметрами мейотического кроссинговера, которые будут использованы в качестве посредников для передачи (интрогрессии) отдельных генов, в том числе генов устойчивости к патогенам, из хромосом дикорастущих видов в хромосому культурных растений. Для этого были созданы трансгенные растения культурного томата, экс-прессирующие ген бактериальной рекомбиназы recA E. col/, использование которых увеличивало частоту мейотической рекомбинации у внутривидовых гибридов томата, стабилизировало кроссинговер и наследование генов у некоторых межвидовых гибридов томатов. Это новый перспективный подход создания исходного материала в селекции растений с использованием метода отдаленной гибридизации.
Интересным открытием института последнего времени является обнаружение, выделение и определение структуры нового растительного промотора (элемент генома, контролирующий экспрессию гена) из сорного растения мокрицы. Этот сильный промотор (сейчас патентуется) по своей эффективности значительно превосходит известный промотор из вируса цветной капусты Camvs35, который широко используется в генной инженерии и биотехнологии растений. В растении Thellung/ella salsug/nea идентифицированы 4 гена, кодирующие белки с доменом холодового шока.
Показано, что перенос одного из них в модельные растения существенно повысил их морозоустойчивость, что указывает на перспективность его использования в качестве целевого гена в биотехнологии культурных растений.
В институте разработаны разнообразные надежные цитологические метолы и маркеры для определения стрессоустойчивости (соле-устойчивость, холодостойкость, устойчивость к тяжелым металлам, некоторым патогенам) растений. По наличию специфических структурных особенностей и изменений ядра, ядрышка, хроматина, микротрубочек и других клеточных элементов можно выявлять и быстро контролировать наличие нужных признаков при подборе пар скрещиваемых растений, анализе и отборе полученных гибридов на разных, в том числе и на ранних этапах развития растений (проростки). Это заметно ускоряет весь селекционно-генетический процесс.
Установлено, что путем регуляции метилирования генома при формировании зерновки пшениц можно увеличить белковость зерна, и это исключительно важное свойство наследуется в нескольких поколениях. Из пшеницы выделили и охарактеризовали новые уникальные ферменты - эндонуклеазы WEN1 и WEN2. Фермент WEN1 различает ДНК по статусу метилирования и активируется донором метильных групп Б-аденозил^-метионином. До сих пор это явление вообще не было известно для эукариот, а свойственно лишь некоторым бактериальным рестрикционным эндонук-леазам. Это указывает на возможное существование системы рестрикции-модификации генома у растений. Таким образом, открыт новый тип регуляции активности эука-риотических (растительных) эндо-нуклеаз. Фермент может быть использован в генной инженерии и для исследования эпигенетики растений.
Современная генетика и селекция немыслимы без генетической идентификации, легитимизации и паспортизации организмов. Для этого необходимо секвенирование геномов и лучше всего - полное. Несмотря на появление очень мощных и быстрых современных секве-наторов, это пока еще - дорогостоящее и практически недоступное занятие. Для грамотного и надежного доступного генетического анализа разных организмов в институте разработана технология микро-сателлитного анализа ДНК, которая сводится к анализу организации повторяющихся нуклеотидных последовательностей в ДНК. Эта апробированная технология может применяться для анализа и поддержания генетических коллекций (различение и идентификация видов, сортов, инбредных линий и клонов), анализа родословных, подбора родительских пар при скрещивании, анализа однородности исходного генетического материала для селекции, регистрации новых сортов, контроля генетической подлинности сортов и для защиты авторских прав селекционеров. С ее помощью проведена дискриминация и по необходимости генетическая ревизия сортов рапса, томата, картофеля и сорго в коллекциях ряда институтов РАСХН. Эта технология, позволяющая надежно распознавать сорта и гибриды, уже полностью отработана и помогла в ряде случаев внести необходимую коррекцию в природу и номинацию сортов.
Разработаны методы отбора растений на клеточном уровне из форм, устойчивых к биотическим и абиотическим стрессовым факторам. На основе полученного биотехнологическими методами исходного материала созданы новые сорта ячменя, яровой пшеницы, лука порея и чеснока. Способ регенерации зерновых злаков (пшеница, ячмень, тритикале) из каллусной ткани щитка недозрелых зародышей был применен для получения
растений, устойчивых к стрессовым факторам, - засоленности, тяжелым металлам, токсинам фитопато-генных грибов. Разработаны метод полиплоидизации, используемый для преодоления стерильности межвидовых гибридов лука, и методики микроразмножения многих декоративных и лекарственных культур (гиацинт, амариллис, лилия, хризантема, жимолость, гвоздика, роза, лапчатка и др.).
На основе клеточной инженерии в сочетании с данными по физиологии растений разработана новая технология промышленного производства оздоровленного посадочного материала картофеля. Это делается путем выращивания каллус-ных культур из меристематических тканей с последующей регенерацией растений картофеля. Для выращивания растений и получения клубней картофеля институтом разработаны аэропонные установки. Аэропоника - высокотехнологичный способ бессубстратного культивирования растений на специально подобранных питательных растворах. Благодаря самым передовым научным разработкам аэропоника становится важным агротехническим средством, позволяющим повысить продуктивность растений, улучшить качество выращиваемой экологически чистой продукции. При выращивании растений в аэропонных установках практически исключаются влияние сезонности, применение средств защиты растений. Преимуществом аэропони-ки являются экономное расходование воды, электроэнергии, удобрений. В институте разработана и сконструирована серия универсальных аэропонных установок. Они в основном используются для адаптации оздоровленных методом апикальных меристем пробирочных растений, размножения и укоренения, а также последующего доращива-ния различных, в том числе и трансгенных растений. Эти установки пользуются большим спросом в
России и за рубежом. Культивирование в аэропонных установках позволяет плавно переходить из условий in vitro к культивированию в условиях in vivo с практически полной приживаемостью растений. Благодаря техническому прогрессу, появлению микропроцессорной техники и микрораспылителей, новейших энергосберегающих сбалансированных по спектру источников искусственного освещения, аэропонные технологии в растениеводстве экономически выгодны и востребованы.
Отсутствие конкуренции за питание и свет позволяет загущать посадки - на 1 м2 высаживают до 600 пробирочных растений для адаптации и дальнейшего доращивания. Использование новых источников света - светодиодов с заданными параметрами - позволяет резко сократить энергозатраты за счет их высокой светоотдачи, отсутствия в спектре излучения инфракрасной составляющей, длительного рабочего ресурса и регуляции спектра излучения. На сегодняшний день эта технология экономически эффективна для выращивания отдельных видов овощей - томата, огурца, салата, земляники, а также различных декоративных и лекарственных растений. При проведении научно-исследовательских работ аэропонная установка просто незаменима, так как может монтироваться в любых закрытых помещениях. Дальнейшее усовершенствование таких установок и собственно технологий позволит успешно применять этот способ культивирования растений и в космической биотехнологии.
Институт известен своими традиционными исследованиями регуляторов роста растений. Сформулирована концепция новой гормональной системы в растениях, основанная на представлении о фузи-кокцине как эндогенном соединении и на наличии в растениях его рецепторов. Установлено, что рецеп-
тор фузикокцина представляет собой динамическую систему, аффинность которой клиганду меняется при стрессовых воздействиях на растения. Обнаружена неизвестная ранее система адаптации растений к абиотическому стрессу (низкие температуры, засоление, засуха). В ее основе лежит способность цитоплазматических белков 14-3-3 регулировать активность многих ферментов. На основе теоретических представлений разработаны приемы уменьшения доз гербицидов при их совместном действии с регуляторами роста растений. Предложены технологии обработки семян риса фузикокци-ном, обусловливающие повышение урожая в условиях засоления и стимуляцию укоренения растений.
Совместно с РГАУ-МСХА имени К.А. Тимирязева в институте создан центр коллективного пользования уникальным оборудованием (ЦКП) для выполнения исследовательских работ, повышения квалификации научных кадров и обучения стажеров, аспирантов и студентов.
Центр аккредитован в качестве испытательной лаборатории в системе Роспотребнадзора (аттестат аккредитации № ГСЭН.Ш.ЦОА.657 от 2 апреля 2009 г.). Приборная база центра включает широкий набор лабораторного оборудования, в том числе термоциклеры для ПЦР в реальном времени, автоматические ДНК-секвенаторы Applied Biosystems, автоматические ДНК/РНК синтезаторы ASM-1000, спектрофотометры, спектрофлуори-метры и другие приборы. Центр осуществляет обучение современным методам анализа ДНК и РНК, анализа ГМО содержащих продуктов, синтеза нуклеозидтрифосфа-тов, праймеров, зондов для ПЦР и ПЦР в реальном времени, разрабатывает на заказ наборы реагентов для качественного и количественного анализа ДНК и РНК, секве-нирование ДНК и комплектацию ПЦР-лабораторий «под ключ».
Соместно с Институтом аналитического приборостроения РАН, МГТУ имени Н.Э. Баумана и ЗАО «Синтол» создан первый отечественный прибор для количественного измерения ПЦР в реальном времени (метод ПЦР-РВ) и разработана новая серия таких более совершенных приборов. Важно отметить, что институт изготавливает к этим приборам необходимые наборы отечественных реактивов. По качеству, точности анализов и производительности эти приборы не уступают импортным аналогам и гораздо экономичнее зарубежных.
Многие работы института были бы невозможны без лаборатории химии нуклеиновых кислот и созданного при институте ЗАО «Синтол». Именно они осуществляют синтез разнообразных праймеров и секвениро-вание отдельных элементов геномов. В них создаются разнообразные флуоресцентные нуклеиновые маркеры с определенной нуклео-тидной последовательностью для анализа структуры и функционирования разныхгенов. Здесь разрабатываются тест-системы для анализа различных ГМО, часть из них уже зарегистрирована Роспотребнадзо-ром, включая такие тест-системы, как скриннинг 35S-NOS, соя Roundup-ready 40-3-2, кукуруза Mon810. Разработаны и регистрируются наборы для анализа ДНК 17 разрешенных для использования в кормах и продуктах питания на территории России ГМ линий, в том числе томата, риса и картофеля.
Институт плодотворно сотрудничает со многими известными учебными центрами, иститутами РАН, РАСХН, МСХ России и ведущими научными центрами Белоруссии, Казахстана, Болгарии, Чехии, Нидерландов, Франции, Италии, Германии, Финляндии, Великобритании, США и других стран. Ученые института принимают участие в ряде российских (РФФИ, МСХ, Миннауки, «Интеграция») и международных научных проектов, вклю-
чая тТАБ, тСО-СОРЕЯМСиЭ, ЮА1^А, грант Маккартуров и др.
Эта масштабная исследовательская работа ведется силами 119 научных сотрудников, среди которых один академик и один член-корреспондент РАСХН, один член-корреспондент РАН, 14 докторов наук и 54 кандидата наук.
В институте функционируют 10 лабораторий (генной инженерии растений, клеточной инженерии растений, ДНК маркеров растений, стрессоустойчивости растений, индуцированного рекомбиногенеза, молекулярной вирусологии, молекулярной диагностики и генно-инженерных конструкций, клеточной биологии, анализа геномов, анализа ГМО) и 5 исследовательских групп (геномной модификации, нуклеиновых кислот, биохимии семян, аэропонных технологий выращивания растений, компьютерного молекулярного моделирования).
Имеется аспирантура по специальности «Биотехнология» и «Молекулярная биология», работает диссертационный докторский совет по специальности «Биотехнология».
Труды ученых института многократно отмечены наградами и премиями различных научных симпозиумов и выставок, в том числе золотыми и серебряными медалями ВВЦ; институт обладает многими патентами и авторскими свидетельствами, результаты работ публикуются в авторитетной отечественной и международной научной периодической печати, издано несколько монографий. За годы работы в институте подготовлены доктора и кандидаты наук в области биотехнологии и молекулярной биологии. Мы приветствуем и приглашаем научную молодежь для работы и совершенствования знаний в современной агробиотехнологии.
В заключение можно сказать, что наступила эра так называемой «зеленой» революции, движущей силой которой будет агробиотехноло-гия, и ВНИИСБ вносит свой вклад в этот процесс.
