CC BY
149
ПАТОМОРФОЛОГИЧЕСКАЯ ОЦЕНКА ДЕЙСТВИЯ КЛИНАКОКСА НА ЖЕЛУДОЧНО-КИШЕЧНЫЙ ТРАКТ ЖИВОТНЫ1Х ПРИ КРИПТОСПОРИДИОЗЕ
Кулясов П.А., Васильева В.А.
Резюме
Изучено влияние клинакокса на желудочно-кишечный тракт при криптоспоридиозе Выявлено гистологически, что препарат способствует снижению отрицательного влияния паразитов на кишечник. Оптимальная его доза - 10 мг/кг массы тела. Патоморфологические изменения у поросят носят временный функциональный характер и исчезают при повторном курсе лечения. Проведенные исследования по изучению биохимического состава сыворотки крови поросят в ходе химиотерапии криптоспоридиоза дают теоретическое обоснование к применению кокцидиостатиков и позволяют судить об исходе и эффективности лечения.
PATHOMORPHOLOGICAL EVALUATION OF CLINACOX ON THE GASTROINTESTINAL TRACT OF ANIMALS AT CRYPTOSPORIDIOSIS
Kulyasov P.A., Vasileva V.A.
Summary
The effect of clinacox on gastrointestinal tract under cryptosporidiosis has been studied. It has histologically been revealed that preparat helps reduce the negative impact of parasites on intestine. Clinacox application scheme and optimal dose (10 mg for a gram of body weight) does not cause pathological changes in piglets. They have only temporary functional features and disappear with repeated treatment. Researches of biochemical composition of piglets blood serum during chemotherapy of cryptosporidiosis give theoretical justification for coccidiostats use and allow to judge the result and treatment efficacy.
УДК 619:543 39:637.4:547 96
ВЫДЕЛЕНИЕ ЛИПОСОМ ИЗ ЯИЧНОГО ЛЕЦИТИНА
Магдеева Э.А. -аспирант Казанская государственная академия ветеринарной медицины имени Н.Э. Баумана
тел.: 89656024924
Ключевые слова: липосомы, лецитин, липиды, фосфолипиды. Key words: liposome, lecithine, lipides, phospholipids.
Липосомы находят все большее применение в мире как перспективные носители лекарственных веществ, поскольку согласно результатам многочисленных клинических испытаний лекарства, вводимые в составе липосом, более эффективны и менее токсичны, чем применяемые в свободном виде.
Важное свойство липосом - это универсальность. Благодаря
полусинтетической природе можно широко варьировать их размеры, и состав поверхности. Это позволяет липосомам переносить широкий круг
фармакологически активных веществ:
противоопухолевые и противомикробные препараты, гормоны, ферменты, вакцины, а также дополнительные источники энергии для клетки, генетический материал.
Липосомы сравнительно легко разрушаются в организме, высвобождая доставленные вещества, но по пути следования липосомы, сами лишенные свойств антигена, надежно укрывают свой груз от контакта с иммунной системой и, стало быть, не вызывают защитных и аллергических реакций организма [1].
Поэтому разработка способа выделения и применения липосом для этих
целей актуальна и для ветеринарнои медицины.
Целью исследований явилось выделение яичного лецитина и изготовление липосом.
Материалы и методы. Работа была выполнена на кафедре микробиологии Казанской государственной академии ветеринарной медицины и в отделе вирусологии Федерального центра токсикологической, радиационной и биологической безопасности. Для получения липосом использовались липиды. Липосомы выделили
«инжекционным» методом и методом «выпаривания и обращения фаз».
Для выделения липосом был использован яичный лецитин. Лецитин выделен следующим образом: в пробирку поместили 0,5 г сухого измельченного яичного желтка и добавили к нему 3 мл этилового спирта. Затем жидкость отфильтровали в сухую пробирку и добавили к нему несколько капель ацетона. Появившаяся муть свидетельствовала об осаждении лецитина [2]. Образовавшуюся суспензию перелили в центрифужные пробирки и центрифугировали при 2000 об/мин в течение 3-4 минут. Надосадочную жидкость слили, а осадок подвергли лиофильному высушиванию.
Липосомы выделяли следующими методами:
1. Инжекционный метод. 50 мг яичного лецитина растворили в 1,0 мл 96% этанола, и впрыснули при помощи шприца (игла 0,4x30,0 мм) в 15 мл 0,01М фосфатного буфера (рН 7,5), в котором предварительно растворили включаемый в липосомы материал. При этом важно постоянно перемешивать раствор на магнитной мешалке [3].
2. Метод «выпаривания и обращения фаз». 30 мг фосфолипидов растворили в 3
мл эфира и влили в круглодонную колбу роторного испарителя объемом 100см3 . Включаемый материал растворили в 0,01 М фосфатном буфере (рН 7,5) и добавили к раствору фосфолипидов. Затем обработали ультразвуком 22 кГц, мощностью 200 Вт в течении нескольких минут до тех пор пока не образовалась эмульсия. Колбу с эмульсией присоединили к роторному испарителю, постоянно понижая давление, чтобы эмульсия не вскипела. Об окончании выпаривания судят по исчезновению запаха органического растворителя. К гелю добавили 5 мл 0,01 М фосфатного буфера (рН 7,5) и встряхивали до образования гомогенной структуры липосом [4].
Результаты исследований. По результатам проведенных научных исследований установлено, что липосомы, полученные разными методами, были гетерогенны по размеру. При выделении липосом методом «инжекции» выделены большие моноламмелярные везикулы, при методе «выпаривания и обращения фаз» образовались как моноламмелярные так и мультиламмелярные везикулы, в
примерном соотношении 80:20. Наиболее крупные везикулы 150-950 нм получены с помощью метода «выпаривания и обращения фаз», при этом данный метод обеспечивает максимальный процент включения лекарственного препарата 78,5±0,5% . При выделении липосом методом «инжекции» размер
липосомальной везикулы 100-800 нм, а уровень включения лекарственного препарата 8,8±0,2%
Заключение. Таким образом, исследованы два метода получения липосом из яичного лецитина. Показано, что метод «выпаривания и обращения фаз» обеспечивает максимальное включение водной фазы в структуру липидных везикул.
ЛИТЕРАТУРА: 1. Бабицкая С.В., Жукова М.В., Кисель М.А. и др.// Химико-фарм. журнал, 2006.- №3.-С.36-38. 2. Алимов А.М., Хазипов Н.З., Якупов Т.Р., Логинов Г.П. Практикум по биохимии с основами физколлоидной химии.-Казань, 2012.- С.170-171. 3. Nordilung I.R. Transbilayer distribution of phosphatidylethanolamine in Large and small unilamellar versicles/ I.R. Nordilung, C.F. Schmidt, S.N. Dicken//Biochemistry.-1981/-Vol.20.-P.3237-3241. 4. Ротов К.А. Получение и характеристика липосом, содержащих антибиотики /К.А.Ротов, В.П.Васильев, Ю.В. Антонов// Микробиол.журн.-1989.-№6.-С.79-83.
ВЫДЕЛЕНИЕ ЛИПОСОМ ИЗ ЯИЧНОГО ЛЕЦИТИНА
Магдеева Э.А.
Резюме
Исследованы два метода получения липосом из яичного лецитина. Показано, что метод «выпаривания и обращения фаз» обеспечивает максимальное включение водной фазы в структуру липидных везикул.
ISOLATION OF EGG LECITHIN LIPOSOMES
Magdeeva E.A.
Summary
Studied two methods of preparation of liposomes from egg lecithin. It is shown that the method of "phase inversion and evaporation" maximizes the inclusion in the aqueous phase structure of lipid vesicles.
УДК 619:617.3:669.018.674:612
Ro- СЕМИОТИКА СОСТОЯНИЯ КОСТНОЙ ТКАНИ ПРИ ЧРЕСКОСТНОМ ВВЕДЕНИИ ИМПЛАНТАТОВ С ПОКРЫТИЕМ НИТРИДАМИ ТИТАНА И ГАФНИЯ В
ЭКСПЕРИМЕНТЕ
Манирамбона Ж.К. - аспирант, Валеева А.Н. - к.в.н., доцент, *Коритам А.Ш. - д.в.н., доцент Казанская государственная академия ветеринарной медицины *Александрийский университет, Египет e-mail: manjeckad@yahoo.fr
Ключевые слова: крыса, имплантат, нитрид титана и гафния, нитрид титана и циркония.
Key words: rat, implants, nitrides of titan and hafnium, nitrides of titan and zirconium.
Стремительный рост хирургической активности в клиниках
ортопедотравматологического профиля в последние годы, сопровождается неизбежным увеличением числа осложнений, в ряде случаев, связанных с реакцией отторжения, которые
обусловлены аллергической реакцией на сплавы, используемых при изготовлении погружных конструкций [6]. Длительное нахождение устанавливаемых пластин, винтов, стержней, в достаточно агрессивной среде, к каковой можно отнести организм пациента, предъявляет особые требования к материалам, из которых изготовлен имплантат.
Актуальность темы обусловлена необходимостью создания перспективных и безопасных покрытий [5], которые не проявляются аллергическими реакциями на сплавы, используемые при изготовлении
погружных конструкций. Серьезный недостаток металлических изделий: они подвержены коррозии, из-за которой снижается механическая прочность, а на организм оказывают определенное воздействие перешедшие в раствор ионы металлов. Создать защитный барьер для их выхода в биологические жидкости организма способны оболочки-покрытия, имеющие минимальную толщину и биологическую устойчивость к
воздействию достаточно агрессивной окружающей среды [1]. В этой связи, важным аспектом является применение методов, позволяющих правильно и надежно оценить их взаимодействие с окружающими тканями и организмом в целом [4]. Перспективными являются покрытия, содержащие производные сверхтвёрдых металлов, которые характеризуются химической и
