CC BY
90
Таким образом, развитие растениеводства Алтайского района в составе АЭТРЗ может быть успешным, может внести весомый вклад в аграрную экономику Алтайского края при реализации, как минимум, следующих положений:
1) на всех площадях сельскохозяйственных угодий будут соблюдаться принципы севооборота или пастбищеоборота;
2) во всех хозяйствах будет налажена под руководством специалистов райсель-хозуправления система семеноводства;
3) растениеводство района будет инвестировано и адаптировано к работе в составе Алтайской экономической туристско-рекреационной зоны.
Библиографический список
1. Микуров О. «Бирюзовая Катунь»: как реализуется проект / О. Микуров / / Алтайская правда. № 114 (26306). 22 апреля. 2008.
2. Мусохранов В.Е. Отчет о научноисследовательской работе «Рекомендации по рациональному использованию пастбищ в низкогорьях Алтайского района» / В.Е. Мусохранов, А.Г. Тараканов,
Н.В. Ревякина // Рукопись. НИИГП. Барнаул, 1993. 110 с.
3. Заключительный отчет о количестве и качестве высеянных семян в хозяйствах Алтайского района в 2007 году / ФГУ «Россельхозцентр» по Алтайскому краю, 2007.
+ + +
УДК 582.572 А.Ю. Набиева,
О.В. Дорогина
ВВЕДЕНИЕ В КУЛЬТУРУ INVITROLILIUM MARTAGON L. SUBSP. PILOSIUSCULUM (FREYN) ILJIN EX B. FEDTSCH. С ПОМОЩЬЮ СПЕЛЫХ И НЕСПЕЛЫХ СЕМЯН
Введение
Рассматриваемый в данной работе подвид L. martagón ssp. pilosiusculum — слабоволосистый в Западной и Восточной Сибири абсолютно преобладает при отсутствии других подвидов, совместно с типовым подвидом он отмечен только в бассейнах рек Вятки и Камы, тогда как на остальной европейской части России он не обнаружен; вне территории России встречается в Монголии [1]. Численность популяций данного подвида заметно сокращается в результате возрастающего воздействия антропогенного фактора, особенно активно он уничтожается вблизи больших городов как декоративное и лекарственное растение. Данный подвид включен в Красную книгу Иркутской области (2001), Красную книгу Республики Саха (2000) [2, 3].
Ежегодно у особи созревает только одна почка возобновления [4]. Диссеми-нация наступает с растрескивания коробочек с середины августа. Семенная продуктивность особей данного подвида
сравнительно невелика [5]. Известно, что спелые семена ко времени диссеминации имеют недоразвитый, слабодифференцированный зародыш. Семена лилий секции Martagón имеют глубокий морфофизиологический покой, обусловленный наличием ингибиторов и недостаточной газопроницаемостью тканей, окружающих зародыш [6]. Общепринятой является точка зрения, что семена лилий прорастают после завершения дифференциации зародыша [7].
Сеянцы подвида в культуре зацветали на 5-6-й год [4].
Для сохранения редких и исчезающих видов в настоящее время широко применяются биотехнологические методы, представляющие возможность как сохранения генотипа, так и ускорения процессов морфогенеза у регенерантов [8]. В то время как типовой вид L. martagón L. s. str. был введен в культуру ткани из семян, а также была разработана методика получения каллуса из тканей проростков, рассматриваемый в данной работе
подвид не был вовлечен в биотехнологические исследования [9, 10].
Цель настоящей работы — провести сравнительный анализ всхожести спелых и неспелых семян Lilium martagón subsp. pilosiusculum в культуре in vitro; определить возможные пути ускорения онтогенеза проростков и получения наибольшего количества дочерних микролуковичек от одного семени.
Материал и методы
Для исследования были собраны нераскрытые коробочки Lilium martagon subsp.pilosiusculum по 2-3 шт. с разных частей растений — всего не менее 12 растений, произрастающих в смешанном лесу в окрестностях г. Новосибирска. Сбор проводили 1-2 августа и 5 сентября в 2006-2007 гг. Собранные в первый срок коробочки (вне зависимости от года) были еще зеленые, семенная кожура белого цвета, что свидетельствует о незаконченности формирования как стенок плода, так и самой семенной кожуры, при этом размер семян не отличался от такового у собранных в сентябре из спелых вскрывающихся коробочек. Эти семена первого сбора мы охарактеризовали как неспелые.
Семена, посеянные 05.09.04 и 22.03.05, были собраны из спелых коробочек с одного и того же растения. В марте семена были посеяны после хранения в течение 6 месяцев при +200С.
Семена для стерилизации помещали на 30 с в 70%-ный раствор этилового спирта, затем на 7-9 мин. в 0,2%-ный раствор хлорида ртути и промывали 4 раза в стерильной дистиллированной воде. Все семена проращивали в темноте при температуре +22...240С.
В дальнейшем проводилось 3 серии опытов:
1) была изучена всхожесть семян лилии данного подвида в зависимости от их спелости и времени хранения. В данном опыте все семена были помещены на питательную среду МС без регуляторов роста, содержавшую 20 г/л сахарозы [11];
2) для выяснения возможных путей морфогенеза в культуре in vitro у неспелых семян L. martagón subsp. pilosiusculum в зависимости от типа питательной среды и внесенных регуляторов роста (0,2 мг/л 2,4Д + 0,1 мг/л БАП) семена помещали для прорастания на один из четырех вариантов питательных сред (табл. 3), содержавших 30 г/л сахарозы;
3) для изучения влияния состава питательной среды и 0,2 мг/л БАП на формирование метамеров у проростков неспелых семян все проросшие семена переносили на питательные среды МС, N6, П-2, содержавшие 20 г/л сахарозы [12, 13].
Проросшие семена, а также семена, образовавшие эмбриогенный каллус и соматические эмбриоиды, переносили в условия фотопериода 16/8 ч на те же среды, содержавшие 0,2 мг/л БАП. В качестве среды, применявшейся для наилучшего укоренения и дальнейшей адаптации микролуковичек к условиям ex vivо, нами использовалась среда S МС, содержавшая 20 г/л сахарозы. Все регенеран-ты и сеянцы, полученные на средах без применения регуляторов роста, имеющие крупные (не менее 10 мм) луковицы, были высажены через 7-8 месяцев в стерильные субстраты, а затем в стаканчики с почвенной смесью в условиях закрытого грунта. Обработку экспериментальных данных проводили с использованием статистических пакетов Microsoft Excel 2000.
Результаты
Согласно полученным данным период прорастания спелых семян данного подвида до и после хранения более продолжителен, чем у свежесобранных семян (спелых и неспелых), а всхожесть меньше (табл. 1).
При проращивании неспелых семян лилии данного подвида на среде П-2, дополненной ауксином 0,2 мг/л 2,4-Д и цито-кинином 0,1 мг/л БАП, у основания главного корня проростков было отмечено формирование биполярных структур, представлявших собой соматические эм-бриоиды. Органогенез происходил путем прямой регенерации без образования каллуса, что позволило получить от одного семени в среднем до 3,02 регенеран-тов.
На остальных средах — МС и N6 с такими же добавками у большинства сеянцев происходило формирование каллус-ной ткани в основании семядоли, тогда как в контроле на среде МС без гормонов дочерние луковицы практически не образовывались (табл. 2).
Через шесть месяцев культивирования изучали заложение метамеров у микролуковичек данного подвида, полученных от неспелых семян в зависимости от состава питательных сред (табл. 3).
Таблица 1
Всхожесть семян I.. та^адоп subsp. pilosiusculum при +200С на среде МС в зависимости от сроков посева, п = 100
Вид растения Число, месяц и год посева Число дней на каждом этапе % проросших семян
до начала прорастания прорастание
L. martagón subsp. pilosiusculum 5.09.06 (спелые) 18,0±0,7 45,0±1,0 87,0±0,8
22.03.07 (спелые-пос-ле хранения) 29,9±0,9 61,8± 1,1 76,0±0,9
02.08.06 (неспелые) 7,0±0,3 16,0±0,6 98,0±0,6
F теор. = 3,55 HCPo,o5 Рфакт. = 310,03 HCP005 = 2,10 Рфакт. = 748,65 HCP005 = 2,51 Рфакт. = 173,77 HCP005 = 2,48
Таблица 2
Возможные пути морфогенеза в культуре in vitro у неспелых семян L. martagón subsp. Pilosiusculum в зависимости от типа питательной среды, n = 50
Вариант Преобладающий тип морфогенеза Количество микролуковичек (шт.) через 3 мес. от 1 семени
1. МС (контроль) эмбриогенез 1,29±0,68
2. МС + 0,2 мг/л 2,4Д + 0 ,1 мг/л БАП каллусогенез; непрямой органогенез 2,86±0,72
3. N6 + 0,2 мг/л 2,4Д + 0,1 мг/л БАП каллусогенез; непрямой органогенез 3,31 ±0,86
4. П-2 + 0,2 мг/л 2,4Д + 0,1 мг/л БАП эмбриоидогенез 3,02±0,68
Таблица 3
Влияние состава питательной среды на формирование метамеров в проростках неспелых семян L. martagón subsp. pilosiusculum, n = 10
Среды для культивирования проросших семян Среднее количество метамеров
1. МС 3,7±0,4
2. МС + 0,2 мг/л БАП 5,8±0,8
3. N6 3,5±0,2
4. N6 + 0,2 мг/л БАП 6,3±1,3
5. П-2 + 0,2 мг/л БАП 8,5±0,8
НСР0,05 (1) =4,50; (2) = 4,14; (1,2) = 3,29
Примечание. Фактор 1 — присутствие (отсутствие) 0,2 мг/л БАП в среде; фактор 2 — вариант питательной среды; фактор 1,2 — взаимодействие между первым и вторым факторами.
Обсуждение
Как следует из представленных данных, всхожесть семян данного подвида в культуре in vitro зависит от их спелости и сроков посева. В процессе исследования было установлено, что наибольшее число микролуковичек было образовано путем
непрямого органогенеза у семян, эмбриональные ткани которых образовали каллус на средах МС и N6 с регуляторами роста. Несмотря на то, что образовавшихся в результате соматического эм-бриоидогенеза число микролуковичек на среде П-2 с добавлением 0,2 мг/л 2,4Д и
0,1 мг/л БАП было несколько меньше, такой путь морфогенеза более предпочтителен, так как способствует получению растений генетически идентичных исходным [14]. Кроме того, на данной среде число метамеров, слагающих луковицу сеянца, было достоверно выше, чем на средах МС и N6 без регуляторов роста. Известно, что в определенной степени число метамеров является количественным выражением физиологического состояния особи и показателем онтогенетического развития [7]. Было отмечено, что в условиях in vitro у видов лилий секции Martagón ювенильная стадия продолжается 3-4 года [1], луковицы трехлетнего возраста состоят из 5-7 чешуй. Нами было отмечено увеличение количества метамеров до 8 спустя всего 6 месяцев произрастания сеянцев на питательной среде П-2.
Выводы
1. Неспелые семена L. martagon subsp. pilosiusculum, способные к прорастанию и не имеющие морфофизиологического покоя, прорастали в культуре in vitro более дружно и за более короткие сроки, чем семена, собранные с тех же растений на месяц позже.
2. Образование микролуковичек на среде П-2 происходило путем вторичного соматического эмбриоидогенеза, что позволило увеличить коэффициент микроразмножения данного подвида в 2-3 раза.
3. На среде П-2 с добавлением 0,2 мг/л БАП развитие сеянцев проходило более ускоренно.
Библиографический список
1. Баранова М.В. Лилии / М.В. Баранова. Л.: Агропромиздат, 1990.
2. Красная книга Иркутской области: сосудистые растения. Иркутск, 2001.
3. Красная книга Республики Саха (Якутия). Якутск: НИПК, Сахаполиграфиздат, 2000. Т. 1.
4. Биологические особенности растений Сибири, нуждающихся в охране / отв.
ред. К.А. Соболевская. Новосибирск: Наука, 1986.
5. Боронникова С.В. Семенная продуктивность Lilium martagón subsp. pilosiusculum (Freyn) Iljin ex B. Fedtsch. и Paeonia anómala L. (Пермская обл.) / С.В. Боронникова // Растительные ресурсы. 2002. Вып. 3. Т. 38. С. 50-54.
6. Николаева М.Г. Покой семян / М.Г. Николаева // Физиология семян. М.: Наука, 1982. С. 125-183.
7. Баранова М.В. Луковичные растения семейства Лилейных (география, биомор-фологический анализ, выращивание) / М.В. Баранова. СПб.: Наука, 1999. 229 с.
8. Молканова О.И. Сохранение редких и исчезающих растении в банке меристем ГБС РАН / О.И. Молканова, Ю.Н. Горбунов // Биологическое разнообразие. Интродукция растений: тез. докл. III Межд. науч. конф. СПб., 2003. С. 42.
9. Pelkonen V.P. Tissue culture as means in the production of hardy lilies / V.P. Pelkonen // J. Acta Horticulturae, 1997. 447. Р. 665-667.
10. Kedra M. Morphogenesis of Lilium
martagon L. explants in callus culture / M. Kedra, A. Bach // Acta Biologica Cra-coviensia Series Botanica. 2005. 47/1.
Р. 65-73.
11. Murashige T. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures / T. Murashige, F. Skoog / / Physiol. Plant J. 1962. Vol. 15. P. 473-497.
12. Chu Ch.-Ch. The № 6 medium and its application to anther culture of cereal crops / Ch.-Ch. Chu // Proc. sympos. on Plant Tissue Culture. Peking: Sci. Press, 1978. P. 43-50.
13. Chuang Ch.-Ch. A set of potato media for wheat anther culture / Ch.-Ch. Chuang, T.-W. Quyang / / Proc. sympos. on Plant Tissue Culture. Peking: Sci. Press, 1978. P. 51-56.
14. Батыгина Т.Б. Эмбриология цветковых растений. Терминология и концепции / Т.Б. Батыгина. СПб.: Мир и семья, 1997. Т. 2. С. 629-633.
+ + +
