ния растущей культуры, часть пошла на эксперименты по акклиматизации растений к почвенным условиям, остальные использованы для получения микроклубней в условиях in vitro и ми-никлубней — in vivo (в теплице Ботанического сада МГУ им. Н. П. Огарева). При этом было высажено в грунт более 600 пробирочных растений, которые прижились практически полностью и в последующем образовали ми-никлубни СССЭ. Это связано с удачной комбинацией физико-химических параметров при выращивании растений: невысокой температурой, низкой влажностью почвы и высокой — воздуха. В то же время условия освещения не соответствовали поставленной задаче, что привело к сравнительно низкой продуктивности растений в теплице.
В мелкодсляночном опыте, проведенном на территории Республикан-
ской станции юннатов, в качестве посадочного материала использовали клубни картофеля СССЭ сорта Невский. Оздоровленный посадочный материал показал свои преимущества перед обычным картофелем того же сорта: отсутствие видимых проявлений болезней, более длительный период жизни (без отмирания ботвы и растений в целом), здоровые клубни, полученные от него, более высокая урожайность (23,1 т/га против 14,0 т/га в контроле).
В результате проведенных опытов можно сделать вывод о перспективности выращивания оздоровленных пробирочных растений картофеля в условиях открытого и закрытого грунта. Продолжается работа по оптимизации культивирования пробирочных растений и получаемых на их основе микроклубней.
БИБЛИОГРАФИЧЕСКИЙ СПИСОК
1. Мелик-Саркисов О. С., Овчинникова В. Н., Ульянов Р. П. Получение безвирусного посадочного материала картофеля микроклубнями, индуцированными в культуре in
vitro / ВАСХНИЛ. М., 1985. 16 с.
2. Трофимсц Л. Н„ Остапенко Д. П., Бойко В. В. и др. Оздоровление и ускоренное размножение семеннош картофеля / ВАСХНИЛ. М.,
1985. 35 с.
3. Трофимсц Л. Н., Остапенко Д. П., Ата-бсков Н. Г. и др. Биотехнологические методы получения и оценки оздоровленного картофеля. М.: Агропромиздат, 1988. 38 с.
4. Шмыгля В. А., Лодочкин П. И. Оздоров-
Поступила 13.02.2000.
леиие картофеля, пораженного вирусами: Учеб.-мстод. пособие / ТСХА. М., 1983. 32 с.
5. Ahloowalia В. S. Production and performance of potato minitubers // Euphytica. 1994. Vol. 75, № 3. P. 163 — 172.
6. Estrada R., Tovar P., Dodds J. H. Induction of in vitro tubers in a broad range of potato genotypes // Plant Cell Tissue, Organ Cult. 1986. Vol. 7, № 1. P. 3 — 10.
7. Tovar P., Estrada R., Schildc-Rcntsch-ler L.t Dodds J. H. Induction and use of in vitro potato tuber // Circular Intern, potato center. 1985. Vol. 13, № 4. P. 1 — 5.
ВОЗБУДИТЕЛИ КРИПТОСПОРИДИОЗА ЖИВОТНЫХ
Е. В. КОЛМЫКОВА, старший преподаватель, В. А. ВАСИЛЬЕВА, доктор ветеринарных наук, Е. Н. СКОВОРОДИН, доктор ветеринарных наук
Возбудители криптоспоридиоза — 1910 в последние десятилетия привле-кокцидии рода Cryptosporidium Tyzzer кают к себе особое внимание, являясь
© Е. В. Колмыкова, В. А. Васильева, Е. Н. Сковородин, 2000
возбудителями оппортунистических инфекций. У млекопитающих встречается свыше 20 видов Cryptosporidium:
С. muris [б];
С. parvum [7];
С. meleagridis [5];
С. tizzeri [4];
С. lampropeltis [2];
С. vulpis [8];
С. beileyi (Current et al., 1986) и ДР. [11.
По современной классификации существует 5 видов рода Cryptosporidium (табл. 1), а остальные сведены в синонимы.
Таблица 1
Определительная таблица видов рода Cryptosporidium
Ключ для определения видов рода
Cryptosporidium Признаки
Ряд!. Стенка ооцист
1 — однослойная;
2 — двухслойная.
Ряд II. Размеры длины ооцист
1 — до 7,2 мкм;
2—12 — 17 мкм;
3 — свыше 25 мкм.
Ряд III. Место эндогенного развития
1 — железистый желудок;
2 — тонкая кишка, респираторные органы;
3 — подвздошная и толстая кишки, клоака, фабрициева сумка, синус, трахея, конъюнктива.
Ряд IV. Хозяева
1 — птицы;
2 — млекопитающие.
В результате наших исследований мы установили на территории Мордовии один вид Cryptosporidium muris, который составляет 9,45 % от всех существующих видов.
Виды II III IV
I. C. muris 1 1 2
2. C. meleagridis 1 2 1
3. C. pellerdyi 2 — 2
4. C. beileyi 1 3 1
5. C. curyi 2 3 — 2
БИБЛИОГРАФИЧЕСКИЙ СПИСОК
1. Крылов М. В. Определитель паразитических простейших (человека, домашних животных и сельскохозяйственных растений). СПб., 1996. 282 с.
2. Anderson В. Patterns of shedding of Cryptosporidia! oocyste in Jdoho calves // J. Amer. Vet. Med. Ass. 1981. Vol. 178. P. 982 — 984.
3. Current W. et al. The life cycle of Cryptosporidium baifeyi n. sp. (Apicomplexa, Cryptosporidia!) infecting chickens // J. Proiozool. 1986. Vol. 33, № 2. P. 289 — 296.
4. Levine N. D. Protozoan parasites of domestic animals and man. 2 nd ed. Minneapolis: Burgess Publ. Co., 1973. P. 366.
Поступила ¡7.12.99.
5. Slavin D. Cryptosporidium meleagridis (sp. Nov.) // J. Comp. Pathol. 1955. Vol. 65. P. 262 — 266.
6. Tizzcr E. A. An extracel — lular coccidium Cryptosporidium (gen. et sp. nov,) of the gastritis glonds of the common mouse // J. Med. Res. 1910. Vol. 23. P. 487 — 509.
7. Tizzer E. A. Cryptosporidium parvum (sp. nov.) a coccidium found in the small intestine of the common mouse // Asch. Protisnenkd. 1912. Vol. 26. P. 394 — 412.
8. Wcitz I., Tassara R. Pulmonary cryptosporidiosis//Rev. Med. Chile. 1986. Vol. 7. P. 691.