Восприимчивость цыплят-бройлеров к бактериям, изолированным от синантропной птицы Текст научной статьи по специальности «Ветеринарные науки»

Таблица 9

Усвоение и баланс фосфора

Показатель Группа

контрольная I-опытная II-опытная

Принято с кормом, г 0,94 0,94 0,96

Выделено с пометом, г 0,54 0,53 0,51

Усвоено, г 0,40 0,41 0,45

Коэффициент усвоения,% 42,55 43,61 46,87

Выделено азота с яйцом, г 0,24 0,26 0,27

Коэффициент использования азота на яйцо от всего принятого,% 25,53 27,66 28,12

Это объясняется тем, что обмен кальция и фосфора тесно связан между собой. Коэффициент усвоения фосфора в опытных группах выше, чем в контрольной

группе. Во второй группе этот показатель был на уровне 46,87%, а использование фосфора на яйцо составило 28,12%, против 25,53% в контрольной группе.

Список литературы

1. Дмитроченко, А.П. Минеральное питание сельскохозяйственных животных / А.П. Дмитро-ченко. - М.: Колосс, 1973. - С. 210.

2. Лопатин, Н.Г. Микроэлементы в растительных кормах Приамурья / Н.Г. Лопатин // Химию в сельское хозяйство. - Хабаровск [б.и.], 1964. - С. 81 - 89.

Reference

1. Dmitrochenko, A.P. Mineral'noe pitanie sel'skokhozyaistvennykh zhivotnykh (Mineral Nourishment of Farm Animals), M., Koloss, 1973, P. 210.

2. Lopatin, N.G. Mikroelementy v rastitel'nykh kormakh Priamur'ya (Microelements in Vegetable Feed of Priamurye), Khimiyu v sel'skoe khozyaistvo, Khabarovsk, 1964, PP. 81 - 89.

УДК 619:616.9+636.5 ГРНТИ 68.41.53

Асмолова О.Л., ст. преподаватель; Мандро Н.М., д-р вет. наук, профессор; Литвинова З.А., канд.вет.наук, доцент,

Дальневосточный государственный аграрный университет, г. Благовещенск, Амурская область, Россия,

E-mail:motyashka89@mail.ru; litvinova-08@mail.ru; mnm0351@mail.ru; ВОСПРИИМЧИВОСТЬ ЦЫПЛЯТ-БРОЙЛЕРОВ К БАКТЕРИЯМ, ИЗОЛИРОВАННЫМ ОТ СИНАНТРОПНОЙ ПТИЦЫ

В статье ставится задача определить степень восприимчивости цыплят-бройлеров к патогенной и условно-патогенной микрофлоре, изолированной из организма свободноживущей птицы, а также кормов, кормовых добавок, смывов инвентаря и оборудования. Установлено, что трехкратный пассаж через организм молодняка сельскохозяйственной птицы усиливает вирулентность микроорганизмов с последующим проявлением инфекционного процесса.

КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА: МИКРОФЛОРА, СИНАНТРОПНАЯ ПТИЦА, ЦЫПЛЯТА-БРОЙЛЕРЫ, ЗАБОЛЕВАЕМОСТЬ, ЛЕТАЛЬНОСТЬ, СМЕРТНОСТЬ, ИНДЕКС КОНТАГИОЗ-НОСТИ.

UDC 619:616.9+636.5

Asmolova O.L., Senior Teacher; Mandro N.M., Dr Veterinar. Sci., Professor; Litvinova Z.A., Cand. Veterinar. Sci., Associate Professor, Far Eastern State Agrarian University, Blagoveshchensk, Amur region, Russia,

E-mail: motyashka89@mail.ru; litvinova-08@mail.ru; mnm0351@mail.ru BROILERS' SUSCEPTIBILITY TO BACTERIA ISOLATED FROM SYNANTHROPIC BIRDS

The article's objective is to determine the degree of broilers' susceptibility to pathogenic and opportunistic pathogenic microflora isolated from the body of free-living birds and also from feed, feed additives, wash-outs of instruments and equipment. It has been found out that thrice-repeated passage through body of the young poultry enhances microorganism virulence with further manifestation of the infectious process.

KEY WORDS: MICROFLORA, SYNANTHROPIC BIRDS, BROILERS, INCIDENCE, LETHALITY, DEATH-RATE, CONTAGIOSITY INDEX

Возникновение, развитие и исход инфекционных заболеваний зависит от вида и возраста животных,физиологического состояния организма, наличия и выраженности иммунитета, патогенности и вирулентности микроорганизма, его дозы и других факторов [3]. В большинстве случаев действие этих факторов проявляется при возникновении заболеваний, вызываемых условно-патогенными микроорганизмами.

Синантропная птица может служить резервуаром и источником возбудителя инфекции, а объекты промышленного птицеводства (корма, вода, инвентарь и оборудование), с которыми она контактирует, могут выступать в роли факторов передачи патогенной и условно-патогенной микрофлоры сельскохозяйственной птице [3]. Однозначных сведений на восприимчивость сельскохозяйственной птицы к микрофлоре, изолированной от синантропной птицы в литературных источниках нет, в связи с чем целью наших исследований явилось установить восприимчивость молодняка сельскохозяйственной птицы к патогенной и условно-патогенной микрофлоре, выделенной от синантропной птицы и объектов птицеводства Амурской

области, с которыми контаминирует си-нантропная птица.

Для достижения поставленной цели были определены следующие задачи:

- изучить в опыте восприимчивость молодняка сельскохозяйственной птицы к культурам первично изолированных бактерий и после нескольких пассажей на цыплятах-бройлерах;

- установить степень восприимчивости цыплят-бройлеров к культурам изолированных бактерий в оптимальных условиях эксперимента;

- определить показатели заболеваемости, летальности и смертности при моделировании инфекционного процесса изолированными бактериями.

Объекты и методы исследования.

Исследования проводились в период с 2012 по 2015 год на кафедре ветери-нарно-санитарной экспертизы, эпизоотологии и микробиологии факультета ветеринарной медицины и зоотехнии ФГБОУ ВО Дальневосточный ГАУ. Материалом для исследований послужили культуры бактерий, выделенные нами от синантроп-ной птицы (воробей домовой - 4 голов, сорока обыкновенная - 3 головы, ворона - 3 головы) и объектов птицеводства (кормов - 39 проб, воды - 37 проб, ракушки - 12

проб, зерна пшеницы - 3 пробы, смывов с инвентаря и оборудования - 163 пробы), с которыми контактировала синантропная птица. Объектом исследования явились цыплята кросса Иза Хоббат Ф-15 шестидневного возраста массой 100 - 120 грамм. По методу сбалансированных групп-аналогов были сформированы одна контрольная и 15 подопытных группы цыплят по шесть голов в каждой, всего 96 голов.

Цыплятам-бройлерам подопытных групп ежедневно в течение 10 дней перо-рально через зонд вводили взвесь агаровых культур микроорганизмов в объеме 1,0 мл в максимальной концентрации микробных тел- 1,0 млрд., средней - 100 млн., минимальной - 10 млн. Содержание микробных тел определяли по стандарту мутности.

Птицам первой, второй и третьей подопытных групп задавали бактериальную культуру Staphylococcus aureus, выделенную из внутренних органов синантроп-ной птицы; третьей, четвертой и пятой опытным группам вводили Escherichia coli, выделенную из смывов с инвентаря и оборудования, контаминированную синан-тропной птицей; седьмой, восьмой и девятой опытным группам задавали взвесь Proteus mirabilitis, изолированную из внутренних органов синантропной птицы, обладающую патогенными свойствами; взвесь культуры Pseudomonas aeruginosa, выделенную из проб комбикорма, вводили десятой, одиннадцатой, двенадцатой подопытным группам; тринадцатой, четырнадцатой и пятнадцатой подопытным группам задавали бактериальную культуру Salmonella enteritidis, изолированную из внутренних органов синантропной птицы. Цыплятам контрольной группы вводили аналогичным методом стерильный физиологический раствор.

Опыты заражения с первичными культурами бактерий в указанных объемах и их количестве положительных достоверных результатов с проявлением инфекционного процесса не дали. По этой причине вирулентность изолированных микроорганизмов повышали пассажами через орга-

низм дополнительных групп цыплят до появления инфекционного процесса и клинических признаков болезни.

Подопытную птицу подвергали вакцинации согласно схеме, принятой в птицеводческих хозяйствам Амурской области.

Молодняк сельскохозяйственной птицы в возрасте ноль дней иммунизировали против инфекционной бурсальной болезни вакциной Вакситек HVT- IBD методом подкожной инъекции в область шеи в дозе 0,2 мл и против инфекционного бронхита кур вакциной Н120 и 491 в виде спрея; в возрасте 7-8 дней проводили ревакцинацию против инфекционного бронхита кур вышеуказанной вакциной, в возрасте 16 дней - против инфекционной бурсальной болезни вакциной 228Е методом выпойки в количестве 1 дозы на голову. Против болезни Ньюкасла птицу вакцинировали в 14 дней и ревакцинировали в 28 дней живой вакциной Ла Сота методом выпойки в количестве 1 доза на голову.

Клиническое наблюдение в течение 30 дней, учитывали проявление инфекционного процесса. Подопытную павшую и вынужденно убитую птицу вскрывали, отмечая патологоанатомические изменения, отбирали патологический материал для бактериологического исследования. Выделение культур бактерий проводили методами полного бактериологического исследования с последующей идентификацией бактерий с первично изолированными культурами[1,4]. Достоверность результатов исследований определяли методом вариационной статистики с использованием компьютерной программы Microsoft Excel.

Результаты исследования.

В результате исследований установлено, что при пероральном введении

культур микроорганизмов молодняку сельскохозяйственной птицы оказались достоверно восприимчивы цыплята, которым задавали культуры бактерии видов Escherichia coli, Proteus mirabilitis, Pseudomonas aeruginosa, Salmonella enter-itidis. У цыплят первой, второй и третьей опытных групп, которым задавали

Staphylococcus aureus в различной концентрации, развитие инфекционного процесса и патологических изменений не установлено.

В таблице представлены некоторые эпизоометрические характеристики, полуОсновные эпизоометрические показатели

ченные в результате определения восприимчивости молодняка сельскохозяйственной птицы к культурам бактерий, изолированных от различных объектов птицефабрик, а также синантропной птицы [2].

Таблица

инфицировании поголовья цыплят (п=96)

Группа Заболеваемость, % Летальность, % Смертность, % Индекс контагиозности

Опытная 1(п=6); 81арЬу1ососсшаигеш 0 0 0 0

Опытная 2(п=6); 81арЬу1ососсшаигеш 0 0 0 0

Опытная 3 (п=6); 81арЬу1ососсшаигеи8 0 0 0 0

Опытная 4(п=6); ЕзсИепсЫасоИ 66.7* 0 0 0.7

Опытная 5 (п=6); ЕБсИепсЫасоИ 33.3* 0 0 0.2

Опытная (п=6); ЕБсИепсЫасоИ 0 0 0 0

Опытная 7 (п=6); Рго1еи5т1гаЫШ5 83.3** 60.0** 50.0** 0.8

Опытная 8 (п=6); Рго1еи5т1гаЫШ5 33.3** 0 0 0.3

Опытная 9 (п=6); Рго1еи5т1гаЫШ5 16.7** 0 0 0.2

Опытная 10 (n=6) Pseudomonasaeroginosa 66.7** 50** 33.3** 0.7

Опытная 11 (n=6) Pseudomonasaeroginosa 16.7** 0 0 0.2

Опытная 12 (n=6) Pseudomonasaeroginosa 0 0 0 0

Опытная 13 (n=6) Salmonellaenteritidis 33.3* 100.0* 33.3* 0.7

Опытная 14 (n=6) Salmonellaenteritidis 0 0 0 0

Опытная 15 (n=6) Salmonellaenteritidis 0 0 0 0

Контрольная (n=6) 0 0 0 0

Примечание: Р<0,05* Р<0,01 ** Р<0,001***

Наименьшая концентрация микроорганизмов^ которой была восприимчива птица, составила 100 млн.микробных тел вида Escherichia coli, (пятая опытная группа), Proteus mirabilitis (девятая опытная группа), Pseudomonas aeroginosa (11-ая опытная группа). К микроорганизмам вида Salmonella enteritidis птица проявила свою восприимчивость в максимальной концентрации- 1,0 млрд. микробных тел (13-ая опытная группа).

Патогенное действие проявили бактерии видов Proteus mirabilitis, Pseudomonas aeroginosa, Salmonella enteritidis при введении птице максимальной концентрации микроорганизмов.

Так, при введении взвеси бактерии в концентрации 1.0 млрд. микробных клеток в 1.0 мл -Proteus mirabilitis - заболеваемость составила 83.3%; летальность -60.0%; смертность - 50%; Pseudomonas

aeroginosa- 66.7%; 50.0% и 33.3%соответ-ственно; Salmonella enteritidis -33.3%; 100.0% и 33.3% соответственно.

Клинические признаки болезни у птиц, в большинстве случаев, проявлялись угнетением, отказом от корма, диареей. У цыплят, которым задавали микробные взвеси в концентрации 1,0 млрд. микробных клеток в единице объёма, болезнь проявлялись на 2-3 дня раньше, чем у птицы других опытных групп.

Определение индекса контагиозно-сти показало, что наиболее восприимчива птица к максимальным концентрациям микроорганизмов Proteus mirabilitis—0.8; Escherichiacoli, Pseudomonas aeroginosa, Salmonella enteritidis—0.7.

При снижении концентрации микробных клеток уменьшается индекс конта-гиозности.

В пятой опытной группе цыплят, которым вводили культуру Escherichia coli в концентрации 100 млн. микробных клеток, индекс контагиозности составил 0.2. Шестой опытной группе цыплят задавали культуру Escherichia coli с концентра-цией10 млн. микробных клеток, индекс контагиозности был равен нолю.

Птице восьмой опытной группы вводили Proteus mirabilitis в концентрации 100 млн. микробных клеток - контактное число составило 0.3. Девятой опытной группе цыплят задавали Proteus mirabilitis в концентрации 10 млн. микробных клеток, индекс контагиозности составил 0.2.

Опытной 11-ой группе птиц перо-рально вводили Pseudomonas aeroginosa в концентрации 100 млн. клеток, при этом индекс контагиозности составил 0.2; при введении культуры Pseudomonas aeroginosa в концентрации 10 млн. микробных клеток в 12-ой опытной группе восприимчивость птицы не отмечена. Птица 14-ой и 15-ой опытных групп, которой задавали культуру Salmonella enteritidis в концентрации 100 млн. и 10 млн. микробных клеток соответственно, не была восприимчива к инфицированию.

Таким образом, молодняк сельскохозяйственной птицы неодинаково восприимчив к микрофлоре, изолированной из различных объектов птицефабрик и синан-тропной птицы. Наиболее восприимчива птица к максимальным концентрациям микроорганизмов Proteus mirabilitis с индексом контагиозности 0.8; Escherichia coli, Pseudomonas aeroginosa, Salmonella enteritidis -с индексом контагиозности 0.7.

Выводы:

1. Трехкратный пассаж на цыплятах изолированных культур бактерий из объектов птицеводства и от синантропной

птицы повышал вирулентность этих бактерий с последующим проявлением инфекционного процесса.

2. Минимальная концентрация микроорганизмов к которым был восприимчив молодняк сельскохозяйственной птицы к культурам бактерий Proteus mirabilitis, Escherichia coli, Pseudomonas aeroginosa, которые вводили в течение 10 дней соста-вила100 млн. микробных тел, Salmonella enteritidis- 1.0 млрд. микробных тел; к микроорганизмам вида Staphylococcus aureus восприимчивость птицы не проявлялась.

3. Наибольшую опасность для сельскохозяйственной птицы составляют изолированные культуры бактерий Proteus mirabilitis в концентрации 1.0 млрд.мик-робных тел заболеваемость составила 83.3%, летальность 60.0%, смертность 50.0% и контагиозность 0.8; в концентрации 100 млн. микробных тел - заболеваемость составила 33.3%, контагиозность-0.3; при концентрации 10 млн. микробных клеток показатель заболеваемости - 16.7%, контагиозность- 0.2; введение Escherichia coli в концентрации 1.0 млрд., 100 млн. микробных клеток заболеваемость составила -66.7% и 33.3%, контагиозность 0.7 и 0.2 соответственно;введение Pseudomonas aeroginosa в концентрации 1.0 млрд. микробных клеток заболеваемость составила 66.7%, летальность - 50.0%, смертность -33.3%, контагиозность - 0.7; при концентрация 100 млн. микробных клеток показатель заболеваемости составил 16.7%, контагиозность - 0.2; введение Salmonella enteritidis в концентрации 1.0 млрд. микробных клеток заболеваемость составила 33,.3%; летальность - 100.0%, смертность - 33.3%, контагиозность 0.7.

Список литературы

1.Быков, А.С. Основы микробиологии, вирусологии и иммунологии/А.С. Быков, А.А. Воробьев, Ю.С. Кривошеин. - М.: ACADEMIA, 2001. - 85 с.

2.Макаров, В.В. Эпизоотологический метод исследования: Учебное пособие / В.В. Макаров [и др.]. - СПб.: Издательство «Лань», 2009.- 224 с.

3. Мезенцев, С. В. Стабилизация иммунитета организма сельскохозяйственной птицы / С. В. Мезенцев // Достижения ветеринарной медицины - XXI веку : матер. междунар. конф. (Барнаул, 03-04 окт. 2002 г.). - Барнаул: АГАУ, 2002. - С.268-270.

4. Методики клинических лабораторных исследований : справочное пособие : [в 3 т.] / под ред. В. В. Меньшикова. - Т. 3: Клиническая микробиология, бактериологические исследования, микологические исследования, паразитологические исследования, инфекционная иммунодиагностика, молекулярные исследования в диагностике инфекционных заболеваний. - М.: Лабора, 2009. - 879 с. : ил., табл.

5.Определитель бактерий Берджи. В 2-х т.1: пер.с англ./под ред. Дж. Хоулта, Н. Кринга, П. Снита, Дж. Стейли, С. Уилльямса. - М.: Мир, 1997. - 432 с.

б.Определитель бактерий Берджи. В 2-х т.2: пер.с англ./под ред. Дж. Хоулта, Н. Кринга, П. Снита, Дж. Стейли, С. Уилльямса.- М.: Мир, 1997.- 368 с.

Reference

1. Bykov, A.S., Vorob'ev, A.A., Krivoshein, Yu.S. Osnovy mikrobiologii, virusologii i immunologii (Bases of Microbiology, Virology and Immunology), M., ACADEMIA, 2001, 85 p.

2. Makarov, V.V. Epizootologicheskii metod issledovaniya: Uchebnoe posobie (Epizootologic Method of Research: Text-Book), V.V. Makarov [dr.], SPb., Izdatel'stvo «Lan'», 2009, 224 p.

3. Mezentsev, S. V. Stabilizatsiya immuniteta organizma sel'skokhozyaistvennoi ptitsy (Stabilization of Poultry's Body Immunity), Dostizheniya veterinarnoi meditsiny - XXI veku, mater. mezhdunar. konf. (Barnaul, 03-04 okt. 2002 g.), Barnaul, AGAU, 2002, PP. 268-270.

4. Metodiki klinicheskikh laboratornykh issledovanii : spravochnoe posobie (Methods of clinical laboratory studies : a reference guide), [v 3 t.], pod red. V. V. Men'shikova, T. 3, Klinicheskaya mikrobi-ologiya, bakteriologicheskie issledovaniya, mikologicheskie issledovaniya, parazitologicheskie issledo-vaniya, infektsionnaya immunodiagnostika, molekulyarnye issledovaniya v diagnostike infektsionnykh zabolevanii, M., Labora, 2009, 879 s., il., tabl.

5. Opredelitel' bakterii Berdzhi. V 2-kh t.1: per.s angl. (Bergy Bacteria Detector. Two Volumes. Volume 1: Translated from English), pod red. Dzh. Khoulta, N. Kringa, P. Snita, Dzh. Steili, S. Uill'yamsa, M., Mir, 1997, 432 p.

6. Opredelitel' bakterii Berdzhi. V 2-kh t.2: per.s angl. (Bergy Bacteria Detector. Two Volumes. Volume 2: Translated from English), pod red. Dzh. Khoulta, N. Kringa, P. Snita, Dzh. Steili, S. Uill'yamsa, M., Mir, 1997, 368 p.

УДК 636.082:636.598 ГРНТИ 68.39.13; 68.39.37

Ройтер Я.С. руководитель научного направления генетика и селекция, профессор; Соловьев В.Ю. канд. с.-х. наук, науч. сотр.,

Всероссийский научно-исследовательский и технологический институт птицеводства;

г. Сергиев Посад, Сергиево-Посадский район, Московская область, Россия; E-mail: roiter@vnitip.ru;

Казанцева М.А. зоотехник-селекционер, ООО «Вурнарец»,

д. Игорвары, Цивильский район, Республика Чувашия, Россия МЕТОДЫ ПОВЫШЕНИЯ ПЛОДОВИТОСТИ МАТЕРИНСКОЙ ЛИНИИ ЛИНДОВСКОЙ ПОРОДЫ ГУСЕЙ

Работа выполнена в ООО «Вурнарец» республики Чувашия на гусях линдовской породы создаваемой специализированной материнской линии. В статье рассмотрены результаты селекции материнской линии, направленной на повышение плодовитости гусей. Детальный анализ продуктивности гусей первого и второго года использования показал существенные индивидуальные различия селекционируемой птицы по яйценоскости, живой массе и массе яйца. Рекомендовано при комплектовании племенного стада отбирать гусынь первого года использования, в возрасте 26 недель с живой массой от 5,0 до 6,5 кг, второгодок, в возрасте 78 недель, от 5,6 до 7,0 кг соответственно. Рациональная масса яиц гусынь, предназначенных для инкубации, находится в пределах