ВЛИЯНИЕ ВНЕКЛЕТОЧНОГО МАТРИКСА НА КАРДИОГЕННУЮ ДИФФЕРЕНЦИРОВКУ КЛЕТОК Текст научной статьи по специальности «Биотехнологии в медицине»

МАТЕРИАЛЫ V НАЦИОНАЛЬНОГО КОНГРЕССА ПО РЕГЕНЕРАТИВНОЙ МЕДИЦИНЕ

95

диаметра, имеющих размер около 100 нм и обладающих зарядом поверхности близким к нейтральному. Размер частиц определяли методом динамического светорассеяния. Такие системы способны проникать внутрь клетки, а также доставлять внутрь ядра на стадии митоза, на других стадиях развития клетки они инертны и не способны вмешиваться в процессы клеточного метаболизма.

При этом противоопухолевый препарат доксорубицин является только модельным соединением, в дальнейшем полые нанокорпускулярные полимерные носители можно использовать для самых разнообразных физиологически активных веществ.

Литература:

1. Dyatlov V.A., Katz G.A. Polyalkylcyanoacrylate nanocapsules.

Int. Application No PCT/IE 93/000005, Int. Publication

No W094/017789, 1994.

ВЛИЯНИЕ ВНЕКЛЕТОЧНОГО МАТРИКСА

НА КАРДИОГЕННУЮ ДИФФЕРЕНЦИРОВКУ

КЛЕТОК

Г.А. Ивахова1, Н.Б. Бильдюг2

1 Санкт-Петербургский государственный технологический институт (технический университет), Санкт-Петербург, Россия

2 Институт цитологии РАН, Санкт-Петербург, Россия

e-mail: nyadatep@gmail.com

Ключевые слова: МСК, фибробласты, кардиогенная диф-

ференцировка, внеклеточный матрикс.

Неспособность к делению зрелых кардиомиоцитов — функциональных клеток сердца — ограничивает возможность получения стабильной клеточной линии для ее использования в качестве in vitro модели. В связи с этим огромное количество исследований направлено на кар-диогенную дифференцировку различных клеток, включая эмбриональные (ЭСК), мезенхимные (МСК), индуцированные плюрипотентные (иПСК) стволовые клетки, а также фибробласты.

Большинство существующих методов кардиоген-ной дифференцировки предполагает использование на разных этапах культивирования комбинаций разнообразных факторов, влияющих на процесс кардиогенеза in vivo. В частности, наиболее эффективные протоколы получения кардиомиоцитов из иПСК и фибробластов включают многократные этапы вирусной трансдукции и использование различных многокомпонентных диф-ференцировочных сред [1, 2]. Однако такие манипуляции существенно ограничивают возможности применения полученных клеток в качестве тест-систем, в частности, для исследования лекарственных препаратов in vitro. Таким образом, существует необходимость в упрощенных методах кардиогенной дифференцировки, включающих введение минимального количества экзогенных факторов, потенциально препятствующих проведению дальнейших in vitro анализов.

На сегодняшний день накопилось достаточное количество данных о том, что наряду с растворимыми факторами важным регулятором кардиогенеза является внеклеточный матрикс (ВКМ) [3]. В связи с этим, настоящая работа была направлена на оценку кардиоген-ного потенциала клеток различного происхождения при их культивировании в присутствии компонентов ВКМ. В работе использовали МСК из костного мозга эмбриона человека и мышцы конечности эмбриона человека

(получены из Ц^ «KKKn» ИНЦ РАН, грант Mинобрнауки РФ, Оглашение № G75-15-2G21-683], а также фи-бробласты, полученные из ткани сердца крыс. В ходе работы было показано, что культивирование MCK и фи-бробластов на белках ВKM приводило к существенному изменению их морфологии. C помощью метода имму-нофлуоресценции и конфокальной микроскопии был выявлен ранний маркер кардиогенной дифференцировки GATA4 в клетках, культивируемых на коллагене. ^оме того, культивирование MCK на коммерческом препарате «Matrigel» приводило к формированию в единичных клетках характерного для кардиомиоцитов миофибриллярно-го аппарата. Полученные результаты могут применяться при разработке эффективных методов кардиогенной дифференцировки, а также для оптимизации модельных тест-систем in vitro.

Литература:

1. Guan X., Wang Z., Czerniecki S., et al. Hum. Gene Ther. Clin. Dev. 2G15. V. 26(3]. PP. 194-2G1.

2. Nam Y.J., Song K., Luo X., et al. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2G13. V 11G(14]. PP. 5588-93.

3. Bildyug N. Int. J. Cardiovasc. Res. 2G17. V. 6 (2]. PP. 1-7.

СОЗДАНИЕ ФИБРИНОВЫХ СКАФФОЛДОВ, ЗАСЕЛЁННЫХ СТВОЛОВЫМИ КЛЕТКАМИ ПУЛЬПЫ И ПЕРИОДОНТА И ПЕРСПЕКТИВЫ ИХ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ В ЭКСПЕРИМЕНТЕ

Д.А. Иволгин1, Ю.А. Домбровская1, Н.И. Енукашвили1 5, Р.Е. Банашков2, Н.Ю. Семенова3, И.А. Карабак4, А.В. Котова1, 5, А.В. Силин1

1 ФГБОУ ВО Северо-Западный медицинский университет им. И.И. Мечникова, Санкт-Петербург, Россия

2 Независимый центр рентгенодиагностики «Пикассо», Санкт-Петербург, Россия

3 РосНИИ гематологии и трансфузиологии ФМБА, Санкт-Петербург, Россия

4 ФГБУ Детский научно-клинический центр инфекционных болезней ФМБА, Санкт-Петербург, Россия

5 ФГБУН Институт цитологии РАН, Санкт-Петербург, Россия

e-mail: ida59m@mail.ru

Ключевые слова: скаффолд, фибриновый клей, стволовые клетки пульпы и периодонта, остеогенная дифференциров-ка, направленная костная регенерация/

Создание трехмерных структур- скаффолдов- из био-деградируемых материалов и заселение их стволовыми клетками, полученными из тканей полости рта, перспективно для методик направленной регенерации тканей. Стволовые клетки пульпы и периодонта в большей степени способны к остеогенной дифференцировке, что биологически обуславливает их применение при реконструктивных операциях на костной ткани. Целью исследования явилась оценка заживления костного дефекта в области альвеолярной части нижней челюсти лабораторных мышей с использованием фибринового скаффолда, заселенного стволовыми клетками пульпы и периодонта.

В исследовании 29 лабораторным мышам проводилось удаление моляров и формирование костного дефекта. В качестве замещающего материала использовали фибриновый клей, полученный из плазмы крови

Гены & ^етки XVII, №3, 2G22