CC BY
21
3. Anton Karlsson, Christoffer Nessvi, Precision Agriculture - A study of the profitability in a Swedish context // Swedish University of Agricultural Sciences, Department of Economics / Degree thesis No 1155, ISSN 1401-4084 Uppsala 2018.
4. Sydney Gourlay, Ermias Aynekulu, Keith Shepherd, Calogero Carletto // Collecting the Dirt on Soils / Advancements in Plot-Level Soil Testing and Implications for Agricultural Statistics, World bank group, may 2017, http://econ.worldbamk.org
5. Tomislav Hengi, Johan G.B. Leenaars, Keith D. Shepherd, Markus G. Walsh, Gerard B. M. Heuvelink, Tekalign Mamo, Helina Tilahum, Ezra Berkhout, Matthew Cooper, Eric Fegraus, Ichsani Wheeler, Nketia A. Kwabena Soil nutrient maps of Sub-Saharan Africa: assessment of soil nutrient content at 250 m spatial resolution using machine learning //Nutr Cycl Agroecosyst. 2017. 109. p. 77-102 http://doi:10.1007/s10705-017-9870-x
6. Elgolts L. E. Differential equations and calculus of variations. Moscow: Nauka, 1972, 432 p.
7. Experience in organizing the rational use of agricultural land in large agricultural holdings in the Bryansk region / V.E. Torikov, E.P. Chirkov, N.A. Sokolov, E.Ya. Lebedko, O.M. Mikhai-lov, T.V. Ivanyuga / ed. by N. M. Belous. Bryansk, 2014.
УДК 619:615.371:636.4:612.41
ВЛИЯНИЕ ВАКЦИНАЦИЙ НА ФАГОЦИТАРНУЮ АКТИВНОСТЬ НЕЙТРОФИЛОВ
КРОВИ СВИНЕЙ
Influence of Vaccinations on the Phagocytal Activity of Neutrophils in Pig's Blood
Крапивина Е. В., д-р биол. наук, профессор, Сергеева Е.В., аспирант, Иванов Д.В., канд. биол. наук, Кимуржи А.Д.
Krapivina E. V., Sergeeva E. V., Ivanov D. V., Kimurzhi A.D.
ФГБОУ ВО «Брянский государственный аграрный университет» Bryansk State Agrarian University
Реферат. Для изучения динамики фагоцитарной активности нейтрофилов в различные периоды после введения антигена и на фоне технологических стрессов на ООО «Брянский мясоперерабатывающий комбинат» Брянской области поросят (58-61 дневного возраста, живой массой 11,16±0,01 кг) вакцинировали и ревакцинировали против классической чумы и рожи свиней. Кровь для исследования брали у всех животных из яремной вены утром до кормления перед началом опыта, через 1, 2 и 3 месяца опытного периода. Установлено, что введение антигенов с вакциной за сутки до взятия крови и стресс-факторы обусловили повышение способности нейтрофилов крови свиней поглощать чужеродный материал, особенно в базальных условиях как за счёт увеличения числа нейтрофилов крови, способных к поглощению чужеродного материала, так и за счёт увеличения интенсивности этого процесса. Введение антигенов с вакциной за сутки до взятия крови вызывало максимальную активацию поглотительной способности нейтрофилов крови, на что указывает отсутствие адаптационного резерва этого механизма защиты организма. Технологические стрессы обусловили достоверно значимое увеличение числа нейтрофилов крови, способных к поглощению чужеродного материала в стимулированных зимозаном условиях по сравнению с базальными, но интенсивность поглотительной способности нейтрофилов крови при этом достоверно не повышалась. Это указывает на экстенсивный тип этого механизма защиты в условиях технологических стрессов. Вакцинация, проведённая за месяц до взятия крови у свиней, не оказывала активирующего влияния на поглотительную способность нейтрофилов крови, показатели, характеризующие эту функцию нейтрофилов, приближались к нормативным значениям.
Abstract. To study the dynamics of the phagocytic activity of neutrophils in different periods after injection of the antigen and against the background of technological stresses, the piglets (at the age of 58-61 days and with the liveweight of 11.16 ± 0.01 kg) were vaccinated and revaccinated against classical plague and erysipelas of pigs at the LLC "Bryansk Meat Processing Plant" of the
Bryansk region. Blood of all animals under study was taken from the jugular vein in the morning before feeding before the beginning of the experiment, after 1, 2 and 3 months of the experimental period. It was found that the injection of antigens with the vaccine the day before the blood test and stress factors led to an increase in the ability of pig neutrophils to absorb foreign material, especially in basal conditions, both due to an increase in the number of blood neutrophils capable of absorbing foreign material, and due to an increase in intensity of this process. The injection of antigens with the vaccine a day before blood sampling caused the maximum activation of the absorption capacity of blood neutrophils, as indicated by the absence of an adaptive reserve of this body defense mechanism. Technological stresses caused a relevantly significant increase in the number of blood neutrophils capable of absorbing foreign material under conditions stimulated by zymosan compared to basal conditions, but the intensity of the absorption capacity of blood neutrophils did not significantly increase. It indicates an extensive type of this defense mechanism under conditions of technological stress. The vaccination carried out a month before taking blood from pigs did not have an activating effect on the absorption capacity of blood neutrophils; the indicators characterizing this function of neutrophils approached standard values.
Ключевые слова: вакцинация, свиньи, фагоцитарная активность нейтрофилов крови.
Key words: vaccination, pigs, phagocytal activity of blood neutrophils.
Введение. Развитие свиноводства является естественным, объективно обусловленным, экономически выгодным и наиболее перспективным направлением возрождения мясного комплекса России. Успешному развитию свиноводства во многом препятствуют инфекционные болезни, которые наносят большой экономический ущерб, обусловливая снижение его продуктивности и низкую рентабельность отрасли. Инфекционные болезни - одна из сложных проблем ветеринарной науки и практики [1, с. 96]. В системе ветеринарно-санитарных мероприятий в свиноводстве одно из ведущих мест занимает профилактика инфекционных болезней [2, с. 83], в первую очередь специфическая иммунизация животных. Вакцины позволяют надежно профилактировать или сводить до минимума проявления многих особо опасных болезней животных [3, с. 518]. Конечной целью любой вакцинопрофилактики является полная ликвидация болезни, ближайшая цель - предотвращение заболеваний у отдельных особей или групп [4, 10]. Механизмы естественной неспецифической резистентности направлены на обеспечение постоянства внутренней среды организма и, соответственно, жизнедеятельности в условиях, когда они подвергаются воздействию тех или иных факторов [5, с. 3; 6, с. 16-25]. Одним из важнейших клеточных механизмов неспецифической резистентности является фагоцитоз, в результате которого происходит деградация и обезвреживание чужеродного вещества. Фагоцитоз, являясь механизмом неспецифической защиты, в то же время способствует иммунологическим механизмам защиты [7, с. 176-186]. Наиболее многочисленным видом лейкоцитов, обладающих фагоцитарной активностью являются нейтрофилы.
Целью исследования было изучение фагоцитарной активности нейтрофилов крови свиней в разные сроки после введения вакцин.
Материалы и методы исследования. Для изучения динамики фагоцитарной активности нейтрофилов в различные периоды после введения антигена и на фоне технологических стрессов на ООО «Брянский мясоперерабатывающий комбинат» (свинокомплекс «Бай-ково» Карачевского района Брянской области) была сформирована группа из 5 поросят (до-ращивание) 58-61 дневного возраста, живой массой 11,16±0,01 кг. Поросята были получены от свиноматок (крупная белая х ландрас), осеменённых спермой хряка дюрок.
Кровь для исследования брали у всех животных из яремной вены утром до кормления перед началом опыта, через 1, 2 и 3 месяца опытного периода. За месяц до первого взятия крови поросята были вакцинированы против классической чумы свиней (вирус-вакцина ЛК-ВНИИВВиМ сухая культуральная). За месяц до второго взятия крови все поросята были вакцинированы против рожи свиней (вакцина из штамма ВР-2 сухая живая), а за сутки до этого взятия они были ревакцинированы против классической чумы свиней. За месяц до третьего взятия крови все поросята были ревакцинированы против рожи свиней. Через 90 суток опытного периода поросят подвергли технологическим стрессам - стали готовить к убою: провели ветеринарный осмотр, взвешивание и голодную выдержку.
Показатели гемограммы подсчитывали с использованием геманализатора «Abactus junior vet 5». Фагоцитарный показатель (ФП, %) рассчитывали как процент нейтрофилов, способных к поглощению частиц латекса, фагоцитарный индекс (ФИ, у.е.) - среднее число частиц латекса, поглощенных одним активным нейтрофилом, абсолютный фагоцитоз крови (АФ, 109/л) - общее количество частиц латекса, поглощаемое нейтрофилами в литре крови, (ФЧ, у.е.) - среднее количество частиц латекса приходящееся на один нейтрофил (как активный, так и неактивный) [8, с. 56-93]. Поглотительную способность нейтрофилов (ФП, %, ФИ, у.е., АФ, 109/л) оценивали в двух состояниях: базальном (баз.) - в свежевзятой крови стабилизированной гепарином, и стимулированном (стим.) - после внесения в пробы крови зимо-зана, что моделирует условия бактериального заражения и характеризует адаптационные резервы поглотительной способности нейтрофильных гранулоцитов [9, с. 31-41].
Полученные цифровые данные обработаны методом вариационной статистики. Для выявления статистически значимых различий использован критерий Стьюдента по Н. А. Плохинскому [10, с. 94-130]. Результаты считали достоверными начиная со значения р<0,05..
В качестве значений физиологической нормы принимали интервалы соответствующих показателей, приведенные в литературе [11, с. 17; 12, с. 463-474; 13, с. 26-30.].
Результаты исследования и их обсуждение. Перед началом опыта количество лейкоцитов в крови у свиней соответствовало наиболее высоким значениям физиологической нормы, что, видимо, связано с вакцинацией против классической чумы свиней, проведенной за 1 месяц до начала опыта. Абсолютное и относительное количество нейтрофилов соответствовало нижним границам нормативных значений. Эти процессы связаны с формированием иммунного ответа на проведённую месяц назад вакцинацию.
Таблица 1 - Поглотительная активность нейтрофилов крови свиней (M ±m, n=5)
Показатель Перед началом опытного периода Через 30 суток опытного периода Через 60 суток опытного периода Через 90 суток опытного периода
Лейкоциты WBC, 109/л 22,06±1,89 19,53±2,53 17,15±1,85 26,43±0,74*
Hейтрофилы, 109/л 5,76±1,44 6,84±2,23 3,60±0,76 8,52±1,12*
Hейтрофилы, % 25,44±4,33 32,38±6,81 19,86±2,84 31,88±3,38*
ФПбаз., % 28,87±1,95 69,00±4,58* 12,00±1,54* 65,40±2,01*
ИФбаз., у.е. 3,99±0,37 8,15±0,25* 3,37±0,08* 6,61±0,21*
АФбаз., 109/л 6,26±1,18 37,41±10,85* 1,42±0,39* 37,65±6,79*
ФЧбаз., у.е. 1,13±0,09 5,62±0,43* 0,41±0,06* 4,33±0,21*
ФПстим., % 56,11±3,57^ 80,5±1,08* 38,8±1,68*^ 78,00±1,43*^
ИФстим., у.е. 5,34±0,18^ 7,90±0,39* 4,15±0,15*^ 6,50±0,66*
АФстим., 109/л 17,47±4,48 41,89±12,06 5,72±1,25*- 43,02±6,93*
ФЧстим., у.е. 3,00±0,22^ 6,37±0,36* 1,61±0,06*^ 5,10±0,60*
А ФП, % 29,24±4,89 11,8±4,09* 26,9±1,81* 12,60±2,79*
А ИФ, у.е. 1,36±0,27 0,24±0,12* 0,77±0,14* 0,55±0,38
А АФ, 109/л 11,21±3,41 4,48±1,72 4,31±0,95 8,03±4,97
А ФЧ, у.е. 1,87±0,25 0,74±0,21* 1,20±0,06 1,00±0,56
Примечание: * - р <0,05, достоверно по отношению к предыдущему периоду исследования,
• - р <0,05, достоверно стим. по отношению к баз.
Второе взятие крови для анализа было проведено через 30 суток после первого. При этом вакцинация против рожи свиней была проведена за 29 суток до второго взятия крови (на следующий день после первого взятия крови) и за 1 сутки до второго взятия крови была проведена ревакцинация против классической чумы свиней.
Количество лейкоцитов в крови у свиней через 30 суток опытного периода существенно не изменилось, но отмечена тенденция к повышению абсолютного (на 18,75%) и относительного (на 27,27%) количества нейтрофилов. Сдвиг клеток крови в нейтрофильную сторону при втором взятии крови обусловлен, проведённой за сутки до этого, ревакцинацией против классической чумы свиней.
Через сутки после второго взятия крови свиньям провели ревакцинацию против рожи свиней и через 60 суток опытного периода взяли кровь для исследования. По сравнению с предыдущим периодом исследования была отмечена тенденция к незначительному снижению числа лейкоцитов (на 12,19%), абсолютного (на 47,37%) и относительного (на 38,66%) количества нейтрофилов.
При взятии крови у свиней через 90 суток опытного периода (перед убоем) в связи с технологическими стрессами (ветеринарный осмотр, взвешивание, голодная выдержка) было установлено достоверное увеличение по сравнению с предшествующим периодом исследования числа лейкоцитов на 54,11% и абсолютного количества нейтрофилов (на 136,66%). При этом относительное количество нейтрофилов было достоверно выше (на 60,52%) по сравнению с предшествующим периодом исследования. Повышение уровня нейтрофилов крови характерно для фазы тревоги стрессорной реакции адаптационного синдрома организма [14, с. 56-65].
Таким образом, введение антигенов с вакциной за 1 сутки до взятия крови (через 30 суток опытного периода) обусловило выраженную тенденцию к: развитию нейтрофильной (стрессорной) фазы иммунного ответа.
Технологические стрессы (через 90 суток опытного периода перед убоем) вызвали ярко выраженную стрессорную реакцию адаптационного синдрома организма, на что указывает достоверно значимое повышение числа лейкоцитов, главным образом за счёт нейтрофилов.
Перед началом опыта ФП, ИФ и ФЧ в базальных условиях был незначительно выше нормы, что указывает на наличие в организме животных незначительного количества чужеродного материала. Это вероятно связано с проведённой за месяц до взятия крови вакцинацией. Внесение в пробы крови свиней зимозана обусловило достоверно значимое увеличение ФП (на 94,35%), ИФ (на 33,83%), ФЧ (на 165,48%) и тенденцию к увеличению АФ (на 179,07%), что указывает на наличие адаптационного резерва способности нейтрофилов крови к поглощению чужеродного материала.
Через 30 суток опытного периода (на следующий день после ревакцинации против классической чумы свиней) в крови у свиней было установлено достоверно значимое увеличение ФП, ИФ и ФЧ как в базальных, так и в стимулированных зимозаном условиях (на 139,00 и 43,46%, 104,26 и 47,99%, 397,34 и 112,33% соответственно) по сравнению с началом опыта. АФ в базальных условиях в крови у свиней увеличивался достоверно значимо по сравнению с началом опыта (на 497,60%), а в стимулированных зимозаном условиях отмечена лишь тенденция к повышению (на 139,78%). При этом все показатели, характеризующие поглотительную способность нейтрофилов крови в стимулированных зимозаном условиях существенно не отличались от аналогичных показателей в базальных условиях, что указывает на отсутствие адаптационного резерва поглотительной способности нейтрофилов крови у животных, которым за сутки до исследования ввели антиген и, что, видимо, вызвало максимальную мобилизацию защитных механизмов организма.
Через сутки после второго взятия крови свиньи были ревакцинированы против рожи свиней и через 60 суток опытного периода у них была взята кровь для исследования. Установлено, что ФП, ИФ, АФ и ФЧ у свиней как в базальных, так и в стимулированных зимоза-ном условиях по сравнению с предыдущим периодом достоверно снижались (на 98,26 и 51,80%, 58,65 и 47,47 на 497,60%, 96,20 и 86,34%, 92,70 и 74,72% соответственно) приближаясь к нормативным значениям. При этом все показатели, характеризующие поглотительную способность нейтрофилов крови в стимулированных зимозаном условиях были достоверно выше, чем в базальных, что указывает на восстановление адаптационной способности нейтрофилов крови через месяц после введения антигенов.
Через 90 суток опытного периода у свиней была взята кровь для исследования на фоне технологических (предубойных) стрессов. Установлено, что абсолютное и относительное количество нейтрофилов в этих условиях достоверно повышалось (на 136,66 и 60,52% соответственно) по сравнению с предыдущим периодом исследования. Показатели, характеризующие поглотительную способность нейтрофилов крови свиней, как в базальных, так и в стимулированных зимозаном условиях достоверно повышались по сравнению с предыдущим
периодом исследования: ФП - на 445,00 и 101,10% ; ИФ - на 96,14 и 56,62% ; АФ - на 2551,40 и 652,09% ; ФЧ - на 956,09 и 216,77% соответственно. При этом только ФП в стимулированных условиях превышал аналогичный показатель в базальных условиях на 16,15%. Это указывает на наличие адаптационного резерва только числа нейтрофилов крови, способных к поглощению чужеродного материала, то есть, повышение активности защитных механизмов организма у свиней в условиях стресса было экстенсивным, только за счёт увеличения числа клеток, способных поглощать чужеродный материал.
Заключение. Введение вакцины за сутки до взятия крови и стресс-факторы практически в одинаковой степени повышали способность нейтрофилов крови свиней поглощать чужеродный материал, особенно в базальных условиях при отсутствии в первом случае адаптационного резерва поглотительной способности нейтрофилов и эстенсивной защитной реакцией в случае стресса. Вакцинация, проведённая за месяц до взятия крови у свиней, не оказывала активирующего влияния на поглотительную способность нейтрофилов крови, показатели, характеризующие эту функцию нейтрофилов, приближались к нормативным значениям.
Библиографический список
1. Дремач Г.Э. Иммуногенез у свиней, вакцинированных против рожи // Ученые записки УО ВГАВМ. 2010. Т. 46, № 2. С. 96-100.
2. Совершенствование специфической профилактики инфекционных болезней животных / В.В. Максимович и др. // Ученые записки УО ВГАВМ. 2003. Т. 39, ч. 1. С. 83-85.
3. Ярилин А.А. Иммунология: учебник для медицинских институтов. М.: ГОЭТАР-Медиа, 2010. 750 с.
4. Степанов А.А. Иммунопрофилактика кори, эпидемического паротита и краснухи // Медицинский совет. 2007. № 2. С. 10-15.
5. Кадырова А.А. Иммунологически обусловленная естественная резистентность и подходы к ее оценке // Биомедицина, 2003. № 4. С. 3-10.
6. Сиротинин Н.Н. Эволюция резистентности организма. М.: Медицина, 1981. 236 с.
7. Микробиология и иммунология / под ред. А.А. Воробьева. М.: Медицина, 1999. 464 с.
8. Определение естественной резистентности и обмена веществ у сельскохозяйственных животных / В.Е. Чумаченко, А.М. Высоцкий, Н.А. Сердюк, В.В Чумаченко. Киев: Урожай, 1990. 134 с.
9. Хаитов Р.Б, Пинегин Б.В.,. Истамов. Х.И. Экологическая иммунология. М.:ВНИРО. 1995, 219 с.
10. Плохинский Н.А. Биометрия. Новосибирск: Изд-во Сибирского отделения АН СССР, 1961. 362 с.
11. Клинические лабораторные исследования крови. Показатели в норме и при патологии: учеб.-метод. пособие / В.В. Черненок и др. 2-е изд., доп. и перераб. Брянск: Изд-во Брянский ГАУ, 2016. 37 с.
12. Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики: справ. / И.П. Кондрахин и др. М.: КолосС, 2004. 520 с.
13. Шульга Н.Н., Шульга И.С., Плавшак Л.П. Анализ вакцин и вакцинаций // Тенденции развития науки и образования. 2017. № 31-4. С. 26-30.
14. Гаркави Л.Х., Квакина Е.Б., Уколова М.А. Адаптационные реакции и резистентность организма. Ростов н/Д: Изд-во Ростовского ун-та, 1990. 224 с.
References
1. Dremach G.E. Immunogenez u sviney, vaktsinirovannyh protiv rozhi // Uchenye zapiski UO VGAVM. 2010. T. 46, № 2. S. 96-100.
2. Sovershenstvovanie spetsificheskoy profilaktiki infektsionnyh bolezney zhivotnyh / V.V. Maksimovich i dr. // Uchenye zapiski UO VGAVM. 2003. T. 39, ch. 1. S. 83-85.
3. Yarilin A.A. Immunologiya: uchebnik dlya meditsinskih institutov. M.: GOETAR-Media, 2010. 750 s.
4. Stepanov A.A. Immunoprofilaktika kori, epidemicheskogo parotita i krasnuhi // Med-itsinskiy sovet. 2007. № 2. S. 10-15.
5. Kadyrova A.A. Immunologicheski obuslovlennaya estestvennaya rezistentnost i podhody k ee otsenke //Biomeditsina, 2003. № 4. S. 3-10.
6. Sirotinin N.N. Evolyutsiya rezistentnosti organizma. M.: Meditsina, 1981. 236 s.
7. Mikrobiologiya i immunologiya /pod red. A.A. Vorobeva. M.: Meditsina, 1999. 464 s.
8. Opredelenie estestvennoy rezistentnosti i obmena veschestv u selskohozyaystvennyh zhivotnyh/ V.E. Chumachenko, A.M. Vysotskiy, N.A. Serdyuk, V.V Chumachenko. Kiev: Urozhay, 1990. 134 s.
9. Haitov R.B, Pinegin B.V., Istamov H.I. Ekologicheskaya immunologiya. M.:VNIRO. 1995, 219°s.
10. Plohinskiy N.A. Biometriya. Novosibirsk: Izd-vo Sibirskogo otdeleniya AN SSSR, 1961.
362°s.
11. Klinicheskie laboratornye issledovaniya krovi. Pokazateli v norme i pri patologii: ucheb.-metod. posobie / V.V. Chernenok i dr. 2-e izd., dop. i pererab. Bryansk: Izd-vo Bryanskiy GAU, 2016. 37s.
12. Metody veterinarnoy klinicheskoy laboratornoy diagnostiki: sprav. / I.P. Kondrahin i dr. M.: KolosS, 2004. 520 s.
13. Shulga N.N., Shulga I.S., Plavshak L.P. Analiz vaktsin i vaktsinatsiy // Tendentsii razvitiya nauki i obrazovaniya. 2017. № 31-4. S. 26-30.
14. Garkavi L.H., Kvakina E.B., Ukolova M.A. Adaptatsionnye reaktsii i rezistentnost organizma. Rostov n/D: Izd-vo Rostovskogo un-ta, 1990. 224 s.
УДК 636.4.082.453.52:636.084.57
ВЛИЯНИЕ КОРМОВОЙ ДОБАВКИ НА КАЧЕСТВО СПЕРМЫ ХРЯКОВ-
ПРОИЗВОДИТЕЛЕЙ
The Influence of Feed Additives on the Sperm Quality of Stud Boars
Малявко И.В.1, канд. биол. наук, доцент, Малявко В.А.2, канд. биол. наук, заведующая сектором серологии Стукова О.Н.1, магистр, Сницаренко Г.Н.1, аспирант Malyavko I.V., Malyavko V.A., Stukova O.N., Snitsarenko G.N.
1ФГБОУ ВО «Брянский государственный аграрный университет» Bryansk State Agrarian University 2ФГБУ Брянская МВЛ Bryansk Interregional Veterinary Laboratory
Реферат. Экспериментально было изучено влияние кормовой добавки (корм растительный плодовый яблочный искусственно высушенный) на качество спермы хряков-производителей в условиях крупного свиноводческого комплекса Брянской области. В результате проведённых исследований было выявлено, что введение в состав комбикорма кормовой добавки в количестве 2,9% способствовало повышению содержания питательных веществ в его сухом веществе. Так, в 1 кг сухого вещества комбикорма рациона хряков-производителей содержалось 1,54 кг энергетических кормовых единиц, 15,45 МДж обменной энергии, 314 г сырого и 204 г перерваримого протеина, 9,2 г лизина, 5,96 г треонина, 7,2 г метионина+цистина, 49,9 г сырой клетчатки, 8,3 г кальция, 6,24 г фосфора, 110 мг железа, 13,9 мг меди, 68,2 мг цинка, 42,3 мг марганца, 1,43 мг кобальта, 0,28 мг йода, 9,95 мг каротина, 4,58 тыс. МЕ витамина А, 495 МЕ витамина Д, 44,6 мг витамина Е, 5,38 мг витамина В1, 4,64 мг витамина В2, 19,07 мг витамина В3, 1,52 г витамина В4, 71,9 мг витамина В5, 20,3 мкг витамина В12. Потребление в составе комбикорма кормовой добавки хряками-производителями породы Пьетрен способствует увеличению получаемого от них объёма эякулята на 20,6%. При этом, концентрация спермиев в 1 мл эякулята спермы была также выше у хряков-производителей опытной группы, получавших кормовую добавку на 21,08%, чем у их сверстников из контрольной группы.
