Научная статья на тему 'ВЛИЯНИЕ СУБИНГИБИРУЮЩИХ КОНЦЕНТРАЦИЙ G4-СТАБИЛИЗИРУЮЩИХ ЛИГАНДОВ НА ТРАНСКРИПТОМНЫЙ ПРОФИЛЬ MYCOBACTERIUM SMEGMATIS'

ВЛИЯНИЕ СУБИНГИБИРУЮЩИХ КОНЦЕНТРАЦИЙ G4-СТАБИЛИЗИРУЮЩИХ ЛИГАНДОВ НА ТРАНСКРИПТОМНЫЙ ПРОФИЛЬ MYCOBACTERIUM SMEGMATIS Текст научной статьи по специальности «Фундаментальная медицина»

CC BY
75
15
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.
Ключевые слова
G-квадруплексы / транскриптомный анализ / Mycobacterium smegmatis / Mycobacterium tuberculosis / BRACO-19 / TMPyP4 / антимикробная терапия / G-quadruplexes / transcriptomic analysis / Mycobacterium smegmatis / Mycobacterium tuberculosis / BRACO-19 / TMPyP4 / antimicrobial therapy

Аннотация научной статьи по фундаментальной медицине, автор научной работы — М В. Зайчикова, Д А. Беспятых, М В. Малахова, И Н. Бодоев, T С. Ведехина

В связи с широким распространением лекарственной устойчивости у Mycobacterium tuberculosis особое значение приобретает поиск противотуберкулезных препаратов с принципиально новым механизмом действия, исключающим развитие перекрестной устойчивости. В этом отношении определенный интерес представляют G-квадруплексы (G4) — неканонические структуры ДНК, участвующие в регуляции и поддержании стабильности генома. Показано, что G4-стабилизирующие соединения, лиганды, оказывают ингибирующий эффект на рост микроорганизма, но точный механизм их действия неизвестен. Целью исследования было выявить связь между наличием потенциальных G4 в геноме модельного микроорганизма M. smegmatis mc2 155 и изменением транскриптомного профиля под действием субингибирующих концентраций лигандов BRACO-19 и TMPyP4, а также провести сравнительный анализ результатов с данными, полученными нами ранее для ингибирующих концентраций указанных лигандов. Под действием BRACO-19 было идентифицировано 589 (316↑; 273↓) и 865 (555↑; 310↓) дифференциально экспрессированных генов, для 5 и 10 мкМ соответственно. Напротив, в случае с TMPyP4 обнаружено снижение числа дифференциально экспрессированных генов с 754 (337↑; 417↓) до 702 (359↑; 343↓) для концентраций 2 и 4 мкМ соответственно. Статистический анализ не выявил связи между изменением уровня экспрессии генов под действием лигандов и наличием потенциальных квадруплекс-формирующих последовательностей, вне зависимости от локализации G4. Тем не менее было установлено, что TMPyP4 вызывает значительные изменения в экспрессии факторов транскрипции и генах биосинтеза аргинина, а BRACO-19 — в генах метаболизма железа, а также в генах систем репликации и репарации.

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

Похожие темы научных работ по фундаментальной медицине , автор научной работы — М В. Зайчикова, Д А. Беспятых, М В. Малахова, И Н. Бодоев, T С. Ведехина

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

TRANSCRIPTIONAL PROFILING OF MYCOBACTERIUM SMEGMATIS EXPOSED TO SUBINHIBITORY CONCENTRATIONS OF G4-STABILIZING LIGANDS

The spread of Mycobacterium tuberculosis drug resistance accentuates the demand for anti-tuberculosis drugs with a fundamentally new mechanism of action without conferring cross-resistance. G-quadruplexes (G4, non-canonical DNA structures) are plausible new drug targets. Although G4-stabilizing ligands have been shown to inhibit mycobacterial growth, the exact mechanism of their action is uncertain. The aim of this study was to assess a possible correlation between putative G4 elements in a model mycobacterial strain M. smegmatis MC2155 and transcriptomic changes under the action of subinhibitory concentrations of G4 ligands BRACO-19 and TMPyP4. We also planned to compare the results with corresponding data previously obtained by us using higher, inhibitory concentrations of these ligands. For BRACO-19, we identified 589 (316↑; 273↓) and 865 (555↑; 310↓) differentially expressed genes at 5 μМ and 10 μМ, respectively. For TMPyP4, we observed the opposite trend, the number of differentially expressed genes decreased at higher concentration of the ligand: 754 (337↑; 417↓) and 702 (359↑; 343↓) for 2 μМ and 4 μМ, respectively. Statistical analysis revealed no correlation between ligand-induced transcriptomic changes and genomic localization of the putative quadruplex-forming sequences. At the same time, the data indicate certain functional specificity of the ligand-mediated transcriptomic effects, with TMPyP4 significantly affecting expression levels of transcription factors and arginine biosynthesis genes and BRACO-19 significantly affecting expression levels of iron metabolism and replication and reparation system genes.

Текст научной работы на тему «ВЛИЯНИЕ СУБИНГИБИРУЮЩИХ КОНЦЕНТРАЦИЙ G4-СТАБИЛИЗИРУЮЩИХ ЛИГАНДОВ НА ТРАНСКРИПТОМНЫЙ ПРОФИЛЬ MYCOBACTERIUM SMEGMATIS»

ВЛИЯНИЕ СУБИНГИБИРУЮЩИХ КОНЦЕНТРАЦИЙ G4-СТАБИЛИЗИРУЮЩИХ ЛИГАНДОВ НА ТРАНСКРИПТОМНЫЙ ПРОФИЛЬ MYCOBACTERIUM SMEGMATIS

М. В. Зайчикова, Д. А. Беспятых, М. В. Малахова, И. Н. Бодоев, T. С. Ведехина, В. А. Веселовский, К. M. Климина, А. М. Варижук, Е. А. Шитиков и

Федеральный научно-клинический центр физико-химической медицины Федерального медико-биологического агентства, Москва, Россия

В связи с широким распространением лекарственной устойчивости у Mycobacterium tuberculosis особое значение приобретает поиск противотуберкулезных препаратов с принципиально новым механизмом действия, исключающим развитие перекрестной устойчивости. В этом отношении определенный интерес представляют G-квадруплексы (G4) — неканонические структуры ДНК, участвующие в регуляции и поддержании стабильности генома. Показано, что G4-стабилизирующие соединения, лиганды, оказывают ингибирующий эффект на рост микроорганизма, но точный механизм их действия неизвестен. Целью исследования было выявить связь между наличием потенциальных G4 в геноме модельного микроорганизма M. smegmatis mc2 155 и изменением транскриптомного профиля под действием субингибирующих концентраций лигандов BRACO-19 и TMPyP4, а также провести сравнительный анализ результатов с данными, полученными нами ранее для ингибирующих концентраций указанных лигандов. Под действием BRACO-19 было идентифицировано 589 (316Т; 2734) и 865 (555Т; 3104.) дифференциально экспрессированных генов, для 5 и 10 мкМ соответственно. Напротив, в случае с TMPyP4 обнаружено снижение числа дифференциально экспрессированных генов с 754 (337Т; 4174) до 702 (359Т; 3434) для концентраций 2 и 4 мкМ соответственно. Статистический анализ не выявил связи между изменением уровня экспрессии генов под действием лигандов и наличием потенциальных квадруплекс-формирующих последовательностей, вне зависимости от локализации G4. Тем не менее было установлено, что TMPyP4 вызывает значительные изменения в экспрессии факторов транскрипции и генах биосинтеза аргинина, а BRACO-19 — в генах метаболизма железа, а также в генах систем репликации и репарации.

Ключевые слова: G-квадруплексы, транскриптомный анализ, Mycobacterium smegmatis, Mycobacterium tuberculosis, BRACO-19, TMPyP4, антимикробная терапия

Финансирование: исследование выполнено за счет гранта Российского научного фонда (проект №19-75-10109).

Вклад авторов: М. В. Зайчикова—анализ литературы, анализ и интерпретация данных, подготовка черновика рукописи; Д. А. Беспятых—анализ литературы, анализ данных, подготовка черновика рукописи; М. В. Малахова — планирование и проведение исследования; И. Н. Бодоев — анализ литературы, анализ данных, подготовка черновика рукописи; Т. С. Ведехина — проведение исследования, интерпретация данных; В. А. Веселовский — проведение исследования, анализ данных; К. М. Климина — проведение исследования, анализ и интерпретация данных; А. М. Варижук — планирование и проведение исследования, интерпретация данных; E. A. Шитиков — планирование исследования, анализ литературы, анализ данных, подготовка черновика рукописи.

[23 Для корреспонденции: Егор Александрович Шитиков

ул. Малая Пироговская, д. 1а, г. Москва, 119435, Россия; [email protected]

Статья получена: 08.04.2022 Статья принята к печати: 30.04.2022 Опубликована онлайн: 15.05.2022 DOI: 10.24075/vrgmu.2022.024

TRANSCRIPTIONAL PROFILING OF MYCOBACTERIUM SMEGMATIS EXPOSED TO SUBINHIBITORY CONCENTRATIONS OF G4-STABILIZING LIGANDS

Zaychikova MV, Bespiatykh DA, Malakhova MV, Bodoev IN, Vedekhina TS, Veselovsky VA, Klimina KM, Varizhuk AM, Shitikov EA3

Federal Research and Clinical Center of Physical-Chemical Medicine, Moscow, Russia

The spread of Mycobacterium tuberculosis drug resistance accentuates the demand for anti-tuberculosis drugs with a fundamentally new mechanism of action without conferring cross-resistance. G-quadruplexes (G4, non-canonical DNA structures) are plausible new drug targets. Although G4-stabilizing ligands have been shown to inhibit mycobacterial growth, the exact mechanism of their action is uncertain. The aim of this study was to assess a possible correlation between putative G4 elements in a model mycobacterial strain M. smegmatis MC2155 and transcriptomic changes under the action of subinhibitory concentrations of G4 ligands BRACO-19 and TMPyP4. We also planned to compare the results with corresponding data previously obtained by us using higher, inhibitory concentrations of these ligands. For BRACO-19, we identified 589 (316T; 2734) and 865 (555T; 3104) differentially expressed genes at 5 рМ and 10 рМ, respectively. For TMPyP4, we observed the opposite trend, the number of differentially expressed genes decreased at higher concentration of the ligand: 754 (337T; 4174) and 702 (359T; 3434) for 2 рМ and 4 рМ, respectively. Statistical analysis revealed no correlation between ligand-induced transcriptomic changes and genomic localization of the putative quadruplex-forming sequences. At the same time, the data indicate certain functional specificity of the ligand-mediated transcriptomic effects, with TMPyP4 significantly affecting expression levels of transcription factors and arginine biosynthesis genes and BRACO-19 significantly affecting expression levels of iron metabolism and replication and reparation system genes.

Keywords: G-quadruplexes, transcriptomic analysis, Mycobacterium smegmatis, Mycobacterium tuberculosis, BRACO-19, TMPyP4, antimicrobial therapy Funding: the study was funded by the Russian Science Foundation, project number 19-75-10109

Author contribution: Zaychikova MV — literature analysis, data analysis and interpretation, manuscript drafting; Bespiatykh DA — literature analysis, data analysis, manuscript drafting; Malakhova MV — research planning and implementation; Bodoev IN — literature analysis, data analysis, manuscript drafting; Vedekhina TS — research implementation, data interpretation; Veselovsky VA — research implementation, data analysis; Klimina KM — research implementation, data analysis and interpretation; Varizhuk AM — research planning and implementation, data interpretation; Shitikov EA — research planning, literature analysis, data analysis, manuscript drafting.

1X1 Correspondence should be addressed: Egor A. Shitikov

Malaya Pirogovskaya, 1a, Moscow, 119435, Russia; [email protected]

Received: 08.04.2022 Accepted: 30.04.2022 Published online: 15.05.2022

DOI: 10.24075/brsmu.2022.024

Туберкулез, вызываемый микобактериями туберкулезного комплекса, представляет собой глобальную проблему для современного здравоохранения. По экспертным оценкам ВОЗ, в 2020 г. число умерших от заболевания возросло по сравнению с 2019 г. на 100 тыс. человек и составило 1,3 млн. В первую очередь это связано с уменьшением расходов на диагностику и лечение туберкулеза и повышенной нагрузкой на систему здравоохранения, вызванной пандемией COVID-19. Ожидается, что негативная тенденция сохранится в ближайшие несколько лет [1].

Несмотря на применение противотуберкулезной терапии, успех лечения туберкулеза, осложненного лекарственной устойчивостью, не превышает 60%. Повсеместно отмечаются случаи возникновения резистентности к новым препаратам, таким как линезолид, бедаквилин, клофозамин и т. д. [2]. В связи с этим актуальным становится поиск новых лекарственных препаратов, отличающихся принципиально иным механизмом действия, а также мишеней для противотуберкулезной терапии.

Одной из мишеней могут стать G-квадруплексы (G4) — неканонические вторичные структуры, формирующиеся в физиологических условиях гуанинсодержащими последовательностями ДНК и РНК. Структурная единица G4 — G-квартет — образован четырьмя гуаниновыми основаниями. Между собой G-квартеты удерживаются и-и-стекинг-взаимодействием, а также дополнительно стабилизируются катионами металлов [3].

Представленные структуры достаточно хорошо изучены у эукариотических организмов и играют важную роль в регуляции и поддержании стабильности генома [4]. В 2000-х гг. потенциальные квадруплекс-формирующие последовательности (putative quadruplex sequence, PQS) были обнаружены в геномах многочисленных бактерий и архей, однако их функциональная роль до сих пор до конца не исследована [5]. Установлено, что G4 могут влиять на различные аспекты физиологии бактерий, в том числе на выживание в неблагоприятных условиях, взаимодействие с макроорганизмом у патогенных бактерий, на антигенную изменчивость и т. д. [6].

G4^raKqbi, часто представленные низкомолекулярными соединениями, способны связываться с квадруплексными последовательностями, тем самым влияя на их термическую стабильность, что в дальнейшем может приводить к нарушению действия различных белковых факторов и ферментов, функционально связанных с ДНК или РНК, и подавлять или активировать транскрипцию и трансляцию. К числу наиболее известных лигандов принадлежат

BRACO-19

производное акридина BRACO-19 и катионный порфирин TMPyP4 (рис. 1). Возможность применения G4-лигандов в качестве потенциальных антимикробных соединений продемонстрирована для таких распространенных патогенов, как Vibrio cholerae, Klebsiella pneumoniae, Streptococcus pneumoniae и Mycobacterium tuberculosis [6].

Для микобактерий туберкулеза, имеющих высокий GC-состав и значительную плотность PQS, исследование влияния G4-стабилизирующих лигандов на патоген представляется весьма перспективным. На бактериях уже показан ингибирующий эффект микромолярных концентраций известных лигандов c-exNDI-2, BRACO-19 и TMPyP4. В случае с c-exNDI-2 и BRACO-19 дополнительно продемонстрирован стабилизирующий эффект на отдельные квадруплексные последовательности, находящиеся в промоторных областях генов [7]. Для TMPyP4 установлено стабилизирующее действие на квадруплексы в генах, ассоциированных с вирулентностью [8].

Следует подчеркнуть, что во всех приведенных работах было исследовано влияние лигандов на отдельные G4-формирующие последовательности, причем наличие G4 всегда приводило к уменьшению экспрессии соответствующего гена под действием соединения. Ранее в нашей лаборатории был проанализирован транскриптомный ответ модельного микроорганизма Mycobacterium smegmatis MC2155 в ходе воздействия ингибирующих концентраций лигандов TMPyP4 (4 мкМ) и BRACO-19 (10 мкМ). Суммарно, изменение экспрессии было выявлено для 10 и 12% генов бактерии под действием TMPyP4 и BRACO-19 соответственно, однако статистической связи между дифференциально экспрессирующимися генами и наличием PQS обнаружено не было [9].

Целью работы было провести анализ влияния субингибирующих концентраций лигандов TMPyP4 (2 мкМ) и BRACO-19 (5 мкМ) на экспрессионный профиль M. smegmatis MC2155 и его сравнение с ранее полученными данными.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

Бактериальный штамм и условия культивирования

В исследовании использовали штамм Mycobacterium smegmatis MC2155. Культивировали при 37 °С во влажной атмосфере, содержащей 5% СО2, с использованием жидкой среды Миддлбрук 7H9 (HiMedia; Индия) или твердой среды Миддлбрук 7H11 (HiMedia; Индия) с добавлением 0,5% глицерина и 10% ростовой добавки

TMPyP4

9808666

Рис. 1. Структурные формулы лигандов BRACO-19 и TMPyP4

135398505

А

0,5

0,0

-0,5

m -1,0

ТМРуР4 (4 мкМ)

V

BRACO-19 (10 мкМ) ,4

ТМРуР4 (2 мкМ)

BRACO-19 (5 мкМ)

Контроль

-1,0

-0,5 -0,0 -0,5

Первая главная компонента (62%)

-1,0

BRACO-19 (5 мкМ) Т n = 316

ТМРуР4 (2 мкМ) Т n = 337

BRACO-19 (5 мкМ) i n = 273

ТМРуР4 (2 мкМ) i n = 417

BRACO-19 (10 мкМ) Т n = 555

ТМРуР4 (4 мкМ) Т n = 359

BRACO-19 (10 мкМ) i n = 310

ТМРуР4 (4 мкМ) i n = 343

Рис. 2. Различия в уровнях транскрипции между образцами Mycobacterium smegmatis, обработанными BRACO-19 и TMPyP4. A. Метод главных компонент показывает корреляцию уровней экспрессии генов в пяти разных условиях (обозначены разными цветами). Б. Диаграммы Венна показывают число пересекающихся генов, регулируемых присутствием соединений BRACO-19 и TMPyP4 в разных концентрациях

Middelbrook OADC (HiMedia). Замороженные клетки высевали из музея на чашки и выращивали в течение 24 ч перед посевом в жидкую среду.

Культивирование бактерий для транскриптомного анализа проводили согласно предыдущей публикации [9]. Клетки M. smegmatis выращивали до оптической плотности 0,47 о.е, измеренной при 570 нм, что соответствовало середине экспоненциальной фазы, и переносили в пробирки объемом 5 мл (NUOVA APTACA; Италия). В пробирки добавляли G4-стабилизирующие соединения до конечной концентрации, соответствующей половине минимальной ингибирующей концентрации (5 мкМ для BRACO-19 и 2 мкМ для TMPyP4). К контрольным образцам добавляли такой же объем ДМСО (1% по объему). Бактериальные клетки инкубировали в течение 4 ч (время деления клеток описано ранее [10]) при 37 ^ во влажной атмосфере, содержащей 5% СО2 в термостатируемом шейкере (250 об./мин). Эксперимент проводили в трех биологических повторах.

Выделение РНК и транскриптомный анализ

Fisher (Thermo Fisher Scientific; США) набором MagMAX mirVana Total RNA Isolation Kit (Thermo Fisher Scientific) в соответствии с протоколом производителя. Тотальную РНК обрабатывали набором TURBO DNA-free kit (Thermo Fisher Scientific) в объеме 50 мкл. Дополнительную очистку РНК проводили Agencourt RNA Clean XP kit (Beckman Coulter; США).

Для приготовления библиотек использовали 300 нг тотальной РНК. Удаление рибосомной РНК проводили набором Ribo-Zero Plus rRNA Depletion Kit (Illumina; США) в соответствии с протоколом производителя. Набор NEBNext Ultra II Directional RNA Library Prep Kit (NEB; США) был использован для приготовления транскриптомных библиотек. Далее библиотеки в эквимолярном количестве смешивали, разводили до конечной концентрации 12 пМ и использовали для высокопроизводительного секвенирования на платформе HiSeq 2500 Illumina наборами HiSeq Rapid SBS Kit v2 (50 циклов) и HiSeq SR Rapid Cluster Kit v2 с добавлением в качестве контроля 1% Phix (Illumina). Данные секвенирования депонированы в NCBI под номером PRJNA765512.

Б

Экстракцию РНК и транскриптомное исследование проводили по методике, описанной ранее [9]. Бактериальные клетки собирали центрифугированием (8000 g, 10 мин, 4 °C), культуру промывали буфером PBS, затем добавляли RNAprotect Bacteria Reagent (Qiagen; США) для стабилизации РНК. Разрушение клеток проводили в двухмиллилитровых пробирках Lysing Matrix B на приборе MagNA Lyzer (Roche; Швейцария) в течении 30 с. Далее РНК выделяли на автоматической станции King

Биоинформатический анализ

Секвенированные чтения были картированы на геном M. smegmatis MC2155 (CP000480.1) с использованием HISAT2 [11]. Программное обеспечение SAMtools [12] использовали для сортировки и преобразования файлов SAM в BAM и их последующего индексирования. Качество картирования и покрытие по генам оценивали с помощью QualiMap [13], отдельные отчеты объединяли с помощью MultiQC [14].

PQS на обеих цепях

n = 572

12 -9 -6 -3 -

0 -

PQS на антисмысловой цепи

n = 241

9 6 3 0

PQS на кодирующей цепи

n = 346

12 Î 9-

I—

® С

О 6 -

го _о

3 -

0

PQS в межгенных участках

n = 62

PQS в промотерах

n = 17

9 8 -

7 6 5

О BRACO-19 (5 мкМ) О BRACO-19 (10 мкМ) О Контроль О ТМРуР4 (2 мкМ) ТМРуР4 (4 мкМ)

Рис. 3. Коробчатая диаграмма, показывающая различия в экспрессии генов, содержащих PQS, между контролем, при воздействии BRACO-19 и при воздействии TMPyP4. Число генов с PQS (n) не включает гены с низким количеством CPM (Counts Per Million), в случае межгенных участков включены оба гена. В рамке показаны верхний и нижний квартили, а линия внутри рамки показывает медиану. Черная точка указывает среднее значение. Games-Howell post hoc тест был использован для вычисления значения p

секвенирования сравнивали между собой, а также с ранее полученными данными.

Метод главных компонент показал кластеризацию повторов в каждом эксперименте, а также выраженную вариацию между обоими лигандами и контролем (рис. 2A). Однако в ходе анализа не было обнаружено существенной вариации между различными концентрациями одного лиганда.

Под действием BRACO-19 было идентифицировано 589 (316Î; 2731) и 865 (555Î; 3101) дифференциально экспрессированных генов, для 5 мкМ и 10 мкМ соответственно (рис. 2Б). Напротив, в случае с TMPyP4 обнаружено снижение числа дифференциально экспрессированных генов с 754 (337Î; 4171) до 702 (359Î; 3431) для концентраций 2 мкМ и 4 мкМ соответственно.

Картированные чтения были отнесены к генам с помощью featureCounts [15]. Дифференциальный анализ экспрессии генов выполняли с использованием пакета edgeR [16] для R. Гены с отсечкой частоты ложных обнаружений (FDR) 0,05 и порогом кратности изменения (log2FC) |1| (т. е. > |2|-кратное изменение) считали дифференциально экспрессируемыми. Для межвыборочного сравнения подсчеты были нормализованы с использованием усеченного среднего значения M с поправкой на длину гена [17]. Дальнейший анализ функционального обогащения терминов GO и путей KEGG для дифференциально экспрессируемых генов был выполнен с использованием пакета clusterProfiler [18], категории считали обогащенными, если FDR < 0,05.

РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

Влияние G4-стабилизирующих лигандов BRACO-19 и TMPyP4 на экспрессию генов M. smegmatis MC2155

Для оценки влияния лигандов BRACO-19 и TMPyP4 на экспрессию генов клетки M. smegmatis обрабатывали субингибирующими концентрациями соединений (5 мкМ и 2 мкМ соответственно) в течение 4 ч. Результаты РНК-

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

Влияние лигандов на экспрессию генов, связанных с потенциальными квадруплекс-формирующими последовательностями

Связь между изменением уровня экспрессии генов под действием лигандов и наличием потенциальных квадруплекс-формирующих последовательностей оценивали для следующих ранее установленных групп: РОЭ на обеих

BRACO-19 (5 мкМ)

BRACO-19 (10 мкМ)

8 1

7 _ n = 35 6 n = 525 5- n = 23 4 -

2"

-I -- --2 --3 --4

8

7

6 "

5

4

3

' 2 -1 -0 --1 -2 -3 -4

n = 50 n = 508 n = 25

7 6 5 4 3 2 1

1 0 -1 -2 -3 -4

0 1 2 3 4 5

ТМРуР4 (2 мкМ)

n = 30 n = 511 n = 42

6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 log2 CPM

0 1 2 3 4 5

6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 log2 CPM

¡8. .*•

7 6 5 4 3 2 1 0 -1 -2 -3 -4

ТМРуР4 (4 мкМ)

n = 24 n = 524 n = 35

0 1 2 3 4

5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 log2 CPM

0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 1од2 СРМ

Экспрессия генов, ассоциированных с Э4-квадруплексами ® Повышенная • Без изменений © Пониженная

Рис. 4. График средней разницы (MD-plot) между уровнем изменения экспрессии (log2 FC) и средней экспрессией (log2 CPM) в генах, ассоциированных с потенциальными квадруплексами

цепях гена (n = 665) для 615 генов, PQS в смысловой цепи (n = 267) для 255 генов, PQS в матричной цепи (n = 398) для 360 генов, PQS в межгенных регионах (n = 53; 14/53 для двух генов), PQS в промоторных областях (n = 17) [9]. В ходе анализа для двух концентраций каждого из лигандов по сравнению с контрольными образцами не было выявлено статистически значимых различий ни для одной из представленных групп (Games-Howell post-hoc test padj. >> 0,05; рис. 3).

Число дифференциально экспрессированных генов, ассоциированных с квадруплексами, увеличивалось (58 ^ 75) с повышением концентрации BRACO-19 (5 мкМ ^ 10 мкМ), но уменьшалось (72 ^ 59) при повышении концентрации TMPyP4 (2 мкМ ^ 4 мкМ) (рис. 4).

Изменения в системе репликации и репарации под действием лигандов

Анализ результатов РНК-секвенирования показал, что под действием лигандов BRACO-19 и TMPyP4 профили генов репликативной и репарационной систем M. smegmatis существенно различались см. таблицу. Так, воздействие BRACO-19 приводило к повышению экспрессии генов, кодирующих ДНК-гиразы, ДНК-полимеразы транслезионного синтеза (ТЛС), хеликазы и белки системы репарации. ТЛС ДНК-полимеразы являются белками SOS-ответа и отвечают за активное восстановление хромосомы [19]. ДНК-гиразы (ДНК-топоизомеразы типа II) участвуют в синтезе ДНК, катализируя введение отрицательных суперскрученных витков [20]. Метилтрансфераза Ogt и ДНК-гликозилаза AlkA противодействуют повреждению ДНК в процессе алкилирования [21]. Стоит отметить, что

воздействие субингибирующей концентрации BRACO-19 (5 мкМ) приводило к изменению экспрессии меньшего числа генов. При этом повышение концентрации BRACO-19 вызывало увеличение экспрессии в два и более раза только генов ogt и alkA, что может свидетельствовать о дозозависимом эффекте.

В случае с TMPyP4 единственным геном системы репарации с повышенной экспрессией был ssbb. Ген ssbb кодирует белок, который препятствует комплементарному спариванию одноцепочечной ДНК и участвует в процессах репликации и рекомбинационной репарации. Кроме того, экспрессия ДНК-хеликазы RecQ повышалась под действием обоих лигандов.

Изменения в метаболических путях M. smegmatis MC2155, вызванные G4-лигандами

Анализ GO-категорий и KEGG-путей выявил обогащение (FDR < 0,05; рис. 5) категорий, связанных с транскрипцией (GO:0006351), процессом биосинтеза аргинина (GO:0006526), транспортом (GO:0006810), метаболизмом серы (msm00920), биосинтезом нерибосомных пептидных сидерофоров (msm01053) и ABC-транспортерами (msm02010).

Как и в случае использования ингибирующих концентраций BRACO-19, воздействие меньшим количеством соединения привело к изменению единственного метаболического пути, связанного с железом. В ходе анализа была детектирована гиперэкспрессия генов, продукты которых ответственны за биосинтез сидерофоров, их транспорт и обратный захват. Напротив, гены, вовлеченные в запасание железа,

имели пониженную экспрессию. Важно отметить, что по уровню обогащения ответ бактериальной клетки на субингибирующие концентрации лиганда был сильнее.

Использование лиганда ТМРуР4 привело к гиперэкспрессии генов транскрипционных факторов (00:0006351) и путей, участвующих в метаболизме серы (тэт00920). Последний путь был связан с обогащением транспортных систем при разных концентрациях соединения: гены категорий 00:0006810, тэт02010 и тэт00920 в большинстве пересекались между группами. В свою очередь гены, вовлеченные в биосинтез аминокислоты аргинина, характеризовались уменьшенной экспрессией, которая не зависела от концентрации лиганда.

ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ

Данное исследование является продолжением проведенной ранее работы, в которой был рассмотрен транскриптомный ответ M. smegmatis на действие ингибирующих концентраций 04-стабилизирующих соединений ВЯЛС0-19 и ТМРуР4 [9]. В представленной работе в ходе воздействия субингибирующих концентраций лигандов была предпринята попытка найти взаимосвязь РОЭ с изменением экспрессии генов, а также определить метаболические пути, являющиеся первичными ответчиками.

В ходе биоинформатического анализа было определено, что воздействие даже субингибирующими концентрациями лигандов приводит к изменению экспрессии существенного числа генов (рис. 2). Соединения показали противоположные результаты: увеличение

концентрации лигандов приводило к увеличению (в случае с BRACO-19) и уменьшению (TMPyP4) числа дифференциально экспрессированных генов. Дальнейший анализ результатов не выявил убедительных доказательств значимого повышения или понижения регуляции генов, связанных с PQS, вызванных G4-лигандами, в том числе не удалось найти конкретных доказательств опосредованной лигандами G4-стабилизации, зависимой от концентрации (рис. 3). Кроме того, мы проанализировали общие эффекты лигандов, изучив специфические гены, которые имели схожий для обоих лигандов вектор изменения экспрессии. Однако даже для генов, регулируемых одинаково обоими лигандами, нам не удалось найти конкретных доказательств опосредованной лигандами G4-стабилизации и дозозависимых эффектов. В ходе анализа не удалось также подтвердить стабилизацию ранее описанных для M. tuberculsis квадруплексных структур, в связи с существенной разницей в геномных последовательностях M. tuberculosis и M. smegmatis.

При анализе KEGG-путей и GO-категорий дозозависимый эффект тоже не был обнаружен. Все эффекты, наблюдаемые на уровне транскриптома и вызванные воздействием лигандов в субингибирующих концентрациях, коррелировали с таковыми при ингибирующих, результаты воздействия которых были опубликованы ранее [9] (рис. 5). Стоит отметить лишь систему метаболизма железа в случае с BRACO-19, показавшую больший уровень обогащения при воздействии субингибирующими концентрациями соединения. Данная система активируется в условиях дефицита железа, при окислительном и нитрозативном стрессах, а также в случае потребности в металлопротеинах, участвующих в

Таблица. Изменение уровня экспрессии генов системы репликации и репарации M. smegmatis под действием BRACO-19 и TMPyP4

Локус Ген Продукт Экспрессия генов под действием BRACO-19 в сравнении с контролем Экспрессия генов под действием TMPyP4 в сравнении с контролем

5 мкМ 10 мкМ 2 мкМ 4мкМ

MSMEG_0005 gyrB ДНК-гираза субъединица В 2,485372* 2,304708 -1,79363 -1,70249

MSMEG_0006 gyrA ДНК-гираза субъединица А 2,152993 2,316561 -2,34404 -1,84273

MSMEG_1327 recB Экзодезоксирибонуклеаза субъединица В 1,158257 1,240121 -2,16073 -2,2508

MSMEG_1620 imuA' Гипотетический белок 1,957144 2,865713 1,419836 -1,08999

MSMEG_1622 imuB Репаративная ДНК-полимераза 1,867917 2,435738 1,721681 1,944552

MSMEG_1633 dnaE2 ДНК-полимераза транслезионного синтеза 1,855874 2,529669 1,720836 1,865113

MSMEG_2442 RNaseH2 {rnhB) Рибонуклеаза Н11 1,845015 2,135989 1,353681 1,362699

MSMEG_3172 dinB1 ДНК-полимераза IV 2,069791 2,304246 1,066778 1,130623

MSMEG_3885 helY РНК-хеликаза семейства ОЕАО/ОЕАН 2,540092 3,424716 -1,17839 -1,13342

MSMEG_4701 ssbb Белок, связывающий одноцепочечную ДНК 1,509562 1,910513 2,236647 2,367929

MSMEG_4925 alkA Регулятор транскрипции, белок семейства АСа/ДНК-3-метиладенингликозилаза II 3,608202 8,892216 1,477495 1,539172

MSMEG_4928 ogt Цистеин метилтрансфераза 4,145998 9,941453 1,106208 1,357626

MSMEG_5397 recQ АТФ-зависимая ДНК-хеликаза ЯесО 3,156958 4,455866 2,107502 2,911045

MSMEG_5422 mazG Пирофосфогидролаза 1,754292 1,586085 -2,46206 -2,19913

MSMEG_6443 dinB3 ДНК-полимераза IV 2,077001 2,867936 1,164152 1,261415

MSMEG_6896 ssba Белок, связывающий одноцепочечную ДНК -1,70995 -2,71083 -1,27025 -1,32274

Примечание: * — жирным выделены изменения экспрессии, которые отвечают следующим критериям: изменение более чем в два раза и БЭР < 0,05.

BRACO-19 (5 мкМ)

G0:0006810-

G0:0006526-

G0:0006351

BRACO-19 (10 мкМ)

ТМРуР4 (2 мкМ)

—о

ТМРуР4 (4 мкМ)

msm02010-

msm01053

msm00920

10

15 200 2.5

FDR

0,01 0,02 0,03 0,04

5 7.5 10 0 3 Уровень обогащения

о 5

Число генов о 10

О 40

12 0

Экспрессия

10

Повышенная Пониженная

Рис. 5. ОО-категории и КЕОО-пути, обогащенные в образцах под действием различных концентраций ВЯАСО-19 и ТМРуР4. 00:0006810 — транспорт; 00:0006526 — биосинтез аргинина; 00:0006351 — ДНК-опосредованная транскрипция; тэт02010 — АВС-транспортеры; тэт01053 — биосинтез нерибосомных пептидов группы сидерофоров; тэт00920 — метаболизм серы

репликации и репарации ДНК [22]. При субингибирующей концентрации BRACO-19 был перепредставлен путь биосинтеза нерибосомных пептидных сидерофоров (msm01053), включающий гены синтеза микобактина. Рассмотрение других систем пути выявило постепенное повышение экспрессии генов с увеличением концентрации лиганда.

Анализ генов системы репликации и репарации выявил единственный ген recQ, экспрессия которого была увеличена под действием субингибирующих концентраций BRACO-19 и TMPyP4. Для E. coli показано, что хеликаза RecQ способна разрешать квадруплексные структуры, однако белок RecQ в M. smegmatis не является гомологом белка из E. coli и отсутствует в M. tuberculosis

[23]. Данное наблюдение говорит о необходимости дальнейшего исследования функций белка RecQ M. smegmatis на предмет его способности разрешать й4-структуры.

В дополнение следует отметить, что транскрипционный ответ микроорганизмов представляет собой сложное явление, модулируемое множественными факторами, включая специфичные системы регуляции, воздействие факторов внешней среды и др. Так, к примеру, в последнее время получены свидетельства того, что при определенных условиях квадруплексы, помимо ингибирующего действия, могут выступать в роли активаторов транскрипции. Для эукариотических организмов показано, что квадруплексы могут служить центрами связывания факторов транскрипции, изменять архитектуру хроматина, стабилизировать R-петли и т. д.

[24]. Эксперименты на бактериях показали также, что стабилизация квадруплексов посредством производных нафталин диимида способна не только ингибировать

экспрессию у грамотрицательных микроорганизмов, но и усиливать ее у грамположительных, что указывает на двойственную природу квадруплекс-опосредованной регуляции [25]. Следует также отметить, что несмотря на то, что РНК-квадруплексы бактерий исследованы слабо, существуют свидетельства их наличия у микроорганизмов, как и их участия в регуляции биологических процессов [26]. Таким образом, разработка новых методов обнаружения и подтверждения квадруплексных структур, в том числе и протеомными экспериментами, в будущем обеспечит значительный прогресс в понимании роли отдельных 04 в регуляции генов.

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

ВЫВОДЫ

В настоящее время квадруплексы обнаружены в геномах значительного большинства микроорганизмов и, несомненно, являются важным элементом регуляции. Тем не менее в представленном исследовании не удалось выявить прямую связь между стабилизацией потенциальных квадруплексных структур и экспрессией генов, ассоциированных с ними. Оба соединения действовали на микроорганизм и приводили к изменению существенного количества транскриптов и метаболических путей. А обнаруженные изменения в генах факторов транскрипции и системы репликации и репарации, в случае использования лигандов, указывают на потенциальное действие на уровне РНК/ДНК, что согласуется с последними данными по квадруплекс-опосредованной регуляции генома. В свою очередь гиперэкспрессия гена хеликазы РеоО может служить основой для последующих исследований белка в качестве фермента, участвующего в разрешении квадруплексных структур.

Литература

1. Global Tuberculosis Report 2021 [cited 2022 Apr 7]. Available from: https://www.who.int/teams/global-tuberculosis-programme/tb-reports/global-tuberculosls-report-2021.

2. Kadura S, King N, Nakhoul M, Zhu H, Theron G, Köser CU, et al. Systematic review of mutations associated with resistance to the new and repurposed Mycobacterium tuberculosis drugs bedaquiline, clofazimine, linezolid, delamanid and pretomanid. Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 2020; 75 (8): 2031.

3. Spiegel J, Adhikari S, Balasubramanian S. The structure and function of DNA G-quadruplexes. Trends Chem. 2020; 2 (2): 123-36.

4. Masai H, Tanaka T. G-quadruplex DNA and RNA: Their roles in regulation of DNA replication and other biological functions. Biochemical and Biophysical Research Communications. 2020; 531 (1): 25-38.

5. Bartas M, Cutová M, Brázda V, Kaura P, StAstny J, Kolomazník J, et al. The presence and localization of G-quadruplex forming sequences in the domain of bacteria. Molecules. 2019; 24 (9).

6. Yadav P, Kim N, Kumari M, Verma S, Sharma TK, Yadav V, et al. G-quadruplex structures in bacteria: biological relevance and potential as an antimicrobial target. Journal of Bacteriology. 2021; 203 (13).

7. Perrone R, Lavezzo E, Riello E, Manganelli R, Palii G, Toppo S, et al. Mapping and characterization of G-quadruplexes in Mycobacterium tuberculosis gene promoter regions. Sci Rep. 2017; 7 (1).

8. Mishra SK, Shankar U, Jain N, Sikri K, Tyagi JS, Sharma TK, et al. Characterization of G-quadruplex motifs in espB, espK, and cyp51 genes of mycobacterium tuberculosis aspotential drug targets. Mol Ther Nucleic Acids. 2019; 16: 698-706.

9. Shitikov E, Bespiatykh D, Malakhova M, Bespyatykh J, Bodoev I, Vedekhina T, et al. Genome-wide tanscriptional response of mycobacterium smegmatis MC 2 155 to G-quadruplex ligands BRACO-19 and TMPyP4. Front Microbiol. 2022; 13.

10. Logsdon MM, Aldridge BB. Stable regulation of cell cycle events in mycobacteria: insights from Inherently heterogeneous bacterial populations. Front Microbiol. 2018; 9 (MAR).

11. Kim D, Langmead B, Salzberg SL. HISAT: a fast spliced aligner with low memory requirements. Nat Methods. 2015; 12 (4): 357-60.

12. Li H, Handsaker B, Wysoker A, Fennell T, Ruan J, Homer N, et al. The sequence alignment/map format and SAMtools. Bioinformatics. 2009; 25 (16): 2078-9.

13. Okonechnikov K, Conesa A, García-Alcalde F. Qualimap 2: advanced multi-sample quality control for high-throughput

References

1. Global Tuberculosis Report 2021 [cited 2022 Apr 7]. Available from: https://www.who.int/teams/global-tuberculosis-programme/tb-reports/global-tuberculosis-report-2021.

2. Kadura S, King N, Nakhoul M, Zhu H, Theron G, Koser CU, et al. Systematic review of mutations associated with resistance to the new and repurposed Mycobacterium tuberculosis drugs bedaquiline, clofazimine, linezolid, delamanid and pretomanid. Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 2020; 75 (8): 2031.

3. Spiegel J, Adhikari S, Balasubramanian S. The structure and function of DNA G-quadruplexes. Trends Chem. 2020; 2 (2): 123-36.

4. Masai H, Tanaka T. G-quadruplex DNA and RNA: Their roles in regulation of DNA replication and other biological functions. Biochemical and Biophysical Research Communications. 2020; 531 (1): 25-38.

5. Bartas M, Cutova M, Brazda V, Kaura P, StAstny J, Kolomaznik J, et al. The presence and localization of G-quadruplex forming sequences in the domain of bacteria. Molecules. 2019; 24 (9).

6. Yadav P, Kim N, Kumari M, Verma S, Sharma TK, Yadav V, et al. G-quadruplex structures in bacteria: biological relevance and potential as an antimicrobial target. Journal of Bacteriology. 2021; 203 (13).

sequencing data. Bioinformatics. 2016; 32 (2): 292-4.

14. Ewels P, Magnusson M, Lundin S, Kaller M. MultiQC: summarize analysis results for multiple tools and samples in a single report. Bioinformatics. 2016; 32 (19): 3047-8.

15. Liao Y, Smyth GK, Shi W. featureCounts: an efficient general purpose program for assigning sequence reads to genomic features. Bioinformatics. 2014; 30 (7): 923-30.

16. Robinson MD, McCarthy DJ, Smyth GK. edgeR: a Bioconductor package for differential expression analysis of digital gene expression data. Bioinformatics. 2010; 26 (1): 139-40.

17. Smid M, Coebergh van den Braak RRJ, van de Werken HJG, van Riet J, van Galen A, de Weerd V, et al. Gene length corrected trimmed mean of M-values (GeTMM) processing of RNA-seq data performs similarly in intersample analyses while improving intrasample comparisons. BMC Bioinformatics. 2018; 19 (1).

18. Yu G, Wang LG, Han Y, He QY. clusterProfiler: an R package for comparing biological themes among gene clusters. OMICS. 2012; 16 (5): 284-7.

19. W Yang, Y Gao. Translesion and repair DNA polymerases: diverse structure and mechanism. Annu Rev Biochem. 2018; 87: 239-61.

20. Mdluli K, Ma Z. Mycobacterium tuberculosis DNA gyrase as a target for drug discovery. Infect Disord Drug Targets. 2007; 7 (2): 159-68.

21. Yang M, Aamodt RM, Dalhus B, Balasingham S, Helle I, Andersen P, et al. The ada operon of Mycobacterium tuberculosis encodes two DNA methyltransferases for inducible repair of DNA alkylation damage. DNA Repair. 2011; 10 (6): 595-602.

22. Namouchi A, Gómez-Muñoz M, Frye SA, Moen LV, Rognes T, Tanjum T, et al. The Mycobacterium tuberculosis transcriptional landscape under genotoxic stress. BMC Genomics. 2016; 17 (1): 1-13.

23. Wu X, Maizels N. Substrate-specific inhibition of RecQ helicase. Nucleic Acids Research. 2001; 29 (8): 1765-71.

24. Robinson J, Raguseo F, Nuccio SP, Liano D, di Antonio M. DNA G-quadruplex structures: more than simple roadblocks to transcription? Nucleic Acids Res. 2021; 49 (15): 8419-31.

25. Cebrián R, Belmonte-Reche E, Pirota V, de Jong A, Morales JC, Freccero M, et al. G-quadruplex DNA as a target in pathogenic bacteria: efficacy of an extended naphthalene diimide ligand and Its mode of action. Journal of Medicinal Chemistry. 2021.

26. Shao X, Zhang W, Umar MI, Wong HY, Seng Z, Xie Y, et al. RNA G-quadruplex structures mediate gene regulation in bacteria. mBio. 2020; 11 (1).

7. Perrone R, Lavezzo E, Riello E, Manganelli R, Palii G, Toppo S, et al. Mapping and characterization of G-quadruplexes in Mycobacterium tuberculosis gene promoter regions. Sci Rep. 2017; 7 (1).

8. Mishra SK, Shankar U, Jain N, Sikri K, Tyagi JS, Sharma TK, et al. Characterization of G-quadruplex motifs in espB, espK, and cyp51 genes of mycobacterium tuberculosis aspotential drug targets. Mol Ther Nucleic Acids. 2019; 16: 698-706.

9. Shitikov E, Bespiatykh D, Malakhova M, Bespyatykh J, Bodoev I, Vedekhina T, et al. Genome-wide tanscriptional response of mycobacterium smegmatis MC 2 155 to G-quadruplex ligands BRACO-19 and TMPyP4. Front Microbiol. 2022; 13.

10. Logsdon MM, Aldridge BB. Stable regulation of cell cycle events in mycobacteria: insights from Inherently heterogeneous bacterial populations. Front Microbiol. 2018; 9 (MAR).

11. Kim D, Langmead B, Salzberg SL. HISAT: a fast spliced aligner with low memory requirements. Nat Methods. 2015; 12 (4): 357-60.

12. Li H, Handsaker B, Wysoker A, Fennell T, Ruan J, Homer N, et al. The sequence alignment/map format and SAMtools. Bioinformatics. 2009; 25 (16): 2078-9.

13. Okonechnikov K, Conesa A, García-Alcalde F. Qualimap 2: advanced multi-sample quality control for high-throughput

sequencing data. Bioinformatics. 2016; 32 (2): 292-4.

14. Ewels P, Magnusson M, Lundin S, Kaller M. MultiQC: summarize analysis results for multiple tools and samples in a single report. Bioinformatics. 2016; 32 (19): 3047-8.

15. Liao Y, Smyth GK, Shi W. featureCounts: an efficient general purpose program for assigning sequence reads to genomic features. Bioinformatics. 2014; 30 (7): 923-30.

16. Robinson MD, McCarthy DJ, Smyth GK. edgeR: a Bioconductor package for differential expression analysis of digital gene expression data. Bioinformatics. 2010; 26 (1): 139-40.

17. Smid M, Coebergh van den Braak RRJ, van de Werken HJG, van Riet J, van Galen A, de Weerd V, et al. Gene length corrected trimmed mean of M-values (GeTMM) processing of RNA-seq data performs similarly in intersample analyses while improving intrasample comparisons. BMC Bioinformatics. 2018; 19 (1).

18. Yu G, Wang LG, Han Y, He QY. clusterProfiler: an R package for comparing biological themes among gene clusters. OMICS. 2012; 16 (5): 284-7.

19. W Yang, Y Gao. Translesion and repair DNA polymerases: diverse structure and mechanism. Annu Rev Biochem. 2018; 87: 239-61.

20. Mdluli K, Ma Z. Mycobacterium tuberculosis DNA gyrase as a

target for drug discovery. Infect Disord Drug Targets. 2007; 7 (2): 159-68.

21. Yang M, Aamodt RM, Dalhus B, Balasingham S, Helle I, Andersen P, et al. The ada operon of Mycobacterium tuberculosis encodes two DNA methyltransferases for inducible repair of DNA alkylation damage. DNA Repair. 2011; 10 (6): 595-602.

22. Namouchi A, Gómez-Muñoz M, Frye SA, Moen LV, Rognes T, Tanjum T, et al. The Mycobacterium tuberculosis transcriptional landscape under genotoxic stress. BMC Genomics. 2016; 17 (1): 1-13.

23. Wu X, Maizels N. Substrate-specific inhibition of RecQ helicase. Nucleic Acids Research. 2001; 29 (8): 1765-71.

24. Robinson J, Raguseo F, Nuccio SP, Liano D, di Antonio M. DNA G-quadruplex structures: more than simple roadblocks to transcription? Nucleic Acids Res. 2021; 49 (15): 8419-31.

25. Cebrián R, Belmonte-Reche E, Pirota V, de Jong A, Morales JC, Freccero M, et al. G-quadruplex DNA as a target in pathogenic bacteria: efficacy of an extended naphthalene diimide ligand and Its mode of action. Journal of Medicinal Chemistry. 2021.

26. Shao X, Zhang W, Umar MI, Wong HY, Seng Z, Xie Y, et al. RNA G-quadruplex structures mediate gene regulation in bacteria. mBio. 2020; 11 (1).

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.