CC BY
52
БИОЛОГИЯ, ЭКОЛОГИЯ
УДК 639.371.2:591.1
С. Ю. Касаева, Е. А. Федосеева
Научно-производственный центр «БИОС»
Астрахань
ВЛИЯНИЕ РЕКОМБИНАНТНОГО ИНТЕРЛЕЙКИНА-2 НА ФИЗИОЛОГИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ ГИБРИДА БЕЛУГА X СТЕРЛЯДЬ (БЕСТЕР) ПОСЛЕ ХИРУРГИЧЕСКОГО ВМЕШАТЕЛЬСТВА ДЛЯ ОЦЕНКИ РАЗВИТИЯ ГОНАД
Систематическое воздействие стресс-факторов на осетровых рыб, выращиваемых в условиях аквакультуры, способствует развитию иммунодефицитных состояний. При этом страдает не только гуморальное, но и клеточные звенья иммунитета. Главным образом это касается клеток иммунного надзора - лимфоцитов [ 1-4].
В связи с этим особую актуальность приобретает профилактика и лечебная терапия экологически чистыми, безопасными для человека медикаментозными средствами группы иммуномодуляторов, обладающих иммуностимулирующими свойствами и способствующих устранению Т-клеточных дефицитов.
Интерлейкины являются неспецифическими препаратами и имеют по сравнению с интерфероном большие потенциальные возможности по использованию их в качестве терапевтических препаратов для коррекции Т-клеточных дефицитов. Компоненты системы 1Ь координированно вовлечены в регуляцию иммунного ответа и необходимы для дифференцировки, активации Т- и В-лимфоцитов и других клеток иммунного ответа и интегрированы в цитокино-вую сеть [5]. Мишенями регуляторного действия 1Ь-2 являются различные субпопуляции Т-клеток, В-клетки, натуральные киллерные клетки, макрофаги [6]. В последние годы в медицине и ветеринарии широко используется отечественный генно-инженерный аналог интерлейкина-2 - рекомбинантный интерлейкин-2 (г1Ь-2) «Ронколейкин» (производство ООО
«БИОТЕХ», Санкт-Петербург). Рекомбинантный интерлейкин-2 применяют в качестве иммунокорректора при различных инфекционных, гнойно-воспалительных, кожных, онкологических заболеваниях, постоперационных осложнениях и их профилактике, при заболеваниях глаз, дыхательных путей, воздействии стресс-факторов, в качестве адъюванта вакцин [7, 8].
Поскольку при операциях, осуществляемых в осетроводстве при получении половых продуктов и прижизненной оценке гонад, существует риск возникновения постоперационных осложнений на фоне снижения клеточного иммунитета, то на производственной базе ФГУП «НИЦ по осетроводству «БИОС» были проведены эксперименты по изучению влияния рекомбинантного г1Ь-2 на физиологические показатели гибрида белуга х стерлядь (бестер).
Материалы и методы исследования
Объектом исследования являлся гибрид белуга х стерлядь - бестер ^1рвтвг тко^иклт). Материалом исследования послужили 2-годовики данного гибрида. Для эксперимента было сформировано 3 группы (1, 2 и «контроль») рыб, которым была сделана лапаротомия с биопсией гонад. В группе 1 10-ти рыбам вводили внутривенно препарат «Ронколейкин» в дозе 1 000 ед./кг массы тела; в группе 2 - 10-ти рыбам - 2 000 ед./кг однократно, непосредственно после взятия крови из хвостовой вены перед операцией. Бестерам группы «контроль» (11 экз.) после операции, также однократно, вводили окситетрациклин пролонгированного действия - нитокс, в дозе
0,1 мл/кг биомассы. Все особи были индивидуально помечены.
При клиническом осмотре рыб оценивали состояние шва, меток, жабр, кожных покровов, характер слизеотделения и учитывали поведенческие реакции.
Отбор проб крови у двухлеток бестера осуществляли пункцией хвостовой вены. Иодсчет форменных элементов крови проводили унифицированным методом в счетной камере Горяева, скорость оседания эритроцитов (СОЭ) - по методу Ианченкова. Мазки крови фиксировали раствором Майн-Грюнвальда и докрашивали азур-эозином по Романовскому. Иодсчет лейкоцитарной формулы проводили по методике Ивановой [9]. Уровень гемоглобина в крови определяли гемоглобинцианидным методом. Содержание общего белка в сыворотке крови исследовали биуретовым методом, альбумина - по реакции с бромкрезоловым зеленым. Лизосомально-катионный тест (ЛКТ) проводили по методу Иигаревского [10]. Уровень иммуноглобулинов определяли по унифицированной методике Воловенко [11]. В работе использовали диагностические наборы фирмы «Агат-Мед», «Ольвекс», «Лахема».
Результаты клинического осмотра бестеров в условиях эксперимента
Визуальное наблюдение за состоянием и поведенческими реакциями рыб проводили с первого дня после операции. В начале эксперимента каких-либо отклонений у рыб не выявлено. Повторному ихтиопатологическому осмотру рыба подверглась только на 15-е сутки во избежание дополнительного стресса и травматизации оперированных особей. Ири этом у всех бестеров отмечено воспаление в области шва (табл. 1).
Таблица 1
Клиническая картина операционных швов у бестеров в условиях эксперимента
Препарат, Состояние шва, Всего рыб, Сутки
доза баллы экз. 15 30 45
- - 4 8
г1Ь-2 1 000 ед./кг массы тела (группа 1) + 10 - 3 2
++ 3 2 -
+++ 7 1 -
- - 5 8
г1Ь-2 2 000 ед./кг массы тела (группа 2) + 10 - 3 2
++ 4 2 -
+++ 6 - -
Окситетрациклин 0,1 мл/кг (контроль) - - 2 5
+ 11 2 1 6
++ 5 5 -
+++ 4 3 -
Примечание. (-) - рубцевание разреза, снятие швов; (+) - гиперемия тканей, отечность; (++) - гиперемия тканей, отечность, выделение сукровицы; (+++) - гиперемия тканей, отечность, выделение сукровицы, некроз тканей.
У рыб групп 1 и 2 зафиксирована клиническая картина, характерная для острой фазы воспалительного процесса в области разреза и наложения швов (значительная гиперемия, покраснение, очаговый некроз покровных и подлежащих тканей, выделение кровянистого экссудата), снижение мышечного тонуса, вялость; в области брюшных жучек, хвостового стебля и меток - потертости и у некоторых особей - петехии. У большинства рыб из группы «контроль», инъецированных окси-тетрациклином пролонгированного действия, воспалительная реакция была менее выражена, края разрезов были ровными, с незначительной гиперемией тканей и выделением сукровицы. У этих особей отмечено также снижение мышечного тонуса и ответной реакции на раздражители.
На 30-е сутки у гибридов из групп 1 и 2 зарегистрировано улучшение состояния швов; при этом выявлена повышенная регенерация покровных и подлежащих тканей, прекращение некротических процессов. Кроме того, у этих групп рыб отмечена усиленная реакция на раздражители. У контрольных оперированных особей, наоборот, было зафиксировано некоторое ухудшение физиологического состояния: наблюдали активизацию воспалительных процессов в раневой области (табл. 1), а также покраснение хвостового стебля в месте предыдущего забора крови. На промежуточном ихтипатологическом осмотре у некоторых экспериментальных особей в связи с удовлетворительным состоянием были сняты швы. В большей мере это касалось рыб, которым вводили препарат «Ронколейкин» в дозе 2 000 ед./кг.
На 45-е сутки, при очередном взятии крови, у всех оперированных рыб были сняты швы, однако у контрольных особей все же оставались признаки воспалительных процессов.
Гематологические показатели бестеров в условиях эксперимента
Уровень гемоглобина в крови (НЬ, г/л) в начале эксперимента был различен при р < 0,05 во всех группах (табл. 2). В дальнейшем достоверных различий не выявлено. Концентрация НЬ у рыб из всех экспериментальных групп (р < 0,05) снижалась в течение 30-ти дней и повысилась только к концу эксперимента.
При анализе содержания эритроцитов в крови и содержания гемоглобина в одном эритроците (табл. 2) выявлено, что в данном случае компенсация гемоглобина после операционной и постоперационой кровопотери осуществлялась различными путями.
Таблица 2
Гематологические показатели бестеров в условиях эксперимента
Вариант Показатель 0 сутки 15 сутки 30 сутки 45 сутки
Группа 1 НЬ ± т, г/л 68,21 ± 5,18* 62,50 ± 5,22 49,27 ± 4,50 68,40 ± 5,77
Группа 2 93,85 ± 5,19* 68,69 ± 5,74 57,00 ± 2,30 83,09 ± 4,49
Контроль 85,77 ± 3,79* 74,26 ± 4,45 59,29 ± 3,87 88,43 ± 9,74
Группа 1 Ег ± т, 10-12л 0,97 ± 0,05* 0,81 ± 0,07* 0,79 ± 0,09 0,86 ± 0,06*
Группа 2 1,07 ± 0,05 1,16 ± 0,10* 0,75 ± 0,08 0,90 ± 0,06*
Контроль 1,22 ± 0,07* 0,94 ± 0,13* 0,90 ± 0,11 1,00 ± 0,08*
Группа 1 НЬ/Ег, пкг 60,50 ± 4,38* 80,99 ± 6,68* 65,05 ± 4,15 82,55 ± 8,78
Группа 2 88,39 ± 4,85* 55,26 ± 6,06* 73,71 ± 6,18 95,03 ± 9,42
Контроль 71,77 ± 4,18* 87,99 ± 10,32* 70,74 ± 4,83 92,29 ± 10,91
Группа 1 Ье ± т; 10-12л 0,03 ± 0,01 0,21 ± 0,05 0,17 ± 0,03 0,07 ± 0,02*
Группа 2 0,04 ± 0,02 0,23 ± 0,05* 0,16 ± 0,05 0,07 ± 0,01*
Контроль 0,04 ± 0,02 0,16 ± 0,01* 0,21 ± 0,06 0,14 ± 0,05*
* Различия достоверны при р < 0,05; Ег - эритроциты; Ье - лейкоциты.
В первые 15 суток у рыб групп 1 и «контроль» этот процесс происходил на фоне снижения общего числа эритроцитов за счет увеличения НЬ в одном эритроците, а у группы рыб 2, инъецированной препаратом «Ронколейкин» в дозе 2 000 ед./кг, - за счет увеличения эритроцитов в крови на 43,2 и 23, 4 % относительно групп 1 и «контроль». На 30-е сутки наблюдали противоположную картину - у рыб группы 2 отмечено увеличение концентрации гемоглобина в одном эритроците на 4,0 и 13,0 % относительно групп 1 и «контроль» при снижении количества эритроцитов крови. При этом в этот период был зафиксирован минимальный уровень гемоглобина в крови у всех экспериментальных групп бестеров.
Абсолютное количество лейкоцитов в крови рыб групп 1 и 2 на 15-е сутки было в 1,3 и 1, 4 раза больше, чем у рыб контрольного варианта, причем различия между контрольной группой и группой 2 были при р < 0,05. На 30-е сутки также зарегистрированы различия между этим показателем, но они были недостоверными. На 45-е сутки уровень лейкоцитов в крови рыб из контрольной группы превысил в 2,0 раза аналогичные показатели опытных вариантов (р < 0,05). Динамика уровня лейкоцитов в крови четко отражает состояние рыб после операции в различных вариантах эксперимента и соответствует клинической картине в области шва.
Скорость оседания эритроцитов у рыб в норме составляет 2-10 мм/ч и напрямую зависит от многих обстоятельств: температуры воды, ее бактериального фона, наличия стресс-факторов и общего физиологического состояния организма рыб. В нашем случае СОЭ у оперированных рыб была в пределах физиологической нормы и колебалась в экспериментальный период от 2 до 8 мм/ч. Однако при анализе СОЭ у оперированных рыб, инъецированных различными препаратами, обнаружено, что максимальные значения этого показателя зарегистрированы на 15-е сутки у особей, которым внутривенно вводили «Ронколейкин», что соответствует наблюдаемой клинической картине воспалительных процессов в области шва. При этом СОЭ в группах 1 и 2
была выше на 29,3 и 21,1 % соответственно относительно контроля. Максимальные значения СОЭ у рыб с инъекцией антибиотика зарегистрированы на 30-е сутки, что также согласуется с результатами ихтиопатологического осмотра бестеров.
Физиолого-иммунологические показатели бестеров в условиях эксперимента
Детальное изучение основных белковых фракций сыворотки крови показало, что в послеоперационный период концентрация общего белка (ОБ) снижалась при р < 0,05 на 33,4; 20,9; 34,7 % в течение 30-ти суток у всех групп рыб в основном за счет альбуминовой (Алб) фракции, соответственно по группам 1, 2 и «контроль». Уровень иммуноглобулинов (^) увеличивался на 18,6; 22,5; 22,5 % соответственно по группам 1, 2 и «контроль» (табл. 3).
Таблица 3
Физиологические показатели бестера в условиях эксперимента
Вариант Показатель 0 сутки 15 сутки 30 сутки 45 сутки
Группа 1 Алб ± т, г/л 11,99 ± 0,71 8,58 ± 0,20 8,24 ± 0,30 11,21 ± 0,21
Г руппа 2 11,27 ± 0,29 8,50 ± 0,40 9,06 ± 0,33 11,36 ± 0,22
Контроль 11,21 ± 0,13 9,93 ± 0,28 9,31 ± 0,40 10,72 ± 0,31
Группа 1 ОБ ± т, г/л 31,17 ± 0,95 25,97 ± 1,20 20,77 ± 1,06 29,16 ± 0,82
Г руппа 2 29,98 ± 2,46 27,72 ± 1,15 23,72 ± 1,38 29,31 ± 0,60
Контроль 31,18 ± 1,92 26,37 ± 1,07 20,35 ± 1,33 26,07 ± 1,33
Группа 1 ^ ± т, г/л 7,06 ± 0,27 8,21 ± 0,18 8,37 ± 0,23 6,73 ± 0,34
Г руппа 2 7,11 ± 0,24 8,37 ± 0,24 8,90 ± 0,24 6,48 ± 0,19
Контроль 6,95 ± 0,26 8,00 ± 0,22 8,71 ± 0,26 6,49 ± 0,45
Группа 1 ^/ОБ ± т, % 22,81 ± 1,04 26,62 ± 1,16 32,98 ± 1,97 23,50 ± 2,10
Г руппа 2 24,55 ± 1,33 28,87 ± 1,47 35,65 ± 1,86 28,11 ± 1,74
Контроль 23,80 ± 1,60 27,50 ± 1,96 32,08 ± 1,92 33,69 ± 3,84
Динамика концентрации альбуминов в сыворотке крови свидетельствует о том, что у рыб после длительной зимовки с отсутствием питания и лапаротомии наблюдается снижение концентрации белков (р < 0,05), выполняющих транспортную и резервную функции, на 31,3; 19,6; 16,8 % соответственно по группам рыб 1, 2, «контроль». Кроме того, это может свидетельствовать об активной регенерации тканей в раневой области. Причем к 45-м суткам уровень концентрации альбуминов возрастал, что подтверждает завершение репарационного процесса.
Таким образом, анализ концентраций основных белковых фракций сыворотки крови оперированных бестеров из разных групп не выявил особых различий (р > 0,05) после применения иммунокорректора и антибиотика.
Показатели ЛКТ и клеток белой крови у бестеров в условиях эксперимента
Для оценки способности к фагоцитозу палочкоядерных нейтрофилов крови бестеров был использован ЛКТ, в котором определяли содержание лизосомальных катионных белков (ЛКБ) по среднему цитохимическому коэффициенту (СЦК). Полученные данные (табл. 4) свидетельствуют), что в дооперационный период СЦК нейтрофилов у всех групп бестеров был в пределах нормы и соответствовал по пятибалльной шкале пяти баллам.
Таблица 4
ЛКТ бестеров в условиях эксперимента СЦК ± т; у. е.
Вариант 0 сутки 15 сутки 30 сутки 45 сутки
Опыт 1 1,19 ± 0,09 0,60 ± 0,07 0,64 ± 0,14 0,54 ± 0,05
Опыт 2 1,31 ± 0,07 0,58 ± 0,06 0,50 ± 0,05 0,70 ± 0,06*
Контроль 1,24 ± 0,12 0,44 ± 0,05 0,49 ± 0,08 0,51 ± 0,06
Различия достоверны при р < 0,05.
В дальнейшем у всех бестеров из групп, подвергнутых лапаротомии, отмечена супрессия функциональной активности палочкоядерных нейтрофилов (ПЯН), при этом СЦК снижался (р < 0,05) и был оценен как неудовлетворительный (2 балла). На 15-30-е сутки в крови бестеров наблюдали увеличение числа гранулоцитов со сниженной способностью к фагоцитозу. Так, у групп рыб, инъецированных г1Ь-2, в обеих дозах при увеличении численности палочкоядерных нейтрофилов в 2,3 и 2,2 раза СЦК снизился в 1,9 и 2,3 раза. У бестеров, инъецированных антибиотиком, уровень ПЯН возрос в 1,8 раза, а СЦК - уменьшился в 2,9 раза, что, вероятно, обусловлено не только оперативным вмешательством, как в первых двух случаях, но и дополнительным ингибированием окситетрациклином нейтропоэза и его негативным воздействием на формирование гранулоцитов, способных к фагоцитозу. Отмечено, что при повышении лимфоцитов в крови увеличивается и СЦК ЛКБ нейтрофилов. Коэффициент корреляции между СЦК ЛКТ нейтрофилов и уровнем лейкоцитов в крови бестеров составил 0,72. На 45-е сутки зарегистрировано некоторое увеличение среднего цветного коэффициента ЛКБ у группы особей, инъецированных г1Ь-2 в дозе 2 000 ед./кг - до уровня 0,7, что соответствует по пятибалльной шкале 4-м (хорошо). У рыб из групп 1 и контроль этого не зафиксировано. Значения СЦК у бестеров группы 2 свидетельствуют о более раннем восстановлении организма после оперативного вмешательства, в том числе фагоцитарной функции гранулоцитов, по сравнению с рыбами групп 1 и «контроль».
Микроскопия мазков крови подопытных бестеров показала, что в начале эксперимента лейкоцитарный профиль рыб был относительно идентичным (рис.). При этом отмечена лейкопения.
Сутки
□ лимфоциты ■ моноциты Нэозинофилы
В сегментоядерные нейтрофилы □ палочкоядерные нейтрофилы
Лейкоцитарный профиль бестеров в условиях эксперимента:
* - различия достоверны при р < 0,05; ** - различия достоверны при р < 0,001
На 15-е сутки отмечено перераспределение лейкограммы в сторону нейтрофилии (р < 0,05) у всех групп оперированных особей, при этом основную долю нейтрофильных гранулоцитов составляли палочкоядерные формы, а в абсолютных показателях - сегментоядерные. У групп 1 и 2 увеличилось также содержание моноцитов - в 2,1 и 1,7 раза. Относительное число эозино-филов, напротив, уменьшилось в 2 и 1,1 раза, а в абсолютных значениях увеличилось в среднем в 3,5 раза. У рыб, инъецированных окситетрациклином, наблюдали аналогичные изменения в крови. Однако количество эозинофилов превысило типичные показатели в 6,0 раза (р < 0,05), что, по всей видимости, обусловлено некоторой интоксикацией организма, вызванной окситет-рациклином. При сопоставлении данных лейкограмм с клинической картиной в операционной области выявлено, что они характеризуют неодинаковую клиническую картину - острое воспаление у рыб, инъецированных препаратом «Ронколейкин», и вялотекущую воспалительную реакцию у бестеров с инъекцией окситетрациклина. На 30-й день исследований в лейкоцитарной формуле обнаружено, что лейкограммы рыб всех вариантов практически одинаковы, и был отмечен четкий лимфоцитарный профиль, но у рыб из группы контроля зарегистрировали ста-
бильную эозинофилию. Абсолютное количество эозинофилов в крови бестеров, проинъециро-ванных окситетрациклином, составляло в среднем 22,4 тыс. шт./мкл. Это, возможно, объясняется повышением уровня токсичных веществ в воде, поскольку, как было сказано ранее, экспериментальный период совпал с половодьем. Активная пролиферация лимфоцитов (p < 0,05) у рыб из опытных вариантов, видимо, обусловлена активным влиянием ключевого провоспалительно-го цитокина (IL-2), тогда как у оперированных контрольных особей этот процесс был менее выражен. К 45-м сутками наблюдался относительный баланс в формуле белой крови у групп особей, инъецированных препаратом «Ронколейкин» и окситетрациклином, но у последней все же зарегистрировано более высокое содержание лимфоцитов в абсолютных числах - в 1,9 раза и эозинофилов - в 2,2 раза (приp < 0,05).
Заключение
Таким образом, неравнозначность клинической картины воспалительной реакции у бестеров из разных групп в течение экспериментального периода косвенно может свидетельствовать о перераспределении функциональной активности групп лимфоцитов. Несмотря на то, что отсутствуют данные по количественному соотношению Т- и В-популяций лимфоцитов в крови осетровых и по сравнению с лейкоцитарной формулой теплокровных имеются явные отличия, мы склонны считать, что схема действия rIL-2 идентична схеме, присущей гомотерм-ным организмам. Кроме того, активная регенерация тканей рыб экспериментальных групп и более ранние сроки репарации также могут быть определены терапевтическим эффектом rIL-2.
У оперированных бестеров, инъецированных препаратом «Ронколейкин» в дозе 2 000 ед./кг массы тела, отмечено усиление эритропоэза, в то время как компенсация концентрации гемоглобина в крови других групп оперированных рыб проходила за счет увеличения уровня гемоглобина в одном эритроците. Это может свидетельствовать о стимуляции функциональной активности гемопоэтической ткани иммунокорректором.
В процессе исследований показателей клеток белой крови и содержания лизосомально-катионных белков в нейтрофилах экспериментальных рыб обнаружено позитивное влияние rIL-2 в дозе 2 000 ед./кг на активную пролиферацию лимфоцитов и восстановление фагоцитарной функции нейтрофильных гранулоцитов.
Таким образом, в ходе исследований:
1. Показано, что влияние rIL-2 на физиологическое состояние осетровых рыб имеет дозозависимый характер.
2. Выявлено, что rIL-2 способствует активной регенерации поврежденных тканей осетровых рыб при хирургической травматизации и более ранним срокам репарации.
3. Обнаружено, что под влиянием rIL-2 происходит увеличение числа эритроцитов и лейкоцитов в крови, что свидетельствует о стимуляции функциональной активности гемопоэза.
4. Зарегистрировано позитивное влияние rIL-2 на клеточный иммунитет, в первую очередь на активную пролиферацию лимфоцитов и восстановление фагоцитарной функции нейтрофильных гранулоцитов осетровых рыб. Координируя межклеточные взаимодействия, он обеспечивает повышение устойчивости организма к вторичным инфекциям.
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1. Вихман А. А. Системный анализ иммунофизиологической реактивности рыб в условиях аквакультуры. - М.: Экспедитор, 1996. - 176 с.
2. Junko K., Takaji I. Cortisol directly inhibits neutrophil defense activates in tilapia (Oreochromis niloticus) // 9th Inern.conf. «Diseases of fish and shellfish». - Greece, Rodos. 2002. - Р. 293.
3. Житенева Л. Д., Макаров Э. В., Рудницкая О. А. Основы ихтиогематологии (в сравнительном аспекте). - Ростов н/Д.: Эверест, 2004. - 312 с.
4. Головин П. П. Проблемы стресса у рыб в пресноводной аквакультуре: способы диагностики и коррекции // Болезни рыб: Сб. науч. тр. / ВНИИПРХ. - М., 2004. - С. 54-61.
5. Хаитов Р. М., Пинегин Б. В. Иммуномодуляторы: механизм действия и клиническое применение. -М.: ГНЦ «Ин-т иммунологии», 2003. - 24 с.
6. Smith K. A. Interleukin-2: infection, impact and implication // Science. - 1988. - 240. - 1169.
7. Hank J. A., Surfus J., Gan J. Distinct clinical and laboratory activity of two recombinant interleukin-2 preparations // Clin. Cancer res. - 1999. - 5(2). - Р. 281-289.
8. Козлов В. К. Ронколейкин®: биологическая эффективность, иммунокорригирующая и клиническая эффективность. - СПб.: СПбТУ, 2002. - 86 с.
9. ИвановаН. Т. Атлас клеток крови рыб. - М.: Легкая и пищ. пром-сть, 1983. - 126 с.
10. Пигаревский В. Е., Мазинг Ю. А. Лизосомально-катионные белки // Лабораторное дело. - 1981. -№ 10. - С. 579-582.
11. Воловенко М. А. Определение уровня иммуноглобулинов в сыворотке крови новорожденных телят // Ветеринария. - 1975. - № 4. - С. 39-40.
Статья поступила в редакцию 23.06.2006
THE EFFECT OF RECOMBINANT INTERLEUKIN-2 ON PHYSIOLOGICAL INDICES OF HYBRID BELUGA X STERLET (BESTER)
AFTER SURGERY FOR GONAD DEVELOPMENT ASSESSMENT
S. Yu. Kasaeva, E. A. Fedoseeva
The analysis of recombinant IL-2 effect on the physiological state of Bester after surgery has shown its dose-dependence. It is determined that rIL-2 contributes to active regeneration of surgery-damaged tissues and earlier reparation periods. The effect of this medication has shown the increase in number of red blood cells and leucocytes, which testifies the stimulation of hemapoiesis functional activity. The positive effect of rIL-2 on the cell immunity is primarily demonstrated by the lymphocyte proliferation activation and the restoration of phagocytic function of sturgeon neutrophilic granulocytes. By means of intercellular interactions, the recombinant interleukin-2 provides higher resistance of fish to secondary infections.
