CC BY
31
4. Активность аминотрансфераз сыворотки крови коров, мкмоль/ч-мл (X±Sx)
Группа
Показатель контрольная I II
АсАТ 0,25±0,02 0,30±0,02 0,32±0,01**
АлАТ 0,18±0,02 0,23±0,01 0,25±0,01**
выявленные различия в содержании глюкозы между группами были недостоверны, более низкая концентрация глюкозы характеризует напряжённость энергетической составляющей процессов заключительного развития плода в организме коров контрольной гр.
Уровень активности аминотрансфераз оказывает существенное влияние на процессы синтеза белка в организме. Эти ферменты крови катализируют реакции переаминирования и синтеза аминокислот.
Активность аспартат- и аланинаминотранс-фераз во всех группах соответствовала физиологическим потребностям животных в сухостойный период. По активности аспартатаминотрансферазы превосходство имели животные опытных групп. Достоверные различия при Р<0,01 установлены в сыворотке крови коров контрольной и II опытной групп. Разница составляла 28%. Величина этого показателя в I опытной гр. превышала контрольное значение на 20%. Животные, получавшие с кормом сапропель и сапроверм, превосходили своих контрольных аналогов и по активности ала-нинаминотрансферазы. Самое высокое значение активности АлАТ отмечено в сыворотке крови коров II опытной гр. — 0,25 мкмоль/ч-мл, что было выше контроля на 38,8% при Р< 0,01. У животных I опытной гр. активность этого фермента составляла 0,23 мкмоль/ч • мл и была выше, чем у контрольных сверстниц, на 27,8% (табл. 3). Некоторое повышение коэффициента Ритиса (в норме 1,3) в контрольной гр. свидетельствует о более напряжённой работе сердца животных в сухостойный период.
Повышение активности аминотрансфераз у коров опытных групп свидетельствовало о по-
вышении интенсивности протекания белкового обмена, подтверждением чего служило увеличение концентрации общего белка в сыворотке крови. Увеличение активности АсАТ и АлАТ связано с интенсивным ростом плода в сухостойный период, во время которого возрастает интенсивность протекания биохимических процессов в организме животных.
Вывод. Использование в кормлении сухостойных коров сапропеля и сапроверма оказывает благоприятное влияние на ряд физиологических процессов в организме животных, что подтверждается морфологическими и биохимическими показателями крови коров опытных групп.
Литература
1. Быкова О.А. Биохимический статус коров в период раздоя при включении в рацион сапропеля и сапроверма Энергия Еткуля // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2015. № 5 (15). С. 117-120.
2. Быкова О.А. Минеральные добавки из местных источников в рационах сухостойных коров // Агропродовольственная политика России. 2015. № 3 (15). С. 64-66.
3. Быкова О.А. Рубцовый метаболизм и морфологический состав крови бычков при использовании в рационах минеральных добавок из местных источников сырья // Кормление сельскохозяйственных животных и кормопроизводство. 2015. № 11-12. С. 15-21.
4. Соболева Н.В., Карамаев С.В. Влияние сенажа с разной долей козлятника восточного в составе на технологические свойства молока коров // Известия Самарской государственной сельскохозяйственной академии. 2015. № 1. С. 95-98.
5. Косилов В., Мироненко С., Никонова Е. Мясные качества сверхремонтных тёлок красной степной породы и её помесей // Молочное и мясное скотоводство. 2012. № 2. С. 19-21.
6. Литвинов К.С., Косилов В.И. Гематологические показатели молодняка красной степной порды // Вестник мясного скотоводства. 2008. Т. 1. № 61. С. 148-154.
7. Косилов В.И., Миронова И.В. Эффективность использования энергии рационов коровами чёрно-пёстрой породы при скармливании пробиотической добавки Ветоспорин-актив // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2015. № 2 (52). С. 179-182.
8. Кубатбеков Т.С. Факторы, обуславливающие рост и развитие животных // Вестник Российского университета дружбы народов. Серия: Агрономия и животноводство. 2006. № 1. С. 103-106.
9. Карамаев А.С., Зайцев В.В. Динамика показателей естественной резистентности телят разных пород с возрастом // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2010. № 3 (27). С. 195-197.
10. Антонова В.С., Топурия Г.М., Косилов В.И. Методология научных исследований в животноводстве. Оренбург, 2011. 246 с.
Влияние Ксиланита, Фоспасима и настойки пустырника на метаболические и функциональные показатели в организме кроликоматок при длительной транспортировке
Л.Л. Ибрагимова, аспирантка, Э.Р. Исмагилова, д.в.н., профессор, ФГБОУ ВО Башкирский ГАУ
Кролиководство занимает небольшую долю объёма производства животноводческой продукции. В то же время кролики благодаря своей высокой интенсивности размножения и скороспелости
могут обеспечивать население высокодиетическим мясом при небольших затратах кормов и труда. В промышленном кролиководстве кролики, как животные с хорошо развитой нервной системой, подвержены стрессу. Из наиболее распространённых технологических стрессов особое место занимает транспортный. Дополнительное небла-
гоприятное воздействие ведёт к усугублению или возврату к фазе шока и стадии истощения стресс-реакции и, как правило, перехода их в патологию. Поэтому на фоне стресса у кроликов повышается заболеваемость, происходит расстройство иммунитета, снижение привесов, а в отдельных случаях и гибель животных [1—3]. В этой связи внимание исследователей обращено на изыскание путей и средств повышения системной приспособительной реакции животных.
В ветеринарной медицинской практике для снижения нагрузок, вызванных транспортным стрессом, применяют технологические и зоогигие-нические мероприятия, используют препараты различных фармакологических групп. Они направлены на создание условий, не допускающих развития чрезмерной стресс-реакции, т.е. способствуют завершению стресс-реакции стадией адаптации и препятствуют развитию стадии шока, снижению продуктивности и тем более гибели животного [1, 4]. В промышленном кролиководстве имеется ограниченное количество препаратов, обладающих антистрессовым действием. Поэтому одним из существенных направлений в современной ветеринарной медицине является разработка и внедрение в промышленное кролиководство антистрессорных препаратов, не вызывающих метаболических и функциональных (физиологических) изменений в организме, имеющих преимущественно адаптивное значение. К таким препаратам можно отнести Ксиланит, Фоспасим и настойку пустырника.
Ксиланит (Ху1апИ) зарегистрирован и производится компанией «Нита-Фарм» (г. Саратов, Россия). Обладает седативными, анальгезирующими, анестезирующими и миорелаксирующими свойствами. Доза применения Ксиланита для кроликов в настоящее время не установлена. Препарат Фоспа-сим ^ОБраБт) — гомеопатическое лекарственное средство, предназначенное для лечения и профилактики поведенческих расстройств у животных. Производитель ООО «Хелвет» рекомендует раствор Фоспасим для перорального применения кошкам и собакам до исчезновения клинических признаков заболевания. Влияние препарата Фоспасим на организм кроликов при длительной транспортировке не изучено. Настойка пустырника представляет собой спиртовую вытяжку из травы пустырника. Обладает выраженными седативными свойствами, а также оказывает гипотензивное и кардиотони-ческое действие.
Кровь является внутренней средой организма, куда входят все плазматические и бластоматические вещества, и поэтому для оценки физиологического состояния животных в условиях стресса большое значение имеют морфологические и биохимические показатели крови [5—7].
Материал и методы исследования. Для достижения поставленной цели нами в условиях ЗАО «АКПП «Рощинский» и ООО «Башкрол» Республи-
ки Башкортостан были сформированы по принципу аналогов семь групп кроликоматок калифорнийской породы массой 3,0—3,5 кг в возрасте 4 мес. по 20 гол. в каждой [8]. Перед транспортировкой животным I гр. вводили внутримышечно препарат Ксиланит (ЗАО «Нита-фарм»), 0,25 мл на 1 гол. (1,5 мг/кг живой массы), II гр. — внутримышечно Ксиланит, по 0,35 мл на 1 гол. (2,0 мг/кг живой массы), III гр. — внутримышечно Ксиланит, по 0,45 мл на 1 гол. (2,5 мг/кг живой массы). Особям
IV гр. вводили внутримышечно Фоспасим, по 0,4 мл на 1 гол., дважды: перед транспортировкой и после выгрузки в первый день адаптации. Кроликоматкам
V гр. также вводили препарат Фоспасим, по 0,4 мл на 1 гол., дважды: перед транспортировкой и после выгрузки в первый день адаптации, а далее — пе-рорально по 12—13 капель ежедневно, в течение 7 дней. Животным IV гр. перорально вводили по 0,4 мл настойки пустырника, разведённой в 5 мл проточной воды комнатной температуры. При перевозке в идентичных условиях с животными других групп кроликоматки VII гр. (контрольной) не получали препаратов.
Во время транспортировки у животных был постоянный доступ к воде и корму. До и после транспортировки был произведён забор крови у кроликоматок для морфологического и биохимического анализа, велось наблюдение за их физиологическим состоянием (определяли жажду, аппетит, температуру тела, артериальный пульс, количество дыхательных движений). Количество эритроцитов, лейкоцитов, содержание гемоглобина, общего кальция и фосфора определяли общепринятыми методами. Содержание в крови глюкозы определяли с использованием наборов реактивов «Клини-Тест». Уровень адреналина определяли флюориметриче-ским методом. Концентрацию кортизола устанавливали иммуноферментным методом.
Транспортировка на расстояние 840 км осуществлялась посредством авторефрижератора и длилась 24 часа. Транспортное средство было снабжено компрессорной холодильной установкой, которая поддерживала в грузовом отсеке оптимальный для кроликов температурный режим (+14°С).
Результаты исследования. До начала перевозки показатели крови кроликоматок экспериментальных групп находились в пределах физиологической нормы, и разница между группами была статистически несущественна. После перевозки реакция показателей периферической крови животных в группах с применением протекторов и в контрольной была различной.
Количество эритроцитов и гемоглобина в крови кроликоматок, не получавших адаптогены (контрольная гр.), после транспортировки заметно снизилось — на 11,65 и 10,3%, или в 1,03 раза. Во всех группах, где животные получали протекторы, количество эритроцитов не подверглось изменениям. Следовательно, адаптогены оказали поло-
жительное влияние на эритропоэз кроликоматок. В крови особей контрольной гр. были выявлены нарушения синтеза гемоглобина, которые возникли под действием стрессорных факторов.
Нами установлена тенденция снижения количества общего белка в сыворотке крови животных контрольной гр. после транспортировки на 4,53% (в 1,04 раза). В крови кроликоматок после введения препаратов-протекторов данный показатель остался на оптимальном уровне, что подтверждает стабильность реактивности их организма.
Количество общего кальция в крови животных всех групп до перевозки находилось в пределах от 2,44+0,07 до 2,55+0,04 ммоль/л. После выгрузки в периферической крови кроликоматок контрольной гр. содержание общего кальция увеличилось до 3,48+0,07 ммоль/л, что на 13,6% (в 1,36 раза) было выше данного показателя до перевозки. В крови особей I, II, VI групп, так же как и у аналогов контрольной гр., наблюдалось существенное повышение общего кальция относительно исходных величин до загрузки — 3,44+0,20; 3,52+0,11 и 3,44+0,1 ммоль/л соответственно. В крови животных III, IV и V групп содержание общего кальция не отличалось от исходного значения до эксперимента и составляло соответственно 2,54+0,11; 2,45+0,07 и 2,47+0,06 ммоль/л, что было существенно ниже значения данного показателя у особей контрольной гр. При повышении кальция в крови во время стресса он откладывается на эндотелии сосудов, последние становятся хрупкими и ломкими. Вследствие пониженного тонуса мышц нарушается продвижение крови из капилляров в вены.
Количество неорганического фосфора в крови животных до перевозки находилось в пределах 0,94+0,02—1,02+0,02 ммоль/л. После транспортировки наблюдалось снижение величины данного показателя у животных V гр. в 1,25 раза и контрольной гр. — в 1,3 раза по сравнению с исходными данными (Р<0,05).
Уровень глюкозы в периферической крови кроликоматок всех подопытных групп до загрузки колебался от 4,88+0,14 до 5,06+0,09 ммоль/л. После выгрузки отмечалось существенное повышение концентрации глюкозы в крови животных контрольной, а также I и VI групп. Однако достоверные различия (Р<0,05) между полученными показателями у кроликов II, III и IV групп отсуствуют. Спонтанная или стрессорная гликемия возникает в постагрессивный период критического состояния. В нашем случае причиной может быть эмоциональное расстройство, перенесённое животными во время длительной транспортировки, а в I и VI группах — слабое антистрессорное действие препаратов.
Адреналин — основной гормон, участвующий в защите от стресса, выделяется мозговым веществом надпочечников. Содержание адреналина в крови
животных всех групп до загрузки существенно не отличалось, а после транспортировки повысилось. При этом если у кроликов I, II и VI групп повышение адреналина в крови было относительно небольшим (на 4,1; 2,4 и 3,5 нг/мл соответственно), то у кроликов контрольной гр. повышение было значительным (на 11,54 нг/мл). В крови животных остальных групп содержание адреналина изменялось несущественно (Р<0,05).
Кортизол — гормон, который способствует сохранению энергетических ресурсов живого организма. Он является регулятором углеводного обмена и в некоторой степени участвует в развитии реакции на стресс. Определение гормона кортизола показало, что его содержание в крови кроликоматок, как и адреналина, после транспортировки повысилось во всех группах, но в разной степени. Так, у особей II, III, IV и V групп повышение данного показателя было незначительным — на 2,4; 0,78; 0,36 и 0,04 нг/мл соответственно, по сравнению с кроликами I и VI групп — на 4,24 и 3,96 нг/мл соответственно. Стресс-реакция организма запускается гипоталамо-гипофизарной-гонадальной системой с интенсивным образованием кортикостероидов и катехоламинов надпочечниками. Адаптивные механизмы в организме обеспечивают быстрое образование энергии путём ускоренной работы сердечно-сосудистой системы, проявляющейся в учащённом сердцебиении, в изменении частоты пульса и поведения. Результаты проведённого нами эксперимента показали, что во время и после перевозки кроликоматки III, IV и V групп вели себя спокойно и на внешние раздражители реагировали адекватно. У животных I, II и VI групп аппетит был хуже, три кролика корм не принимали, пили только воду и неподвижно сидели в клетках. В контрольной группе наблюдали беспокойство кроликов, изменение поведенческого стереотипа с превалированием повышенной подвижности, учащённого приёма корма небольшими порциями или полное отсутствие аппетита, агрессивность. Температура тела у животных этих групп повышалась до верхних границ физиологических пределов, у отдельных кроликов наблюдался синдром «транспортной лихорадки».
По истечении транспортировки кроликоматки, которым вводили адаптогены, по сравнению с особями контрольной гр. находились в более спокойном состоянии, позволяли манипуляции, связанные с выгрузкой, поедали корм, температура их тела была в норме (39,5°С+0,22). Животные контрольной гр. находились в состоянии возбуждения, оказывали активное сопротивление при выгрузке, температура их тела была повышенная (41,9°С+0,18), сердцебиение учащённое (163+2,1 удара в мин.). Масса тела после транспортировки резко уменьшилась. У аналогов I, II и VI групп и у большинства кроликов (17 гол.) контрольной гр. проявились симптомы ринита. У пяти кроликов
контрольной гр. прослушивали жёсткое везикулярное дыхание, сопровождающееся кашлем. На лапках образовались зачёсы. У двух кроликов был отмечен сильный, громкий, короткий, поверхностный кашель, область гортани припухла, температура тела повысилась (44,2°С), что свидетельствовало о воспалении гортани и трахеи. В III гр. соответствующие признаки ринита были отмечены только у двух особей, остальные находились в здоровом состоянии. У кроликоматок IV и V групп клинические признаки ринита не проявились.
Вывод. Введение перед транспортировкой препарата Ксиланит в дозе 0,45 мл на голову или гомеопатического препарата Фоспасим, 0,4 мл на голову, дважды - перед транспортировкой и после выгрузки в первый день адаптации, далее перорально по 12-13 капель ежедневно в течение 7 сут. предупреждает нарушение метаболических и функциональных изменений в организме и тем самым снижает эмоциональный стресс, улучшает процесс адаптации кроликоматок калифорнийской породы при длительной транспортировке.
Литература
1. Исмагилова Э.Р., Ибрагимова Л.Л. Применение гомеопатического препарата «Фоспасим» для повышения адаптационной способности кроликов при транспортировке // Фундаментальные исследования. 2013. № 8 (ч. 2). С. 376-379.
2. Ибрагимова Л.Л., Исмагилова Э.Р. Гистоструктура миокарда и надпочечников кроликов при транспортировке и применении препарата протектора // Фундаментальные исследования. 2013. № 10 (ч. 3). С. 164-167.
3. Магер С.Н., Напримеров В.А., Смирнов П.Н. Влияние стресс-факторов на воспроизводительную способность крупного рогатого скота // Вестник Новосибирского государственного аграрного университета. 2005. № 2. С. 49.
4. Сапожникова О.Г., Оробец В.А., Славецкая Б.М. Гомеопатическая коррекция стресса // Международный вестник ветеринарии. 2010. № 2. С. 44-46.
5. Крылов В.Н., Косилов В.И. Показатели крови молодняка казахской белоголовой породы и её помесей со светлой аквитанской // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2009. № 2 (22). С. 121-125.
6. Литвинов К.С., Косилов В.И. Гематологические показатели молодняка красной степной породы // Вестник мясного скотоводства. 2008. Т. 1. № 61. С. 148-154.
7. Траисов Б.Б. Гематологические показатели мясо-шёрстных овец / Б.Б. Траисов, К.Г. Есенгалиев, А.К. Бозымова, В.И. Косилов // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2012. № 3 (35). С. 124-125.
8. Антонова В.С., Топурия Г.М., Косилов В.И. Методология научных исследований в животноводстве. Оренбург, 2011. 246 с.
Бактериальная ферментация питательных веществ в рубце при использовании пробиотических препаратов
И.А. Бабичева, д.б.н, Р.З. Мустафин, к.б.н, ФГБОУ ВО Оренбургский ГАУ
Многообразные превращения питательных веществ в преджелудках жвачных животных происходят под действием различных видов микроорганизмов [1-3]. При этом, проходя ряд полиступенчатых преобразований, в рубце образуется много метаболитов, одни из которых становятся для организма пластическим и энергетическим материалом, другие же превращаются в микро-биальный полноценный белок, являясь основным источником необходимых биологически активных веществ и незаменимых аминокислот [4-6].
Поэтому для обеспечения полигастричных животных нормальным питанием прежде всего следует создать оптимальные условия для развития микрофлоры [7, 8]. Степень интенсивности её жизнедеятельности зависит от многих факторов, важнейшими из которых являются концентрация водородных ионов среды, состояние стенок слизистой рубца, а также количество метаболитов корма в преджелудках [9, 10].
Целью исследований было изучение воздействия штаммов пробиотических препаратов Бацелл и Лактомикроцикол на рубцовое содержимое молодняка крупного рогатого скота.
Материал и методы исследования. Для опыта с микробиологическим препаратом Бацелл были
подобраны бычки казахской белоголовой породы. Различия по группам заключались в том, что бычки опытных групп, в отличие от контрольных сверстников, к основному рациону дополнительно получали пробиотик в дозах соответственно 15, 25 и 35 г/гол. в сутки.
Влияние пробиотика Лактомикроцикол на степень интенсивности микробиологических процессов в рубце жвачных оценивали на молодняке красной степной породы. В рацион телят опытных групп включали пробиотик по разработанной схеме.
Исследование по изучению влияния пробиоти-ческих препаратов Бацелл и Лактомикроцикол на рубцовое содержимое бычков проводили в хозяйствах Оренбургской области. В опытах использовали препараты, включающие живые лактобактерии, бифидобактерии, незаменимые аминокислоты, органические кислоты, витамины, микроэлементы и биологически активные вещества.
Результаты исследования позволили установить, что скармливание в составе рациона различного количества кормовой добавки Бацелл, как источника ферментов протеолитического, амилолитического и целлюлозолитического действия, повлияло на степень интенсивности микробиологических процессов (табл. 1).
В частности, концентрация водородных ионов у животных контрольной и I опытной гр. была практически на одном уровне, разница не пре-
