CC BY
0СОВРЕМЕННЫЕ ВОПРОСЫ MODERN ISSUES OF БИОМЕДИЦИНЫ BIOMEDICINE 2024, T. 8 (3)_2024, Vol. 8 (3)
Дата публикации: 01.09.2024 Publication date: 01.09.2024
DOI: 10.24412/2588-0500-2024_08_03_5 DOI: 10.24412/2588-0500-2024_08_03_5
УДК 616.89;616.387;612.33+612.35 UDC 616.89;616.387;612.33+612.35
ВЛИЯНИЕ ХРОНИЧЕСКОГО ПРЕДАТОРНОГО СТРЕССА НА СОРБЦИЮ
ТОНКОЙ КИШКИ И ПЕЧЕНИ
А.А. Виноградов1, И.В. Андреева2, Л.О. Воронкова1
1 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Рязанский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова» Министерства здравоохранения Российской Федерации, г. Рязань, Россия
Государственное бюджетное учреждение здравоохранения Московской области «Московский областной научно-исследовательский клинический институт им. М. Ф. Владимирского», г. Москва, Россия
Аннотация. Цель исследования - изучить характер изменения сорбции нейтрального красного в тонкой кишке и печени крыс при моделировании хронического предаторного стресса. У крыс-самцов линии Wistar проводили колориметрические исследования концентрации нейтрального красного в спиртовых вытяжках из тонкой кишки и печени после внутрисердечного введения 0,5% водного раствора нейтрального красного из расчета 1,0 мл на 100 г массы животного. При хроническом предаторном стрессе в тонкой кишке и печени крыс развиваются стресс-индуцированные изменения, которые влияют на сорбцию нейтрального красного. В тонкой кишке через 15 минут экспозиции нейтрального красного в организме крысы его концентрация увеличивалась в 1,886±0,072 раза, а в печени -в 1,755±0,098 раза. Процесс всасывания нейтрального красного из тонкой кишки в кровь и лимфу замедлялся, уменьшая его поступление через систему воротной вены в печень. Увеличение сорбционной способности тонкой кишки для нейтрального красного свидетельствовало о повышении его всасывания и снижении элиминации, что выражало нарушение проницаемости кишечной стенки.
Ключевые слова: крысы Wistar, предаторный стресс, тонкая кишка, печень, сорбция, нейтральный красный.
THE EFFECT OF CHRONIC PREDATOR STRESS ON THE SORPTION OF THE SMALL INTESTINE AND LIVER
A.A. Vinogradov1, I.V. Andreeva2, L.O. Voronkova1
'Ryazan State Medical University, Ryazan, Russia
2Moscow Regional Research and Clinical Institute, Moscow, Russia
Abstract. The aim was to study the nature of changes in the sorption of neutral red in the small intestine and liver of rats when modeling chronic predator stress. In male Wistar rats, colorimetric studies of the concentration of neutral red in alcohol extracts from the small intestine and liver were performed after intracardiac administration of 0.5% aqueous solution of neutral red at the rate of 1.0 ml per 100 g of animal weight. With chronic predator stress, stress-induced changes develop in the small intestine and liver of rats, which affect the sorption of neutral red. In the small intestine, after 15 minutes of exposure to neutral red in the rat body, its concentration increased by 1.886±0.072 times, in the liver - by 1.755±0.098 times. The process of absorption of neutral red from the small intestine into the blood and lymph slowed down, reducing its flow through the portal vein system to the liver. An increase in the sorption capacity of the small intestine for neutral red indicated an increase in its absorption and a decrease in elimination, which expressed a violation of the permeability of the intestinal wall. Keywords: Wistar rats, predator stress, small intestine, liver, sorption, neutral red.
Введение. Человек живет в практически литературы, хронический стресс оказывает постоянном хроническом психоэмоцио- влияние на гормональный и иммунологиче-нальном стрессе [1]. При этом, по данным ский статус, сердечно-сосудистую систему
и другие органы. Доказано, что под влиянием стрессовых факторов возникают изменения в морфологическом и биохимическом состоянии печени [2-3]. Имеются единичные публикации о влиянии хронического стресса на тонкую кишку с развитием целиакии с гиперрегенераторной атрофией слизистой оболочки тонкой кишки, которая проявляется синдромом мальабсорбции (нарушения всасывания) [4-5].
Для определения изменений функционального состояния органов и тканей в экспериментальной практике применяют количественное определение их сорбцион-ной способности [6]. В эксперименте на животных для изучения влияния внешних факторов, в частности хронического стресса, на органы и системы существенное значение имеет прижизненная окраска их клеток и тканей с количественным определением сорбционной способности для введенного красителя [7-9].
Методы прижизненной окраски широко применяют в общей медико-биологической практике. Это связано с тем, что законы проницаемости клетки для витальных красящих веществ те же, что и для питательных веществ [10-11]. Описана прижизненная окраска головного мозга, гипофиза, сердца и печени с определением количественных показателей сорбционной способности клеток и тканей. Это было изучено в экспериментах на животных после инфаркта миокарда, сосудистых трансформаций, хлороформной интоксикации, гипоксии [12-14]. Однако влияние хронического стресса на печень и процесс всасывания в тонкой кишке путем определения сорбции введенного в организм витального красителя на сегодняшний день не изучено.
Цель исследования - изучить характер изменения сорбции нейтрального красного в тонкой кишке и печени при моделировании хронического предаторного стресса.
Методы и организация исследования. Исследование проведено на 60 крысах-самцах линии Wistar массой 220-370 г, взятых из питомника лабораторных
МОБЕКК КБиЕБ ОБ ВЮМЕБГСШЕ 2024, Уо1. 8 (3)
животных филиала «Столбовая» ФГБУН НЦБМТ ФМБА России (ветеринарное свидетельство № 19211027545 от 29.05.2023). Животные были разделены на контрольную и экспериментальную группы по 30 крыс в каждой. Возраст крыс соответствовал зрелому (репродуктивному периоду) по возрастной периодизации онтогенеза крыс [15-16].
При содержании животных руководствовались «Принципами надлежащей лабораторной практики» (национальный стандарт Российской Федерации ГОСТ № 33044-2014, введён с 1.08.2015 г.), приказом Минздрава России от 01.04.2016 г. № 199н «Об утверждении правил надлежащей лабораторной практики», «Санитарно-эпидемиологическими требованиями к устройству, оборудованию и содержанию экспериментально-биологических клиник (вивариев)» (СП 2.2.1.3218-14). Эвтаназию животных осуществляли передозировкой Золетила У1гЬае (Франция).
Исследование было выполнено в соответствии со стандартами надлежащей лабораторной практики и одобрено на заседании биоэтической комиссии ФГБОУ ВО РязГМУ Минздрава России (№ 25, 2021 г.).
Эксперимент по моделированию хронического эмоционального предаторного стресса от запаха хищника не приводит к физическим травмам (этиологически значимое воздействие): грызуны используют обонятельную сенсорную систему для поведения, связанного с выживанием. Процесс эксперимента осуществлялся путем воздействия запахом мочи хищника (кошки) в течение 10 дней в виварии ФГБОУ ВО РязГМУ Минздрава России по методике В.Э. Цейликман и соавт. (2021). Во время проведения эксперимента каждую крысу помещали в отдельную маркированную клетку. В каждой клетке ежедневно в течение 10 дней устанавливали емкость с мочой кошки на 1 час [17].
Для сорбции нейтрального красного сначала строили градуированный график
СОВРЕМЕННЫЕ ВОПРОСЫ MODERN ISSUES OF БИОМЕДИЦИНЫ BIOMEDICINE 2024, T. 8 (3)_2024, Vol. 8 (3)
колориметрических показателей при определенной массе нейтрального красного (НК). Для построения градуированного графика готовили 6 растворов подкисленного 70% спирта с концентрацией НК (класс по Со1оиг Index, 2-е издание, BR № 50040)
от 50 до 500 мкг. Растворы колориметриро-вали и по показателям КФК-2МП строили градуированный график. На ось У вводили колориметрические показатели, а на ось X -концентрацию красителя (рис. 1).
0,90 0,80 0,70 0,60 0,50 0,40 0,30 0,20 0,10 0 i
Y
100 200 300 400 500 ыкг
Рис. 1. Градуированный график колориметрических показателей относительно массы
нейтрального красного от 50 до 500 мкг
Для определения сорбции тонкой кишки и печени у животных контрольной (КГ) и экспериментальной (ЭГ) групп под общим обезболиванием (Золетил У1гЬае 20 мг/кг внутримышечно) внутрисердечно вводили 0,5% водный раствор нейтрального красного из расчета 1,0 мл на 100 г массы животного. Через 15 минут после инъекции раствора нейтрального красного выполняли лапаротомию и, отступив от 12-перстной кишки на 5,0 см, брали фрагмент тонкой кишки длиной до 6 см, а также фрагменты печени. Эвтаназию проводили передозировкой Золетила У1гЬае.
Выбранный участок тонкой кишки продольно разрезали по противоположному от брыжеечного свободному краю тонкой кишки. Фрагменты тонкой кишки и печени промывали 0,9% раствором хлорида натрия. Тонкую кишку разрезали на кусочки длиной до 1,5 см. Для удаления остатков воды препараты тонкой кишки и печени (далее -
препараты) на 2 минуты укладывали в фильтровальную бумагу. Подсохшие кусочки помещали в пронумерованные герметично закрывающиеся емкости с 3,0 мл 70% спирта, в который добавляли 3 капли 0,1% раствора соляной кислоты. Через 24 часа инкубации при комнатной температуре (+20-22°С) препараты извлекали из спирта и помещали в термостат на 1 -2 часа при температуре +55°С для высушивания до постоянного веса. Высушенные кусочки препаратов нумеровали в соответствии нумерации емкостей, из которых они были извлечены, и взвешивали на электронных весах.
Спиртовой раствор переливали в предварительно пронумерованные пробирки и центрифугировали в течение 5 минут при скорости 1000 об/мин. Затем надосадочную жидкость колориметрировали на фотоколориметре КФК-2МП. По градуированному
БИОМЕДИЦИНЫ 2024, T. 8 (3)
графику фотоколориметрические показатели переводили в количественные показатели нейтрального красного. Показатель сорбции рассчитывали в мкг/мг путем деления количественного показателя
BIOMEDICINE 2024, Vol. 8 (3)
концентрации нейтрального красного (далее - краситель на вес сухого остатка препарата с учетом соответствия его номера с номером раствора, который колориметрировали) (табл. 1).
Таблица 1
Пример определения концентрации нейтрального красного в тонкой кишке животных _контрольной группы_
Показатели Номер фрагмента тонкой кишки
1 2 3 4
Показатель КФК-2МП 0,642 0,589 0,500 0,569
Показатель с градуированного графика, мкг 392 359 305 347
Масса сухого кусочка, мг 17 16 13 15
Количество нейтрального красного, сорбированного тонкой кишкой, мкг/мг 23,06 22,44 23,46 23,13
Показатель сорбции = 23,02±0,293 мкг/мг (p<0,05)
Примечание: КФК-2МП - марка фотоколориметра
Цифровые данные обрабатывали методами вариационной статистики с помощью программы StatSoft Statistica 13.0 (США, номер лицензии AXA003J115213FAACD-X, Statsoft.ru) и Microsoft Excel for MAC ver. 16.24 (ID 02984-001-000001). Определяли: среднюю арифметическую выборки (M); ошибку средней арифметической выборки (±m); T-критерий Стьюдента, вероятность ошибки (p) и коэффициент корреляции Пирсона (R). По шкале Чеддока коэффициент корреляции 0,5-0,7 определял заметную, 0,7-0,9 - высокую, а 0,9-1,0 - весьма высокую корреляционную зависимость выявленных изменений [18].
Результаты исследования и их обсуждение. Через 15 минут после внутрисердеч-ного введения водного раствора нейтрального красного животным КГ установлено неравномерное распределение количества сорбированного красителя во фрагментах выделенного отдела тонкой кишки (табл. 2). Меньший показатель сорбции был в 4 фрагменте (21,92±1,298 мкг/мг). По мере
отдаления от 12-перстной кишки сорбцион-ная способность тонкой кишки уменьшалась в следующих значениях: 1 фрагмент -концентрация красителя 22,76±1,292 мкг/мг; 2 фрагмент - 22,37±1,362 мкг/мг (меньше в 1,018±0,012 раза); 3 фрагмент -22,09±1,308 мкг/мг (меньше в 1,012±0,008 раза); 4 фрагмент - 21,92±1,298 мкг/мг (меньше в 1,008±0,007 раза). При сравнении показателей 1 фрагмента с показателями 4 фрагмента установлено уменьшение концентрации красителя в 1,039±0,0089 раза (на 0,843±0,1767 мкг/мг). Коэффициент корреляции (Я) указывал на прямую, весьма высокую зависимость понижения сорбцион-ной способности тонкой кишки при удалении от 12-перстной кишки ^=0,989). Оказалось, что у животных ЭГ сорбционная способность тонкой кишки изменялась по мере отдаления от 12-перстной кишки, как у животных КГ. Выявлено уменьшение концентрации красителя в тонкой кишке от 1 фрагмента к 4 фрагменту (табл. 3).
MODERN КБЦЕБ ОБ BЮMEDICINE 2024, Уо1. 8 (3)
Таблица 2
Концентрация нейтрального красного в тонкой кишке животных контрольной группы в зависимости от удаленности от 12-перстной кишки
Номер животного Концентрация нейтрального крас! мкг/мг юго во фрагментах тонкой кишки, (р<0,05)
1 фрагмент 2 фрагмент 3 фрагмент 4 фрагмент
1 24,16±0,899 23,84±0,226 23,21±0,688 23,02±0,293
2 24,19±0,731 24,13±0,325 23,82±0,238 23,48±0,492
3 23,81±0,444 23,21±0,384 23,16±0,388 23,15±0,367
4 21,35±0,223 21,31±0,442 20,81±0,463 20,38±0,276
5 22,21±0,416 21,27±0,709 21,15±0,315 21,13±0,472
6 20,85±0,587 20,43±0,342 20,38±0,400 20,35±0,057
Примечание: фрагмент - 5,0 см от 12-перстной кишки; 2 фрагмент - 6,5 см; 3 фрагмент -8,0 см; 4 фрагмент - 9,5 см. Длина каждого фрагмента - 1,5 см.
Таблица 3
Концентрация нейтрального красного в тонкой кишке животных экспериментальной группы в зависимости от удаленности от 12-перстной кишки
Номер животного Концентрация нейтрального крас! мкг/мг юго во фрагментах тонкой кишки, (р<0,05)
1 фрагмент 2 фрагмент 3 фрагмент 4 фрагмент
1 42,64±1,398 42,24±1,237 41,98±0,461 41,28±0,521
2 42,61±1,497 42,20±1,205 41,48±1,246 41,25±0,375
3 43,89±1,661 43,50±0,500 42,28±1,401 42,14±1,802
4 40,53±1,151 40,38±1,091 39,75±0,750 39,26±1,627
5 41,68±2,531 41,58±0,952 41,23±2,247 40,62±1,478
6 44,53±1,263 43,97±0,528 43,28±0,840 42,76±1,095
Примечание: фрагмент - 5,0 см от 12-перстной кишки; 2 фрагмент - 6,5 см; 3 фрагмент 8,0 см; 4 фрагмент - 9,5 см. Длина каждого фрагмента - 1,5 см.
В 1 фрагменте тонкой кишки животных ЭГ показатель сорбции был в пределах 42,65±1,042 мкг/мг, что в 1,877±0,061 раза больше контрольного показателя. Коэффициент корреляции указывал на прямую, высокую зависимость изменения концентрации красителя в тонкой кишке от эксперимента ^=0,914 при 1=11,98, р<0,001). Во 2 фрагменте концентрация красителя составила 42,31±0,949 мкг/мг - в 1,008±0,003 раза меньше, чем в первом, и в 1,896±0,074 раза больше контрольного показателя ^=0,919 при 1=12,01, р<0,001); в 3 фрагменте - 41,67±0,847 мкг/мг, что в 1,015±0,005 раза меньше, чем во 2 фрагменте и в 1,891±0,074 раза больше контрольного показателя ^=0,900 при 1=12,57, р<0,001); в 4 фрагменте - 41,2±0,852 мкг/мг, что в 1,011±0,004 раза было меньше концентрации красителя 3 фрагмента, но в
1,885±0,073 раза больше контрольного показателя ^=0,853 при 1=12,33, р<0,001). После эксперимента концентрация красителя в тонкой кишке животных ЭГ была больше контрольного показателя в 1,887 ±0,071 раза при R=0,883, 1=33,42 и р<0,001.
Анализ полученных результатов в процессе исследования сорбционной способности тонкой кишки у животных КГ и ЭГ не отвечает на вопрос о позитивном или негативном влиянии хронического пре-даторного стресса на процесс всасывания в тонкой кишке. Увеличение концентрации красителя в тонкой кишке указывает на повышение сорбционной способности или процесса всасывания составляющих слизистую оболочку (ворсинки и крипты). Всасывание включает и перенос продуктов гидролиза пищевых веществ из полости желудочно-кишечного тракта в кровь, а
БИОМЕДИЦИНЫ 2024, T. 8 (3)
с током крови - в печень [19-20]. Следовательно, увеличение концентрации красителя в тонкой кишке в связи с повышенной сорбционной способностью должно при неизмененном процессе всасывания из тонкой кишки в кровь пропорционально влиять на увеличение концентрации красителя в печени. Для решения этого вопроса была изучена сорбционная способность печени в норме и в условиях хронического предаторного стресса.
BIOMEDICINE 2024, Vol. 8 (3)
У животных КГ концентрация красителя в печени составила 14,38±0,980 мкг/мг, что было в 1,55±0,630 раза меньше, чем в тонкой кишке (22,28±0,28 мкг/мг) (рис. 2). В центральном отделе печени концентрация красителя была 15,36±0,258 мкг/мг, а в дистальном отделе - 13,40±0,230 мкг/мг, что было в 1,146±0,004 раза меньше (при R=0,981, 1=5,97 и р=0,001), чем в центральном отделе (табл. 4).
мкг/мг 45,0
□ КГ
□ ЭГ
40,0 35,0 30,0 25,0 20,0 15,0 10,0 5,0
±0,518
±0,280
±0,446
±0,980
Тонкая кишка
Печень
Рис. 2. Концентрация нейтрального красного в тонкой кишке и печени у животных контрольной (КГ) и экспериментальной (ЭГ) групп
Таблица 4
Концентрация нейтрального красного в печени животных контрольной группы, мкг/мг
Номер животного Концентрация нейтрального красного во фрагментах ткани печени, мкг/мг (р<0,05)
1 фрагмент 2 фрагмент 3 фрагмент 4 фрагмент
Центральный отдел печени
1 15,59±0,072 15,42±0,016 15,23±0,110 15,13±0,168
2 15,53±0,239 15,52±0,368 15,41±0,114 15,27±0,022
3 15,81±0,035 15,69±0,014 15,64±0,278 15,38±0,297
4 14,78±0,340 14,63±0,129 14,61±0,087 14,36±0,162
5 15,78±0,003 15,59±0,179 15,52±0,268 15,40±0,151
6 15,75±0,037 15,67±0,014 15,43±0,179 15,43±0,179
Дистальный отдел печени
1 13,71±0,263 13,62±0,352 13,61±0,087 13,43±0,095
2 13,87±0,095 13,67±0,208 13,66±0,191 13,59±0,256
3 13,98±0,019 13,55±0,030 13,44±0,015 13,39±0,279
4 12,99±0,075 12,94±0,057 12,64±0,222 12,62±0,099
5 13,53±0,232 13,40±0,049 13,40±0,049 13,07±0,026
6 13,50±0,226 13,42±0,225 13,38±0,147 13,12±0,090
MODERN КБЦЕБ ОБ BЮMEDICINE 2024, Уо1. 8 (3)
После 10-дневного эксперимента в печени животных ЭГ концентрация красителя увеличивалась в сравнении с показателями, определенными у животных КГ, в 1,371±0,063 раза (до 19,64±0,446 мкг/мг при R=0,876, 1=4,89 и р=0,001). В центральном отделе печени концентрация красителя была в 1,308±0,019 раза больше, чем у животных КГ, и колебалась в пределах 20,08±0,264 мкг/мг при R=0,686, 1=12,79 и р<0,001. В дистальном отделе - в 1,434±0,018 раза и колебалась в пределах
19,20±0,350 мкг/мг при R=0,745, 1=13,85 и р<0,001.
Концентрация красителя в центральном отделе печени животных ЭГ была больше в 1,046±0,008 раза, чем в дистальном (табл. 5), как и у животных КГ (табл. 4). Однако у животных КГ разница между показателями концентрации красителя в центральных и дистальных отделах была больше (в 1,146±0,004 раза), чем у животных ЭГ (рис. 2).
Таблица 5
Концентрация нейтрального красного в печени животных экспериментальной группы,
мкг/мг
Номер животного Концентрация нейтрального красного во фрагментах ткани печени, мкг/мг (р<0,05)
1 фрагмент 2 фрагмент 3 фрагмент 4 фрагмент
Центральный отдел печени
1 19,75±0,537 19,43±0,012 19,90±0,322 21,03±0,364
2 19,50±0,187 19,83±0,332 20,07±0,760 19,43±0,123
3 19,28±0,222 20,95±0,258 19,05±0,107 19,63±0,231
4 19,74±0,020 20,58±0,167 20,39±0,332 20,37±0,259
5 20,58±0,138 20,77±0,665 19,81±0,386 21,57±0,306
6 20,38±0,274 19,78±0,124 19,78±0,148 19,77±0,021
Дистальный отдел печени
1 18,64±0,005 18,48±0,406 19,38±0,027 18,87±0,383
2 18,57±0,569 18,44±0,327 18,48±0,173 19,28±0,136
3 18,69±0,226 19,91±0,172 18,60±0,293 18,92±0,446
4 19,41±0,141 19,16±0,154 19,08±0,046 19,64±0,117
5 20,15±0,040 19,47±0,349 19,10±0,099 20,03±0,026
6 20,38±0,274 19,39±0,084 19,48±0,077 19,35±0,181
Концентрация красителя в тонкой кишке у животных ЭГ была больше в 1,887±0,071 раза ^=0,883, 1=33,42 и р<0,001), а в печени - в 1,096±0,050 раза (Я=0,876, 1=4,89 и р=0,001), чем у животных КГ.
В процессе исследования установлено, что в условиях хронического стресса сорбция красителя в тонкой кишке увеличивается, что, по-видимому, связано с нарушением всасывания красителя в кровь и накоплением его в оболочках тонкой кишки на фоне лимфостаза и венозного полнокровия [4-5]. Поэтому в процессе эксперимента
в печени концентрация красителя увеличивалась не пропорционально его увеличению в тонкой кишке.
Заключение. На фоне хронического предаторного стресса увеличивалась сорб-ционная способность тонкой кишки и печени с преимущественным повышением в тонкой кишке. По мере удаления от 12-перстной кишки у животных КГ и ЭГ сорбционная способность тонкой кишки уменьшалась, но оставалась на высоком уровне.
В печени животных КГ и ОГ сорбцион-ная способность была выражена в большей
MODERN ISSUES OF BIOMEDICINE 2024, Vol. 8 (3)
степени в центральных отделах органа по сравнению с дистальными.
Увеличение концентрации нейтрального красного в тонкой кишке животных ЭГ связано с его депонированием на фоне лим-фостаза и нарушения всасывания в кровь, о чем свидетельствует непропорциональное увеличение красителя в печени животных ЭГ.
Для решения вопроса о позитивном или негативном влиянии увеличения сорбцион-ной способности тонкой кишки в ответ на хронический стресс нужны целенаправленные исследования с исключением поступления в печень красителя посредством артериального кровоснабжения.
Конфликт интересов. Авторы заявили об отсутствии конфликта интересов.
Благодарности. Авторы выражают благодарность научному отделу, виварию и гистологической лаборатории ФГБОУ ВО «РязГМУ» Минздрава России за активное содействие исследованию.
Conflict of interest. The authors declare no conflict of interest.
Acknowledgements. The authors express their gratitude to the Scientific department, vivarium and histology laboratory of the Ryazan State Medical University for actively contributing to the study.
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1. Mental Stress and Its Effects on Vascular Health / Sara J. D. S., Toya T., Ahmad A. [et al] // Mayo Clin Proc. - 2022. - Vol. 97(5). - P. 951-990. DOI: 10.1016/j .mayocp.2022.02.004.
2. Литвиненко, А. Н. Морфологические и мор-фометрические параметры ткани печени лабораторных животных после моделирования хронического стресса / А. Н. Литвиненко, Д. А. Зиновкин, Т. C. Угольник // Проблемы здоровья и экологии. - 2018. - Т. 58. - № 4. - С. 56-60.
3. Chronic stress induces steatohepatitis while decreases visceral fat mass in mice / Liu Y. Z., Chen J. K., Zhang Y. [et al] // BMC Gastroenterol. -2014. - Vol.14. - P. 106. DOI: 10.1186/1471-230X-14-106.
4. Life events and the onset of celiac disease from a patient's perspective / Ciacci C., Siniscalchi M., Bucci C. [et al] // Nutrients. - 2013. - Vol. 5(9). -P. 3388-3398. DOI: 10.3390/nu5093388.
5. Stressful life events among individuals with a history of eating disorders: a case-control comparison / Lie S. E., Bulik C. M., Andreassen O. A. [et al] // BMC Psychiatry. - 2021. - Vol. 21 (1). - P. 501-512. DOI: 10.1186/ s12888-021-03499-2.
6. Патент на изобретение 1465767 СССР, МПК G 0,1 N 33/48(2006.01). Способ определения сорбционной активности тканей: N 4201379/2814: заявл. 25.02.87; опубл. 15.03.1989 / Виноградов, А. А. - Бюлетень № 10.
7. Виноградов, А. А. Сорбционная способность миокарда и мозговой ткани у крыс, перенесших клиническую смерть после гипоксической тренировки / А. А. Виноградов, С. Ю. Некрасов //
Актуальные проблемы акушерства и гинекологии, а также медицинской генетики. - 2003. -№ 9. - С. 290-295.
8. Парахонский, А. П. Исследование сорбционной ёмкости мембран эритроцитов для оценки характера эндогенной интоксикации при дерматозах / А. П. Парахонский, С. С. Цыганок // Успехи современного естествознания. - 2006. -№ 10. - С. 86-87. URL: https://natural-sciences. ru/ru/article/view?id=11651 (дата обращения: 26.01.24).
9. Бадалова, З. А. Показатели сорбционной способности и проницаемости эритроцитарных мембран у детей и новорождённых, проживающих в зоне повышенного радиационного фона / З. А. Бадалова, Д. С. Додхоев // Вестник Ави-цены. - 2019. - Т. 21. - № 4. - С. 597-602; DOI: 10.25005/2074-0581-2019-21-4-597-602.
10. Янбухтина, З. Р. Витальные красители в интраокулярной хирургии / З. Р. Янбухтина, Т. Р. Мухамадеев, Б. М. Азнабаев // Медицинский вестник Башкортостана. - 2015. - Т. 10. -№ 2. - С. 156-161.
11. Изучение морфофункциональных свойств тромбоцитов новорожденных в норме, при гипоксии и синдроме системного воспалительного ответа с использованием витального окрашивания / Леонтьев М. А., Родзаевская Е. Б., Пылаев Т. Е. [и др.] // Известия высших учебных заведений. Поволжский регион. Медицинские науки. - 2018. - Т. 48. - № 4. - С. 30-39. DOI: 10/21685/2072-3032-2018-4-4.
12. Экспозиционная динамика сорбции головного мозга и миокарда при хлороформной
интоксикации / С. А. Лобко, А. А. Панкратьев, И. В. Андреева, А. А. Виноградов // Вестник Луганского национального университета имени Тараса Шевченко (медико-биологические науки). - 2010. - № 15 (202). - С. 90-95.
13. Виноградов, А. А. Влияние отека головного мозга на динамику изменения проницаемости гематоэнцефалического барьера / А. А. Виноградов // Вестник проблем биологии и медицины.
- 1997. - № 5. - С. 49-55.
14. Виноградов, А. А. Экспозиционная динамика сорбции в передней части гипофиза при венозном полнокровье / А. А. Виноградов, О. А. Виноградов // Вестник Луганского национального университета имени Тараса Шевченко (медико-биологические науки). - 2002. - № 7 (51). - С. 108-113.
15. Лабораторные животные / И. П. Западнюк, В. И. Западнюк, Е. А. Захария, В. В. Западнюк.
- Киев: Вища школа, 1983. - 383 с.
16. Лабораторные крысы: содержание, разведение и биоэтические аспекты использования в экспериментах по физиологии поведения / В. И. Белякова, Е. М. Инюшкина, Д. С. Громова, А. Н. Инюшкин. - Самара: Изд-во Самар. ун-та, 2021.
- 96 с.
17. Патент на изобретение RU 2356102 C1. МПК G09B 23/28 (2006.01). Способ моделирования посттравматического стрессового расстройства у лабораторных крыс: N 2007128 128/14: заявл. 23.07.2007, опубл. 20.05.2009 // Цейликман В. Э., Лапшин М. С., Комелькова М. В. [и др.] - Бюллетень № 14.
18. Реброва, О. Ю. Статистический анализ медицинских данных. Применение пакета прикладных программ STATISTICA / О. Ю. Реброва. - Москва: Медиа Сфера, 2002. -305 с.
19. Метельский, С. Т. Транспортные процессы и мембранное пищеварение в слизистой оболочке тонкой кишки. Электрофизиологическая модель / С. Т. Метельский. - М.: Анахарсис, 2007.
- 272 с.
20. Метельский, С. Т. Физиологические механизмы всасывания в кишечнике. Основные группы веществ / С. Т. Метельский // РЖГГК. -2009. - Т. 19. - №3. - С. 51-56.
REFERENCES
1. Sara J.D.S., Toya T., Ahmad A., Clark M.M., Gilliam W.P., Lerman L.O., Lerman A. Mental Stress and Its Effects on Vascular Health. Mayo
MODERN ISSUES OF BIOMEDICINE 2024, Vol. 8 (3)
Clin Proc, 2022, vol. 97(5), pp. 951-990. DOI: 10.1016/j .mayocp.2022.02.004.
2. Litvinenko A.N., Zinovkin D.A., Ugol'nik T.S. Morphologic and Morphometric Parameters of the Liver Tissue of Laboratory Animals After Modeling of Chronic Stress. Health and Ecology Issues, 2018, vol. 58, no. 4, pp. 56-60. (in Russ.)
3. Liu Y.Z., Chen J.K., Zhang Y., Wang X., Qu S., Jiang C.L. Chronic stress induces steatohepatitis while decreases visceral fat mass in mice. BMC Gastroenterol, 2014, vol. 14, p. 106. DOI: 10.1186/ 1471-230X-14-106.
4. Ciacci C., Siniscalchi M., Bucci C., Zingone F., Morra I., Iovino P. Life events and the onset of celiac disease from a patient's perspective. Nutrients, 2013, vol. 5(9), pp. 3388-3398. DOI: 10.3390/nu50 93388.
5. Lie S.E., Bulik C.M., Andreassen O.A., Ro O., Bang L. Stressful life events among individuals with a history of eating disorders: a case-control comparison. BMC Psychiatry, 2021, vol. 21 (1), pp. 501-512. DOI: 10.1186/s12888-021-03499-2.
6. Vinogradov A.A. A way to identify tissue sorption activity. Patent for invention 1465767 USSR, 1989 (in Russ.)
7. Vinogradov A.A., Nekrasov S.Yu. Sorption capacity of myocardium and brain tissue in rats who suffered clinical death after hypoxic training. Ak-
tual'nye problemy akusherstva i ginekologii, a takzhe meditsinskoj etiki, 2003, vol. 9, pp. 290-295. (in Russ.)
8. ParakhonskijA.P., Tsyganok S.S. Investigation of the sorption capacity of erythrocyte membranes to assess the nature of endogenous intoxication in dermatoses. Advances in current natural sciences, 2006, no. 10, pp. 86-87. Available at: https://natu-ral-sciences.ru/ru/article/view?id=11651 (in Russ.)
9. Badalova Z.A., Dodkhoev D.S. Indicators of sorption capacity and permeability of erythrocyte membranes in children and newborns living in the zone of increased radiation background. Avicenna Bulletin, 2019, vol. 21, no. 4, pp. 597-602. DOI: 10.25005/2074-0581-2019-21-4-597-602 (in Russ.)
10. Yanbukhtina Z.R., Mukhamadeev T.R., Azna-baev B.M. Vital dyes in intraocular surgery. Bashkortostan Medical Journal, 2015, vol. 10, no. 2, pp. 156-161. (in Russ.)
11. Leont'ev M.A., Rodzaevskaya E.B., Pylaev T.E., Leont'eva A.V., Maslyakov V.V. The study of the morphofunctional properties of newborn platelets in normal, with hypoxia and the syndrome of a systemic inflammatory response using vital
БИОМЕДИЦИНЫ 2024, T. 8 (3)
BIOMEDICINE 2024, Vol. 8 (3)
staining. University proceedings. Volga region. Medical sciences, 2018, vol. 48, no. 4, pp. 30-39. DOI: 10/21685/2072-3032-2018-4-4. (in Russ.)
12. Lobko S.A., Pankratiev A.A., Andreeva I. V., Vinogradov A. A. Exposure dynamics of sorption of the brain and myocardium in chloroform intoxication. Bulletin of Luhansk Taras Shevchenko National University (Biomedical sciences), 2010, vol. 15 (202), pp. 90-95. (in Russ.)
13. Vinogradov A.A. The effect of cerebral edema on the dynamics of changes in the permeability of the blood-brain barrier. Bulletin ofproblems of biology and medicine, 1997, vol. 5, pp. 49-55. (in Russ.)
14. Vinogradov A.A., Vinogradov O.A. Exposi-tional dynamics of sorption in the anterior pituitary gland with venous fullness. Bulletin of Luhansk Taras Shevchenko National University (Biomedical Sciences), 2002, vol. 7 (51), pp. 108113. (in Russ.)
15. Zapadnyuk I.P., Zapadnyuk V.I., Zakharia E.A., Zapadnyuk V.V. Laboratory animals. Kiev: Vishcha shkola, 1983, 383 p. (in Russ.)
16. Belyakova V.I., Inyushkina E.M., Gromova D.S., Inyushkin A.N. Laboratory rats: management, breeding and bioethical aspects of use in experiments on the behavior physiology. Samara: Samara University Publishing House, 2021, 96 p. (in Russ.)
17. Tseilikman V.E., Lapshin M.S., Komelkova M.V., Sarapultsev A.P., Tseilikman O.B., Dyatlov D.A., Manukhina E.B. A method for modeling post-traumatic stress disorder in laboratory rats. Patent for invention RU 2356102 C1, 2009. (in Russ.)
18. Rebrova O.Yu. Statistical analysis of medical data. Application of the STATISTICA application software package. Moscow: Media Sfera, 2002, 305 p. (in Russ.)
19. Metel'skij S.T. Transport processes and membrane digestion in the mucous membrane of the small intestine. Electrophysiological model. Moscow: Anakharsis, 2007, 272 p. (in Russ.)
20. Metel'skij S.T. Physiological mechanisms of absorption in the intestine. Basic groups of substances. Russian Journal of Gastroenterology, Hepatology, Coloproctology, 2009, vol. 19, no. 3, pp. 51-56. (in Russ.)
СВЕДЕНИЯ ОБ АВТОРАХ:
Александр Анатольевич Виноградов - доктор медицинских наук, профессор кафедры анатомии, ФГБОУ ВО «Рязанский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова» Минздрава России, Рязань, e-mail: alexanvin@yandex.ru, ORCID: 0000-0003-0441-7121. Ирина Владимировна Андреева - доктор медицинских наук, профессор кафедры клинической ультразвуковой и функциональной диагностики, ГБУЗ МО «Московский областной научно-исследовательский клинический институт им. М.Ф. Владимирского», Москва, e-mail: prof.an-dreeva.irina.2012@yandex.ru, ORCID: 0000-0001-6946-3036.
Лилия Олеговна Воронкова - соискатель кафедры нормальной физиологии с курсом психофизиологии, ФГБОУ ВО «Рязанский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова» Минздрава России; врач-диетолог-нутрициолог, Рязань, e-mail: doc.liliiav@gmail.com, ORCID: 0009-0000-1777-107Х.
INFORMATION ABOUT THE AUTHORS:
Aleksandr A. Vinogradov - Doctor of Medical Sciences, Professor, Professor of the Department of Anatomy, Ryazan State Medical University, Ryazan, e-mail: alexanvin@yandex.ru, ORCID: 0000-00030441-7121.
Irina V. Andreeva - Doctor of Medical Sciences, Professor, Professor of the Department of Clinical Ultrasound and Functional Diagnostics, Moscow Regional Research and Clinical Institute (MONIKI), Moscow, e-mail: prof.andreeva.irina.2012@yandex.ru, ORCID: 0000-0001-6946-3036. Lilia O. Voronkova - Post-Graduate Student of the Department of Normal Physiology with the course of Phsychophysiology, Ryazan State Medical University; Dietitian, Ryazan, e-mail: doc.liliiav@gmail.com, ORCID: 0009-0000-1777-107Х.
Для цитирования: Виноградов, А. А. Влияние хронического предаторного стресса на сорбцию тонкой кишки и печени / А. А. Виноградов, И. В. Андреева, Л. О. Воронкова // Современные вопросы биомедицины. - 2024. - Т. 8. - № 3. DOI: 10.24412/2588-0500-2024_08_03_5
For citation: Vinogradov A.A., Andreeva I.V., Voronkova L.O. The effect of chronic predator stress on the sorption of the small intestine and liver. Modern Issues of Biomedicine, 2024, vol. 8, no. 3. DOI: 10.24412/2588-0500-2024 08 03 5
