CC BY
34КОРМА И КОРМЛЕНИЕ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ ЖИВОТНЫХ
УДК 636:611:636.9 DOI: 10.24411/0023-4885-2020-10404
ВЛИЯНИЕ БЕЛКОВОГО ГИДРОЛИЗАТА НА МОРФОФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ КАЧЕСТВА ПОЛОВЫХ КЛЕТОК САМЦОВ НОРОК
С.М. Борунова1*, П.Н. Абрамов2
1. Федеральное государственное бюджетное учреждение «Всероссийский государственный Центр качества и стандартизации лекарственных средств для животных и кормов» (ФГБУ «ВГНКИ»), 123022, Москва, Звенигородское шоссе, д. 5, fatima.borunova@mail.ru
2. Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии - МВА имени К.И. Скрябина», 109472, г. Москва, ул. Академика Скрябина, д. 23, Abramov_P@inbox.ru
В статье представлены результаты исследования морфофункциональных параметров спермопродук-ции самцов норок и аналитический мониторинг состояния развития пушного звероводства за рубежом и в России. Определены основные репродуктивные дефекты гамет самцов норок, установленные с помощью визуального метода световой микроскопии, а также, путем применения автоматического спермоанализатора. Представленные результаты направлены на расширение и пополнение научных данных о составе и качестве эякулята норок и послужат необходимой базовой информацией при создании криобанка племенной продукции пушных зверей, что в перспективе может определить стратегическое развитие отечественных звероводческих ферм, нацеленных на повышение рентабельности своих предприятий и пушно-меховой индустрии в целом.
Ключевые слова: спермопродукция, морфологические, биохимические методы; биотехника репродукции; морфофункциональные показатели.
В девяностые годы наша страна занимала достойное высокое место по объему реализуемой во всем мире меховой продукции. Почти целиком она поставлялась за рубеж и служила одним из ключевых источников валютных поступлений в казну Российской Федерации. Во времена перестройки пушно-меховая отрасль, как и многие другие, начала сдавать свои лидирующие позиции не только на международном уровне, но и на внутреннем рынке. В то время прекратили существование многие ведущие отечественные звероводческие фермы Приморья, Карелии, Ленинградской области, Восточной и Западной Сибири.
В настоящее время рынок меха в Российской Федерации продолжает реагировать на экономические колебания - понижение цен на продукцию, спад процента продаж, сокращение производства пушного товара. В то же время наша страна обладает колоссальным потенциалом про-
изводства пушно-меховой продукции. Данную проблему можно успешно решить, взяв за модель новаторство зарубежных специалистов звероводов, которые в технологический процесс отрасли активно и широко внедряют методы искусственного осеменения. Это позволяет им не только увеличить получение продукции с высокими качествами (длина и масса тела, однородность цвета, густота, плотность и уравненность волоса, улучшенное качество опушения, расширенная линейка цветовой гаммы и т.д.,), но и добиться высоких экономических показателей рентабельности пушно - меховой отрасли (Багиров В.А., Насибов Ш.Н., Кленовицкий П.М. и др., 2009).
Так фермеры Скандинавских стран за последние 15 лет активно применяют метод искусственного осеменения криоконсервированной спермой самок пушных зверей. Согласно одной из традиционных методик скандинавской сортировки 70 % шкурок по качеству соответствует
классам Saga и Saga royal, а по размеру 60% пушнины относится к категориям «40» (0000) и «50» (00000) (Жвакина А.Р., Багиров В.А., Кудрявцев В.Б., 2011).
Очевидно, отечественной пушно-меховой отрасли чтобы стать самоокупаемой и рентабельной в условиях современной экономики необходимо применять инновационные методы и актуализировать существующие, модернизируя их и адаптируя под свои реалии введения работы. Высокие показатели качества пушно-меховой продукции можно получить и подтвердить, внедряя необходимый контроль, который должен начинаться с условий содержания пушных зверей, экспертизы и пересмотра целесообразности использования типовых рационов (ветеринарно-са-нитарный контроль качества содержания в них кормовых добавок), активного внедрение новейших селекционных разработок (создание новых и улучшения существующих пород), применения современных технологий отделки шкурковой продукции (использование нанотехнологиче-ских методов крашения, уморение, протравливание, рейнфорсинга и т.д.), то есть контроля на всех этапах производства от «клетки» до «аукциона», согласно международным требованиям и стандартам.
Современная внутренняя и внешняя макро-и микроэкономика навязывает иные правила работы не только пушно-меховой индустрии, но и отечественному животноводству в целом. В связи с этим, поэтапный контроль продукции на всех звеньях технологической цепочки побуждает изменять устоявшиеся стереотипы ведения пушно-меховой индустрии у обслуживающих её ведущих специалистов (технологов, генетиков, ветеринарных врачей, зоотехников).
При этом, высокая эффективность будет обеспечиваться путем внедрения обязательной оценки всех самцов-производителей по репродуктивным показателям и по качеству потомства, являющихся проблемами, имеющими экономическое значение при разведении норок (Абрамов М.Д., Бернацкий И.Г., 1977; Sundqvist, C., 1986).
Современные вспомогательные репродуктивные технологии, а именно искусственное оплодотворение, перенос эмбрионов в сочетании с криоконсервацией гамет и т.д., можно рассматривать, как инновационные методы в животноводстве, где криоконсервация гамет расширяет
диапазон фертильного потенциала исчезающих видов, включая ценный генетический материал животных, которые не смогли размножиться естественным путем или умерли преждевременно.
Сформированный криобанк позволит объединить время и пространство в селекционных программах так, как замороженную сперму можно легко транспортировать для искусственного осеменения и использовать спустя годы после первоначального сбора (Howard J.G., Wildt D.E., 2009).
Создание отечественного криобанка генетического материала продукции пушных зверей повлияет на формирование племенного ядра в звероводстве, как необходимого инструмента в увеличении поголовья и получении от него продукции, а также послужит надежной отправной точкой в проведении международных торговых операций «экспорт/импорт», выдерживании жестких требований и стандартов, предъявляемых к пушно-меховой продукции и сохранению генетических ресурсов животных (Насибов Ш.Н, Воеводин В.А, Багиров В.А. и др., 2009). Это позволит уменьшить численность на звероферме самцов пушных зверей при одновременном увеличении количества самок более 15% (Кудрявцев В.Б., Николаев О.А., 2004). Флагманом репродукции будет выступать биологическое качество половых клеток, как один из наиболее важных факторов при развитии эмбрионов пушных зверей, а также индикатор успеха вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ) в целом. На биологическое качество спермопродукции самцов производителей норок уделяли внимание ученые еще в начале прошлого века. Так, еще в 1978 году было установлено, что сперматозоиды норки имеют головастикообразную форму, длина головной части спермия составляет 5,8-7,0 мкм, а ширина 6,1 мкм. Средняя часть имеет длину 6,0 мкм, а общая длина - 43,0 мкм (Kim J.W., Ahmad M.S., Kitts W.D., 1978; Cummins J.M., Woodall P.F., 1985), а видоспецифические припухлости над головной частью эпидидимального сперматозоида были отнесены к акрасомальной его части.
D.M. Krause, R.J. Ringer, Aulerich R.K. (1986) подробно описали морфологию цитоплазматиче-ских капель в головке спермиев норок и указали на то, что они образуются, в следствии, нарушения процесса роста и развития сперматозоидов.
E. Blom, E. Hermansen (1969) отмечали у норки
высокое количество аномальных сперматозоидов, в сравнении с другими видами. Так, сперма норок содержала следующие аномалии: свернутые спиралью и изогнутые хвосты, бесхвостые сперматозоиды, различные дефекты головки и аномальное слипание (Onstad О., 1967; Sundqvist С., Toppari J., Parvinen M. et al, 1986). Jarosz S., Slawen J., Motz J. (1968) выявили, что фертиль-ность в меньшей степени зависит от количества сперматозоидов, а с первичными морфологическими аномалиями падает ниже 6%.
Спермограмма по мнению L.C. Busch, W. Kshnel, C. Stang-Voss (1977) является мощным инструментом в разведении норок, поэтому в своих исследованиях нами для достижения поставленной цели применены современные методы скри-нинговых исследований спермопродукции.
Целью данной работы являлось определение морфофункциональных показателей спермо-продукции самцов-норок при применении белкового гидролизата.
Материалы и методы
Белковый гидролизат получали методом ферментативного гидролиза в ЗАО «Биопрогресс» (г. Щелково). Данная кормовая добавка содержала в себе широкий спектр заменимых и незаменимых аминокислот, положительно влияющих на гомеостаз пушных зверей, в частности на их репродуктивный потенциал. Добавку добавляли первой и второй опытным группам самцов норок в корм по 2 и 4 мл, соответственно, на протяжении двух месяцев до начала гона и во время него. Контрольные аналоги находились на общепринятом рационе.
В настоящее время известно о существование нескольких видов выявления бесплодия в норковод-стве: пальпация семенников (Onstad О., 1967); скрининг спермограммы (Christiansen I.J., 1985).
Скрининговые исследования спермо-граммы считаются наиболее достоверными, полезными и эффективными методами, легко применяемыми в ветеринарной практике введения звероводства.
Метод пальпации семенников считается менее информативным в распознавании основных нарушений работы половых желез норок, а также этот метод ограничивается и сроками проведения пальпации в зависимости от времени спаривания.
Скриннинговый метод исследования спер-мопродукции самцов может быть выполнен также и с помощью применения трансректальной электроэякуляции, а образцы репродуктивного материала могут быть собраны методом Лэнса (Graf Z., 1985). По мнению Sundqvist C. (1985), наиболее точным является метод аспирационной биопсии семенника, выполняемый для обнаружения дефектов гамет.
Скрининговый метод исследования спермо-продукции широко распространен за рубежом в биотехнике репродукции пушных зверей и позволяет исследовать сперму самцов, установить ее морфофункциональные показатели, и на этом основании принимать решение о допуске их к спариванию.
Для проведения скрининговых исследований спермопродукции была получена от животных опытных и контрольной групп путем прерывания полового акта и взятия биоматериала из влагалища самок норок, при использовании пипетки вводимой на 2-3 см (Таль З.М., 1968). Из пипетки полученную сперму помещали на предметное стекло и микроскопировали при увеличении х200. Параллельно, полученную спермопро-дукцию помещали в специальную транспортную среду для последующего исследования на автоматическом анализаторе Andro Vigion (Германия). Этапы скрининга были следующими: оценка качества спермопродукции по подвижности; определение целостности акросомы спер-мия.
Подвижность сперматозоидов в полученном эякуляте от самцов, получавших в корм гид-ролизат и от самцов, находящихся на основном (базовом) патании оценивали, как визуально (таблица), так и на спермоанализаторе (чек-лист), после просмотра пяти различных её полей.
Результаты исследований и их обсуждение
Известно, что у взрослой норки, наблюдаются последовательные сезонные изменения активности половых органов, а у самцов норок семенники функционируют только в течение нескольких месяцев, а именно в период размножения (в марте) (Onstad О., 1967; Hemmingsen В., 1967).
Одной из проблем, имеющих большое экономическое значение при разведении норки, является бесплодие самцов (Абрамов М.Д., Бернац-кий В.Г., 1977). По их данным 20-30% самцов
Рисунок 1. Морфологические особенности сперматозоидов норок (х-100). 1 - сперматозоид с поврежденной акросомой
могут иметь репродуктивные нарушения, а так как полигамный самец использует при покрытии от 4 до 8 самок, то и отрицательный эффект фер-тильности может передаться будущему поколению и даже привести к бесплодию.
Согласно данным полученным Thomassen R., Sanson G., Krogenaes A. и др. (2006) сперма пушных зверей классифицируется как некачественная, если прогрессивная подвижность сперматозоидов (поступательное движение сперматозоидов) составляет меньше 50%, а процент аномальных сперматозоидов (морфофункциональные отклонения) больше 20%. Спермопродукция классифицирована, как хорошего качества если прогрессивная подвижность более 50%, а процент аномальных сперматозоидов ниже или равен 20%.
При исследовании спермы самцов норок, не получавших в корм белковый гидролизат, было выявлено присутствие большого количества спермиев с поврежденной акросомой (Рис. 1) (прореагировавшая акросома), что свидетельствует о аномальном протекании роста и развития гамет в семенниках.
Образцы спермы самцов норок контрольной группы содержали различные типы морфо-функциональных нарушений, отражающих вероятные дефекты процесса сперматогенеза. При идентификации функциональных дефектов спер-
миев нами было зафиксировано присутствие сперматозоидов с пружинообразным жгутиковым отделом. Вместо прямолинейно-поступательного движения было выявлено криволинейно-поступательное движение сперматозоидов, что тождественно данным полученным Ош1аё О. (1967), а также, присутствие большого количества агглютинированных островков в образцах спермопродукции. Во всех пробах контрольной и опытных групп фиксировали подвижность сперматозоидов, тождественную 6 баллам активности из 10, что вероятно связано с зависимостью стадии развития и количеством сперматозоидов от возраста самцов норок.
Морфофункциональные показатели самцов норок контрольных и опытных групп представлены в таблице.
Морфофункциональные показатели спер-мопродукции самцов норок (рис. 2) свидетельствуют о положительной динамике мероприятий по профилактике нарушений метаболизма, основу которых составляет своевременная коррекция рациона кормления норок по лимитирующим аминокислотам.
Основным дискриминационным показателем фертильности спермы является подвижность. На рисунке 2 представлен чек-лист с результатами исследований спермопродукции до
Морфофункциональные показатели самцов норок
Количе- Морфофункциональные отклонения По-
Группы животных ство образцов спермы С ин-тактной акросо-мой Отделившаяся головка Аномальная головка Согнутые хвосты Закрученные хвосты Спира-левид- ные хвосты движ-ность спер-миев, балл
Контроль 30 65 % 3,4% 7,25% 4,66% 4,3% 6,7% 4,5-5
Опыт 1 2 мл 30 83% 2,3% 3,4% 2,14% 2,0% 3,5% 4,9-5,5
Опыт 2 4 мл 30 87% 1,4% 3,3% 1,8% 2,0% 2,8% 5,8-6
внесения белкового гидролизата в основной рацион питания с распределением по классам подвижности клеток в образце спермы и диаграмма средней скорости движения спермиев в соответствии с классификацией ВОЗ. Полученные данные свидетельствуют о том, что процент мертвых клеток не превышал процент неподвижных сперматозоидов. Наблюдается большое количество живых, но неподвижных спермиев, имеющих структурные дефекты жгутиков (спиралевидные жгутики) в контрольной группе эксперимента. Спермопродукция самцов контрольной группы имела активность от 4,5 до 5 баллов, в сравнении с контролем, где отмечали незначительную тенденцию к повышенной активности/подвижности с трудом дотягивающей до 6 баллов.
Классификация клеток основана на установлении зависимости направления движения и скорости (диаграмма скорости на чек-листе) в ходе анализа спермоанализатором всех половых клеток, где подвижность спермиев распределяется по следующим категориям: 1 - быстро движущиеся, скорость их при этом составляет более 25 мкм/сек; 2 - прогрессивно движущиеся, однако скорость их ниже и способны передвигаться быстрее в следствии капацитации; 3 - половые клетки подвижны, но не могут передвигаться поступательно, чаще вращаются вокруг своей оси «манежный» тип движения и совершают колебательное движение на одном месте (причина возникновения - аномалии в строении
шейки и хвостовой части спермия); 4 - полностью неподвижные спермотозоиды.
Следующим этапом нашего исследования являлось определение целостности акросомы. Сущность метода заключается в определении под микроскопом числа сперматозоидов с ин-тактной или поврежденной акросомой. Целостность акросомы определяют с помощью дифференцированного окрашивания специальными красителями. Морфометрические параметры каждого сперматозоида оцениваются по размеру и форме головки. По данным Е.Е. Браги-ной (2009), головка спермия с четко очерченной акросомной областью должна хорошо визуализироваться. Акросома - это секреторный пузырек, который формируется из пузырьков зоны Гольджи, начиная с ранних этапов сперматогенеза. Акросома располагается в виде шапочки на переднем полюсе ядра (Рис.3). В матриксе акросомы локализованы протеолитические ферменты, которые участвуют во взаимодействии сперматозоида и яйцеклетки и обеспечивают проникновение через zona pellucida (ZP) (Ramalho-Santos J., Schatten G., Moreno R.D., 2002). Шейка сперматозоида должна быть тонкой и прикрепляться к головке вдоль ее оси. Размеры цитоплазматических капель не должны превышать 1/2 размера головки нормального сперматозоида. Хвост должен быть прямым (не закрученным), одинаковой толщины на всем протяжении. Спермии самцов
Таблица клас-ции клеток
Диаграмма скорости
-УАР УС1
■уэъ
Коп-во спермиев
Апс(гоУ151оп® пример отчета - Минитюб ГмбХ « Тифэмбэя * Германия
Странице 2/6
Рисунок 2. Чек-лист подвижности половых клеток и диаграмма средней скорости их движения
норок, в базовый рацион которых добавляли белковый гидролизат по 2 и 4 мл имели четко очерченные целостные акросомальные шапочки, с хорошо просматриваемой головкой, шеечной и хвостовой частью. Жгутики сперматозоидов имели минимальное количество дефектов, вероятно это связано с аминокислотным обогащением метаболических реакций, способствующих развитию морфологически правильного строения спермиев в процессе их созревания, что приводит к сокращению количества атипичных клеток.
На рисунке 3 представлена сперма самцов-производителей, получавших белковый гидроли-зат вместе с основным рационом.
Во всех исследуемых образцах спермопро-дукции самцов, получавший гидролизат, средний
показатель количества сперматозоидов с интакт-ной акросомой составил - 5,9%, что соответствует норме показателей спермопродукции, изложенных МУ РСХН (2018).
Заключение:
Скрининговые исследования спермопро-дукции самцов норок контрольной группы позволили установить следующие дефекты гамет: 1. Присутствие более 70% спермиев с поврежденной акросомой; 2. Сперматозоиды имели пружинообразный жгутик; 3. Вместо общепринятого прямопоступательного движения - криволинейно-поступательное; 4. Ни один образец спермопродукции контрольной и опытных групп не соответствовал высоким параметрам десятибальной системы; 5. Зафиксировано присутствие спермиев с многочислен-
Рисунок 3. Морфологические особенности сперматозоидов норок (х-100). 1 - сперматозоид с интактной (нормальной) акросомой
ными и разнообразными морфофункциональ-ными отклонениями: отделившаяся головка, согнутые и закрученные хвосты, аномальная головка.
Спермии самцов норок опытных групп имели так же криволинейно-поступательное движение, активность/подвижность превышала контроль на 10-20% и благодаря правильной коррекции базового рациона, по лимитирующим аминокислотам, запустился каскад биохимических реакций, где активизация метаболических процессов, оказала положительное воздействие на процесс сперматогенеза.
Список литературы
1. Кудрявцев В.Б., Николаев О.А. Ускорение селекционного процесса с помощью искусственного осеменения. Кролиководство и звероводство, 2002, №6, стр. 8-9.
2. Багиров В.А., Насибов Ш.Н., Кленовицкий П.М., Лесин С.А., Воеводин В.А., Зиновьева Н.А., Эрнст Л.К., Калашников В.В., Солошенко В. А. Сохранение и рациональное использование генофонда животных.Доклады Российской
академии сельскохозяйственных наук, 2009, № 2, стр. 37-40.
3. Жвакина А.Р., Багиров В.А., Кудрявцев В.Б. Репродуктивные технологии в звероводстве. Достижения науки и техники АПК, 2011, №12, стр. 60-62.
4. Кудрявцев В.Б., Николаев О.А. Искусственное осеменение песцов и лисиц в «Гагарин-ском звероплемхозе». Кролиководство и звероводство, 2004, №4, стр. 7-8.
5. Насибов Ш.Н, Воеводин В.А, Багиров В.А., Иолчиев Б.С., Кленовицкий П.М., Амиршоев Ф.С., Лесин С. А. Методы получения и криоконсер-вации семени для сохранения генетических ресурсов животных. Вестник Казанского ГАУ, 2009, Т. 18, №4, стр. 139-141.
6. Onstad O. Studies on postnatal testicular changes, semen quality, and anomalies of reproductive organs in the mink. Acta Endocr., Co-penh.,Suppl., 1967, 117:1-117.
7. Sundqvist C. Recent male mink reproduction studies and some prospects for the future. Seien-tifur, 1986, 10, р.261-264.
8. Howard J.G., Wildt D.E. Advances in reproductive science for wild carnivore conservation. Re-prod Domest Anim. 2009 Jul; 44 Suppl 2:47-52. doi: 10.1111/j. 1439-0531. 2009.
9. Kim J.W., Ahmad M.S., Kitts W.D. Ultrastructure of mink (Mustela vison) spermatozoa. Korean J. Anim. Sci., 1978, 20, 52-65
10. Cummins J.M., Woodall P.F. On mammalian sperm dimensions. J. Reprod. Fert., 1985, 75, 153-175.
11. Krause D.M., Aulerich R.J., Ringer R.K. Description of the cytoplasmic droplet on mink spermatozoa. Scienlifur, 1986, 10, 36-39.
12. Blom E., Hermansen E. Segmentai aplasia of the Wolffian duct (lack of epididymis), a sterilizing and hereditary defect in the mink. Nord Vet Med., 1969, 21, 188-192.
13. Onstad О. Studies on postnatal testicular changes, semen quality, and anomalies of reproductive organs in the mink. Acta endocr., Co-penh., Suppl.,1967, 117, 1-117.
14. Sundqvist С., Toppari J., Parvinen M., Fagar-strom R. Elimination of infertile male mink from breeding using sperm test, testicular palpation, testosterone test and fine-needle aspiration biopsy of the testis. Animal Reproduction Science, 1986, 11, р.295-305
15. Jarosz S., Slawen J., Motz J. Attempts to determine the relationship between sexual reflexes, semen characters and fertility in mink. Roezn. Nauk. roln. Ser. , Zootech., 1968, 90, 463, 175
16. Hemmingsen B. Postnatal development and cyclic changes in the testes of mink. Nord. Vet-Med., 1967, 19, р. 71-80.
17. Абрамов М.Д., Бернацкий В.Г. Некоторые причины бесплодия у норок и меры борьбы с ними. Проблемы пушного звероводства и кролиководства: Сборник науч. тр. НИИП-ЗиК, 1977, Т. 15, стр. 5-12
18. Christiansen I.J. Attempts to advance implantation in mink by means of treatment with med-roxyprogesterone acetate. K. Vet.-og Landbo-heisk. Inst.Sterilitetsforskn. Aarsberetn., 1985, №28, р.55-60.
19. Busch L.C., Kshnel W., Stang-Voss C. The ultrastructure of the vaginal epithelium of the mink (Mustela vison Schreb.) during the reproductive cycle.Ada morph. neerl. scand., 1979, №17, р.210-211.
20. Graf Z. Development and use of an electroejac-ulator for zoo and domestic animals. Magy. Al-latorv. Lap., 1985, №40, р.169-174.
21. Sundqvist C. Morp ho metric studies on mink testi-cular tissue. Theriogenology, 1985, №24, р.713-723.
22. Thomassen R., Sanson G., Krogenaes A., Fougner J. A., Andersen K., Farstad W. Artificial insemination with frozen semen in dogs: a retrospective study of 10 years using a non-surgical approach. W FarstadTheriogenology. 2006. Oct 15; 66(6-7):1645-50. Epub 2006 Feb 15.
23. Таль З.М. Опыт применения ультафиолето-вого облучения в норководстве / Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук, Московская сельскохозяйственная академия им. К.А. Тимирязева, Москва, 1698.
24. Брагина Е. Е., Замятнина В. А., Бочарова Е. Н. и др. Количественное
25. ультраструктурное исследование хроматина сперматозоидов при нарушении фертильно-сти. Андрололия и генитальная хирургия, 2009, Т.10, №1, стр.44-49.
26. Ramalho-Santos J., Schatten G.,Moreno R. D. Control of membrane fusion during spermiogen-esis and the acrosome reaction. Biol Reprod 2002;67(4):1043-51.
MORPHOFUNCTIONAL QUALITIES OF SEX CELLS IN MALE MINKS S.M. Borunova1, P.N. Abramov2
1. Federal State Institution «The Russian State Center for Quality and Standardization of Animal Drugs and Feed» (FGBU «VGNKI»), 123022, Moscow, Zvenigorodskoe shosse, 5, fatima.borunova@mail.ru
2. Federal State Budgetary Educational Institution of Higher Education "Moscow State Academy of Veterinary Medicine and Biotechnology - MVA named after K.I. Scryabin «, 109472, Moscow, st. Academician Scriabin, 23, Abramov_P@inbox.ru
The article presents the results of a study of morphological and functional parameters of semen production, self-testing and analytical monitoring of the state of development of fur farming abroad. The main defects of the gametes of male minks were determined, established using the visual method of light microscopy, as well as by means of an automatic sperm analyzer.
The main reproductive defects of the gametes of male minks were determined, they were established using the visual method of light microscopy, and using an automatic sperm analyzer. The presented results are aimed at expanding and replenishing scientific data on the composition and quality of mink ejaculate. They will serve as the necessary basic information when creating a cryobank of breeding products of fur animals, which in the future can determine the strategic development of domestic fur farms aimed at increasing the profitability of their enterprises and the fur industry generally.
Key words: semen production; morphological, biochemical methods; reproduction biotechnology; morphological and functional indicators.
