CC BY
42
2012, Т. 2, № 1-2
Современное лабораторное обеспечение.
после инфицирования способствовало угасанию структурно-функциональных реакций. Поскольку уже через 3 часа количество микроба в лимфатических узлах животных 1 подгруппы было больше, чем во 2 подгруппе, а структурно-функциональные преобразования зон лимфоузла не были столь выраженным, нежели в узлах животных 2 подгруппы, элиминация агента в 1 подгруппе происходила медленнее и, соответственно, морфологические изменения сохранялись дольше.
Таким образом, выявлена разная интенсивность реакций бласттрансформации лимфоидных органов животных и, соответственно, реализация иммунных реакций, что определило динамику элиминации микроба при экспериментальной стафилококковой инфекции.
УСТОЙЧИВОСТЬ К ХИНОЛОНАМ ШТАММОВ S.TYPHI - ВОЗБУДИТЕЛЕЙ БРЮШНОГО ТИФА, ЗАРЕГИСТРИРОВАННОГО НА ТЕРРИТОРИИ РФ
С.А. Егорова1, Л.А. Кафтырева1, В.К. Козырева2, Е.В. Войтенкова1
ФБУН НИИ эпидемиологии и микробиологии имени Пастера, Санкт-Петербург; 2НИИантимикробной химиотерапии ГБОУ ВПО Смоленская государственная медицинская академия Минздравсоцразвития РФ, Смоленск
Препараты группы хинолонов стали использовать в качестве эмпирической терапии брюшного тифа в 1990-е годы в связи с появлением и широким распространением штаммов S.Typhi, устойчивых к традиционно используемым препаратам: левомицети-ну, ампициллину и ко-тримоксазолу. В настоящее время во всех странах (и эндемичных по брюшному тифу и для которых заболеваемость определяется завозными случаями), возбудитель брюшного тифа характеризуется устойчивостью к хинолонам (нали-диксовой кислоте) и сниженной чувствительностью к фторхинолонам (ципрофлоксацину, норфлокса-цину, офлоксацину). Эта глобальная тенденция затронула и административные территории РФ, в которых в последние годы регистрировались случаи, как правило, завозного брюшного тифа.
Исследования референс-центра по мониторингу за возбудителем брюшного тифа показали, что 82,8% (167 из 202 изученных штаммов) штаммов S.Typhi, выделенных в 2005—2011 гг. на различных территориях РФ, характеризовались таким фенотипом резистентности (МПК налидиксовой кислоты > 256 мг/л, МПК ципрофлоксацина 0,19—0,5 мг/л). Кроме того, у пяти штаммов (2,2%) МПК ципрофлоксацина превышала 32 мг/л, что свидетельствовало о резистентности. Устойчивость к налидиксовой кислоте обусловлена мутациями в гене gyrA, кодирующем субъединицу А фермента ДНК гиразы, который участвует в репликации ДНК и является мишенью для действия хинолонов. Все устойчивые штаммы имеют хотя бы одну мутацию, как правило, в кодоне 83 (Ser) gyrA. Наиболее широко встречается резистентность, связанная с заменой Ser83Phe. В российских штаммах, устойчивых к хинолонам, встречались два вида мутаций: Asp87Asn и Ser83Tyr, а у штамма устойчивого к ципрофлоксацину — двойная мутация Ser83Phe и Asp87Asn. Выявленные хромосомные мутации могут служить эпидемиологической меткой для выяснения происхождения и подтверждения завоза штаммов.
Многолетнее использование антибиотиков для терапии брюшного тифа сопровождается постоянной адаптацией возбудителя к их селективному давлению посредством различных механизмов: хромосомных точечных мутаций или мобильных генетических элементов, содержащих детерминанты резистентности. В настоящее время особенностью популяции штаммов S.Typhi является устойчивость к современным препаратам (хинолонам) и «восстановление» чувствительности к «старым» препаратам первой линии (хлорамфениколу, ампициллину, ко-тримоксазолу). Такие штаммы имеют глобальное распространение.
ПЕРСПЕКТИВЫ ИННОВАЦИОННЫХ РАЗРАБОТОК ПО ОПРЕДЕЛЕНИЮ ЭЛЕКТРИЧЕСКОГО СОПРОТИВЛЕНИЯ БАКТЕРИЙ
В.В. Ефимов
ГБОУ ВПО «Тюменская государственная медицинская академия» Минздравасоцразвития России, г. Тюмень
Теоретическое обоснование электрокинетических свойств бактерий нашло отражение в теориях: Г. Гельмгольца — Ж. Перена и М. Гуа — О. Штерна. На поверхности биологических частиц, находящихся в жидкой среде, возникает двойной электрической слой типа конденсатора. Одна обкладка — заряженная поверхность биологической частицы, а другая — ионы, находящиеся в жидкости и несущие противоположный заряд. Двойной электрический слой биологических частиц образуется под влиянием двух противоположно действующих сил: электрического притяжения и теплового движения ионов. Наличие поверхностного электрического заряда на микробных клетках позволило определять в жидкой среде их электрическое сопротивление, которое зависит от многих факторов, в частности, от вида микроорганизма, его концентрации в жидкой среде и физиологического состояния микробных клеток.
Проведенные исследования показали, что в условиях проведения опытов электрическое сопротивление исследуемых микробных взвесей (возбудителей ИСМП) находилось в пределах 500—2000 кОм. Используяпоказателиэлектрическогосопротивления микробных взвесей предложен метод определения максимальной концентрации Staphylococcus aureus, Proteus mirabilis, Citrobacter freundii и Pseudomonas aeruginosa, способ индикации госпитальных и спорадических штаммов P. aeruginosa, S. aureus, Enterobacter cloacae, способ индикации некультивируемых бактерий стафилококка, разработан экспресс метод определения в жидкой среде P. aeruginosa и Escherichia coli, некультивируемые в лабораторных условиях, сконструировано устройство для выделения некульти-вируемых бактерий. Выше перечисленные научные исследования являются объектом интеллектуальной собственности и защищены заявками на патенты и полезную модель.
Экспресс метод индикации культивируемых и некультивируемых бактерий в лабораторных условиях открывает новые возможности для проведения предэпидемической диагностики инфекционных заболеваний, оценки эпидемического благополучия в лечебно-профилактических учреждениях (ЛПУ), контроля эффективности проведения текущей и заключительной дезинфекции, а также для разработки критериев определения качества применяемых дезинфекционных средств в ЛПУ.
