CC BY
64
© КОЛЛЕКТИВ АВТОРОВ, 2013 УДК 578.832.1.083.2
А. В. Васин1, Н. Т. Сандыбаев2, М. А. Плотникова1, С. А. Клотченко1, О. В. Червякова2, В. М. Строчков2,
Э. Т. Тайлакова2, О. А. Темкина1, А. В. Бродская1, Я. А. Забродская1, К. П. Никуленков1, В. В. Егоров1,
Ж. К. Кошеметов2, А. Р Сансызбай2, О. И. Киселев1
Универсальный диагностический олигонуклеотидныи микрочип для определения и субтипирования вирусов гриппа A человека и
животных
1ФГБУ "НИИ гриппа" Минздрава России, 197376, Санкт-Петербург; 2РГП "НИИ проблем биологической безопасности" КН МОН РК,
пгт. Г вардейский, Казахстан
В работе представлен диагностический олигонуклеотидный микрочип для субтипирования вирусов гриппа А (вгА) человека и животных. предложен универсальный метод флюоресцентного мечения геномных сегментов всех известных подтипов вгА, состав буфера гибридизации, а также программное обеспечение для обработки получаемых результатов. Результаты анализа 48 штаммов вгА человека и животных, принадлежащих к 18 разным подтипам, позволили однозначно типировать все штаммы и субтипировать 45 штаммов.
Ключевые слова: вирус гриппа А; гемагглютинин; нейраминидаза; микрочип; молекулярная диагностика.
A. V. Vasin1, N. T. Sandybaev2, M. A. Plotnikova1, S. A. Klotchenko1, O. V. Chervyakova2, V. M. Strochkov2, E. T. Taylakova2, O. A. Temkina1, A. V. Brodskaya1, Y. A. Zabrodskaya1, K. P. Nikulenkov1, V. V. Egorov1,
J. K. Koshemetov2, A. R. Sansyzbay2, O. I. Kiselev1
Universal diagnostic oligonucleotide microarray for subtyping of human and animal
influenza A viruses
1 Federal State Research Institute of Influenza, Ministry of Health of the Russian Federation, St. Petersburg, Russia
2 Research Institute for Biological Safety Problems, Gvardeiskiy, Republic of Kazakhstan
The diagnostic oligonucleotide microarray for subtyping of human and animal influenza a viruses (IAVs) was developed. We proposed a simple method of the fluorescent labeling of genomic segments of all known IAVs subtypes, the composition of the hybridization buffer, as well as the software of the data processing. 48 IAVs strains of different subtypes were analyzed using our microarray. All of them were identified, while 45 of 48 strains were unambiguously subtyped.
Key words: influenza A virus; hemagglutinin; neuraminidase; microarray; molecular diagnosis.
Введение
Грипп - острое инфекционное заболевание человека и животных, этиологическим агентом которого являются одноименные РНК-содержащие вирусы трех типов -А, В и С, принадлежащие семейству Orthomyxoviridae. Геном вирусов гриппа А (ВГА), представляющих наибольшую эпидемиологическую опасность, состоит из 8 отдельных сегментов (-)-РНК, кодирующих не менее 11 белков. ВГА классифицируют на подтипы на основе антигенных различий поверхностных гликопротеинов гем-агглютинина (НА) и нейраминидазы (NA). Природным резервуаром всех известных подтипов ВГА (Н1-16 и N1-9) являются водоплавающие птицы. В человеческой популяции циркулирует только 3 подтипа НА (Н1-3) и 2 подтипа NA (N1-2), однако высокая степень изменчивости ВГА, а также возможность реассортации вирусных сегментов при коинфекции разными штаммами могут приводить к появлению таких новых "нетипичных" для данной популяции вирусных вариантов, как, например, H5N1 или H1N1 , „0 [1].
Ежегодные эпидемии гриппа и потенциальная угроза возникновения новых пандемий обусловливают необходимость разработки и совершенствования методов, позволяющих проводить быструю и точную идентифи-
кацию и субтипирование вирусных штаммов в клинических образцах [2]. В настоящее время для этой цели широко применяют стандартные иммунологические методы или методы на основе полимеразной цепной реакции (ПЦР). Одним из наиболее перспективных и относительно доступных подходов к высокопроизводительному определению вирусного подтипа является предложенная в 1990-е годы технология биологических микрочипов [10]. В последние годы появился целый ряд работ по созданию микрочипов для детекции и субтипи-рования ВГА [3, 4, 7, 9, 11].
Ранее мы также провели дизайн олигонуклеотидного микрочипа для субтипирования ВГА H5N1 человека, а затем и для субтипирования всех известных подтипов ВГА человека и животных [8, 12]. Кроме того, мы предложили способ получения флюоресцентно меченой вирусной кДНК, используемой для анализа на микрочипе, путем амплификации геномных сегментов РНК с помощью универсальных для всех подтипов ВГА праймеров к высококонсервативным концевым областям этих сегментов. Использование таких праймеров позволяет унифицировать разрабатываемые микрочипы и избавиться от необходимости использования наборов мультиплексных праймеров, специфических только для определенных подтипов ВГА.
Контактная информация:
Васин Андрей Владимирович, канд. биол. наук, e-mail: [email protected]
32
В данной работе мы предложили методику субтипи-рования ВГА с использованием олигонуклеотидного биочипа, подобрали условия проведения гибридизации флюоресцентно меченой вирусной кДНК на биочипе и проверили его специфичность на примере вирусных штаммов 18 подтипов ВГА из разных хозяев. Также мы разработали программное обеспечение для быстрого и простого анализа результатов.
Материалы и методы
В работе использовали 47 охарактеризованных штаммов ВГА человека и животных, среди которых А/Алматы/1/98 (H1N1), А/Алматы/5/98 (H1N1), А/ Алматы/32/98 (H1N1), А/Астрахань/72/08 (H1N1), A/ Брисбейн/59/07 (H1N1), А/Воронеж/4/08 (H1N1), A/ Калифорния/07/09 (H1N1 ), A/Новая Каледония/20/99
(H1N1), A/свинья/31/76 (ШШ), А/утка/Альберта/35/76 (H1N1), А/Хабаровск/74/77 (H1N1), A/Египет/96/02 (H1N2), А/серебристая чайка/Атырау/2186/07 (H2N2), А/Сингапур/1/57 (H2N2), А/утка/Германия/215/73 (H2N3), A/Брисбейн/10/07 (H3N2), A/Виктория/3/75 (H3N2), А/Новосибирск/1/08 (H3N2), А/Самара/68/08 (H3N2), A/Сидней/5/97 (H3N2), А/чирок-трескунок/ Коргалжын/865/04 (H3N6), А/ворон/Иркутск/402/08 (H3N8), А/лошадь/Алматы/26/07 (H3N8), А/ло-шадь/Отар/764/07 (H3N8), А/серебристая чайка/ Иркутск/111/05 (H3N8), А/утка/Калифорния/72 (H3N8), А/чирок-свистунок/Коргалжын/1797/06 (H3N8), А/ малая поганка/Алаколь/791/04 (H4N6), А/голубая чер-неть/Актау/1455/06 (H4N6), А/лысуха/Актау/1454/06 (H4N6), А/утка/Чехословакия/56 (H4N6), А/домаш-ний гусь/Павлодар/1/05 (H5N1), A/курица/Курган/5/05 (H5N1), А/лебедь-шипун/Мангистау/3/06 (H5N1), А/ скворец/Костанай/233/07 (H5N1), А/утка-широконоска/ Костанай/58/07 (H5N1), A/утка/Потсдам/1402-6/86 (H5N2), А/крачка/Южная Африка/59 (H5N3), А/утка/ Сингапур/FП9/97 (H5N3), А/серебристая чайка/
Сарма/51с/06 (H6N1), A/утка/Нидерланды/00 (H7N3), А/Алматы/331/06 (H7N7), А/каспийский тюлень/1/00 (H7N7), A/Гонконг/1073/99 (H9N2), А/сизая чай-
ка/Иркутск/121/08 (H9N7), А/черноголовый хохо-тун/Атырау/284/02 (H13N6), А/серебристая чайка/ Атырау/2216/07 (H16N3).
Печать микрочипов. Олигонуклеотидные зонды, содержащие аминолинкер ("ДНК-Синтез", Россия), в трехкратном SSC-буфере в концентрации около 300 нг/ мкл наносили на альдегидный субстрат (Vantage Aldehyde Slides, "CEL Associates", США) методом контактной печати с использованием споттера SpotBot® 3 Personal Microarrayers ("Arrayit Corporation", США). После печати слайды оставляли на ночь в споттере, затем проводили ковалентную пришивку зондов с помощью УФ-облучения в кросслинкере BioLink ("Biometra", Германия) при 0,09 Дж/см2.
Выделение РНК. Тотальную РНК экстрагировали из зараженного материала реагентом TRizol ("Invitrogen", США) в соответствии с инструкцией производителя. Качество и концентрацию полученной РНК проверяли на спектрофотометре NanoDrop ND-1000 ("NanoDrop Technologies", США).
Амплификация вирусной РНК. Одностадийную ОТ-ПЦР проводили с помощью набора SuperScript III Platinum One-Step Quantitative RT-PCR System ("Invitro-gen", США) в соответствии с инструкцией производителя. Для мультисегментной амплификации использовали универсальную пару праймеров, подобранную к концевым высококонсервативным областям, которые имеют во всех геномных сегментах ВГА (MBTuni-12 и MBTuni-13) [5]. Амплификацию проводили, как описано ранее
[12]. Флуюресцентное мечение пробы осуществляли путем прямого встраивания Cy5-dCTP ("ДНК-Синтез", Россия) непосредственно в процессе ОТ-ПЦР, реакционная смесь при этом дополнительно содержала 33 мкМ 1 мМ Cy5-dCTP.
Гибридизация. К 1 мкл ПЦР-смеси, содержащей Cy5-кДНК, добавляли раствор для гибридизации, доводили общий объем до 50 мкл Milli-Q H2O и прогревали в твердотельном термостате при 99°С 2 мин, затем охлаждали во льду 2 мин и сразу наносили на микрочип. Параллельно этому олигонуклеотидные зонды на микрочипе денатурировали кипячением слайда в Milli-Q H2O 1 мин с последующей инкубацией в 96% этаноле при 20°С в течение 1 мин, после чего слайд высушивали центрифугированием при 300 g 2 мин. Гибридизацию проводили с использованием рамки на 16 субэрреев FAST® Frame ("Whatman", США) в течение 2 ч при 37°C с перемешиванием при 250 об/мин в термошейкере Biosan PST-60 HL plus ("BioSan", Латвия). После этого проводили отмывку слайда от раствора для гибридизации и несвязавшихся молекул пробы, затем слайд высушивали на центрифуге.
Сканирование микрочипов проводили на сканере ScanArray Express ("PerkinElmer", США) с разрешением 5 мкм и при значении PMT в пределах 60-90. Флюоресцентное сканирование для метки Cy5 осуществляли при длине волны возбуждения 650 нм и длине волны регистрации 670 нм. Получаемые изображения обрабатывали с использованием программы ScanArray Express 3.0 ("PerkinElmer", США).
Результаты и обсуждение
Представленный в работе микрочип предполагает детектирование и субтипирование ВГА по геномным сегментам, кодирующим HA и NA. На начало 2011 г. в базе данных GenBank было представлено примерно по 23 000 полноразмерных нуклеотидных последовательностей HA 16 подтипов и NA 9 подтипов. Множественное выравнивание вышеуказанных последовательностей, выполненное в программе MAFFT [6], а также результаты последующего филогенетического анализа в программе Jalview [13] позволили разделить их на кластеры внутри каждого из подтипов HA и NA. Для практически всех последовательностей каждого кластера были найдены полностью идентичные участки, к которым в программе OligoWiz 2.0 [14] подобрали оптимальные по физикохимическим свойствам комплементарные олигонуклеотидные зонды. Таким образом, для каждого из подтипов HA и NA составили наборы зондов, содержащие от одной до шести последовательностей. Всего подобрали около 70 зондов, их нуклеотидные последовательности были приведены ранее [8]. Отнесение штаммов ВГА к определенному подтипу осуществляли при условии гибридизации исследуемой пробы хотя бы с одним зондом из набора, характеризующего конкретный вирусный подтип.
Олигонуклеотидные зонды синтезировали и иммобилизовали на микрочип для дальнейшего проведения контрольных испытаний и отработки всех этапов подготовки пробы и ее гибридизации (рис. 1). Микрочип состоял из 16 идентичных массивов точек, расположенных в виде матрицы размером 2 на 8. В свою очередь каждый массив содержал точки, напечатанные в виде матрицы 20 на 12, диаметр каждой точки составлял 200 нм. Все зонды для субтипирования HA и NA, а также зонды, выявляющие консервативные для всех подтипов ВГА нуклеотидные последовательности М2-белка и белка NP, выбранные в качестве положительного контроля присутствия ВГА в анализируемой пробе, наносили в трех
33
Схема расположения зондов в эррее
1 2 3 4
1 NP-1 NP-2 М2-1 М2-2 ПК
2 М2-3 Н1-1 Н1-2 Н1-3 ПК/Н1
3 Н2-1 Н2-2 Н2-3 Н2-4 Н2
4 НЗ-1 НЗ-2 НЗ-З * НЗ
5 Н4-1 Н4-2 Н4-3 * Н4
б Н5-1 Н5-2 Н5-3 * Н5
7 Н5-4 Н5-5 Н5-6 * Н5
8 Нб-1 Нб-2 Нб-3 * Нб
9 Н7-1 Н7-2 Н7-3 Н7-4 Н7
10 HS Н9-1 Н9-2 Н9-3 Н8/Н9
11 НЮ-1 НЮ-2 Н11-1 Н11-2 Н10/Н11
12 Н12 Н13-1 Н13-2 * Н12/Н13
13 Н14 Н15 Н16-1 Н16-2 Н14/Н15/Н16
14 N1-1 N1-2 N1-3 N1-4 N1
15 N2-1 N2-2 N2-3 N2-4 N2
16 N3 N4 N5 * N3/N4/N5
17 N6-1 N6-2 N6-3 * N6
18 N7-1 N7-2 * * N7
19 N8-1 N8-2 N8-3 N9 N8/N9
20 NP-1 NP-2 * * ПК
Каждый зонд представлен тремя спотами
Рис. 1. Схема расположения олигонуклеотидных зондов на биочипе для субтипирования ВГА.
повторах, обеспечивающих статистическую достоверность получаемых при анализе данных.
Специфичность взаимодействия олигонуклеотидов, иммобилизованных на подложке микрочипа, с анализируемой флюоресцентно меченой пробой во многом зависит от условий проведения гибридизации. Гибри-дизационный раствор помимо непосредственно меченой кДНК должен содержать формамид для снижения температуры плавления ДНК-дуплекса, солевой буфер, детергент и забивочный реагент. На первом этапе исследования провели оптимизацию состава буфера для гибридизации. Для этого использовали различные солевые буферы: PBS, SSC, раствор Денхардта, коммерческие буфер для ревертазы ("Promega", США) и ULTRAHyb® буфер ("Ambion", США). В качестве забивочных реагентов выбрали бычий сывороточный альбумин (БСА), желатин, неспецифическую дрожжевую тРНК и Cot-1 ДНК человека. В экспериментах варьировал процентный состав компонентов разных буферов, а также оценивали влияние наличия детергента SDS различной процентности на результат гибридизации. Оптимальным для разрабатываемого микрочипа выбрали гибри-дизационный буфер, содержащий 20% формамид, 1% БСА, трехкратный SSC-буфер и 1% SDS. Оптимальный объем продукта одностадийной ОТ-ПЦР, содержащего анализируемую флюоресцентно меченую Су5-кДНК, составлял 1-2 мкл на каждые 50 мкл гибридизационной смеси. Оптимальную температуру для гибридизации выбрали равной 37°C, время гибридизации 2 ч. После этого проводили отмывку слайда от гибридизационно-го буфера и несвязавшихся молекул пробы. По итогам экспериментов по оптимизации серии отмывок решили остановиться на следующем алгоритме: трехкратный SSC-буфер - 2 мин, однократный SSC-буфер - 2 мин. Затем гибридизационную рамку снимали и слайд отмывали целиком в Milli-Q H2O 2 мин, после чего сушили в центрифуге при 300 g в течение 2 мин и сканировали на флюоресцентном сканере.
Для оценки специфичности разработанного микрочипа проводили гибридизационный анализ проб ВГА, охарактеризованных ранее методами ОТ-ПЦР и иммуноферментного анализа в РГП "НИИ проблем биологической безопасности" КН МОН РК и фГБУ "НИИ гриппа" Минздрава России. В качестве референсных отобрали 47 штаммов ВГА человека и животных, принадлежащих к 18 различным подтипам. При тестировании микрочипа на выбранных 47 изолятах ВГА однозначно субти-пировали 45 образцов. Для них достоверно значимый уровень флюоресценции наблюдали только для точек, соответствующих специфическим подтипам ВГА, тогда как величина интенсивности флюоресценции для всех остальных точек находилась на значительно меньшем уровне или была сопоставима с погрешностью (рис. 2; дана выборка из 12 разных подтипов ВГА).
Для количественной оценки регистрируемого сигнала, получаемого после гибридизации на микрочипе, проводили расчет величины интенсивности флюоресценции каждой точки с помощью программы ScanArray Express 3.0. На выходе программа выдает матрицу данных, для анализа которых мы разработали программу MArrAnalyzer. За величину интенсивности флюоресценции зонда принимали медианное значение флюоресценции трех точек, соответствующих этому зонду, исключая величину флюоресценции фона. Программа MArrAnalyzer, адаптированная под разрабатываемый микрочип для субтипирования ВГА, позволяет автоматически анализировать данные, получаемые после обработки изображения флюоресценции точек на микрочипе, и выдавать однозначный ответ в формате "да/нет" с учетом пороговых значений. Анализируемый штамм относили к определенному подтипу ВГА, если величина интенсивности флюоресценции зонда была сравнима с флюоресценцией положительных контролей M2 и NP. С использованием программы MArrAnalyzer по результатам сканирования микрочипов после проведения гибридизационного анализа флюоресцентно меченых
34
Рис. 2. Результаты сканирования микрочипов после проведения гибридизационного анализа флюоресцентно меченых проб, полученных от образцов различных подтипов ВГА.
Здесь и на рис. 3: 1 - А/утка/Альберта/35/76 (H1N1); 2 - А/серебристая чайка/Атырау/2186/07 (H2N2); 3 - А/утка/Германия/215/73 (H2N3); 4 - А/ Самара/68/08 (H3N2); 5 - А/чирок-трескунок/Коргалжын/865/04 (H3N6); 6 - А/лошадь/Отар/764/07 (H3N8); 7 - А/утка/Чехословакия/56 (H4N6); 8 - А/домашний гусь/Павлодар/1/05 (H5N1); 9 - А/крачка/ЮА/59 (H5N3); 10 - А/Алматы/331/06 (H7N7); 11 - А/черноголовый хохотун/Атырау/284/02
(H13N6); 12 - А/серебристая чайка/Атырау/2216/07 (H16N3).
проб ВГА определили величину интенсивности флюоресценции зондов и построили гистограммы (рис. 3; графики соответствуют изображениям флюоресценции точек, представленных на рис. 2).
Из анализируемых 47 штаммов 2 определялись неоднозначно. Так, например, несмотря на то, что штамм А/ утка/Германия/215/73 (H2N3) (рис. 3, № 3) достоверно был отнесен к HA второго подтипа, величина интенсивности флюоресценции набора зондов, характеризующих
данный подтип, была значительно ниже, чем у положительных контролей. В случае более высоких значений неспецифической флюоресценции субтипирование этого штамма было бы затруднено. Кроме того, для некоторых однозначно субтипированных штаммов на фоне высокого специфического сигнала наблюдали и незначительную неспецифическую флюоресценцию. Однако более тонкий подбор условий гибридизации позволит минимизировать неспецифический сигнал.
35
Рис. 3. Гистограммы величин интенсивности флюоресценции зондов, полученных с помощью программы MArrAnalyzer по результатам обсчета данных после обработки изображения флюоресценции точек (см. рис. 2).
36
Использование олигонуклеотидных биочипов для субтипирования ВГА с высокой чувствительностью дает возможность проводить одновременные детекцию, типирование и субтипирование десятков образцов в рамках одного эксперимента. Чувствительность разработанного биологического микрочипа сопоставима со стандартным анализом на основе ОТ-ПЦР, при этом методом гибридизации на микрочипе субти-пировали даже те пробы, ампликоны которых электро-форетически не выявлялись. При анализе в ОТ-ПЦР брали 50 пкг вирусной РНК. В дальнейшем предполагается определить аналитическую чувствительность разработанного микрочипа. Следует отметить, что описанный метод позволяет при необходимости проводить скрининг не только по HA и NA, но и по всем остальным генам ВГА. Единственным недостатком предложенного метода можно считать невозможность однозначного субтипирования ВГА разных подтипов при коинфекции.
Проведение мероприятий комплексного надзора за гриппом, а также его профилактики и лечения требует создания чувствительных, надежных, высокопроизводительных и быстрых методов определения подтипов ВГА. Одним из таких подходов является активно развивающийся метод диагностических биологических микрочипов, который в скором будущем может перейти из научных лабораторий в медицинскую практику.
Исследование выполнено при поддержке КНМОН РК и Министерства образования и науки Российской Федерации, соглашение № 8121 от 23.10.2012.
ЛИТЕРАТУРА
1. Киселев О. И. Геном пандемического вируса гриппа A/H1N1v-2009. СПб.: Димитрейд График Групп; 2011.
2. Debouck C., Goodfellow P. N. DNA microarrays in drug discovery and development. Nat. Genet. 1999; 21(1): 48-50.
3. FesenkoE. E., KireyevD. E., GryadunovD. A. et al. Oligonucleotide microchip for subtyping of influenza A virus. Influenza Other Respi. Viruses. 2007; 1(3): 121-9.
4. Han X., Lin X., Liu B. et al. Simultaneously subtyping of all influenza A viruses using DNA microarrays. J. Virol. Methods. 2008; 152(1-2): 117-21.
5. Hoffmann E., Stech J., Guan Y. et al. Universal primer set for the full-length amplification of all influenza A viruses. Arch. Virol. 2001; 146(12): 2275-89.
6. Katoh K., Asimenos G., TohH. Multiple alignment of DNA sequences with MAFFT. Methods Mol. Biol. 2009; 537: 39-64.
7. Kessler N., Ferraris O., Palmer K. et al. Use of the DNA flow-thru chip, a three-dimensional biochip, for typing and subtyping of influenza viruses. J. Clin. Microbiol. 2004; 42(5): 2173-85.
8. Klotchenko S. A., Vasin A. V, Sandybaev N. T. et al. Oligonucleotide microarray for subtyping of influenza A viruses. J. Physiol: Conf. Ser. 2012; 345(012041): 1-8.
9. Li J., Chen S., Evans D. H. Typing and subtyping influenza virus
using DNA microarrays and multiplex reverse transcriptase PCR. J. Clin. Microbiol. 2001; 39(2): 696-704.
10. Lysov Y., Florentiev V., Khorlin A. et al. A new method to determine the nucleotide sequence by hybridizing DNA with oligonucleotides. Proc. Acad. Sci. USSR. 1988; 303: 1508-11.
11. Sengupta S., Onodera K., Lai A. et al. Molecular detection and identification of influenza viruses by oligonucleotide microarray hybridization. J. Clin. Microbiol. 2003; 41(10): 4542-50.
12. Vasin A. V., Sandybaev N. T., Plotnikova M. A. et al. Multisegment one-step RT-PCR fluorescent labeling of influenza A virus genome for use in diagnostic microarray applications. J. Physiol: Conf. Ser. 2011; 291(012006): 1-6.
13. Waterhouse A. M., Procter J. B., Martin D. M. et al. Jalview Version 2 - a multiple sequence alignment editor and analysis workbench. Bioinformatics. 2009; 25(9): 1189-91.
14. Wernersson R. Probe design for expression arrays using OligoWiz. Methods Mol. Biol. 2009; 529: 23-36.
REFERENCES
1. Kiselev O. I. Genome of Pandemic Influenza A/H1N1-2009/10 Virus. St. Petersburg; 2011 (in Russian).
2. Debouck C., Goodfellow P. N. DNA microarrays in drug discovery and development. Nat. Genet. 1999; 21(1): 48-50.
3. FesenkoE. E., KireyevD. E., GryadunovD. A. et al. Oligonucleotide microchip for subtyping of influenza A virus. Influenza Other Respi. Viruses. 2007; 1(3): 121-9.
4. HanX., LinX., LiuB. et al. Simultaneously subtyping of all influenza A viruses using DNA microarrays. J. Virol. Methods. 2008; 152(1-2): 117-21.
5. Hoffmann E., Stech J., Guan Y. et al. Universal primer set for the full-length amplification of all influenza A viruses. Arch. Virol. 2001; 146(12): 2275-89.
6. KatohK., Asimenos G., TohH. Multiple alignment of DNA sequences with MAFFT. Methods Mol. Biol. 2009; 537: 39-64.
7. Kessler N., Ferraris O., Palmer K. et al. Use of the DNA flow-thru chip, a three-dimensional biochip, for typing and subtyping of influenza viruses. J. Clin. Microbiol. 2004; 42(5): 2173-85.
8. Klotchenko S. A., Vasin A. V., Sandybaev N. T. et al. Oligonucleotide microarray for subtyping of influenza A viruses. J. Phys.: Conf. Ser. 2012; 345(012041): 1-8.
9. Li J., Chen S., Evans D. H. Typing and subtyping influenza virus using DNA microarrays and multiplex reverse transcriptase PCR. J. Clin. Microbiol. 2001; 39(2): 696-704.
10. Lysov Y., Florentiev V., Khorlin A. et al. A new method to determine the nucleotide sequence by hybridizing DNA with oligonucleotides. Proc. Acad. Sci. USSR. 1988; 303: 1508-11.
11. Sengupta S., Onodera K., Lai A. et al. Molecular detection and identification of influenza viruses by oligonucleotide microarray hybridization. J. Clin. Microbiol. 2003; 41(10): 4542-50.
12. Vasin A. V., Sandybaev N. T., Plotnikova M. A. et al. Multisegment one-step RT-PCR fluorescent labeling of influenza A virus genome for use in diagnostic microarray applications. J. Phys.: Conf. Ser. 2011; 291(012006): 1-6.
13. Waterhouse A. M., Procter J. B., Martin D. M. et al. Jalview Version 2 - a multiple sequence alignment editor and analysis workbench. Bioinformatics. 2009; 25(9): 1189-91.
14. Wernersson R. Probe design for expression arrays using OligoWiz. Methods Mol. Biol. 2009; 529: 23-36.
Поступила 05.07.12
37
