CC BY
74
УДК 612.017.1
УКОРОЧЕНИЕ ТЕЛОМЕР В ЛИМФОЦИТАХ CD4+ И CD8+ ВИЧ-ИНФИЦИРОВАННЫХ БОЛЬНЫХ АССОЦИИРОВАНО С ИЗМЕНЕНИЕМ ИХ КОЛИЧЕСТВА И СООТНОШЕНИЯ
Вячеслав Игоревич БОРИСОВ, Владимир Сергеевич КОЖЕВНИКОВ
НИИ клинической иммунологии СО РАМН 630099, г. Новосибирск, ул. Ядринцевская, 14
В данной работе исследовалась длина теломер и уровень активации лейкоцитов у ВИЧ-инфицированных больных. Было обнаружено, что у пациентов с ВИЧ-инфекцией теломеры были более короткие в популяциях лимфоцитов (на 0,8 тыс. пар нуклеотидов, п. н., p < 0,05) и моноцитов (на 0,35 тыс. п. н., p > 0,05). Также в обеих популяциях достоверно выше процент пролиферирующих клеток и клеток в апоптозе. Выделив из всей популяции лимфоцитов клетки CD4+ и CD8+, выявили значительное укорочение теломер в обеих субпопуляциях (на 1,1 и 0,9 тыс. п. н. соответственно, p < 0,01). Количество клеток в апоптозе и фазе S/M клеточного цикла было выше у пациентов с ВИЧ только в субпопуляции CD4+ без достоверных различий для лимфоцитов CD8+. Соотношение количества лимфоцитов CD4+ к CD8+ у больных ВИЧ составило 0,72 ± 0,491. Снижение количества лимфоцитов CD4+ приводит к развитию лимфопении, и поддержание общего лимфоцитоза происходит за счет усиления пролиферации лимфоцитов CD8+, причем у некоторых пациентов их количество превышало нормальное значение. Такая массивная пролиферация вместе с хронической антигенной активацией приводит к резкому укорочению теломер. Это подтверждается обратной зависимостью длины теломер лимфоцитов CD8+ от количества клеток: чем их больше, тем короче в них теломеры. Для лимфоцитов CD4+ соотношение было прямым: укорочение теломер происходит тогда, когда происходит снижение их количества. Уровень лимфоцитов CD4+ начинает заметно снижаться при истощении компенсаторных механизмов, направленных на поддержание постоянного количества, результатом которого является накопление клеток CD4+ с короткими теломерами. В итоге происходит быстрое пролиферативное старение обеих субпопуляций и еще большее истощение иммунной системы.
Ключевые слова: теломеры, ВИЧ, CD4+, CD8+, апоптоз.
Основным признаком развития синдрома приобретенного иммунодефицита в результате заражения вирусом иммунодефицита человека (ВИЧ) 1 типа является снижение количества Т-лимфоцитов CD4+ в периферической крови. Лечение может приводить к увеличению уровня клеток CD4+, но их репертуар так и не восстанавливается, поэтому у таких пациентов остается высокий риск развития оппортунистических инфекций [1]. Во время первичной инфекции иммунная система реагирует в направлении предотвращения распространения вируса, с основой в ВИЧ-специфическом CD8+-Т-клеточном ответе, что приводит к снижению виремии [2]. В дополнение к усиленному Т-клеточному обновлению и увеличению пропорции высокодифференцированных антигенспецифичных лимфоцитов CD4+ и CD8+ при ВИЧ-инфекции инфицированные больные характеризуются сниженной продукцией наивных Т-клеток, что отражает ослабление способности возобновления пула Т-лимфоцитов [3].
Среди факторов, которые могут влиять на репликативный потенциал и клональное истощение, значительная роль отводится феномену укорочения ДНК во время репликации клетки [4]. Поскольку каждое удвоение ДНК сопровождается концевой недорепликацией дочерней нити, она становится короче на несколько десятков нуклео-
тидов, и такое укорочение происходит за счет потери бессмысленных теломерных повторов. Теломерная ДНК является терминальной последовательностью на концах линейных хромосом и состоит из повторяющихся тандемно расположенных гексаповторов TTAGGG [5]. Функция тело-мер заключается в предотвращении повреждения жизненно важных генов, и когда теломеры достигают некоторой критической длины, происходит запуск процесса клеточного старения и остановки деления. Таким образом, укорочение теломер может способствовать ограничению репликативной жизни нормальных соматических клеток. Поэтому при хронической активации иммунной системы антигенами, присутствующими в организме, происходит ее функциональное истощение и снижение пролиферативного потенциала, что проявляется увеличенной предрасположенностью к инфекциям и плохим прогнозом у ВИЧ-инфицированных больных [6]. К лабораторным и клиническим проявлениям этой активации относятся высокий уровень спонтанной пролиферации лимфоцитов in vitro, экспрессия маркеров активации на лимфоцитах CD4+ и CD8+ и усиление выработки провоспалительных цитокинов.
Помимо увеличения пролиферации, активация лимфоцитов может приводить к истощению
Борисов В.И. — к.б.н., н.с. лаборатории клинической иммунопатологии, e-mail: [email protected] Кожевников В.С. — д.м.н., проф., зав. лабораторией клинической иммунопатологии, e-mail: [email protected]
их пула, поскольку служит одним из пусковых факторов апоптоза. При ВИЧ-инфекции апоптоз служит одной из причин массовой гибели лимфоцитов, при этом доля клеток, подвергающихся апоптозу, зависит не от числа зараженных лимфоцитов или стадии ВИЧ-инфекции, а от числа активированных лимфоцитов [7, 8].
К настоящему времени многочисленные исследования динамики длины теломер в лимфоцитах у ВИЧ-инфицированных людей до сих пор не показывают однозначных результатов. В одной из ранних работ было обнаружено, что длина теломер в Т-лимфоцитах CD4+ у ВИЧ-позитивных больных была значительно больше, чем у здоровых доноров, но в клетках CD8+ оказалась короче [9]. Позднее показали, что ускоренное укорочение теломер происходит в обеих субпопуляциях лимфоцитов, CD4+ и CD8+, причем степень сокращения обратно коррелирует с количеством клеток: чем меньше становилось лимфоцитов, тем более короткие были в них теломеры [10]. В одной из недавних работ было установлено, что количество лимфоцитов CD4+ снижалось как в группе ВИЧ-инфицированных пациентов без проявления симптомов заболевания, так и у людей с симптоматическим проявлением синдрома приобретенного иммунодефицита (СПИД) с еще большим укорочением теломер. Однако количество клеток CD8+, наоборот, увеличивалось в обеих группах [2].
Возможно, такое увеличение происходит не только для усиления процесса элиминации вируса, но и как компенсаторный механизм Т-клеточного гомеостаза для поддержания общего лимфоцитоза. Поэтому целью данного исследования было определение степени репликативного старения, уровня активации и апоптоза в субпопуляциях Т-лимфоцитов CD4+ и CD8+, а также признаков гомеостатических процессов у ВИЧ-инфицированных больных.
Материал и методы
Группа больных ВИЧ-инфекцией была сформирована из пациентов, направленных на обследование в НИИ клинической иммунологии СО РАМН г. Новосибирска из Центра профилактики и борьбы со СПИДом, г. Новосибирск (n = 31, средний возраст 28 ± 6,6 лет). Группа контроля была сформирована из здоровых доноров (n = 32, средний возраст 28 ± 6,8 лет). Все исследования выполнены с информированного согласия испытуемых и в соответствии с этическими нормами Хельсинкской декларации (2000 г.).
Измерение длины теломер с помощью метода Flow-FISH
Определение длины теломер проводили методом гибридизации in situ, с последующим анализом на проточном цитофлуориметре. Лейкоциты, отмытые забуференным физиологическим раствором с 0,1 % бычьего сывороточного альбумина (БСА) («Sigma», США) (ЗФР-БСА), метили мышиными биотини-лированными анти-CD4 или анти-CD8 антителами
(«Becton Dickinson», США). Инкубировали 20 минут при 37 °С, отмывали ЗФР-БСА, добавляли стрептавидин с флуорохромом Cy5 и инкубировали еще 20 минут. После отмывки вводили 4 мМ раствора BS3 (Bis(sulfosuccinimidyl)suberat, «Pierce», США), через 30 минут добавляли Tris («Sigma», США) в конечной концентрации 20 мМ, инкубировали 15 минут и отмывали ЗФР-БСА. Затем смешивали со спленоцитами мышей линии C57BL/6 (питомник «Рассвет», г. Томск) и осаждали. Осадок ресуспендировали в 300 мкл гибридизационного раствора, состоящего из 70%-ного формами-да («Sigma», США), 20 мМ Tris и 1 % БСА. Зонд (СССТАА^-FITC («EUROGENTEC Ltd», Бельгия), добавляли в концентрации 0,3 мкг/мл. Пробы нагревали 10 минут при 80 °С и гибридизовали 3 часа при +20 °С. Затем клетки переносили в пробирки для цитометрии, дважды отмывали раствором 70%-го формамида и однократно ЗФР-БСА + 0,1 % Tween. Осадок ресуспендировали в 0,5 мл ЗФР-БСА, содержащим 25 мкл/мл РНКазы и 2 мкл/мл 7-аминоактиномицина D (ICN «Biomedicals Inc.», США). Анализ проб проводили на проточном ци-тофлуориметре «FACS Calibur» («Becton Dickinson», США) с помощью программного обеспечения «Cell QuestPRO» («Becton Dickinson», США). Сигнал флуоресценции теломер исследуемых клеток определяли как средний уровень флуоресценции (mean fluorescence intensity, MFI) клеток, находящихся в фазе клеточного цикла G0/G1, вычитанием фоновой аутофлуоресценции (т. е. MFI контрольных образцов, прошедших FISH в отсутствие PNA-зонда). Относительные значения длины теломер определяли как отношение MFI исследуемого образца к MFI спленоцитов мыши. Дополнительно вводили коэффициент для уравновешивания сигнала на количество хромосом между клетками человека и мыши.
После пересчитывали абсолютную длину теломер через относительную по формуле Y = 2042 + 28 099 х X, где Y — средняя длина теломер на популяцию клеток в парах нуклеотидов, X — уровень сигнала по каналу светимости зонда относительно сигнала от клеток внутреннего контроля. Эта формула прямой была получена путем построения зависимости средней длины теломер в лейкоцитах у 5 доноров, измеренной с помощью Southern Blotting и уровня флуоресценции этих же клеток, относительно флуоресценции контрольных клеток.
Метод определения уровня апоптоза и спонтанной пролиферации
Относительное содержание клеток с гипердипло-идным (клетки в фазе клеточного цикла S/M) и с гиподиплоидным (клетки в апоптозе) набором ДНК определяли по степени флуоресценции внутриядерного красителя на проточном цитофлуориметре. Результаты выражали в виде процентного соотношения позитивных клеток к общему количеству лимфоцитов (моноцитов) в исследуемой области.
Статистическая обработка данных
Статистическая обработка результатов проводилась в программе «Statistica 6.0» («StatSoft Inc.», США). Использовались методы описательной и непараметрической статистики (U-тест Манна — Уитни). Все данные представлены в формате «среднее значение ± стандартная ошибка».
Результаты
Определение длины теломер
На первом этапе исследования были определены длины теломер в основных популяциях лейкоцитов периферической крови у группы доноров и больных ВИЧ-инфекцией. Оказалось, что значительная разница в сторону укорочения присутствует у ВИЧ-инфицированных пациентов только в лимфоцитах, с незначительным укорочением в моноцитах (табл. 1). В гранулоцитах пациентов исследуемых групп средняя длина теломер была идентична. У здоровых доноров наибольшая средняя длина теломер среди всех лейкоцитов была обнаружена в лимфоцитах, тогда как у пациентов с ВИЧ-инфекцией показатели были инвертированы: в гранулоцитах длина теломер была наибольшая, а в лимфоцитах, наоборот, наименьшая.
Уровень апоптоза и спонтанной пролиферации был исследован для популяций лейкоцитов периферической крови с более короткими теломерами у ВИЧ-инфицированных больных (лимфоцитов и моноцитов). Оказалось, что при ВИЧ-инфекции количество клеток в апоптозе и в фазе S/M клеточного цикла достоверно превосходит соответствующие показатели у доноров в обеих популяциях (р < 0,01). Количество лимфоцитов доноров в апоптозе и в S/M-фазе клеточного цикла составило 0,600 ± 0,095 и 0,150 ± 0,023 % соответственно, моноцитов — 1,480 ± 0,234 и 0,230 ± 0,036 %. У ВИЧ-пациентов количество лимфоцитов в апоптозе было 1,360 ± 0,272 %, в S/M-фазе — 0,790 ± 0,158 %, моноцитов — 2,420 ± 0,484 и 1,160 ± 0,232 % соответственно.
Средняя длина теломер общей популяции лимфоцитов будет только косвенно отражать измене-
Таблица 1
Длина теломер (тыс. п. н.) в популяциях лейкоцитов пациентов с ВИЧ-инфекцией и здоровых доноров
Доноры, n = 32 ВИЧ-инфицированные пациенты, n = 31
Лимфоциты 7,3 ± 0,29 6,5 ± 0,19*
Моноциты 7,1 ± 0,21 6,8 ± 0,23
Гранулоциты 6,8 ± 0,27 6,9 ± 0,39
Возраст, лет 28 ± 6,8 28 ± 6,6
Примечание: * — отличие от соответствующего значения у доноров достоверно при р < 0,05.
Таблица 2
Длина теломер (тыс. п. н.) в субпопуляциях лимфоцитов пациентов с ВИЧ-инфекцией и здоровых доноров
Доноры, n = 26 ВИЧ-инфицированные пациенты, n = 19
Лимфоциты CD4+ 8,5 ± 0,29 6,91 ± 0,23**
Лимфоциты CD8+ 8,1 ± 0,23 6,67 ± 0,26**
Возраст, лет 27 ± 6,5 27 ± 4,3
Примечание: ** — отличие от соответствующего значения у доноров достоверно при р < 0,01.
ние длины теломер в субпопуляциях хелперных (CD4+) и цитотоксических лимфоцитов (CD8+), которые принимают основное участие при ВИЧ-инфекции, поэтому была исследована длина теломер отдельно в клетках CD4+ и в CD8+. Оказалось, что у ВИЧ-инфицированных больных теломеры резко укорочены в обеих субпопуляциях лимфоцитов и соответствуют биологическому возрасту на 18 лет старше (табл. 2).
Количество клеток в апоптозе и в фазе S/M у ВИЧ-инфицированных больных было больше только в субпопуляции клеток CD4+, составив соответственно 1,01 ± 0,317 и 1,090 ± 1,049 % (у доноров - 0,47 ± 0,251 и 0,510 ± 0,669 %, р < 0,05). Для популяции лимфоцитов CD8+ не было найдено достоверных различий между донорами и больными с ВИЧ-инфекцией. У всех исследуемых пациентов с ВИЧ наблюдалось резкое снижение соотношения количества CD4+/CD8+ в периферической крови, составившего в среднем
0,72 ± 0,491. Такое уменьшение индекса может происходить как за счет снижения числа клеток CD4+ в результате вирусного повреждения и активационного апоптоза, так и за счет повышения содержания лимфоцитов CD8+ за счет антигенной и гомеостатической пролиферации. Присутствует обратная зависимость между количеством клеток в субпопуляциях CD4+ и CD8+: чем больше одних, тем меньше других (р < 0,05), и наоборот.
Поскольку пролиферативную историю прямо отражает длина теломер, был построен график зависимости длины теломер от количества клеток CD4+ и CD8+ у ВИЧ-инфицированных больных, представленный на рисунке. Выявлена четкая корреляция между длиной теломер и количеством лимфоцитов. При этом для клеток CD4+ корреляция была положительная, т. е. чем клеток меньше, тем короче в них теломеры, а для лимфоцитов CD8+ - отрицательная, т. е. при увеличении их количества происходит укорочение теломер у ВИЧ-инфицированных больных. В группе доно-
ров корреляции между количеством субпопуляций лимфоцитов и длиной теломер не были выявлены.
Обсуждение
Поскольку хроническая активация иммунной системы из-за длительной персистенции вируса при ВИЧ-инфекции затрагивает все клеточные элементы, была исследована длина теломер в основных популяциях лейкоцитов периферической крови. Оказалось, что укорочение теломер происходит не только в лимфоцитах, как это было показано ранее при многих исследованиях [6, 9, 10], но и в моноцитах. Такое укорочение не является достоверно значимым, тем не менее оно указывает на активацию и пролиферативную историю моноцитарно-мак-рофагального звена иммунной системы. Подтверждением этому служит факт выявления большего количества у ВИЧ-инфицированных больных как лимфоцитов, так и моноцитов в фазе S/M клеточного цикла. Повышенный процент клеток в апоп-тозе может быть результатом как прямого цитопа-тического действия вируса, так и «активационного» апоптоза из-за хронической активации лейкоцитов антигенами [11, 12].
Одними из основных клеточных элементов, затрагиваемых и участвующих в иммунном ответе при ВИЧ-инфекции, являются лимфоциты CD4+ и CD8+. Измерение длины теломер выявило их значительное укорочение, в одинаковой степени выраженное в обеих субпопуляциях у больных ВИЧ-инфекцией, что говорит об одинаковой пролиферативной истории субпопуляций. В то же время количество пролиферирующих клеток было больше, чем у доноров, только в субпопуляции CD4+, но у этих клеток был повышен и уровень апоптоза. В субпопуляции CD8+ не было значительных различий с донорами.
Иммунная система устроена таким образом, что поддерживает на постоянном уровне количество своих клеточных элементов [13, 14]. При снижении числа лимфоцитов CD4+ необходимо восстановление их должного уровня, но т. к. при ВИЧ-инфекции тимопоэз резко истощается [3], то запускается универсальный ответ на лимфопению -гомеостатическая пролиферация, в которую входят только клетки памяти, уже прошедшие антигенную презентацию и имеющие укороченные теломеры. Пролиферация CD8+-лимфоцитов вызывается их активацией как цитотоксических лимфоцитов для снижения виремии [9], однако помимо этого также происходит запуск гомеостатической пролиферации. Падение количества клеток CD4+ приводит к снижению общего количества лимфоцитов, которое может восстанавливаться за счет субпопуляции CD8+-клеток. На ранних стадиях СПИД еще нет выраженной лимфопении, однако отношение лимфоцитов CD4+/CD8+ отличается на порядок, и чем ниже количество первых, тем выше содержание вторых, причем практически у всех пациентов количество CD8+ превышало нормальное значение.
Эти лимфоциты начинают заполнять освободившуюся от СБ4+-клеток нишу [14].
Последствия этих процессов отражены на рисунке. Видно, что теломеры в клетках СБ4+ укорачиваются при снижении их количества, тогда как укорочение теломер в клетках СБ8+ происходит, наоборот, при увеличении их количества. Оказалось, что чем ниже соотношение СБ4+/СБ8+, тем достоверно короче теломеры в СБ4+-лимфоцитах (р < 0,05), т. е. присутствует прямая связь между тяжестью поражения иммунной системы и степенью укорочения теломер в лимфоцитах. Предполагается, что при падении уровня СБ4+, когда это указывает на серьезное поражение иммунной системы, все компенсаторные механизмы для поддержания количества лимфоцитов были запущены, что приводит к резкому укорочению теломер. Одновременно со снижение числа лимфоцитов СБ4+ возрастает количество клеток СБ8+ за счет гомеостатической пролиферации, что также приводит к резкому укорочению теломер последних. Напротив, при незначительном снижении уровня клеток СБ4+ нет массивной пролиферации, не запускается гомеостатическая пролиферация СБ8+ лимфоцитов, и не происходит быстрого укорочения теломер в обеих субпопуляциях. Причем, так как не нарушен тимо-поэз, восстановление количества СБ4+ идет за счет притока новых клеток с длинными теломерами, поэтому возможно удлинение теломер в среднем в популяции у ВИЧ-инфицированных доноров [9].
Быстрое укорочение теломер приводит к резкому уменьшению пролиферативного потенциала лимфоцитов, невозможности элиминации чужеродных антигенов и увеличению предрасположенности к инфекциям. Таким образом, длина теломер в субпопуляциях лимфоцитов СБ4+ и СБ8+ является не только показателем репликативного старения, но и совместно с их количеством дополнительным показателем уровня повреждения иммунной системы и косвенным маркером степени истощения компенсаторных гомеостатических процессов.
Длина теломер, п. н.
Рис. Зависимость длины теломер лимфоцитов СБ4+ и СБ8+ от количества клеток у больных ВИЧ-инфекцией, п = 19. СБ4+: г = 0,57, р < 0,05; СБ8+: г = - 0,57, р < 0,05.
Список литературы
1. Connors M., Kovacs J.A., Krevat S. et al. HIV infection induces changes in CD4+ T-cell phenotype and depletions within the CD4+ T-cell repertoire that are not immediately restored by antiviral or immune-based therapies // Nat. Med. 1997. 3. (5). 533-540.
2. Singh H.R., Singh N.G.B., Singh T.B. Estimation of CD4+ and CD8+ T-lymphocytes in human immunodeficiency virus infection and acquired immunodeficiency syndrome patients in Manipur // Indian J. Med. Microbiol. 2007. 25. (2). 126-132.
3. Richardson M.W., Sverstiuk A., Hendel H. et al. Analysis of telomere length and thymic output in fast and slow/non-progressors with HIV infection // Biomed. Pharmacother. 54. (1). 2000. 21-31.
4. Olovnikov A.M. A theory of marginotomy. The incomplete copying of template margin in enzymic synthesis of polynucleotides and biological significance of the phenomenon // J. Theor. Biol. 1973. 41. (1). 181-190.
5. Blackburn E.H. Structure and function of telomeres // Nature. 1991. 350. 569 - 573.
6. Papagno L., Spina C.A., Marchant A. et al. Immune activation and CD8+ T-cell differentiation towards senescence in HIV-1 Infection // PLoS Biol.
2004. 2. (2). 173-185.
7. Meyaard L., Otto S.A., Jonker R.R. et al. Programmed death of T cells in HIV-1 infection // Science. 1992. 257. 217-219.
8. Banda N.K., Bernier J., Kurahara S.D.K. et al. Crossllnklng CD4 by human immunodeficiency virus gp120 primes T cells for activation-induced apopto-sis // J. Exp. Med. 1992. 176. 1099-1106.
9. Palmer L.D., Weng N., Levine B.L. et al. Telomere length, telomerase activity, and replicative potential in HIV infection: Analysis of CD4 and CD8 T-cells from HIV-discordant monozygotic twins // J. Exp. Med. 1997. 185. 1381-1386.
10. Bestilny L.J., Gill M.J., Mody C.H., Ryabo-wol K.T. Accelerated replicative senescence of the peripheral immune system induced by HIV infection // AIDS. 2000. 14. 771-780.
11. Stan G.-B., Belmudes F., Fonteneau R. et al. Modelling the influence of activation-induced apopto-sis of CD4+ and CD8+ T-cells on the immune system response of a HIV-infected patient // Syst. Biol. 2008.
2. 94-102.
12. Varadhachary A.S., Perdow S.N., Hu C. et al. Differential ability of T-cell subsets to undergo activation-induced cell death // Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1997. 94. 5778-5783.
13. Tanchot C., Rosado M.M., Agenes F. et al. Lymphocyte homeostasis // Semin. Immunol. 1997. 9. 331-337.
14. Mahajan V.S., Leskov I.B., Chen J. Homeostasis of T cell diversity // Cell. Mol. Immunol.
2005. 2. 1-10.
TELOMERE SHORTENING IN BOTH CD4+ AND CD8+ CELLS FROM HIV PATIENTS IS ASSOCIATED WITH CHANGES OF THEIR NUMBERS AND RATIO
Vyacheslav Igorevich BORISOV, Vladimir Sergeevich KOZSHEVNIKOV
Institute of Clinical Immunology SB RAMS 630099, Novosibirsk, Yadrintsevskaya st., 14
In present work the telomere length and activation level of leucocytes from HIV-patients was measured. It was found that telomeres were shorter in lymphocytes (on 0,8 kbp, p < 0,05) and monocytes (on 0,35 kbp, p > 0,05) from HIV-patients. The number of proliferate and apoptotic cells in analyzed populations were greater in HIV-patients also. When both CD4+ and CD8+ subsets were separated it was detected significant telomere shortening in these subpopulations from HIV-patients comparing with donors (on 1,1 and 0,9 kbp, respectively, p < 0,01). The amount of apoptotic cells and cells in S/M phase was higher in HIV-patients in CD4+ subset whereas there were not any differences between donors and HIV-patients in CD8+ leucocytes. The rate of CD4+ to CD8+ amount was 0,72 ± 0,491 in patients with HIV infection. Decreased CD4+ level leads to lymphopenia and the maintenance of lymphocytosis is kept up by CD8+ lymphocytes proliferation, and many patients contained extremely high level of CD8+ cells even more than in donors. So expressed proliferation simultaneously with chronicle antigen activation results in telomere shortening. It is confirmed by inverse relation of CD8+ telomere length from cell number: the more CD8+ amount the shorter telomeres. In CD4+ lymphocytes the relationship was direct: the telomere shortening takes place when the number of CD4+ decreases. The amount of CD4+ lymphocytes decreases appreciably when the compensatory mechanisms necessary to support the constant lymphocyte amount are depleted. The result of that is an accumulation of CD4+ cells with short telomeres. The outcome of that is fast proliferative aging of both subsets as well as hard immune depletion.
Key words: telomere, HIV, CD4+, CD8+, apoptosis.
Borisov V.I. — candidate of biological sciences, laboratory of clinical immunopathology, e-mail: [email protected]
Kozhevnikov V.S. — doctor of medical sciences, professor, the head of laboratory of clinical immunopathology, e-mail: [email protected]
