CC BY
3
© В. И. БОНДАРЕНКО, В. И. ЗАДОРОЖНАЯ, 1991 УДК 614.777:578.835.11 ]-078 (048.8)
В Ж/ ' :
В. И. Бондаренко, В. И. Задорожная ЦИРКУЛЯЦИЯ ПОЛИОВИРУСОВ В АБИОТИЧЕСКИХ ОБЪЕКТАХ (обзор)
Киевский НИИ эпидемиологии и инфекционных болезней им. Л. В. Громашевского
Проведение вакцинопрофилактики полиомиелита, циркуляция полиовирусов среди населения приводят к интенсивной контаминации вирусами этой группы объектов окружающей среды. Определение длительности сохранения полиовирусов в различных объектах окружающей среды, их устойчивости к действию применяемых химических ингибиторов, степени загрязнения этими вирусами абиотических объектов представляет интерес для установления потенциальных факторов передачи полиовирусной инфекции. Это особенно важно, поскольку имеется определенный процент лиц, восприимчивых к полиомиелиту, а также в связи со способностью даже вакцинных штаммов полиови-руса у лиц с нарушением иммунного статуса вызывать паралитические формы болезни.
Сточные воды, куда поступают выделения человека, из всех объектов окружающей среды в наибольшей степени контаминированы энтерови-русами, в том числе и полиовирусами. Их регулярное исследование может обеспечить информацию о серотипах энтеровируссгв, циркулирующих среди населения [36, 67].
О загрязнении сточных вод полиовирусами сообщают многие исследователи [6—9, 23, 27,. 28, 35]. По данным разных авторов, частота выделения полиовирусов из проб сточных вод «неодинакова. При изучении сточных вод в Канаде P. Payment и соавт. [49, 50] обнаружили вирусы в 90,5 % проб. Среди них полиовирусы трех типов составили 89,5 % и по генетическим характеристикам были отнесены к вакцинным, вирулентным и промежуточным. Согласно сообщению S. Ouvrard и соавт. [47], около 60 % проб сточных вод контаминированы кишечными вирусами, среди которых большой удельный вес приходится на штаммы полиовирусов, отличающиеся по биологическим свойствам от вакцинных.
V. Krikelis и соавт. [33] обнаружили полиовирусы в 35 % изученных проб сточных вод в одном из городов Греции. Исследования, проведенные чехословацкими учеными, показали, что около 9 % проб сточных вод, прошедших очистку, содержали полиовирусы, основная часть которых определялась в течение 3—4 мес после массовой вакцинации, проводимой в стране каждую весну. В некоторые годы выделения полиовирусов типов II и III наблюдалось и более длительное время после вакцинации [66]. А. А. Бабаевым и соавт. [1] полиовирусы из сточных вод Баку в 1967—1971 гг. изолированы в 71,2—88,1 % проб, а в 1972 и 1973 гг.— соответственно в 15 и 9,6 %.
Сточные воды могут быть контаминированы как штаммами полиовирусов, обладающими характеристиками вакцинных, так и штаммами, отличающимися по биологическим свойствам от аттенуиро-ванных. Исследования [46, 48] показывают, что вакцинные штаммы сохраняют характеристики ат-тенуированных лишь в течение 1 нед. Штаммы, выделенные через 2, 3 и 4 нед после вакцинации, имели сходство с вакцинными соответственно в 72, 26 и 11 % случаев. При изучении свойств полиовирусов, выделенных из сточных вод Праги [43], установлено, что наибольшее число штаммов с характеристиками вирулентных наблюдается среди полиовирусов типа II, наименьшее — среди вирусов типа I. В исследованиях этих же авторов, проведенных в 1983—1984 гг., все штаммы полиовирусов типа III, выделенные из сточных вод, по генетическим маркерам были отнесены к аттенуи-рованным, в то время как штаммы полиовирусов типов I и II отличались от вакцинных [44]. По данным К. И. Спыну и соавт. [14], свойствами вирулентных чаще обладали полиовирусы типа I, реже — типа III. Приведенные данные не позволяют установить превалирующую способность одного из типов аттенуированных полиовирусов изменять свои биологические свойства.
Сточные воды в процессе прохождения через очистные сооружения не полностью освобождаются от полио- и энтеровирусов других групп. При этом наблюдается лишь незначительное снижение их количества [37]. Средняя эффективность удаления всех вирусов при прохождении через 2 установки биологической обработки сточных вод составляет 48—68 % [58]. Энтеровирусы, в том числе кй полиовирусы, были обнаружены во всех пробах сточных вод, прошедших обработку методом осаждения, и в 79 % — при последующей их обработке активным илом [53]. Наименее чувствительными к этому методу очистки оказались полиовирусы типов I и II. Последующая обработка активного ила химическими соединениями (NaF, NaN3) оказалась неэффективной в отношении полиовирусов [17]. В исследованиях [41] показано, что методами флокуляции и седиментации из сточных вод удаляется до 95 % вирусов. При последующем озонировании воды достигается 100 % элиминация вирусов. Результаты, полученные этими авторами, свидетельствуют о необходимости более широкого применения метода озонирования воды на очистных сооружениях.
Выживаемость вакцинного штамма полиовируса типа I в осадке сточных вод при комнатной темпе-
ратуре составляет 10 нед, дикого — 8 нед [60]. Полиовирусы и вирусы группы Коксаки в осадке сточных вод обнаруживаются в течение 21 нед [29].
Таким образом, значительная контаминация по-лиовирусами сточных вод, малая эффективность современных методов очистки их от вирусного загрязнения, длительность сохранения полиовиру-сов в сточных водах представляют значительную опасность в отношении загрязнения овощей, выращенных на полях орошения сточными водами, и попадания полиовирусов в открытые водоемы, используемые в рекреационных целях и для водозабора.
Изучая пробы почв с полей орошения биологически очищенными сточными водами, О. В. Сала-той [12] из 70 исследованных проб выделено 19 штаммов полиовирусов (14 типа II и 5 типа I). Сезонность их обнаружения совпадала с максимальным выделением вирусов из сточных вод. Инактивация полиовирусов типа I в почве происходит прямо пропорционально температуре [19, 631. Персистенция вируса зависит от типа почвы и ¿тепени очистки жидкости, в которой суспендировались вирусы. При 37 °С вирусы не выделялись на 12-й день, при 4 °С — обнаруживались в течение 180 дней. Полиовирусы, суспендированные в жидкости отстойника, инактивировались быстрее, чем при их внесении в речную воду или почвенные воды. Наиболее эффективно процессы самоочищения происходили в глинистых почвах.
Попадание сточных вод на поля орошения приводит к проникновению полиовирусов и энтеро-вирусов других групп в грунтовые воды. В США 50—65 % водных вспышек энтеровирусных заболеваний возникло в результате загрязнения почвенных вод. Вирусы могут проникать в почву на глубину более 64 м и при определенных условиях преодолевать расстояние в горизонтальных слоях до 408 м [20, 57, 65]. Предупредить попадание вирусов в грунтовые воды можно предварительным хлорированием сточных вод [21]. Приведенные данные свидетельствуют о важности разработки эффективных методов очистки сточных вод от вирусного загрязнения.
Одним из факторов передачи полиовирусной инфекции может служить вода открытых водоемов. В 15 районах Франции из речной воды изолированы штаммы полиовирусов со свойствами атте-нуированных [24]. Из воды р. Москвы энтерови-русы выделены из 36 % проб. Среди них преобладали полиовирусы, антигенно родственные вакцинным. При этом установлена зависимость загрязнения воды водоемов от спуска сточных вод [8]. Аналогичные данные получены и при исследовании воды открытых водоемов в ГДР [9]. По данным [42], уровни вирусного загрязнения речной воды снижаются по мере удаления от места спуска сточных вод. В местах сброса воды очистными канализационными сооружениями обнаружены энтеро-вирусы в 90 % проб от числа исследованных, из них полиовирусы в 86 %. Наряду с вакцинными
присутствовали штаммы с характеристикой вирулентных по маркеру RCT4o-
Выживаемость полиовирусов в речной воде зависит как от времени года (температурный фактор), так и от степени биологического и химического загрязнения воды. В исследованиях [31] инактивации полиовирусов типа I в стерильной воде с понижением титра на 99,9 % происходила за 6 дней, в неочищенной речной воде — быстрее. Химическое загрязнение воды может являться защитой для вирусов в результате подавления биотического антагонизма или, наоборот, оказывать вирулицидное действие [62].
На основании приведенных данных речную воду нельзя исключить из числа факторов риска передачи полиовирусной инфекции.
Имеются данные о значительном загрязнении полиовирусами не только рек, но и морей [2, 3, 15, 18, 55]. Сброс сточных вод в море может сопровождаться попаданием в морскую воду до 120 различных энтеропатогенных вирусов, в том числе и полиовирусов. Концентрация их в морской воде у места спуска сточных вод составляет 2,9— 5,9 ЕД/500 мл. Адсорбируясь на твердых частицах, вирусы накапливаются в донных отложениях. Здесь они могут находиться в количестве, в 10— 10 000 раз превышающем содержание вирусов в' слоях воды, расположенных выше. В результате турбулентного перемешивания воды частицы и вирусы вновь могут оказаться во взвешенном состоянии и перемещаться на большие расстояния в зоны отдыха или разведения моллюсков [57]. Энтеро-вирусы обнаружены в 26 % проб морского залива Галвестнон [56]. Из них полиовирусы типа I выделены в 18 %,типа II — в 39 % и типа III — вЗ % случаев. Наиболее часто обнаруживались вирусы, связанные с суспендированными твердыми частицами. Полиовирусы типа I в этих пробах сохраняли свою инфекционность в течение 9 дней. На более длительную выживаемость в морской воде вирусов, связанных с суспендированными твердыми частицами, по сравнению со свободными указывает S. Gogal [22]. Определенный эпидемический риск представляет.и использование плавательных бассейнов с рекреационной целью. Энте-ровирусы резистентны к той концентрации хлора, которая применяется для дезинфекции воды в плавательных бассейнах. Р. Jorgensen- [30] изолировал энтеровирусы из воды плавательного бассейна даже при концентрации остаточного хлора 0,4 мг/л. Установлена корреляционная зависимость между обнаружением вирусов и другими гигиеническими показателями качества воды: при низкой концентрации остаточного хлора и увеличении содержания Е. coli, как правило, в воде обнаруживаются энтеро- и аденовирусы [40]. Л. К. Ле-есмент и соавт. [10] изолировали аденовирусы из 25 % проб воды детских плавательных бассейнов после купания детей.
Учитывая большую устойчивость полиовирусов к действию хлора по сравнению с таковой адено-
вирусов, можно предположить возможность попадания их в воду бассейнов и инфицирования купающихся. Присутствие даже одной вирусной частицы в воде, которой пользуются дети, недопустимо.
Как видно из приведенных данных, вода поверхностных водоемов может служить фактором передачи энтеровирусной,в том числе и полиовирусной, инфекции. Это подтверждается также данными S. Plotkin и М. Katz [54], согласно которым даже
1 БОЕ полиовируса способна вызвать заболевание восприимчивого организма.
Наибольшую опасность в отношении инфицирования полиовирусами представляют питьевая вода и продукты питания. В литературе имеется много сообщений о выделении полиовирусов из водопроводной воды [5, 15, 21, 26, 32]. Исследуя пробы питьевой воды, R. Walter и соавт. [61] в 10,5 % из них изолировали энтеровирусы, среди которых были и полиовирусы трех типов. В. А. Казанцева и соавт. [8] выделили энтеровирусы из 20 % проб питьевой воды, при этом среди обнаруженных штаммов преобладали полиовирусы. Однако R. Morris и D. Sharp [45] при исследовании большого объема воды (135 000 л) в течение 1980— 1983 гг. энтеровирусы не обнаружили.
Существующие методы очистки водопроводной воды не гарантируют полного обеззараживания ее от энтеровирусов. По данным P. Payment и М. Trudel [52], при обработке ее удаляется 99,998 % вирусов. Оставшиеся вирусы составляют примерно 10 вирусных частиц на 1000 л воды и, по мнению авторов, при удовлетворительных бактериологических показателях не представляют опасности для здоровья людей.
Содержание 0,3—0,5 мг/л свободного хлора в водопроводной воде не обеспечивает полного освобождения ее от вируса полиомиелита [11, 31]. J. Slade [59] обнаруживал полиовирусы в необработанной водопроводной воде в концентрации 7—8 БОЕ/м3, в обработанной хлором при его содержании 1 мг/л — 2—3 БОЕ/м3. Вирусы не выявлены при обработке воды хлором в дозе 1,5—
2 мг/л при экспозиции 15 мин. В то же время озон в концентрации 2—4 мг/л полностью инактивиро-вал полиовирусы. В исследованиях R. Warriner и соавт. [51] наиболее устойчивым к действию хлора оказался полиовирус типа I, наименее — типа III.
Поскольку такая высокая концентрация хлора для обеззараживания питьевой воды не применяется из-за ухудшения ее органолептических свойств, существует опасность попадания полиовируса в организм человека с питьевой водой. Учитывая длительность сохранения полиовирусов в питьевой воде — 60—75 сут [13], необходимо разрабатывать и внедрять более эффективные методы ее очистки, например озонирование.
Имеются сообщения о выделении полиовируса из пищевых продуктов. В. А. Казанцева и соавт. [8] изолировали энтеровирусы из молочных продуктов в 18 % исследованных проб. Среди выде-
ленных штаммов около 80 % составляли полиовирусы. Установлена способность полиовируса накапливаться в моллюсках и крабах [25, 34, 39]. По данным G. Lewis и соавт. [38], содержание энтеровирусов в устрицах, отловленных в месте спуска сточных вод в море, составляло 32 000 БОЕ на 100 г ткани моллюска. Выделенные штаммы были представлены вирусами Коксаки В-4,5 и полиовирусами трех типов. Попытка очистить ткань устриц путем содержания их в чистой воде в течение 8 дней не привела к существенному изменению концентрации вируса. Согласно данным R. Eilender и соавт. [16], количество вирусов, содержащихся в устрицах, отражало их концентрацию в пробах воды. Из устриц авторы выделили полиовирусы типов I и II.
B. П. Вуткарев и соавт. [4] находили полиовирус в неповрежденной корневой системе овощей через 2—4 ч после полива их вируссодержащей жидкостью, а в стеблях и овощах — через 6—12 ч. Выживаемость полиовируса на поверхности овощей составляла 25 сут, в стеблях — 20—25 сут, зрелых овощах — 8 сут. По данным В. Ward и L. Irving [64], в летнее время после орошения сточными водами полиовирус на поверхности овощей инактивировался на 96,4—98,7 % через 24 ч после полива. При температуре 4 °С его выживаемость составляла 55—76 дней.
Таким образом, анализ данных литературы свидетельствует, что сточные воды, вода поверхностных водоемов, грунтовые воды, почва с полей орошения, водопроводная вода, некоторые пищевые продукты контаминированы полиовирусами и могут служить факторами риска развития полиовирусной инфекции. В связи с этим необходимо дальнейшее совершенствование методов очистки сточной и водопроводной воды от вирусного загрязнения.
Литература
1. Бабаев А. А., Садыхова Ф. Э., Алиев А. А. // Научные основы снижения вирусных и бактериальных инфекций.— Баку, 1978.— С. 21—25.
2. Бондаренко В. И., Григорьева Л. В. // Мнкробиол. журн.— 1979.—Т. 41, № 5.—С. 546—548.
3. Бондаренко В. И., Попович Г. Г.) Григорьева Л. В., Ященко К. В. // Вопр. вирусол.— 1983.— № 3.— С. 362—264.
4. Вуткарев В. П., Яровой П. И., Спыну К. И. // Актуальные проблемы медицинской вирусологии.— М., 1985.—
C. 117—118.
5. Дроздов С. Г., Казанцева В. А. // Вестн. АМН СССР.— 1981.— № 3.— С. 85—92.
6. Злобин В. И., Васерин Ю. И., Кондраиюва 3. И., Бей-кин Я. Б. II Вопр. мед. вирусол.— М., 1975.— С. 124—125.
7. Казанцева В. А., Дроздов С. Г., Ошерович A. AL, Айзен М. С. II Там же.—С. 129—130.
8. Казанцева В. А., Дроздов С. Г., Ошерович А. М. // Всесоюзный съезд микробиологов и эпидемиологов, 16-й: Тезисы докладов.—М., 1977.—Ч. 3.—С. 165—166.
9. Казанцева В. А., Дроздов С. Г. // Вирусы и вирусные инфекции человека.— М., 1981.— С. 21—22.
10. Леесмент Л. К., Суби К. X., Рауд Р. А. // Актуальные проблемы медицинской вирусологии.— М., 1985.— С. 108— 109.
11. Ловцевич Л. // Гиг. и сан.— 1973.—№ 10.— С. 11 — 15.
12. Салата О. В. // Украинский респ. съезд микробиологов, эпидемиологов и паразитологов, 11-й: Тезисы докладов.— Киев, 1985.— Ч. 1.— С. 81.
13. Спыну К. И., Вуткарев В. П. // Рукопись деп. во ВИНИТИ 09.03.83 г., № 1215—83.
14. Спыну К. И., Гидирим В. Н., Вуткарев В. П. // Вопр. вирусол.— 1983.— №? 5.—С. 594—596.
15. Baron D., Campin Ch. // Tech. Sci. Meth.— 1986.— Vol. 18, N 11.— P. 527—529.
16. ELlender R. D., Cook D. WSheladia V. R., Johnson R. A. // Gul. Res. Rep.— 1980.—Vol. 6, N 4.— P. 371—376.
17. Far rah S. RSchewerman P. R., Eubank R. D., Bitton G. // Water Sci. Technol.— 1985.—Vol. 17, N 10.— P. 165—174.
18. Finance C., Brigaud M., Lucena F. et al. // Zbl. Bakt. I Abt. Orig. В.— 1982.—Bd 176, N 5—6.—S. 530—536.
19. Geagel J. G., O'Brien R. T. // Appl. environ. Microbiol.—
1979.—Vol. 38, N 4.—P. 694—701.
20. Gerba С. P. 11 Develop, industr. Microbiol.— 1983.— Vol. 24.— P. 247—251.
21. Gerba C. P., Marzouk YManor Y. et al. // Symposium 3-d: Proceedings.— Denver, Colo., 1985.— Vol. 3.— P. 1518—1529.
22. Gogal S. M. 11 CRC Crit. Rev. Environ. Contr.— 1984.— Vol. 14, N 1.—P. 1—32.
23. Hamparian V. V., Ottolenghi A. C., Hunghes J. И. // Appl. environ. Microbiol.— 1985.— Vol. 50, N 2.— P. 280—286.
24. Hartemarin Ph., Vlock J. C., Joret J. C., Foligwet J. M. // Haustechn. Bauphys. Umwelttechn.— 1981.— Bd 102, N 3.— S. 110—113.
25. Hejkal T. W., Gerba C. P. // Appl. environ. Microbiol.— 1981.—Vol. 41, Ivi 1.—P. 207—211.
26. Herrero L., Fucutos L. G. // Rev. Latino-Amer. Microbiol.— 1978.—Vol. 20, N 1.—P. 35—39.
27. Jarzabek L. // Вирусы и вирусные инфекции человека.— М., 1981.— С. 27.
28. Jarzabek L., Najberg G. // Przegl. Epidem.— 1982.— Vol. 35, N 4,— P. 429—435.
29. Jorgensen P. H., Lung E. // Water. Sci. Technol.— 1985.— Vol. 17, N 10.—P. 185—195.
30. Jorgensen P. H. 11 Vatten.— 1985.—Vol. 41, N 3.— P. 179—185.
31. Kaneko M., Igarashi H. // Water Sci. Technol.— 1983.— Vol. 15, N 5.— P. 137—143.
32. Keswick В. H., Gerba C. P., Du-Pond H. L., Rose J. B. // Appl. environ. Microbiol.— 1984.— Vol. 47, N 6.— P. 1290— 1294.
33. Krikelis V., Markoulatos PSpyrow N., Serie Ch. // Water Sci. Technol.— 1985.—Vol. 17, N 10.— P. 159—164.
34. Landry E. F., Vaughn J. M., Vical T. J., Mann R. // Appl. environ. Microbiol.— 1982.—Vol. 44, N 6.—P. 1362— 1369.
35. Lautier FRazafitsalama D. // Bull. Soc. Path. Exot.— 1985.—Vol. 78, N 2.—P. 264—270.
36. Lavate O., Cotor F., Ivan A. et al. // Rev. Roum. Virol.—
1980.—Vol. 31, N 4.—P. 289—293.
37. Lewis G. D., Austin F. J., Loutif M. W. 11 N. Z. J. Mar. Freshwater Res.— 1986.—Vol. 20, N 1.—P. 101 — 105.
38. Lewis G. D., Loutif M. W., Austin F. J. 11 Ibid.— P. 431 — 437.
39. Loh Ph. C., Dow M. A., Fujoka R. SLau L. S. // JCEANS 86 Conf. Ree.— New York, 1986.— Vol. 3.— N 4.— P. 845—848.
40. Lopes P. J. II Schrifter. Ver. Wasser.— Boden. Lufthyg.—
1985.— N 65.— S. 289—294.
41. Lopes P. J. U Ibid.—S. 279—287.
42. Lucena F., Bosch A., J of re J., Schwartzbrod L. // Water Res.— 1985.—Vol. 19, N 10.—P. 1237—1239.
43. Matyasova J., Koza J. // Журн. гиг., эпидемиол., микро-биол. (Прага).— 1982.— Т. 26, № 2.— С. 154—167.
44. Matyasova JKoza J., Kucharska L. // Csl. Epidemiol. Microbiol. Immunol.— 1987.—Vol. 36, N 3.—P. 161 — 167.
45. Morris R., Sharp D. N. // Water Sci. Technol.— 1985.— Vol. 17, N 10.— P. 105—109.
46. Nacano J. H., Gelfand H. M., Cole J. Т. 11 Amer. J. Hyg.—
1963.—N 78.—P. 214—222.
47. Ouvrard S., Coiron C., Prevot JFesty B. // Techn. Sci. Munic.— 1982.—Vol. 77, N 8—9.— P. 427—433.
48. Pagano J. S., Bottiger M. // Arch. ges. Virusforsch.—
1964.—Bd 15, N 1.—S. 15—19.
49. Payment P., Larose Y., Trudel M. // Canad. J. Microbiol.— 1979.—Vol. 25, N 11.—P. 1305—1309.
50. Payment P., Ayache K, Trudel M. // Ibid.— 1983.— Vol. 29, N 1.— P. 111 — 112.
51. Payment P., Fremblay M., Trudel M. // Appl. environ. Microbiol.— 1985.—Vol. 49, N 4.—P. 981—983.
52. Payment P., Trudel M. // Water Sci. Technol.— 1985.— Vol. 17, N 10.—P. 97—103.
53. Payment P., Fortin S., Trudel M. // Canad. J. Microbiol.—
1986.—Vol. 32, N 2.—P. 922—925.
54. Plotkin S. A., Katz M. // Transmission of Viruses by the Water Route.—Sydney, 1967.—P. 151 — 166.
55. Pot a ¡alio U., Kubica B. // Bull. Inst. Marit. trop. Med. Idynia (PRL).— 1981.—Vol. 32, N 3—4.—P. 285—291.
56. Rao I/. C., Seidel К M., Gogal S. M. et al. // Appl. environ. Microbiol.— 1984.—Vol. 48, N 2.—P. 404—409.
57. Rao С. V., Metkalf T. J., Melnik J. L. // Бюл. ВОЗ.— 1986.— Т. 64, No 1.— С. 1 — 13.
58. Schwartzbrod L., Vilagines Ph., Schwartzbrod J. et al. // Water Res.— 1985.—Vol. 19, N 11.— P. 1353—1356.
59. Stade J. S. // Water Sci. Technol.— 1985.— Vol. 17, N 10.— P. 111 — 125.
60. Subrahmanyan Т. // Бюл. ВОЗ.— 1978.— Т. 55, № 4.— С. 445—449.
61. Walter R., Dobberkau H.-S., Diener W. et al. // Z. ges. Hyg. Grenzgeb.— 1982.— Bd 28, N 6.— S. 391—395.
62. Walter R., Dürkop J., Friendman В., Dobberkau H. J. // Water Sci. Technol.— 1985.—Vol. 17, N 10.—P. 139—151.
63. Wang D.-Sh., Gerba C. P., Lance J., Gogal S. M. // J. environ. Sci. Hlth.— 1985.—Vol. A20, N 6.—P. 617— 624.
64. Ward В. K, Irving L. G. 11 Water Res.— 1987.—Vol. 21, N 1.— P. 57—63.
65. Yates M. V., Yates S. R., Warriek A. WGerba С. P. 11 Groundwater Contamin. and Reclam.— Bethesda, 1985.— P. 117—121.
66. Zadrazilek J., Dransnar M., Hlawova H. // Журн. гиг., эпидемиол., микробиол. (Прага).— 1982.— Т. 26, № 1.— С. 1 — 12.
67. Zavate О., Cotor F., Avram G. et al. II Rev. Roum. Virol.— 1986.—Vol. 37, N 1.—P. 61—66.
Поступила 11.05.89
