CC BY
18
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫЕ СТАТЬИ
УДК 576.315.42
Трансляционная кросс-активация геномных РНК потексвирусов в составе вирионов
М. В. Архипенко*, Н. А. Никитин, Е. К. Донченко, О. В. Карпова, И. Г. Атабеков
Московский государственный университет им. М.В. Ломоносова, биологический факультет,
119234, Москва, Ленинские горы, 1, стр. 12
*E-mail: [email protected]
Поступила в редакцию 02.03.2017
Принята к печати 03.10.2017
РЕФЕРАТ Ранее мы показали, что геномная РНК двух представителей потексвирусов - Х-вируса картофеля и вируса мозаики альтернантеры - недоступна in vitro для рибосом в составе вирусных частиц, но может быть трансляционно активирована при взаимодействии вириона с транспортным белком 1 (ТБ1). С целью изучения механизмов трансляционной активации вирусной РНК потексвирусов нами исследованы трансляционные свойства двух других представителей этого рода - вируса мозаики нарцисса и вируса ау-кубы-мозаики картофеля. Показано, что в составе вирионов РНК потексвирусов обладает общими трансляционными свойствами in vitro, и ТБ1 способны трансляционно активировать РНК не только своего, гомологичного, вириона, но и РНК в составе вирионов других представителей группы (кросс-активация), проявляя при этом избирательную специфичность. Взаимная трансляционная кросс-активация происходит у вирусов, принадлежащих к одной или к близким филогенетическим подгруппам. Получены прямые доказательства того, что связывание ТБ1 с торцом вириона является обязательным, но недостаточным условием для трансляционной активации инкапсидированной РНК.
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА вирусы растений, геномная РНК, кросс-активация, потексвирусы, трансляционная активация, транспортный белок 1.
СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ БО - белок оболочки; ВАМК - вирус аукубы-мозаики картофеля; ВМАльт - вирус мозаики альтернантеры; ВМН - вирус мозаики нарцисса; ТБ1 - транспортный белок 1; ХВК - Х-вирус картофеля.
ВВЕДЕНИЕ
Некоторое время назад в нашей лаборатории было показано, что геномная РНК одного из представителей потексвирусов - Х-вируса картофеля (ХВК) -недоступна in vitro для рибосом в составе вирусных частиц, но может быть трансляционно активирована либо после фосфорилирования белка оболочки (БО) в составе вириона, либо при образовании комплекса вириона с транспортным белком 1 (ТБ1). Мы предполагаем, что эти два способа трансляционной активации функционируют на разных этапах инфекции. В первично зараженной клетке РНК становится доступной для рибосом в результате фосфорилирования БО в составе вириона. При распространении инфекции ТБ1, образующийся в первично зараженной клетке, входит в состав транспортной формы, связывается с торцом вируса и/или вирусного рибонуклеопротеида и активирует инкапсидированную РНК [1-3].
Изучая это явление, нам удалось выяснить, что ТБ1 взаимодействует с молекулами БО, расположенными на конце полярной белковой спирали ХВК,
соответствующем 5'-концу геномной РНК, но с самой РНК не взаимодействует. Фосфорилирование БО и взаимодействие с ТБ1 затрагивают различные области молекулы БО ХВК: если при фосфорилирова-нии ключевую роль играют 19 ^концевых аминокислотных остатков БО, то в процессе связывания ТБ1 с вирионом определенную роль играет С-концевой участок БО ХВК протяженностью 10/18 аминокислотных остатков, доступный для взаимодействия с ТБ1 в торце вирусной частицы [4, 5].
Связывание ТБ1 с нативными вирионами ХВК приводит к линейной дестабилизации всей спиральной белковой оболочки вирусной частицы, вследствие чего вирион переходит из стабильного не-транслируемого состояния в метастабильную форму, благодаря чему 5'-конец вирусной РНК становится доступен для рибосом. Таким образом, очевидно, что ТБ1, являясь компонентом транспортной формы ХВК, может служить регулятором трансляции РНК в составе вириона или вирусного транспортного рибо-нуклеопротеида [1, 6, 7].
С использованием панели делеционных мутантов показано, что участок ТБ1, обеспечивающий его связывание с вирусной частицей, находится между 112 и 122 аминокислотными остатками. При этом связывание ТБ1 с БО в составе вириона является необходимым, но недостаточным условием активации трансляции инкапсидированной РНК. При удалении любого участка ТБ1, не препятствующего его связыванию с вирусной частицей, или при его фосфо-рилировании, по-видимому, происходит изменение конформации белка, что приводит к блокировке ТБ1-зависимой активации трансляции [5].
Геномная РНК другого потексвируса - вируса мозаики альтернантеры (ВМАльт, штамм ВМАльт-MU) - не транслируется in vitro в составе вирусных частиц, но может трансляционно активироваться так же, как и РНК ХВК - путем фосфорилирования БО в составе вирусной частицы и при взаимодействии вирионов с ТБ1 ВМАльт [8, 9]. При изучении трансляционной активации геномов ХВК и ВМАльт возник вопрос - может ли ТБ1 ХВК активировать РНК в составе вирусных частиц ВМАльт и наоборот. Оказалось, что при взаимодействии вирионов ВМАльт с гетерологичным ТБ1 ХВК происходит эффективная активация трансляции инкапсидирован-ной РНК ВМАльт [8]. Более того, ТБ1 ВМАльт может активировать трансляцию РНК в составе вириона ХВК [10].
Полученные результаты позволили предположить, что обнаруженные трансляционные свойства инкапсидированной РНК и механизм активации трансляции могут быть общими у вирусов, относящихся к роду Potexvirus (потексвирусы).
В данной работе изучены трансляционные свойства еще двух потексвирусов: вируса мозаики нарцисса (ВМН) и вируса аукубы-мозаики картофеля (ВАМК), и возможность трансляционной активации транспортными белками 1 инкапсидированной РНК четырех представителей этой группы (ХВК, ВМАльт, ВМН и ВАМК).
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ
Выделение препаратов вирусов и вирусных РНК
Препараты ХВК, ВАМК и ВМН выделяли из зараженных растений Datura stramonium L. согласно [1]. Препарат ВМАльт выделяли из зараженных растений портулака (Portulaca grandiflora) по методике, описанной в [8]. РНК выделяли фенольным методом с некоторыми модификациями [11].
Получение мутантных ТБ1
Рекомбинантные белки ТБ1 ХВК и ВМАльт получены как описано ранее [1, 10].
Генно-инженерные конструкции для экспрессии белков ТБ1 ВМН и ТБ1 ВАМК были созданы на основе плазмиды pQE30 (QIAGEN). Кодирующие области генов ТБ1 ВМН и ТБ1 ВАМК с добавлением His6 получены амплификацией на матрицах геномных6 РНК ВМН и ВАМК (праймеры прямой NMV BamHI(+)5'-acacggatccatggactgtaagta-3' и обратный NMV PstI(-)5'-acacctgcagcgtagttaacaggtg-3') и на матрице геномной РНК ВАМК (праймеры прямой Auc-BamHI(+)5'-acatggatccggaatggaatat-3' и обратный Auc-PstI(-)5'-acacctgcagatcagtctaaat-3'). Этими плаз-мидами трансформировали клетки Escherichia сoli M15[pREP4]. После индукции экспрессии рекомбинантные белки очищали с помощью аффинной хроматографии на Ni-NTA-агарозе. Анализ полученных белковых препаратов при помощи электрофореза в 8-20% денатурирующем полиакриламидном геле (ПААГ с ДСН) выявил единственную полосу, подвижность которой соответствовала рассчитанной молекулярной массе рекомбинантных ТБ1 ВМН (26.7 кДа) и ТБ1 ВАМК (27.2 кДа).
Трансляция in vitro
Трансляцию РНК в бесклеточной системе из экстракта зародышей пшеницы проводили согласно протоколу Promega с некоторыми модификациями как описано ранее [12]. Количество РНК в пробе составляло 40 мкг/мкл. Рекомбинантный ТБ1 для трансляционной активации РНК в составе вири-она добавляли в молярном соотношении ХВК : ТБ1 = 1 : 100, т.е. на 1 мкг РНК (20 мкг вируса) 1.4 мкг ТБ1.
Иммуноэлектронная микроскопия
Анализ методом иммуноэлектронной микроскопии проводили как описано ранее [13]. В качестве первичных антител использовали поликлональные антисыворотки к ТБ1 ХВК, ТБ1 ВМАльт и ТБ1 ВАМК, полученные согласно [10]. В качестве вторичных использовали антивидовые антитела, конъюгирован-ные с частицами коллоидного золота диаметром 12 нм. Полученные образцы контрастировали 2% водным раствором уранилацетата. Наблюдения проводили на просвечивающем электронном микроскопе JEOL JEM-1011 (JEOL, Япония) при 80 кВ. Изображения получали с помощью цифровой камеры Gatan Erlangshen ES500W с использованием программного обеспечения Gatan Digital Micrograph.
РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
Для изучения трансляционных свойств инкапсиди-рованной РНК потексвирусов были накоплены, выделены и очищены препараты ВМН и ВАМК, также получены рекомбинантные ТБ1 этих вирусов. Обнаружено, что трансляционные свойства инкап-
1 2 3
1 2 3
187K
174K
12 3 12 3
165K
1 2 3 4 5 6 7
ВАМК
ВМН
ВМАльт ХВК
Рис. 1. Трансляционная активация инкапсидированных РНК ВАМК и ВМН in vitro. РНК вирусов ВАМК, ВМН, ВМАльт и ХВК (1); РНК в составе вирусных частиц (2); РНК в составе вирусных частиц, к которым добавлены ТБ1 вирусов (3). Стрелками показаны положения репликаз ВАМК (187К), ВМН (186К), ВМАльт (174К) и ХВК (165К). Электрофоретический анализ ^S-меченых продуктов трансляции
сидированных РНК этих представителей потексви-русов не отличаются от свойств ВМАльт и ХВК: геномные РНК ВАМК и ВМН не транслируются in vitro в составе вирионов (рис. 1, дорожки 2), но могут быть трансляционно активированы после взаимодействия вирусных частиц с собственным ТБ1 вирусов (рис. 1, дорожки 3), как это было показано ранее для РНК ВМАльт и ХВК (рис. 1, положительные контроли).
Ранее мы показали возможность активации трансляции инкапсидированных РНК ХВК и ВМАльт при добавлении ТБ1 ВМАльт к ХВК и ТБ1 ХВК к ВМАльт - кросс-активацию трансляции [8, 10]. В данной работе мы попытались выяснить, возможна ли кросс-активация у других потексвирусов. В серии экспериментов показано, что трансляционная активация ВАМК происходит и при взаимодействии вирусной частицы с ТБ1 другого потексвируса -ВМН (рис. 2, 5). В то же время при взаимодействии вириона ВАМК с ТБ1 ХВК (рис. 2, 4) инкапсидиро-ванная РНК ВАМК трансляционно не активируется, в отличие от РНК ВМАльт [8]. Аналогичный результат получен и в «обратном» случае - при добавлении ТБ1 ВАМК к вирионам ХВК РНК ХВК оставалась недоступной для рибосом (рис. 2, 6).
Анализ кросс-активации трансляции РНК в составе вирионов ВМН и ХВК показал, что ТБ1 ВМН не активирует трансляцию ХВК (рис. 3, 4), тогда как ТБ1 ХВК активирует трансляцию инкапсиди-рованной РНК ВМН (рис. 3, 3). Оказалось, что в паре ВМН-ХВК отсутствует взаимная кросс-активация, как и в паре ВМН-ВМАльт - РНК в составе вирио-
187K
165K
Рис. 2. Трансляционная активация геномной РНК ВАМК в составе вирусных частиц in vitro. РНК ВАМК (1); РНК ВАМК в составе вирусных частиц (2); к вирионам ВАМК добавлен ТБ1 ВАМК (3); ТБ1 ХВК (4); ТБ1 ВМН (5); вирусные частицы ХВК после добавления ТБ1 ВАМК (6) и ТБ1 ХВК (7). Стрелками показаны положения репликазы ВАМК (187К) и ХВК (165К). Электро-форетический анализ 3^-меченых продуктов трансляции
1 2 3 4 5 6 7
165K
186K
Рис. 3. Трансляционная активация геномной РНК ВМН в составе вирусных частиц in vitro. РНК ВМН в составе вирусных частиц (1) и после добавления ТБ1 ХВК (3), ТБ1 ВМН (5) или ТБ1 ВМАльт (7). Свободная РНК ВМН - положительный контроль (6). Трансляция инкап-сидированной РНК ХВК после добавления к вирусным частицам ХВК ТБ1 ВМН (4) или ТБ1 ХВК - положительный контроль (2). Стрелками показаны положения репликаз ВМН (186К) и ХВК (165К). Электрофоретический анализ ^S-меченых продуктов трансляции
нов ВМН не может быть активирована ТБ1 ВМАльт (рис. 3, 7), но при этом ТБ1 ВМН может активировать трансляцию РНК ВМАльт (рис. 4, 4), так же как это происходит в паре ВМАльт-ТБ1 ХВК (рис. 4, 3) [8]. Таким образом, при изучении трансляционной активации потексвирусов нами впервые обнаружено такое явление, как неполная кросс-активация инкап-сидированных вирионных РНК.
Нами проверена возможность трансляционной активации ТБ1 ВАМК инкапсидированной РНК ВМН
12 3 4
174K
Рис. 4. Трансляционная активация геномной РНК ВМАльт в составе вирусных частиц in vitro. РНК ВМАльт в составе вириона (1); РНК ВМАльт -положительный контроль (2); к ВМАльт добавлен ТБ1 ХВК (3) и ТБ1 ВМН (4). Стрелкой показано положение репликазы ВМАльт (174К). Электрофоретический анализ 3^-меченых продуктов трансляции
Трансляционная активация РНК в составе вирионов по-тексвирусов транспортными белками 1
Вирус Белок
ТБ1 ХВК ТБ1 ВМН ТБ1 ВАМК ТБ1 ВМАльт
ХВК + - - +
ВМН + + + -
ВАМК - + + -
ВМАльт + + - +
Примечание. Цветом выделены филогенетические подгруппы ТБ1 (согласно Wong et al. [16]): Ia (розовый); Ib (зеленый); Ic (желтый). «+» - трансляционная активация, «-» - отсутствие трансляционной активации.
и ВМАльт, а также ТБ1 ВМАльт инкапсидированной РНК ВАМК. Оказалось, что ТБ1 ВАМК активирует трансляцию вирусной РНК ВМН, но его добавление к вирионам ВМАльт не приводит к трансляционной активации РНК этого вируса. Аналогичным образом РНК ВАМК в составе вириона не активируется трансляционно при добавлении ТБ1 ВМАльт (данные не приведены).
Результаты проведенных экспериментов обобщены в таблице.
На основании данных по кросс-активации можно утверждать, что ТБ1 ВМН может активировать трансляцию инкапсидированных геномных РНК ВАМК и ВМАльт, но не ХВК. ТБ1 ВАМК трансля-ционно активирует РНК ВМН в составе вириона, но не РНК ВМАльт и ХВК. В дополнение к ранее полученным данным о кросс-активации инкапсиди-рованных РНК ВМАльт и ХВК удалось выяснить, что ТБ1 ХВК трансляционно активирует РНК ВМН в составе вириона, так же как и инкапсидированную РНК ВМАльт, но при взаимодействии ТБ1 ХВК с вирусными частицами ВАМК не происходит трансляционной активации РНК этого вируса. Оказалось, что ТБ1 ВМАльт не способен активировать трансляцию исследуемых в настоящей работе потексвирусов ВАМК и ВМН (таблица). Взаимная кросс-активация трансляции вирусной РНК существует в парах «ХВК-ВМАльт», «ВМН-ВАМК».
Таким образом, транспортные белки потексви-русов способны трансляционно активировать РНК в составе вирионов других представителей группы, но проявляют избирательную специфичность.
Чтобы интерпретировать полученные результаты, мы сравнили аминокислотную последовательность ТБ1 (рис. 5). Известно, что белки ТБ1 представителей рода Potexvirus принадлежат к суперсемейству I хеликаз, содержащих семь высококонсервативных NTP-азных/РНК-хеликазных мотивов, образующих
NTP-азно/РНК-хеликазный домен [14, 15]. Ранее в нашей лаборатории была получена серия мутантов ТБ1 ХВК с делециями, затрагивающими различные функциональные районы молекулы. Выяснилось, что размер и позиция делеции в мутантных белках не оказывают существенного влияния на способность ТБ1 связываться с вирионом ХВК только в том случае, если делеция не затрагивала мотив IV NTP-азно/ хеликазного домена (аминокислотные остатки 112122). В связи с этим основное внимание при сравнении последовательностей мы обращали на мотив IV [5].
Поскольку мотивы IV ТБ1 ХВК, ВМАльт, ВАМК и ВМН, как видно из рис. 5, ощутимо отличаются друг от друга по аминокислотной последовательности, трудно предсказать, связываются ли эти транспортные белки с торцом гетерологичных вирионов в случае отсутствия кросс-активации трансляции. Для ответа на этот вопрос были проведены дополнительные опыты.
Методом иммуноэлектронной микроскопии с использованием первичных антител к ТБ1 ХВК, ВМАльт и ВАМК и вторичных антител, конъюгиро-ванных с коллоидным золотом, показано, что с торцом вирионов ХВК могут связываться как активирующие трансляцию инкапсидированной РНК ХВК белки ТБ1 ХВК (рис. 6А, положительный контроль), ТБ1 ВМАльт (рис. 6Б), так и не активирующие -ТБ1 ВАМК (рис. 6В). В контрольном эксперименте (рис. 6Г, отрицательный контроль) в отсутствие ТБ1 не наблюдали связывания частиц золота с торцом ви-риона. Аналогичные результаты получены при анализе связывания транспортных белков, активирующих и не активирующих трансляцию РНК в составе вирионов ВМАльт (рис. 6Д-З). ТБ1 ВАМК успешно связывался с вирионом (рис. 6Ж), как ТБ1 ВМАльт (рис. 6Д) и ТБ1 ВМН (рис. 6Е), хотя трансляционно активировать РНК в составе вирионов ВМАльт способен только гомологичный ТБ1.
ТБ1 ВМАльт ТБ1 ХВК ТБ1 ВАМК ТБ1 ВМН
ТБ1 ВМАльт ТБ1 ХВК ТБ1 ВАМК ТБ1 ВМН
ТБ1 ВМАльт ТБ1 ХВК ТБ1 ВАМК ТБ1 ВМН
ТБ1 ВМАльт ТБ1 ХВК ТБ1 ВАМК ТБ1 ВМН
Мотив I Мотив 1А
—МШЕ1ЫЕЫЕЕСУУКТЫЕ1Ь—ЗСТЕУУНАУАСАСКЗТЫЕКЕШОЕРОАКАУТНбУР -~М01Ы38ЬКЗЬС¥8КТЗКЗЬ0-50РЪУ,УНА'*/АСАСК5ТАЬККЫЬКНРТРТ\/НТЬСУР МЕУ5ЕЪУКЪЬОНУСЕЕКТТЕК1УРС0Р1УУ061АСС6КТТЪЬЕЫЕНОЕУР51Р1УЗС-ЕР МОСКУЪЬЕЬЬОЗУЗРШЗЗКЗГЗ—ЗРШНСУАСССКЗТИОКТАЬАРРЕЪЫСЗРТРА Мотив 1А Мотив II Мотив III Мотив IV
ОРРКЪЕ6КЕ1САЕКЗРОРЫНЕК1ЬСЕУСАЕРЬЗС-61>ШУЬ1АОРЪОНКЗО-АЪКРНУ1КК ОКШIЮ? КО I РТР Е СЫЕА XШЕ У|ь ЕШ1 X КЬТ ЗУ § АШЕ АЕ> РЩАРЕЕ - 3 Ъ Е Р НЕУ Е Е ШИ 3 ЕИ Э ЕЕ Ъ ОЪ ЪАКАР.Е ТАНЬ X РЕУ ЮНКЕР У ОКСЬАРЕ ДШ©¥ ЗН Ь 3 АШР нШОВ!
ЕЕОЗЫЗСККОЬАУТЗВР---Е$ IЕ ОЕУХЖНё РН Р У\Ф§ АК Е С ЙР Ь Э С Е§РЁУР ЕЕТБЕ
Мотив IV
ЕЗН ИЗ ОУАТ С ШЩГ ИУ^Е РУЬ Э ЩТ Е0—0УВУ<2С1ЕЕСРЕЕСТУ1АЕВЗТУКАЕЕЕКНО ТЗЕКУРККУАОЕ1АСССЕБЕЕТЫ30ЕЕ6-НЕЕ1Т31ЕКСРЕЕЗКУ1А10ЕЕЗЕТТЕЗКНС К НI Е X Е5 Е ИЫ ИIРI Ё.З Е Е Э Ё ЕК ТX ЕКЁС В РУ АТ О Р 1йС? 11 А®Н Е УЕЫУ ГКР(Э А
ЕТИКЕСУРТТАЕЕЫС1Е6С01КЗКРЕОЕСНЕТНЕЫРУТТОРК6УУУАНЕ0ЕУ1ЫЕЕЕ0НС Мотив V Мотив VI
13Р1СРАЕУ1,ЗЗЕЕЕЕТТУУЗЕУЗ—ЕЗОУКЕКИАЬУ1АЕТРНККЗЬНУКАРРЕРВТРЗК.
УЕЕУКРС<2УТСЕЕЬКУУТ1УЗААР—XEEICQSlAFYNArrRSKG.LT У УЙАСТ-------
ушхрз сёЩьзк Е1<д з£§|у§ з н к зе в з ае е кб.зъу I ах з как|аш ЕЕЕШ-------
СРУТРТОНЬИ6ЬТ1РУУЗУУ1Т31АЗЪЗТУОРАЫ-ЕЬ"ЪЗЕТРОЗКАЕН1ГЕЕОАК(ЗНАТС
56
57 59
58
114 116 119 114
172 175 179 174
230 226
232
233
ТБ1 ВМАльт I П":
ТБ1 ХВК ТБ1 ВАМК ТБ1 ВМН
Рис. 5. Сравнение аминокислотных последовательностей ТБ1 ВМАльт, ХВК, ВАМК, ВМН. Серым цветом выделены консервативные мотивы ТБ1 (мотивы I, !А, II, III, IV, V, VI) (по Morozov а1. [15])
Рис. 6. Иммуноэлектронная микроскопия комплексов вирионов ХВК с ТБ1: ХВК (А), ВМАльт (Б) и ВАМК (б) и ви-рионов ВМАльт с ТБ1: ВМАльт (Д), ВМН (Е) и ВАМК (Ж). Первичные антитела к ТБ1 ХВК (А - положительный контроль), ВМАльт (Б, Д), ВАМК (б, Ж) и ВМН (Е) и вторичные антитела, конъюгированные с коллоидным золотом (12 нм). Отрицательный контроль: вирионы ХВК (Г) или ВМАльт (3), инкубированные с первичными и вторичными антителами, конъюгированные с коллоидным золотом, в отсутствие ТБ1. Стрелками показано положение ТБ1 на торце вирионов. Масштабная линейка 200 нм
58 | АСТА ЫАТиИАЕ | ТОМ 9 № 4 (35) 2017
Таким образом, впервые показана возможность взаимодействия торца вириона потексвируса с гете-рологичным ТБ1. При этом связывание ТБ1 с торцом вириона является обязательным, но недостаточным условием для трансляционной активации инкапси-дированной РНК.
При филогенетическом анализе белков ТБ1 потек-свирусов [16] представители рода Potexvirus были разделены на три подгруппы - !а, Ш, !с. К подгруппе !а был отнесен ТБ1 ВМАльт, к подгруппе !Ь - ТБ1 ВМН и ВАМК, а к ^ - ТБ1 ХВК.
В нашей работе показана взаимная кросс-активация трансляции пар вирусов ВАМК-ВМН и ВМАльт-ХВК, тогда как в других вариантах наблюдали неполную кросс-активацию (ВМН-ХВК и ВМН-ВМАльт) или полное ее отсутствие (ВАМК-ХВК) (таблица). Принадлежность вирусов ВАМК и ВМН к одной подгруппе (!Ь) хорошо согласуется с данными по кросс-активации трансляции. При этом возможность трансляционной активации ТБ1 РНК в составе гетерологичных вирионов в случае ХВК и ВМАльт можно объяснить значительно большим филогенетическим родством между подгруппами !а и к, чем между !а и Ш [16]. На данном этапе исследования мы предполагаем, что ключевым моментом в специфичности процесса трансляционной активации РНК потексвирусов играет конформация транспортного белка и возможность его белок-белкового взаимодействия с С-концом белка оболочки вириона, приводящего к дестабилизации белковой спирали. Это подтверждают и данные о том, что фосфорили-рование ТБ1 ХВК препятствует возможности трансляционной активации РНК ХВК в составе вируса [5]. Вряд ли конформация ТБ1 может критически влиять на связывание с торцом вириона, так как ранее мы по-
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1. Atabekov J.G., Rodionova N.P., Karpova O.V., Kozlovsky S.V., Poljakov V.Yu. // Virology. 2000. V. 271. № 2. P. 259-263.
2. Atabekov J.G., Rodionova N.P., Karpova O.V., Kozlovsky S.V., Novikov V.K., Arkhipenko M.V. // Virology. 2001. V. 286. P. 466-474.
3. Karpova O.V., Zayakina O.V., Arkhipenko M.V., Sheval E.V., Kiselyova O.I., Poljakov V.Yu., Yaminsky I.V., Rodionova N.P., Atabekov J.G. // J. Gen. Virol. 2006. V. 87. № 9. P. 2731-2740.
4. Карпова О.В., Архипенко М.В., Заякина О.В., Никитин Н.А., Киселева О.И., Козловский С.В., Родионова Н.П., Атабеков И.Г. // Молекуляр. биология. 2006. Т. 40. № 4. C. 703-710.
5. Zayakina O., Arkhipenko M., Kozlovsky S., Nikitin N., Smirnov A., Susi P., Rodionova N., Karpova O., Atabekov J. // Mol. Plant. Pathol. 2008. V. 9. № 1. P. 37-44.
6. Kiseleva O.I., Yaminsky I.V., Karpova O.V., Rodionova N.P., Kozlovsky S.V., Arkhipenko M.V., Atabekov J.G. // J. Mol. Biol. 2003. V. 332. № 2. P. 321-325.
7. Rodionova N.P., Karpova O.V., Kozlovsky S.V., Zayakina O.V., Arkhipenko M.V., Atabekov J.G. // J. Mol. Biol. 2003. V. 333. № 3. P. 565-572.
казали, что делеционные мутанты ТБ1 ХВК могут успешно взаимодействовать с вирусом [5]. Более того, установлено, что полноразмерные транспортные белки потексвирусов могут связываться с гетерологичны-ми вирионами, но трансляционно их не активируют. Можно предположить, что филогенетически близкие гетерологичные транспортные белки, имеющие сходную пространственную структуру с гомологичным ТБ1, способны при связывании с вирионами дестабилизировать спиральную белковую оболочку вирусной частицы, вследствие чего 5'-конец вирусной РНК становится доступным для рибосом [7].
ВЫВОДЫ
На основании полученных результатов можно утверждать, что инкапсидированная РНК потексви-русов обладает общими трансляционными свойствами in vitro. Получены прямые доказательства того, что связывание ТБ1 с торцом вириона является обязательным, но недостаточным условием активации трансляции вирусной РНК. Транспортные белки 1 потексвирусов способны трансляционно активировать РНК в составе вирионов других представителей группы, но проявляют избирательную специфичность. Взаимная трансляционная кросс-активация происходит у вирусов, принадлежащих к одной филогенетической подгруппе (ВМН-ВАМК - Ib) или к близким подгуппам (ХВК-ВМАльт - 1с и 1а). Возможно, ТБ1 вирусов, активирующих трансляцию инкапсидированной РНК гетерологичных вирионов, обладают близкой пространственной конформацией, но это требует дополнительных экспериментальных доказательств.
Работа поддержана грантом РНФ № 14-24-00007.
8. Мухамеджанова А.А., Карпова О.В., Родионова Н.П., Атабеков И.Г. // ДАН. 2009. Т. 428. № 2. С. 266-268.
9. Ivanov P.A., Mukhamedzhanova A.A., Smirnov A.A., Rodionova N.P., Karpova O.V., Atabekov J.G. // Virus Genes. 2011. V. 42. № 2. P. 268-271.
10. Mukhamedzhanova A.A., Smirnov A.A., Arkhipenko M.V., Ivanov P.A., Chirkov S.N., Rodionova N.P., Karpova O.V., Atabekov J.G. // Open Virol. J. 2011. V. 5. P. 136-140.
11. Karpova O.V., Tyulkina L.G., Atabekov K.J., Rodionova N.P. // J. Gen. Virol. 1989. V. 70. P. 2287-2297.
12. Arkhipenko M.V., Petrova E.K., Nikitin N.A., Protopopova A.D., Dubrovin A.V., Yaminskii I.V., Rodionova N.P., Karpova O.V., Atabekov J.G. // Acta Naturae. 2011. V. 3. № 3. P. 40-46.
13. Nikitin N., Trifonova E., Karpova O., Atabekov J. // Microsc. Microanal. 2013. V. 19. № 4. P. 808-813.
14. Koonin E.V., Dolja V.V. // Crit. Rev. Biochem. Mol. Biol. 1993. V. 28. № 5. P. 375-430.
15. Morozov S.Y., Solovyev A.G. // J. Gen. Virol. 2003. V. 84. P. 1351-1366.
16. Wong S.M., Lee K.C., Yu H.H., Leong W.F. // Virus Genes. 1998. V. 16. № 3. P. 295-302.
