CC BY
16деструктивно измененных нейтрофилов, макрофагов и реснитчатых эпителиальных клеток.
2. Изменения в БАЛе при развитии антракоси-ликозау экспериментальных животных сопровождались гиперфункцией базофильных клеток гипофиза, понижением функции клеток мозгового вещества надпочечников и щитовидной железы.
Список литературы
1. Зорина Л.А., Сорокина Н. С. Руководство по профессиональным заболеваниям. — М.: Медицина, 1983. — С. 87-125.
2. Гацкий Г.Я., Садыков Ж.А., Бережная И.М. Сб.: Эндокринная система организма и вредные факторы внешней среды: Тез. докл. II Всесоюз. конф. 21-23 сентября. — Л.,1983. — 203 с.
3. Алексеев С.В., Усенко В.Р. Руководство по гигиене труда. — М.,1988. — С. 212.
4. Зельцер М.Е., Абылаев Ж.А. и др. Очерки профессиональной эндокринологии. — Алма-Ата: Галым, 1991. — 168 с.
5. Панков Ю.А. Все органы, ткани и клетки животных и человека являются эндокринными // Вестник РАМН, 2001. — № 5. — С. 14-18.
6. Устьянцев С.Л. Новый метод гигиенической оценки сочетанного воздействия химического вещества и физической нагрузки // Мед. труда и пром. экол, 1999. — № 5. — С. 32-33.
7. Колбасин П.Н., Шпак С.И. Влияние хлор- и фофорорганичеческих пестицидов при динамических физических нагрузках на деградацию тканевых базофилов // Гиг. и санит. 1993. — № 3. — С. 50-51.
Материал поступил в редакцию 28.04.05.
L.T.Bazelyuk
ASSESSMENT OF CYTOMORPHOLOGIC CHANGES IN ENDOCRINE ORGANS OF EXPERIMENTAL ANIMALS AT EXPOSURE TO JOINT IMPACT OF COAL DUST AND PHYSICAL LOAD
National Center for Occupational Hygiene and Diseases, Ministry of Health of Kazakhstan, Karaganda
A joint effect of coal dust and physical load for 4 months brought to light fast entry of dust particles into the blood circulation system as well as shifts in acid-alkali equilibrium in blood and cells of endocrine organs which results in reduced functioning of substantia medullaris in adrenal and thyroid glands.
УДК 613.63
З.Ю.Сираева*, Н.Г.Захарова, О.Н.Ильинская, А.В.Гарусов
ТОКСИКОЛОГИЧЕСКАЯ ОЦЕНКА НОВОГО ПРОТРАВИТЕЛЯ СЕМЯН ЗЕРНОВЫХ КУЛЬТУР БИОФУНГИЦИДА БАЦИЗУЛИН
Казанский государственный университет им. В.И.Ульянова-Ленина, Казань
Показано, что перспективный для использования в широкомасштабном сельскохозяйственном производстве биофунгицид бацизулин не оказывает общетоксического действия на организм экспериментальных животных. Согласно действующей в Российской Федерации гигиенической классификации пестицидов биопрепарат относится к препаратам 4-го класса опасности.
Ключевые слова: биофунгицид бацизулин, острая токсичность, кумулятивный эффект, диссеминация.
Введение. В настоящее время в деле защиты растений остро встает принципиально новая задача — создание препаратов не только эффективных против вредных объектов, но и не обладающих общетоксическим, кумулятивным и мутагенным действием на теплокровные объекты. В Казанском государственном университете разработан новый микробиологический препарат — бацизулин, предназна-
* Фрагмент диссертационной работы
ченный для обработки семян и посевов зерновых культур против широкого спектра возбудителей заболеваний растений [10]. Биофунгицид в жидкой препаративной форме содержит биомассу Bacillus sp.3 при следующем соотношении компонентов (об.%): биомасса Bacillus sp.3 — живых микробных клеток и спор не менее 1-1010 КОЕ в 1 мл препарата - 94,0-99,5, стабилизатор «гуми» (ООО НВП «Башинком», Уфа) — 0,5-2,0. Бацизулин, наряду с высокими хитиназной, амилазной, протеазной активно-
стями [8], обладает способностью осуществлять микробиологическую трансформацию органических и неорганических соединений фосфора в доступную для растений форму [9], положительно воздействует на биологическую активность и плодородие почвы [11]. Эти ценные качества удачно сочетаются с отсутствием фитотоксического эффекта и цитогенотокси-ческого действия препарата на различные растительные объекты [10]. В связи с перспективностью использования бацизулина в сель-ско хо зяй ствен ном про из вод стве це лью на -стоящей работы явилось обоснование безопасности применения препарата для теплокровных животных, его токсикологическая характеристика и определение класса опасности согласно действующей в Российской Федерации гигиенической классификации пестицидов.
Материалы и методы исследования. Токсикологические исследования на теплокровных животных проведены на базе Казанского государственного медицинского университета в соответствии с принятыми методическими разработками [5, 6]. Параметры токсичности бацизулина определяли в экспериментах на белых беспородных крысах массой 180-240 г. При формировании групп экспериментальных животных учитывали пол, возраст и массу тела в качестве определяющих показателей.
Параметры острой токсичности биопрепарата изучали при однократном внутрижелудочном введении в дозах 1-1010, 0,5-1010, 0,25-1010 КОЕ/кг массы тела животного (по 12 самцов и 12 самок). Выбор максимальной дозы произведен в соответствии с рекомендуемой в производстве нормой расхода биопрепарата (при протравливании семян — 1,5-2,0 л/т) и согласно существующим физиологически обоснованным нормативам по внутрижелудочному введению
лабораторным животным. Срок наблюдения за животными — 14 дней.
Определение острой дермальной токсичности проводили путем аппликации салфетки, пропитанной нативным препаратом или 50%-ным водным раствором (в дозах 0,25-1010 и 0,125-1010 КОЕ/кг соответственно), на эпилиро-ванный участок кожи боковой поверхности туловища крыс (по 6 самцов и 6 самок на дозу) площадью 16 см2. херез 4 ч суспензию с кожи смывали стерильной водой. Контрольным животным наносили стерильную воду в эквивалентном объеме.
Изучение кумулятивных свойств проводили на белых крысах (по 12 самцов и 12 самок) в условиях внутрижелудочного введения препарата по 5 раз в неделю в течение 8 недель в дозе 1-109 КОЕ/кг, равной 1/10 от максимальной испытанной в остром эксперименте. Контрольным животным вводили стерильную воду.
Хроническое действие на организм белых крыс исследовали в условиях 6-ти месячного (по 5 раз в неделю) внутрижелудочного воздействия малых доз (1-108, 1-107, 1-106 КОЕ/кг). Каждая группа животных состояла из 24 самцов и 24 самок. Массу тела, гематологические, биохимические и патоморфологические показатели учитывали в динамике через 2, 4, 6 месяцев и после месячного восстановительного периода. Для этого часть животных из каждой экспериментальной группы в течение курса введения биопрепарата и через 24 ч после его окончания выводили из опыта.
Общее состояние животных контрольных и опытных групп оценивали по двигательной активности, характеру потребления корма и воды, состоянию слизистых оболочек, шерстного и кожного покрова, массе тела. В период наблюдения в подопытных вариантах отмечали кли-
Таблица 1
Масса тела (г) белых крыс при ежедневном внутрижелудочном введении бацизулина в дозе 1-109 КОЕ/кг/день в течение 8 недель
Группа животных Неделя эксперимента, М±гп
0 1 2 3 4 5 6 7 8
Самцы
Контроль 191,3±7,2 203,5±17,6 211,2±16,5 220,2±19,1 225,7±Ю,2 226,3±11,5 228,6±12,4 229,4±12,0 231,6±12,9
Бацизулин 191,4±6,2 200,8±15,9 208,4±14,8 217,4±16,8 223,5±14,4 224,0± 13,8 229,1±15,9 230,4±16,6 230,8±15,1
Самки
Контроль 178,2±9,1 189,9±10,3 194,7±12,7 210,2±13,6 207,4±11,0 212,5±13,5 215,4±10,9 218,0±13,1 219,3±9,1
Бацизулин 178,3±7,7 184,4±9,2 191,3±13,2 199,3±10,8 204,9±11,3 208,1±10,5 211,9±10,2 215,8±12,3 217,9±8,7
Таблица 2
Гематологические и биохимические показатели крови белых крыс через 24 ч после окончания 8-ми недельного курса введения препарата бацизулин (в числителе) в дозе 1 ■ 109 КОЕ/кг/день и после окончания восстановительного периода (в знаменателе) /р < 0,05/
Показатель Группа животных
самцы самки
контроль бацизулин контроль бацизулин
Гематологические показатели
Гемоглобин, г/л 118±11,8 122±11,3 120±9,7 124±10,6 107±10,0 109±8,7 109±9,5 111±10,3
Эритроциты, млн/мкл 6,0±0,05 6,2±0,12 6,2±0,20 6,2±0,27 6,0±0,11 5,9±0,16 6,0±0,24 5,9±0,2
Гематокритная величина, % 46,2±0,3 48,1±0,7 47,1±0,7 48,0±0,5 45,9±0,8 48,7±0,6 46,2±0,8 45,4±0,4
Средний объем эритроцитов, мкм3 77,0±0,2 77,6±0,4 75,9±0,6 77,4±0,7 76,5±1,1 82,5±0,9 77,0±1,0 76,9±2,1
Ретикулоциты, % 2,3±0,2 2,7±0,1 2,4±0,2 2,6±0,2 2,4±0,1 2,5±0,1 2,2±0,1 2,5±0,1
Тромбоциты, тыс./мкл 549±Ю 560±18 537±19 566±20 454±19 450±12 461±21 453±14
Время свертываемости, с 305,8± 306±9 318±12 310±7 298±9 302±6 299±8 303±8
СОЭ, мм/ч 2,7±0,2 2,9±0,4 2,8±0,1 3,0±0,3 2,3±0,2 2,5±0,1 2,5±0,4 2,6±0,2
Лейкоциты, тыс./мкл 13,2±0,9 12,9±1,1 15,1±1,1 13,0±0,8 11,8±0,7 12,0±0,9 12,8±1,0 12,1±0,8
Лейкоцитарная формула, % базофилы 0 0 0 0 0 0,2±0,02 0 0,2±0,02
эозинофилы 2,0±0,2 1,7±0,2 2,1±0,2 1,7±0,15 1,5±0,1 1,4±0,2 1,7±0,15 1,4±0,2
юные 0 0 0 0 0 0 0 0
палочкоядерные 2,0±0,4 2,2±0,4 2,1±0,5 2,2±0,4 1,8±0,3 1,6±0,4 1,9±0,5 1,7±0,4
сегментоядерные 21,8±2,1 21,0*1,6 23,1±1,5 20,3±1,2 22,0±1,9 19,9±1,7 22,1±1,5 20,2±1,8
лимфоциты 69,4±1,4 72,0±2,3 68,2±2,2 71,5±2,4 68,2±1,7 71,2±2,0 67,3±1,2 71,8±2,6
моноциты 4,8±0,6 4,2±0,4 4,5±0,9 4,3±0,6 3,8±0,2 3,6±0,4 3,9±0,3 3,6±0,2
Биохимические показатели сыворотки крови
Общий белок, г/л 69,8±2,2 73,1 ±4,0 68,4±2,1 72,8±0,9 70,9±2,1 68,4±3,8 71,4±1,2 70,2±1,6
Глюкоза, ммоль/л 6,0±0,5 5,3±1,0 5,9±0,3 5,4±0,4 5,7±0,4 5,6±0,6 5,2±0,3 5,7±0,4
Мочевина, ммоль/л 3,05±0,26 3,46±0,31 2,97±0,18 3,40±0,28 3,94±0,22 2,83±0,27 2,78±0,20 2,90±0,23
Общий холестерин, ммоль/л 2,84±0,22 3,05±0,26 2,87±0,18 2,90±0,21 2,92±0,26 3,38±0,27 2,98±0,22 3,40±0,31
Креатинин, ммоль/л 84,72±8,20 80,53±6,12 82,05±8,06 79,97±6,33 68,86±6,00 73,44±6,91 66,41 ±5,9 71,69±6,04
Билирубин, ммоль/л 15,11±1,27 17,25±0,94 16,76±1,19 18,07±1,74 15,90±1,02 16,54±1,83 15,04±1,34 16,97±1,44
Щелочная фосфатаза, нмоль/(с-л) 386±26 332±31 395±29 339±24 308±21 294±23 317±30 296±33
нические симптомы интоксикации. Взвешивание крыс производили перед началом (при формировании групп экспериментальных животных) и после окончания введения препарата и восстановительного периода; во время введения препарата при изучении кумулятивного эффекта и хронической токсичности — 1 раз в неделю и месяц соответственно.
Клинические анализы периферической крови белых крыс проводили согласно [3]. Подсчет форменных элементов в мазках крови, окрашенных по методу Романовского-Гимза, осуществляли с помощью световой микроскопии; концентрацию гемоглобина определяли по методу Салли. Биохимические показатели сыворотки крови определяли унифицированными методами: общий белок — по биуретовой реакции, глюкозу — глюкозооксидазным методом по окислению ортотолидина и мочевину — по цветной реакции с диацетилмонооксимом; кре-атинин — по цветной реакции Яффе (методом Поппера), общий холестерин — по реакции с уксусным ангидридом (методом Илька), активность щелочной фосфатазы — по гидролизу п-нитрофенилфосфата (методом Бесселя-Лоури-Брока), общий билирубин — по диазореакции в присутствии акселератора (методом Ендрасси-ка-Киеггорна-Грофа) [3].
Перед началом экспериментов у экспериментальных животных проводили фоновое изучение бактериоценоза кишечника. В остром эксперименте материал для анализа отбирали до и после введения препарата. В период введения препарата в хроническом эксперименте и в опыте по выявлению возможного кумулятивного эффекта материал для анализа отбирали ежемесячно; после окончания курса введения и восстановительного периода проводили заключительное изучение кишечного микробоценоза. Суспензию посевного материала готовили на фосфатно-солевом буфере рН 7,2-7,4. Посевы 10-кратных разведений осуществляли на селективные среды не позднее одного часа после забора материала. Родовую и видовую идентификацию выделенных бактерий проводили согласно [1, 2].
По окончании срока наблюдения во всех вари ан тах опы та осу щест вля ли умерщ вле ние крыс путем ингаляции эфира с целью проведения вскрытия и дальнейшего патолого-анато-мического исследования, включающего анализ макроскопической картины органов грудной и брюшной полостей. Микроскопическое изучение структуры сердца, легких, органов иммунной защиты (селезенки, вил очковой железы, лимфатических узлов), печени, почек, кишеч-
ника у животных, получивших максимальные испытываемые дозы, проводили после приготовления гистологических препаратов (парафиновые срезы толщиной 7 мкм, окрашенные гематоксилин-эозином).
Диссеминационный эффект Bacillus sp.3 в остром и хроническом экспериментах определяли методом отпечатка частей органов на поверхность мясо-пептонного агара. Критерием диссеминации в органах считали наличие роста колоний Bacillus sp.3 на поверхности питательной среды.
Результаты экспериментов обрабатывали статистически, используя критерий Стьюдента
[4].
Результаты и обсуждение. Изучение острой пероральной токсичности бацизулина показало отсутствие у экспериментальных животных признаков интоксикации как непосредственно после введения препарата, так и в течение всего последующего периода наблюдения. Потребление пищи и воды, а также двигательная активность соответствовали норме [12]. При анализе гематологических показателей не выявлено статистически достоверных отличий от контроля. Изучение макро- и микроскопического строения внутренних органов животных, получивших максимальную дозу препарата, показало отсутствие каких-либо изменений, связанных с однократным воздействием бацизулина. Гибели лабораторных животных в течение всего срока наблюдения не выявлено. Ввиду отсутствия гибели животных при введении максимальной испытанной дозы (1-1010 КОЕ/кг массы тела животного) определение DL50 не представлялось возможным.
При определении острой дермальной токсичности в условиях накожной аппликации установлено отсутствие какого-либо раздражающего эффекта препарата как после нанесения препарата, так и в последующие 14 дней наблюдения. Раздражения кожи животных, клинических симптомов интоксикации и гибели крыс не выявлено.
Анализ результатов эксперимента по изучению возможного кумулятивного эффекта препарата при введении в желудок показал положи тель ную ди на ми ку из ме не ния мас сы те ла животных подопытных и контрольных групп (табл. 1). В течение всего периода наблюдения потребление животными корма и воды соответствовало физиологической норме. Общее состояние животных в подопытных и контрольных группах не отличалось.
По результатам гематологического анализа незначительное превышение уровня лейкоци-
тов по сравнению с контролем, находящееся в пределах физиологической нормы, выявлено по лейкоцитарной формуле у самцов через 24 ч после окончания курса введения препарата. Как видно из данных табл. 2, сдвига лейкоформулы влево, возникающего в случае развития в организме острого воспалительного процесса инфекционной природы и характеризующегося повышением процентного содержания в крови палочкоядерных нейтрофилов, а также появлением незрелых гранулоцитов (миелоциты и ме-тамиелоциты) [3], не выявлено. Статистически незначимые (р < 0,05) количественные различия по содержанию лейкоцитов в контрольной и подопытной группах устранились в восстановительном периоде. Анатомо-патологических нарушений при визуальном осмотре и отклонений от нормы при микроскопическом анализе гистологических препаратов со стороны внутренних органов не обнаружено; гибели животных на всем протяжении опыта не зарегистрировано. Коэффициенты массы внутренних органов животных подопытных групп не имели статистически значимых различий с контролем и соответствовали норме (табл. 3).
Внутрижелудочное хроническое воздействие малых доз бацизулина (1 • 108, 1-107, 1 • 106 КОЕ/кг) по 5 раз в неделю в течение 6 месяцев не приводило к гибели экспериментальных крыс. Масса тела животных опытных и контрольных групп не имела достоверных различий и соответствовала физиологической норме. При вскрытии крыс, умерщвленных после окончания 6-ти месячного курса введения бацизулина,
патологии со стороны внутренних органов не выявлено. Гистологический анализ органов и тканей лабораторных животных показал отсутствие токсических эффектов. Гематологические и биохимические показатели не имели достоверных отличий от контрольного уровня.
Согласно данным многолетних исследований, проводимых во ВНИИГИНТОКС, ряд бациллярных препаратов (битоксибациллин, ле-пидоцид и др.) может оказывать дисбактерио-тическое действие, нарушая количественные взаимоотношения нормальной микрофлоры организма [7]. В нашем случае хроническое воздействие бацизулина в максимальной испытанной дозе не оказывало выраженного действия на показатели анаэробной составляющей (би-фидобактерии, лактобациллы, клостридии) ми-кробоценоза крыс, а также не сопровождалось заметными изменениями со стороны аэробных и факультативно-анаэробных микроорганизмов кишечника. Статистический анализ результатов экс пе ри мен та и со по ста вле ние их с нор ма ми количественного содержания различных представителей микрофлоры кишечника крыс показал, что в течение опыта, после его окончания и в вос ста но ви тель ный пе риод во всех груп пах животных концентрации изученных микроорганизмов существенно не изменялись и находились в интервале нормальных показателей.
При микробиологическом анализе посевов со срезов внутренних органов, произведенных методом отпечатка, ни в одном из серии опытов не была выделена чистая культура Bacillus sp.3. Штамм не обладает способностью к диссе-
Таблица 3
Коэффициенты массы внутренних органов белых крыс после окончания 8-ми недельного курса внутрижелудочного введения препарата бацизулин в дозе 1 ■ 109 КОЕ/кг/день (в числителе) и после окончания восстановительного периода (в знаменателе) /р < 0,05/
Группа животных Коэффициенты массы внутренних органов, М±т
сердце легкие печень почки селезенка щитовидная железа семенники
Самцы
Контроль 3,53±0,20 3,51±0,18 7,4±0,30 7,5±0,18 36,3±1,11 41,3±1,40 6,0±0,20 6,1±0,18 3,4±0,22 3,3±0,19 0,07±0,009 0,08±0,008 9,9±0,65 10,6±0,42
Бацизулин 3,49±0,06 3,56±0,17 7,4±0,09 7,6±0,08 36,0±1,51 41,8±1,10 5,8±0,40 6,1±0,22 3,5±0,15 3,3±0,24 0,08±0,008 0,08±0,005 9,1±0,49 10,4±0,82
Самки
Контроль 3,32±0,09 3,40±0,11 7,2±0,33 7,1±0,24 35,4±1,20 40,8±0,50 5,9±0,45 5,6±0,30 2,9±0,21 3,2±0,18 0,08±0,008 0,09±0,007 -
Бацизулин 3,35±0,18 3,41±0,07 7,3±0,29 7,1±0,15 37,4±2,30 40,3±0,60 5,8±0,42 5,7±0,24 3,0±0,07 3,2±0,15 0,07±0,013 0,08±0,012 -
минации в кровь и внутренние органы (легкие, печень, поджелудочная железа, стенка кишечника, почки, надпочечники, селезенка, лимфатические узлы и репродуктивные органы) экспериментальных животных ни через 2 месяца введения препарата в случае оценки кумулятивного эффекта, ни через 6 месяцев в хроническом эксперименте. Это соответствует данным литературы об отсутствии адаптационной способности штаммов-продуцентов микробных препаратов к тканям теплокровного организма и возможности тканевого размножения бактерий-продуцентов биопрепаратов ввиду несоответствия интервала оптимальных для роста бактерий условий нормальным физиологическим показателям организма теплокровных животных [7].
Выводы: 1. По результатам оценки острой пе-роральной токсичности бацизулин относится к пестицидам 4-го класса опасности. DL50 препарата для белых беспородных крыс при однократном внутрижелудочном введении превышает максимальную испытанную дозу — 1,0-1010 КОЕ/кг, рассчитанную в соответствии с рекомендуемой в производстве нормой расхода биопрепарата.
2. По острой дермальной токсичности бацизулин относится к пестицидам 4-го класса опасности; не обладает раздражающим действием при на не се нии на ко жу в до зах ме нее или рав -ных 0,25-1010 КОЕ/кг.
3. Кумулятивные свойства препарата при пе-роральном введении в дозе 1-109 КОЕ/кг в течение 8 недель не выражены; согласно гигиенической классификации препарат относится к пестицидам 4-го класса опасности (коэффициент кумуляции выше 4).
Список литературы
1. Берджи М. Определитель бактерий. — М.: Мир, 1997. — Т. 1, 2.
2. Выделение и идентификация бактерий семейства Enterobacteriaceae / Учебно-методическое пособие под ред. А.М.Мардановой, В.И.Вершининой. — Казань: Изд-во КГУ, 2002. — 34 с.
3. Лабораторные методы исследования в кли-
нике / Справочник под ред. В.В.Меньшикова. — М.: Медицина, 1987. — 368 с.
4. Лакин Г.Ф. Биометрия. — М.: Высшая школа, 1973. — 343 с.
5. Методические указания по гигиенической оценке новых пестицидов №4263-87. — Киев: ВНИИГИНТОКС, 1987.
6. Методические указания по экспериментальному обоснованию ПДК микроорганизмов-продуцентов и содержащих их готовых форм препаратов в объектах производственной и окружающей среды. №5789/1-91 от 11.06.1991. — М.: МЗ СССР, 1991. — 22 с.
7. Омельянец Г.Г. Микробные пестициды: оценка безопасности и гигиенические аспекты применения // Защита растений, 1992. — № 2. — С. 22.
8. Сираева З.Ю., Захарова Н.Г., Вершинина
B.И. и др. Хитиназная активность природных штаммов Bacillus sp., перспективных для создания биопрепаратов // Матер. VII Междунар. конф. «Совр. перспективы в иссл. хитина и хитозана».
C.-П.-Репино (15-18 сент, 2003). — М.: ВНИРО, 2003. — С. 411-413.
9. Сираева З.Ю., Захарова Н.Г., Егоров С.Ю. и др. Пути повышения плодородия и урожайности сельскохозяйственных культур в Республике Татарстан // Труды Междунар. конф. «Роль почвы в формировании естественных и антропогенных ландшафтов». — Казань: Фэн, 2003. — С. 434-436.
10. Сираева З.Ю., Захарова Н.Г., Егоров С.Ю. Использование бактерий из рода Bacillus //Вестник РАСХН, 2004. — № 5. — С. 71-75.
11. Сираева З.Ю., Захарова Н.Г., Егоров С.Ю. Влияние биопрепаратов на основе бактерий рода Bacillus на биологическую активность почвы // Труды Междунар. биотехнол. центра МГУ: II Междунар. науч. конф. «Биотехнология — охране окружающей среды» (Ч. II). — М.: Спорт и культура, 2004. — С. 174-177.
12. Трахтенберг И.М., Сова Р.Е., Шевтель В.О. и др. Проблема нормы в токсикологии. — М.: Медицина, 1991. — 204 с.
Материал поступил в редакцию 29.09.05.
Z.Yu.Sirayeva, N.G.Zakharova, O.N.Ilyinskaya, A.V.Garusov
TOXICOLOGICAL ASSESSMENT OF BATSIZULIN BIOFUNGICIDE. A NEW SEED DISINFECTANT FOR GRAIN-CROPS
V.I.Ulyanov-Lenin State University of Kazan
It is shown that batsizulin biofungicide perspective for a large-scale application in agriculture did not exert any general toxic effect on the organism of experimental animals. According to the hygienic classification of pesticides in force in the Russian Federation, the hazard class 4 is assigned to this biopreparation.
