CC BY
29
40(9):3198-203.
5. Leelayuwat C., RomphrukA., LulitanondA., Trakulsomboon S., Thamlikitkul V. Genotype analysis of Burkholderia pseudomallei using randomly amplified polymorphic DNA (RAPD): indicative of genetic differences amongst environmental and clinical isolates. Acta Trop. 2000; 77(2):229-37.
6. Oyston P., Ulrich R., Jeddelon J. Пат. No. 60/396 W02004006857. Glanders/Meliodosis Vaccines. США.
7. Reckseidler S.L., DeShazer D., Sokol P.A., Woods D.E. Detection of Bacterial Virulence Genes by Subtractive Hybridization: Identification of Capsular Polysaccharide of Burkholderia pseudomallei as a Major Virulence Determinant. Infect. Immun. 2001; 69(1):34-4.
8. Thibault F.M., Valade E., Vidal D.R. Identification and discrimination of Burkholderia pseudomallei, B. mallei, and B. thailan-densis by real-time PCR targeting type III secretion system genes. J. Clin. Microbiol. 2004 Dec;42(12):5871--4.
9. Tyler S.D., Strathdee C.A., Rozee K.R., Johnson W.M. Oligonucleotide primers designed to differentiate pathogenic
seudomonads on the basis of the sequencing of genes coding for 6S-23S rRNA internal transcribed spacers. Clin. Diagn. Lab. Immunol. 1995; 2(4):448-53.
D.A.Chuhlantsev, I.V.Marakulin,
I.V.Darmov
Application of PCR for Identification and Interspecific Differentiation of Glanders and Melioidosis Etiological Agents
The 48th Central Scientific Research Institute of the RF Ministry of Defens,
Kirov
Assessed were possibilities of identification and differentiation of glanders and melioidosis etiological agents by means of PCR method using different nucleotide sequences of the pathogenic Burkholderia.
Primers perspective for inclusion in the test-system assigned for detection of glangers and melioidosis etiological agents DNA in environmental samples and biological materials were selected.
Key words: glanders, melioidosis, detection, differentiation, PCR.
Поступила 26.02.08.
КРАТКИЕ СООБЩЕНИЯ
УДК 616.981.452
Л.В.Самойлова
СРАВНИТЕЛЬНОЕ ИЗУЧЕНИЕ РАЗВИТИЯ КЛИНИЧЕСКИХ ФОРМ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЙ ЧУМЫ ПРИ АЭРОГЕННОМ И ПОДКОЖНОМ ЗАРАЖЕНИИ ВИРУЛЕНТНЫМИ ШТАММАМИ У. РЕЭГ/Б И ИХ ИЗОГЕННЫМИ ВАРИАНТАМИ С РАЗЛИЧНЫМ ПЛАЗМИДНЫМ ПРОФИЛЕМ
ФГУЗ «Российский научно-исследовательский противочумный институт «Микроб», Саратов
Представлены обобщенные результаты сравнительных исследований по развитию экспериментальной чумы у лабораторных животных после аэрогенного и подкожного заражения вирулентными штаммами У. ре^'Ш' (рРга+, рСа^, рРБ1+, ряш+) и их изогенными вариантами с утратой рБга и/или рРБ! В зависимости от пути передачи инфекции и дозы возбудителя один и тот же штамм и его изогенные варианты вызывает как легочную, так и бубонно-септическую форму чумы у лабораторных животных. Показано, что у лабораторных животных, зараженных аэрогенно и подкожно изогенными вариантами У. раИ&\ лишенными плазмид рРБ! или рРБЪ/рРга, выращенными при 28 °С на агаре Хоттингера, развивается затяжной инфекционный процесс.
Ключевые слова: чумной микроб, штамм, изогенный вариант, аэрогенное заражение, легочная чума.
В связи с успехами в области молекулярной биологии, расшифровкой генома возбудителя чумы, характеристикой вирулентности в зависимости от генотипа возбудителя стал возникать вопрос, особенно в последние два десятилетия, о роли генотипа возбудителя чумы в развитии той или иной клинической формы болезни. Однако к настоящему времени влияние детерминант вирулентности У. рв8й8 на развитие легочной формы чумы не установлено.
В связи с этим проведено обобщение результатов исследований по определению роли генотипа чумного микроба в развитии легочной формы чумы. Для этого были получены изогенные варианты вирулентных штаммов возбудителя с различными наборами двух собственных плазмид чумного микроба (рБга и рР81) при сохранении всеми вариантами плазмиды pCad.
Штаммы. Использовали три вирулентных штамма У. pestis 231, 358, 629М и изогенные варианты штаммов 358 и 629М, утратившие собственные
плазмиды рБга и/или рР8І. Изогенные варианты получали путем направленного конструирования в отделе генетики РосНИПЧИ «Микроб». Штаммы выращивали при 28 °С на агаре Хоттингера, рН 7,2±0,2.
Аэрогенно заражали морских свинок весом 300-350 г и беспородных белых мышей весом от 20 до 25 г в аэродинамической камере и рассчитывали аспирационную дозу по методике Л.В. Самойловой и Н.И.Николаева [1, 3]. Подкожное заражение проводили общепринятым методом. После заражения вели наблюдение в течение 14 дней и подсчитывали ьб50 и СТ50 (50 % летальная доза для аэрогенного заражения) штаммов по формуле Кербера. Бактериологическое, морфологическое и гистологическое исследования проводили общепринятыми методами. Все исследования проводили в соответствии с Инструкцией по режиму работы с аэрозолями возбудителей особо опасных инфекций (1976) и СП 1.3.12.85-03 «Безопасность работы с микроорга-
низмами 1-11 групп патогенности (опасности)».
Многочисленными опытами, проведенными нами, установлено, что для аэрогенного заражения морских свинок и белых мышей требуется доза, намного превышающая дозу подкожного заражения. ьб50 для подкожного заражения вирулентными штаммами чумного микроба как морских свинок, так и белых мышей находилась в пределах 5-25 КОЕ.
Для аэрогенного заражения вирулентными штаммами СТ50 для морских свинок составляет 500 КОЕ, а для белых мышей - 2000-2230 (1580-3140) КОЕ. Различия в величине показателей можно объяснить более извилистыми верхними дыхательными путями у белых мышей, чем у морских свинок и некоторыми особенностями защитных механизмов верхнего дыхательного тракта этих животных [3].
В экспериментах по заражению морских свинок изогенными вариантами У. ре8^8 358 (контроль - полноценный штамм) показано, что все изогенные варианты У. ре8^8 вызывали при аэрогенном заражении летальный инфекционный процесс, характеризующийся как первичная легочная чума морских свинок. Значительных, статистически достоверных различий по величине СТ50 и срокам жизни морских свинок, у штаммов чумного микроба, лишенных рБга и рР81;, не было, наблюдалось лишь некоторое увеличение СТ50. Проведенное подкожное заражение этими же штаммами позволяет отметить статистически достоверную тенденцию к увеличению сроков жизни у морских свинок, зараженных вариантами штаммов, у которых отсутствуют в геноме две плазмиды рБга и рР81
Штаммы чумного микроба, полноценные по плазмидному профилю (У. pestis 231, 358, 629М), а также лишенные рБга (У. pestis 358/12), были вирулентными для белых мышей при аэрогенном и подкожном заражениях. У всех павших от чумы белых мышей бактериологически и морфологически наблюдалась первичная легочная чума.
Штамм У. pestis 629М (рР8Г) вызывал затяжной инфекционный процесс. Для этого изогенного варианта СТ50 составляла >4-104 КОЕ, т.е. на порядок выше цифр СТ50 исходного штамма. У другого изогенного варианта У. pestis 358/12 (рБга , рР8Г) отмечено еще более медленное развитие инфекции и уменьшение обсемененности органов и тканей мышей бактериями чумы. Эти опыты подтвердили результаты, полученные в экспериментах на морских свинках, где также были отмечены затяжные формы и медленное течение инфекции при заражении штаммами, лишенными плазмид рБга, рР81 или рР81
Проведенное морфологическое и бактериологическое исследование органов и тканей аэрогенно зараженных белых мышей показало, что первичная аэрогенная пневмония («первичный аффект») при заражении исходными (полноценными) штаммами и штаммами, лишенными плазмид, характеризовалась обширными, множественными, быстро прогрессирующими воспалительными очагами с некрозами,
^Морфологические исследования проведены Р.А.Белобородовым.
накоплением микробов, гибелью фагоцитов и отсутствием признаков пролиферации.
Для всех «дефектных» штаммов характерны более мелкие и медленно развивающиеся, не склонные к слиянию пневмонические очаги. В большинстве случаев эти штаммы вызывали изменения, которые включали гранулемы и инкапсулированные абсцессы, т.е. имели признаки перехода к подострому процессу и локализованной форме чумы.*
Таким образом показано, что все изогенные варианты от Y. pestis 358 и 629М вызывают у морских свинок и белых мышей при аэрогенном заражении первичную легочную чуму. Однако изогенные варианты штаммов, лишенные pFra, pPst или pPst, вызывали более затяжной инфекционный процесс (уд -линение жизни). Кроме того, величины СТ50 и LD50 превышали таковые для полноценного штамма.
Таким образом, проведенные исследования в данных условиях опытов показали, что для развития легочной чумы в эксперименте играет роль только вирулентность штамма, путь передачи и восприимчивость к инфекции, что подтверждает мнение Д.И.Заболотского и Wu Lien The, высказанное во время эпидемии чумы в начале XX века [2, 4]. Варианты изогенных штаммов Y. pestis вызывают легочную чуму при аэрогенном заражении и бубонно-септическую при подкожном заражении. Отмечена более затяжная форма чумной инфекции у лабораторных животных при аэрогенном и подкожном заражении их штаммами Y. pestis, лишенными плазмид pPst pFra или только pPst, выращенных при 28 °С на агаре Хоттингера.
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1. Анисимов П.И., Наумов А.В., Белобородов Р.А. и др. Общие сведения о чуме. Рук-во по профилактике чумы. Наумов А.В., Самойлова Л.В., редакторы. Саратов; 1992. 276 с.
2. Заболотный Д. К. Легочная чума в Манчжурии в 1910— 1911 гг. Отчет русской научной экспедиции. Пг.; 1915. T. 1, 2.
3. Храмов В.Н. Некоторые особенности клинико-лабораторного обследования на чуму [автореф. ... канд. мед. наук]. Саратов, 1994.
4. Wu Lien The, Chun, Pollitzer, Wu. Plague. A. Manuel for Medical and Public Health Workers, 1936.
L.V. Samoilova
A Comparative Study of the Development of Clinical Forms of Experimental Plague after Aerogenic or Subcutaneous Challenge with Virulent Y. pestis Strains and their Isogenic Variants Containing Different Plasmid Combinations
Russian Anti-Plague Research Institute “Microbe", Saratov
Reviewed in the work are the results of comparative studies of experimental plague infection development in test animals after their aerogenic or subcutaneous challenge with virulent Y. pestis strains (pFra+, pCad+, pPst+. pgm+) and their isogenic variants, lacking pFra and/or pPst. Any virulent strain and its isogenic variants were shown to produce both pulmonary and bubonic-septicemic forms of plague depending on the infection transmission route and the dose of the pathogen. The test animals infected via aerogenic and subcutaneous routes with isogenic Y. pestis deprived of their pPst or pPst/pFra plasmids and grown in Hottinger agar at 28 C developed a lingering infection.
Key words: the plague pathogen, strain, isogenic variant, aerogenic infection, pulmonary plague.
nociynHHa 13.06.08.
