CC BY
43
УДК 619:636.2:616 Л.В. Медведева,
A.В. Макаров,
B.Н. Кречетова
СОСТОЯНИЕ РАНЕВОЙ МИКРОФЛОРЫ ПОСЛЕ ПРИМЕНЕНИЯ БИОКЛЕЯ «СУЛЬФАКРИЛАТ» ДЛЯ ОБРАБОТКИ РАН ДИСТАЛЬНОГО ОТДЕЛА КОНЕЧНОСТЕЙ У КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА
Ключевые слова: раны дистального отдела конечностей, крупный рогатый скот, хирургический шов, клеевая композиция «Сульфакрилат», бактериологический контроль.
Введение
По данным различных авторов частота поражения пальцев у коров составляет от 10 до 90% от общего числа хирургических заболеваний [1, 2]. В частности встречаются гнойно-некротические поражения пальцев, специфический очаговый пододерматит, раны различного генеза и т.д. Причиной таких патологий, как правило, является нарушение условий содержания, эксплуатации и кормления животных. Имеющиеся на сегодняшний день схемы лечебно-профилактических мероприятий не всегда эффективны, что в результате приводит к выбраковке высокопродуктивных и ценных племенных животных. Сложности в лечении ран дистального отдела конечностей связаны в основном с тем, что в повреждённые ткани сразу после травмы проникает гнойная, анаэробная и гнилостная микрофлора. При этом защита раны от механического и микробного загрязнения вызывает затруднения из-за особенностей содержания травмированных животных и анатомического строения пальцев (многократные обработки, несовершенство повязок, необоснованное применение антибиотиков и т.д.). Следовательно, усовершенствование методов лечения заболеваний дистального отдела конечностей у крупного рогатого скота представляет определённый интерес для ветеринарных врачей, обслуживающих агропромышленный комплекс.
Материалы и методы исследований
Экспериментальные операции проводили на кафедре хирургии и акушерства институ-
та ветеринарной медицины ФГБОУ ВПО «Алтайский государственный аграрный университет» и кафедре микробиологии ФГБОУ ВПО «Алтайский государственный медицинский университет». Объектами исследования служили быки чёрно-пестрой голштинизированной породы (п = 12) живой массой 180-200 кг, подобранные по типу аналогов. С целью приближения условий эксперимента к действительности после нанесения ран в области дистального отдела конечностей быков на сутки помещали в загон, где они находились ранее.
На следующий день травмированные конечности замывали, проводили хирургическую обработку, останавливали кровотечение и осуществляли лечение ран одним из исследуемых способов (рис. 1).
В первой опытной группе^ = 6) кожную рану быкам наносили на ткани конечностей, не несущие значительной механической нагрузки (область венчика, дорсальная поверхности пальцев и т.д.). В качестве лечения применяли простое склеивание краёв и стенок раны клеевой композицией «Сульфакрилат» без последующих обработок (рис. 2).
Во второй опытной группе (п = 3) раны быкам наносили на ткани межпальцевой щели с повреждением подлежащих коже структур. При лечении использовали наложение узлового шва шёлком с последующей герметизацией раневого канала и мест вкола и выкола иглы клеевой композицией «Сульфакрилат» (рис. 3), также без последующих обработок.
В третьей опытной группе (п = 3) раны быкам наносили также в области межпаль-цевой щели. В последующем края раны не соединяли, а биоклей наносили по всей поверхности раны с повторной обработкой через 5 дней (рис. 4).
Рис. 1. Внешний вид раны после замывания конечностей водой и хирургической обработки
Рис. 2. Края и стенки раны надёжно удерживаются в состоянии оппозиции с помощью нанесённой клеевой композиции «Сульфакрилат»
В результате нанесения и последующей полимеризации клея образовывалась тонкая, плотная, эластичная плёнка, обеспечивающая защиту раны от внешней среды и достаточную механическую прочность клеевого шва (1-я опытная группа), при условии отсутствия значительной механической нагрузки на склеиваемые ткани (кожу).
При проведении эксперимента учитывали, что клеевая композиция «Сульфакрилат» обладает бактерицидным действием в отношении возбудителей хирургических инфекций: кишечной палочки, золотистого
стафилококка, протея, палочки синезеленого гноя.
Рис. 3. Шовно-клеевая комбинация при лечении раны дистального отдела конечности у бычка
Рис. 4. Лечение раны конечности у быка по открытому типу с применением биоклея «Сульфакрилат»
На протяжении всего послеоперационного периода (21 день) быки находились в том же загоне, что и в начале эксперимента.
Биопсию тканей и бактериологический контроль выполняли в день нанесения раны, на следующий день перед хирургической обработкой, а также на 7-й, 14-й и 21-й дни послеоперационного периода. Микробиологические исследования проводили на кафедре микробиологии ФГБОУ ВПО «Алтайский государственный медицинский университет». Взятый материал в пробирках со средой Эймса доставляли в лабораторию кафедры микробиологии (рис. 5). Далее производили посев исследуемого материала на 3%-ный кровяной агар и параллельно на сахарный бульон.
Рис. 5. Взятие бактериологических проб с использованием транспортной системы Эймса
Рис. 6. Внешний вид кожной раны (без значимой механической нагрузки) у быка на 2-й и 14-й дни после применения склеивания кожной раны клеевой композицией «Сульфакрилат»
При выделении стафилококка определяли гемолитическую, лецитиназную, коагулаз-ную активность. Гемолитическую активность определяли по способности стафилококков лизировать эритроциты при росте на кровяном агаре. Лецитиназную активность определяли по способности стафилококков образовывать перламутровый венчик вокруг колонии при росте на желточно-солевом агаре. Коагулазную активность определяли по способности стафилококков образовывать сгусток при посеве на кроличью плазму. Стафилококки относили к виду Staphy-lococcusaureus при наличии у него коагулаз-ной активности. При отсутствии таковой, но при наличии гемолитической и лецитиназной активности стафилококк относили к виду Staphylococcusepidermidis. При отсутствии у стафилококка перечисленных культуральных признаков его относили к виду Staphylococ-cussaprophyticus.
Энтерококки идентифицировали по культуральным, морфологическим и тинктори-альным свойствам. Граммотрицательные микроорганизмы идентифицировали с учетом биохимических свойств на средах Хью-Лейфсона, Клиглера, цитрата Симмопса, сред пестрого ряда. Сапрофитную воздушную флору определяли по культуральным и морфологическим свойствам.
Результаты исследования
В период нанесения ран и в последующие дни проводили клинические, гематологические, гистологические, бактериологические исследования.
Согласно результатам бактериологического контроля у бычков первой опытной группы перед склеиванием краёв и стенок раны были выделены Е .coli — более 104 КОЕ (колониеобразующих единиц, т.е. микробных клеток на 1 г исследуемого материала), споровая палочка — более 104КОЕ, Candida
— более 104 КОЕ, Клебсиелла — более 104 КОЕ, Proteus— более 104 КОЕ.
На 7-й день — Candida — 104 КОЕ, Е .coli —
103 КОЕ.
На 14-й день в зоне раневого рубца было обнаружено наличие Candida — 102 КОЕ, Е-coli — 102 КОЕ.
На 21-й день отмечалось наличие Candida
— 102 КОЕ, Staph. epidermidis — более 101 КОЕ, Е-coli — М'КОЕ.
У бычков второй опытной группы с применением шовно-клеевого соединения и наличием механической нагрузки на ткани раны получены следующие данные.
В день операции из раны были выделены Enterococcus — более 104 КОЕ, Candida — более 104 КОЕ, Staph. epiderm. — более
104 КОЕ.
На 2-й день после операции в зоне шовноклеевого соединения тканей дистального отдела конечностей было обнаружено наличие Staphilococcusepidermidis — более 104 КОЕ, Е.тоН — более 104 КОЕ, Strept. B-гем. — более 104 КОЕ, Proteus — более 104 КОЕ.
На 7-й день в зоне шва обсеменение вышеуказанной микрофлорой выявляли до 104 КОЕ.
На 14-й день постоперационного периода в зоне раневого рубца отмечалось наличие Staph. epidermidis — 104 КОЕ, сапрофитной воздушной флоры (споровая палочка
101 КОЕ), Е.гоН — 103 КОЕ, Proteus —
103 КОЕ, Staph.viridansболее — 104 КОЕ.
На 21-й день было выявлено наличие стафилококка эпидермального — 104 КОЕ, Proteus — 101 КОЕ.
У бычков третьей опытной группы, где раны лечили по открытому типу, перед нанесением полимерной клеевой плёнки обнаруживали наличие Staphilococcusepidermi-dis — более 104 КОЕ, Е .coli — более 104 КОЕ, споровую палочку — более 104 КОЕ,
Proteus — более 104 КОЕ.
На 7-й день в зоне раны обсеменение вышеуказанной микрофлорой было следующим — Е.coli — 104 КОЕ, Proteus —
103 КОЕ, споровая палочка — 101 КОЕ.
На 14-й день постоперационного периода в зоне гранулирующей раны отмечалось
наличие Е.^Н — 104 КОЕ, Proteus — 103 КОЕ, Staph. epidermidis — 103 КОЕ.
На 21-й день было выявлено наличие Staph. epiderm. — 101 К ОЕ, Е-coli — 101 КОЕ, споровая палочка — 102 КОЕ.
Заключение
По результатам бактериологического контроля количество микробных тел в ранах у быков 1-й и 3-й опытных групп прогрессивно снижалось к 21-му дню послеоперационного периода. Мы связываем это с применением «бесшовного» соединения и нанесения на поверхность раны защитной полимерной плёнки из биоклея «Сульфак-рилат», обладающего бактерицидными свойствами в отношении возбудителей хирургической инфекции с повторной обработкой на 5-й день.
У бычков второй опытной группы ассоциативная раневая микрофлора была выявлена в большей степени, что закономерно при нахождении в тканях шёлковых нитей, которые легко инфицируются. Тем не менее, на 21-й день рана была контаминирова-на преимущественно кожной микрофлорой в этиологически незначимой концентрации. Следовательно, применение бактерицидной полимерной плёнки «Сульфакрилат», которая заполняет и защищает раневой канал и каналы нитей от внешней среды, также купирует развитие раневой инфекции.
По нашим представлениям использование клеевой композиции «Сульфакрилат» для лечения ран дистального отдела конечностей у крупного рогатого скота позволит сократить количество обработок ран, материальные затраты на лекарственные средства и оплату труда обслуживающего персонала.
Тем не менее необходимо отметить, что несмотря на положительные результаты лечения ран дистального отдела конечностей у быков указанными способами возникает ряд вопросов (рис. 6). В настоящее время мы продолжаем исследовать возможности применения клеевой композиции «Сульфак-рилат» в данной области.
Библиографический список
1. Лепский А.А. Лечение гнойно-некротических поражений пальцев у коров в ТНВ «Рассвет» Бугурусланского района // Ветеринарное дело. Научно-производственный журнал. — 2010. — № 1 (1). — С. 14-15.
2. Марченко В.Т., Марченко А.В., Южи-ков К.Ю. и др. Использование клеевой композиции «Сульфакрилат» в экспериментальной хирургии // Тезисы докладов научной сессии посвященной 65-летию НГМА. — Новосибирск, 2000. — 480 с.
3. Мищенко В.А., Мищенко А.В. Проблема заболеваний дистальных участков конечностей у высокопродуктивных коров // Ветеринария Кубани. — 2008. — № 4. — С. 4-7.
+ + +
УДК 619:615.37:616.34-008.314.4:636.082.35 А.А. Эленшлегер,
А.А. Хэ
ЛЕЧЕБНАЯ ЭФФЕКТИВНОСТЬ ПРОБИОТИКА «ВЕЛЕС 6.59»
ПРИ ДИСПЕПСИИ НОВОРОЖДЕННЫХ ТЕЛЯТ
Ключевые слова: диспепсия (диарея) новорожденных телят, пробиотик «Велес 6.59», биохимические показатели крови, общий белок, общий кальций, неорганический фосфор, резервная щелочность, витамин А, альбумины, глобулины, глюкоза, лечебная эффективность.
Диспепсия новорожденных телят на протяжении многих лет регистрируется во всех животноводческих хозяйствах. Известно, что 80-90% новорожденных телят переболевает диспепсией в первые 10 дней своей жизни. На сегодняшний день схема лечения диспепсии телят разработана преимущественно с применением антибиотиков, которые вме-
сте с патогенной микрофлорой уничтожают естественную микрофлору кишечника. У животных после курса антибиотикотерапии возникает дисбактериоз, животные отстают в росте, у них снижается иммунитет. В последние годы растет интерес к альтернативным препаратам, применяемым для лечения диспепсии. К этим препаратам относятся пробиотики, которые естественным путем, не вредя организму животного, оказывают выраженное терапевтическое действие при лечении диспепсии.
Диспепсия обычно возникает у молодняка со слабой естественной резистентностью, страдающего морфофункциональной незрелостью (гипотрофия), гипогаммагло-
