CC BY
64
ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
УДК: 616.314.163-022.7 DOI 10.24412/2220-7880-2021-2-95-98
СОСТАВ БИОПЛЕНКИ КОРНЕВОГО КАНАЛА ПРИ ХРОНИЧЕСКИХ ФОРМАХ ПЕРИОДОНТИТОВ (ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ)
Расков А.А., Громова С.Н., Пышкина О.А., Кайсина Т.Н., Колеватых Е.П., Мальцева О.А., Кренева В.А.
ФГБОУ ВО «Кировский государственный медицинский университет» Минздрава России, Киров, Россия (610027, г. Киров, ул. К. Маркса, 112) , e-mail: raskov_96@mail.ru
Апикальный периодонтит - воспалительный процесс вокруг верхушки корня зуба, который является следствием микробного инфицирования пульпы. Состав микрофлоры полости рта формируется под воздействием окружающей среды, питания и взаимодействия с другими видами микроорганизмов. В корневом канале микробы образуют биопленку - сообщество микроорганизмов во внеклеточном ма-триксе. В инфицированном канале вегетируют грамположительные и грамотрицательные бактерии, среди которых преобладают облигатные формы анаэробов.
Ключевые слова: корневой канал, биопленка, хронический периодонтит, микроорганизмы, бактерии.
COMPOSITION OF ROOT CANAL BIOFILM IN CHRONIC FORMS OF PERIODONTITIS (LITERATURE REVIEW)
Raskov A.A., Gromova S.N., Pyshkina O.A., Kaysina T.N., Kolevatykh E.P., Mal'tseva O.A., Kreneva B.A. Kirov State Medical University, Kirov, Russia (610027, Kirov, K. Marx St., 112), e-mail: raskov_96@mail.ru
Apical periodontitis, an inflammatory process around the apex of a tooth root, is primarily a sequel to microbial infection of the pulp space. The microbial flora composed of a restricted group of the total oral flora is induced by such factors as anaerobiosis, nutrition and different species inhabiting the root canal. Thus a biofilm in the root canal is formed as a colony of germs within an extracellular matrix. The untreated infected canal generally contains a polymicrobial mix with approximately equal proportions of Gram-positive and Gramnegative species, dominated by obligate anaerobes.
Keywords: root canal, biofilm, chronic periodontitis, microorganisms, bacteria.
В структуре стоматологической заболеваемо- корневых каналов чаще применяют микроскопиче-
сти осложненные формы кариеса зубов составляют ские, культуральные и молекулярно-биологические
32-34%. В 86,4% случаев они сопровождаются вос- методы. Культивирование бактерий на питательных
палительно-деструктивными процессами в пери- средах ограничено, так как необходимо соблюдать
апикальной области и как следствие - прекращением условия выделения и дифференциации их по морфо-
развития и формирования корня постоянного зуба логическим, биохимическим, антигенным свойствам.
у детей и подростков. Периодонтит, как единица, яв- Некоторые микроорганизмы являются некультивиру-
ляется одним из основных заболеваний обращения емыми агентами. Также бактериологические, вирусо-
пациентов за стоматологической помощью - 30% логические и микологические варианты индикации
случаев [1]. микробов трудоемкие и дорогостоящие. В последнее
В полости рта насчитывается более 800 различ- десятилетие молекулярно-генетическая диагности-
ных видов микроорганизмов [2, 3]. Ротовую полость ка позволила идентифицировать микроорганизмы
как экологическую нишу можно разделить на не- в корневых каналах до видовой и штаммовой при-
сколько более мелких биотопов: слизистая оболочка, надлежности. Высокая чувствительность и специ-
протоки слюнных желез, ротовая жидкость, десневая фичность полимеразной цепной реакции (ПЦР) дает
жидкость и зона десневого желобка, зубной налет. возможность установить уровень микробной конта-
В норме пульпа и корневой канал не содержат микро- минации и оценить контроль эффективности эради-
бов. Но при повреждении структур в результате ка- кации патогенов корневого канала. В клинической
риеса, трещин или травм бактерии, грибок и вирусы практике существенную роль играет комплексное
проникают через дентинные канальцы, которые осо- микробиологическое обследование пациентов. Толь-
бенно широкие в молодых зубах с несформирован- ко комбинированное исследование биологических
ными верхушками корней. свойств микробов может выявить этиологию заболе-
Современные методы изучения биопленки ваний эндодонта. в стоматологии зависят от вида клинического матери- Хронический деструктивный периодонтит
ала, полученного из различных биотопов. Биопленка представляет собой иммунологический ответ в виде
слизистой оболочки структурирована, поэтому ко- защитной реакции организма на встречу между
личественный и качественный состав микрофлоры микрофлорой корневого канала вследствие инфици-
варьирует в зависимости от характеристики оральных рования корневой пульпы, периодонтальной связки
экологических ниш. При исследовании микробиома и защитными силами организма, что в свою очередь
Вятский медицинский вестник, № 2(70), 2021
приводит к развитию местного очага воспаления и резорбции периапикальных тканей. Являясь очагом интоксикации и десенсибилизации организма, он может служить причиной одонтогенных инфекций че-люстно-лицевой области и также способствовать неблагоприятному течению заболеваний внутренних органов и их систем. В результате микробиологических исследований выделен 21 вид микроорганизмов с различным типом метаболизма [4].
Все микроорганизмы полости рта имеют одинаковые возможности проникновения в пространство корневого канала, однако только определенные группы были выявлены в инфицированных корневых каналах [5, 6]. Причина непропорционального соотношения между потенциальным и фактическим количеством различных видов бактерий состоит в том, что в корневом канале создается уникальная среда, в которой происходит биологический отбор. Анаэробные условия и наличие питательных субстратов являются основными факторами, определяющими состав микробной флоры.
В начальной фазе инфицирования корневого канала количество видов микроорганизмов обычно невелико. Если инфицирование происходит в результате развития кариеса, бактерии через кариозную полость достигают пульпы. В случаях отсутствия кариозной полости в зубе микроорганизмы проникают через дентинные канальцы, как в случае травм без вскрытия пульпы [7, 8]. В инфицированном корневом канале могут персистировать более двенадцати видов бактерий и грибов, количество бактериальных клеток (колониеобразующие единицы, КОЕ/г) варьирует от <102 до >108 на 1 г образца.
Существует зависимость между размером периапикального поражения и количеством видов бактерий в корневом канале. Зубы с длительными инфекциями и обширными поражениями обычно содержат больше видов бактерий и имеют более высокую плотность бактерий в корневых каналах. Исследование динамики инфицирования корневых каналов показало, что относительные доли анаэробных микроорганизмов и бактериальных клеток увеличиваются со временем. При длительном поражении каналов более трех месяцев преобладают факультативно анаэробные микроорганизмы [9]. Кислород и кислородные продукты играют важную роль как экологические детерминанты в развитии определенных пропорций микрофлоры корневых каналов [10, 11]. Потребление кислорода и производство углекислого газа совместно с развитием низкого потенциала восстановительного окисления благоприятствуют росту и развитию анаэробных бактерий.
В первый период патологического процесса может не быть четких ассоциаций между бактериями, но возникают сильные положительные ассоциации среди ограниченной группы оральной микрофлоры из-за типа питательных веществ в окружающей среде [12-15]. Например, частота распространения Fusobacterium nucleatum (F. nucleatum) связана с вегетацией Peptostreptococcus (Micromonas) micros (P. micros), Porphyromonas endodontalis (P. endodontalis) и Campylobacter rectus (C. rectus) [12]. При проведении статистического анализа установлены сильные положительные ассоциации между Prevotella intermedia (P. intermedia) и P. micros [12, 15] и Peptostreptococcus anaerobius (P. anaerobius) [12]. Выявлена также положительная связь между P. intermedia и P. micros, P. anaerobius и представителями рода
Eubacterium [12]. В целом Eubacterium spp., Prevotella spp. и Peptostreptococcus spp. составляют основу консорциума бактерий каналов зубов [12, 13, 15]. Эти бактерии обладают высокой биохимической активностью (ферментация пептидов и аминокислот), являются об-лигатными анаэробами [16], что указывает на основные источники питания (продукты распада тканей, экссудат) в корневых каналах.
Бактерии, находящиеся в инфицированных корневых каналах, персистируют во внеклеточной матрице в виде взаимосвязанных сообществ как бактериальная биопленка. Ультраструктуру биопленки бактерий в инфицированном корневом канале впервые расшифровал P.N. Nair (1987), который описал их как конгломерат микроорганизмов, погруженный в экстрацеллюлярный аморфный матрикс [17]. Клиническое значение модели роста биопленки заключается в том, что бактерии-ассоцианты относительно более защищены по сравнению с планктонными формами и, как известно, устойчивы к противоми-кробным препаратам [18, 19, 20]. Перспективными являются исследования по механизмам развития и функционирования биопленки, резистентности к антимикробным препаратам.
Таким образом, биопленка в системе корневых каналов зуба - высокоорганизованная структура, включающая в себя бактериальные клетки, покрытые высокоадгезивной внеклеточной полимерной матрицей, с помощью которой они прикрепляются к поверхностям стенок корневых каналов и дентинных трубочек [17, 21].
Предварительные исследования, проведенные нами, показали, что в инфицированных каналах преобладают грамположительные микроорганизмы, а факторный анализ показал четыре комбинации их (таблицы 1-4) [22].
Таблица 1
Факторные нагрузки для ( »актора 1
Фактор № 1 Нагрузка
Staphylococcus epidermidis 0,93
Fusobacterium spp. (F. nucleatum, F. varium, F. necrophorum) 0,87
Streptococcus pyogenes 0,82
Alistipes putredinis 0,75
Escherichia coli 0,74
Peptococcus sp. (P. niger) 0,64
Mitsuokella multacida 0,61
Candida sp. 0,47
Фактор № 1 обусловливает наибольший процент дисперсии (28%) и имеет сильную корреляционную связь с группой грамположительных и грамотрицательных бактерий: Staphylococcus epidermidis, Fusobacterium spp. (F. nucleatum, F. varium, F. necrophorum), Streptococcus pyogenes, Alistipes putredinis, Escherichia coli. Связь средней силы наблюдается с представителями Peptococcus sp. (P. niger), Mitsuokella multacida и Candida sp.
Таблица 2 Факторные нагрузки для фактора 2
Фактор № 2 Нагрузка
Klebsiella sp. 0,96
Bacteroides spp. (B. ovatus, B. vulgates, B. fragilis) 0,80
Capnocytophaga ochracea 0,97
Leptotrichia buccalis 0,62
Фактор № 2 имеет сильную корреляционную связь с грамотрицательной микрофлорой: Klebsiella sp., Bacteroides spp. (B. ovatus, B. vulgates, B. fragilis), Capnocytophaga ochracea и в меньшей степени (связь средней силы) связан с Leptotrichia buccalis.
Таблица 3
Факторные нагрузки для фактора 3
Фактор № 3 Нагрузка
Прочее (Actinomyces odontolyticus, Bifidobacterium dentium, Lactobacillus sp., Propionibacterium granulosum) 0,22
Фактор № 3 имеет отрицательные корреляционные связи с практически всеми микроорганизмами, представленными в исследовании, за исключением слабой положительной связи с Actinomyces odontolyticus, Bifidobacterium dentium, Lactobacillus sp., Propionibacterium granulosum. Таблица 4 Факторные нагрузки для фактора 4
Фактор № 4 Нагрузка
Peptostreptococcus sp. (P. anaerobius) 0,96
Acidaminococcus fermentans 0,95
Leptotrichia buccalis 0,76
Prevotella spp. (P. buccalis, P. intermedia, P. bivia, P. melaninogenica, P. oralis) 0,67
Mitsuokella multacida 0,51
Candida sp. 0,45
Peptococcus sp. (P. niger) 0,43
Фактор № 4 обусловливает наименьший процент дисперсии изучаемых данных (12,73%) и имеет сильную корреляционную связь с Peptostreptococcus spp. (P. anaerobius), Acidaminococcus fermentans и Prevotella spp. (P. buccalis, P. intermedia, P. bivia, P. melaninogenica, P. oralis). Связь средней силы наблюдается с Mitsuokella multacida, Candida sp., Peptococcus sp. (P. niger).
Заключение
Таким образом, в настоящее время нет единого мнения о структуре биопленки поверхности корневых каналов [23]. Исследование состава микробных консорциумов необходимо для обоснования применения конкретных методов обработки корневых каналов, выявления эффективности лечебных ирри-гантов, определения антибиотикочувствительности. Полученные результаты изучения эрадикации патогенных агентов будут использованы в алгоритме терапии стоматологических заболеваний эндодонта. Указанные мероприятия будут применены в профилактике распространения резистентных штаммов микроорганизмов.
Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии явного или потенциального конфликта интересов, связанного с публикацией статьи.
Финансирование. Исследование не имело спонсорской поддержки.
Обзор литературы
Литература/References
1. Березин К.А., Греков А.Х., Зарипова Э.М., Старцева Е.Ю. Статистические аспекты изучения распространенности хронического апикального периодонтита у взрослого населения // Современные проблемы науки и образования. 2015. № 2-1. [Berezin K.A., Grekov A.Kh., Zaripova E.M., Startseva E.Yu. Statistical aspects of studying the prevalence of chronic apical periodontitis in the adult population. Sovremennye problemy nauki i obrazovaniya. 2015; 2-1. (In Russ.)] Доступно по: http://science-education.ru/ru/article/ view?id=19306. Ссылка активна на 2.01.2021.
2. Moore W.E.C., Moore L.V.H. The bacteria of periodontal diseases. Perio 2000. 1994;5:66-77.
3. Paster B.J., Boches S.K., Galvin J.L., et al. Bacterial diversity in human subgingival plaque. J. Bacteriol. 2001;183:3770-3783.
4. Лукиных Л.М. Кокунова А.С., Тиуно-ва Н.В. Чувствительность к антимикробным препаратам микроорганизмов, ассоциированных с биопленками корневых каналов // Эндодонтия Today. 2013. № 1. С. 67-70. [Lukinykh L.M., Kokunova A.S., Tiunova N.V. Sensitivity to antimicrobial preparations of microorganisms associated with root canal biofilms today. Ehndodontiya Today. 2013;1:67-70. (In Russ.)]
5. Kantz W.E., Henry C.A. Isolation and classification of anaerobic bacteria from intact pulp chambers of non-vital teeth in man. Arch. Oral Biol. 1974;19:91-96.
6. Wittgow W.C., Jr., Sabiston C.B., Jr. Microorganisms from pulpal chambers of intact teeth with necrotic pulps. J. Endod. 1975;1:168-171.
7. Sundqvist G. Bacteriological studies of necrotic dental pulps. Umea University Odontological Dissertations No. 7. Umea: Umea University, Sweden, 1976.
8. Sundqvist G. Taxonomy, ecology, and pathogenicity of the root canal flora. Oral Surg Oral Med Oral Pathol. 1994; 78: 522-530.
9. Fabricius L., Dahlen G., Ohman A.E., Moller A.J.R. Predominant indigenous oral bacteria isolated from infected root canals after varied times of closure. Scand. J. Dent. Res. 1982; 90:134-144.
10. Loesche W.J. Importance of nutrition in gingival crevice microbial ecology. Periodontics 1968; 6:245-249.
11. Carlsson J., Frolander F., Sundqvist G. Oxygen tolerance of anaerobic bacteria isolated from necrotic dental pulps. Acta Odont Scand .1977; 35:139-145.
12. Sundqvist G. Associations between microbial species in dental root canal infections. Oral Microbiol Immunol. 1992; 7: 257-262.
13. Gomes B.P., Drucker D.B., Lilley J.D. Positive and negative associations between bacterial species in dental root canals. Microbios. 1994; 80:231-243.
14. Lana M.A., Ribeiro-Sobrinho A.P., Stehling R. et al. Microorganisms isolated from root canals presenting necrotic pulp and their drug susceptibility in vitro. Oral Microbiol. Immunol. 2001; 16:100-105.
15. Peters L.B., Wesselink P.R., van Winkelhoff A.J. Combinations of bacterial species in endodontic infections. Int. Endod. J. 2002; 35:698-702.
16. ter Steeg P.F., van der Hoeven J. S. Development of periodontal microflora on human serum. Microb. Ecol. Health. Dis. 1989; 2:1-10.
17. Nair PNR. Light and electron microscopic studies of root canal flora and periapical lesions. J. Endod. 1987; 13:29-39.
Вятский медицинский вестник, № 2(70), 2021
18. Costerton J.W., Stewart P.S. Biofilms and device-related infections. In: Nataro J.P., Blaser M.J., Cunningham-Rundles S., eds. Persistent bacterial infections. Washington, D.C.: ASM Press, 2000:423-439.
19. Costerton W., Veeh R., Shirtliff M., Pasmore M., Post C., Ehrlich G. The application of biofilm science to the study and control of chronic bacterial infections. J. Clin. Invest. 2003; 112:1466-1477.
20. Abdullah M., Ng Y.L., Gulabivala K., Moles D.R., Spratt D.A. Susceptibilities of two Enterococcus faecalis phenotypes to root canal medications. J. Endod. 2005; 31:30-36.
21. Nair P.N.R. Pathobiology of the periapex. In: Pathways of the pulp. 8th ed. Cohen S., Burns R.C., editors. 2002, St. Louis: C.V. Mosby.
22. Громова С.Н., Расков А.А., Колеватых Е.П., Петров С.Б., Сметанина О.А. Видовой состав микроорганизмов в каналах моляров при хронических формах периодонтитов / В сборнике: Актуальные вопросы стоматологии. Сборник IV Все-
российской научно-практической конференции с международным участием / Под редакцией Л.М. Же-лезнова. 2020. С. 53-56. [Gromova S.N., Raskov A.A., Kolevatykh E.P., Petrov S.B., Smetanina O.A. Vidovoi sostav mikroorganizmov v kanalakh molyarov pri khronicheskikh formakh periodontitov (Conference proceedings) In: Aktual'nye voprosy stomatologii. Sbornik IV Vserossiiskoi nauchno-prakticheskoi konferentsii s mezhdunarodnym uchastiem. Zheleznov L.M., editor. 2020. P. 53-56. (In Russ.)]
23. Румянцев В.А., Родионова Е.Г., Некрасов А.В., Черджиева Ф., Куприянова М.С. Биопленка в эндодонтии. Часть I. Свойства и методы изучения (обзор литературы) // Эндодонтия Today. 2018; 16(1): 17-21. [Rumyantsev V.A., Rodionova E.G., Nekrasov A.V., Cherdzhieva F., Kupriyanova M.S. Biofilm in endodontics. Part I. Properties and methods of study (literature review). Ehndodontiya Today. 2018; 16 (1):17-21. (In Russ.)]
УДК 616.66-007.26-089 DOI 10.24412/2220-7880-2021-2-98-103
ЗНАЧЕНИЕ УКРЫТИЯ НЕОУРЕТРЫ ПРИ ХИРУРГИЧЕСКОЙ КОРРЕКЦИИ ГИПОСПАДИИ (ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ)
'Задыкян Р.С., 2 3Каганцов И.М., 4 5Сизонов В.В., 'Задыкян С.С., 3 6Сварич В.Г.
ТБУЗ «Центр охраны материнства и детства города Сочи», Сочи, Россия (354000, г. Сочи, ул. Дагомысская, д. 46), e-mail: robs90@inbox.ru
2ФГБУ «Институт перинатологии и педиатрии "Национальный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова"», г. Санкт-Петербург, Россия (197341, Санкт-Петербург, ул. Аккуратова, д. 2), e-mail: ilkagan@rambler.ru
3ФГБОУ ВО «Сыктывкарский государственный университет им. Питирима Сорокина», Сыктывкар, Россия (167001, г. Сыктывкар, Октябрьский проспект, д. 55), e-mail: ilkagan@rambler.ru
4ГБУ Ростовской области «Областная детская клиническая больница», Ростов-на-Дону, Россия (344015, г. Ростов-на-Дону, ул. 339-й Стрелковой Дивизии, 14), e-mail: vsizonov@mail.ru
5ФГБОУ ВО «Ростовский государственный медицинский университет» Минздрава России, Ростов-на-Дону, Россия (344022, Ростов-на-Дону, пер. Нахичеванский, д. 29, Россия)
6ГУ «Республиканская детская клиническая больница», Сыктывкар, Россия (167000, Сыктывкар, ул. Пушкина, 116/6), e-mail: svarich61@mail.ru
Гипоспадия является одним из самых частых пороков развития полового члена у мальчиков. За время развития хирургии было предложено большое количество методик оперативного лечения данного порока, но, несмотря на все достижения современной медицины, частота осложнений после первичных хирургических вмешательств порой достигает высоких цифр. Наиболее частыми осложнениями после оперативного лечения гипоспадии являются свищи уретры, несостоятельность швов и расхождение уретры, инфицирование послеоперационной раны, сужение артифициального меатуса и в редких слу -чаях стеноз сформированной уретры. Частота осложнений при хирургической коррекции гипоспадии может достигать 60%. Она также зависит от возраста пациента и опыта хирурга. Одним из часто ис -пользуемых способов предотвращения послеоперационных осложнений при оперативном лечении ги -поспадии является укрытие сформированной неоуретры дополнительным слоем тканей, которые разделяют уретральные и кожные швы. Зачастую в выборе метода укрытия неоуретры хирург полагается на собственный опыт. С целью ознакомления в данном обзоре проанализированы и представлены данные отечественных и зарубежных клиник по использованию различных методов укрытия неоуретры при первичных и повторных уретропластиках с их сравнительной оценкой.
Ключевые слова: дети, гипоспадия, фибриновый клей, уретропластика, свищ уретры.
THE PURPOSE OF NEOURETHRA COVER IN SURGICAL CORRECTION OF HYPOSPADIAS (LITERATURE REVIEW)
'Zadykyan R.S., 2 3KagantsovI.M., 45Sizonov V.V., 'Zadykyan S.S., 3 6Svarich V.G.
