CC BY
51
УДК 636.52/58:591.089.843 DOI 10.24411/2078-1318-2020-13100
Доктор биол. наук, доцент Л.В. КОЗИКОВА (ВНИИГРЖ, филиал ВИЖа им. Л.К. Эрнста, [email protected]) Мл. науч. сотрудник Е.А. ПОЛТЕВА (ВНИИГРЖ, филиал ВИЖа им. Л.К. Эрнста, [email protected])
Канд. биол. наук Е.В. НИКИТКИНА (ВНИИГРЖ, филиал ВИЖа им. Л.К. Эрнста, [email protected])
СОХРАНЕНИЕ РАЗНООБРАЗИЯ ИСХОДНЫХ ПОРОД И ПОПУЛЯЦИЙ КУР
В сельском хозяйстве наиболее экономически значимой отраслью является птицеводство, что обусловлено получением продукции в короткие сроки за счет скороспелости. Птицы необходимы как поставщики мяса и яиц, а также они служат важным инструментом и модельным объектом для исследования генома и воспроизводства. Известно, что впервые геном птиц был изучен в 2004 г. у птицы из красных джунглей, так как она является предком домашней курицы [1]. Как правило, среди сотен различных пород различают две основные коммерческие группы: бройлеры (мясного типа) и несушки (яйцевого типа), которые отбирались на протяжении веков. За счет интенсивного генетического отбора птицы, соответственно, имеют и разные фенотипы. Для бройлеров характерен интенсивный рост с хорошо развитой мышечной системой, для кур-несушек важны репродуктивные качества с производством большого количества яиц.
В настоящее время актуальным становится создание новых селекционных форм высокопродуктивных птиц, что требует сохранения большого разнообразия исходных пород и популяций. В современном мире наблюдается снижение общего породного разнообразия сельскохозяйственных животных, включая птиц, что может негативно сказаться на создании новых пород и кроссов для получения высококачественных экологически чистых продуктов питания. Одним из возможных вариантов для решения этих проблем является сохранение репродуктивных клеток методом криоконсервации. У птиц для сохранения генофонда, как правило, применяют криоконсервацию семени, при этом создаются банки семени птиц во многих странах мира [2]. Обычно в коммерческих программах скрещивания для осеменения применяется свежее семя. При создании криобанков птиц и других видов животных широко используется искусственное осеменение. Заморозка семени у птиц разных пород и линий имеет значительные различия. Под руководством ФАО более 28 стран принимают участие в программах по криоконсервации семени. Генетический материал может сохраняться в виде спермы, ДНК или кусочков ткани, причем финансирование этих программ может иметь поддержку как от государства, так и от частных предпринимателей. В разных странах Европы и Америки научные институты и университеты сохраняют редкие виды и современной селекции птиц [3]. Так, в Соединенных Штатах Америки более чем у 55 линий кур от 451 петуха находится генетический материал в криобанках [4], в центре генетических ресурсов Нидерландов криоконсервировано семя от 21 аборегенной породы [5], а во французском цациональном банке хранится семя от 21 аборегенных пород петухов, пекинских уток и гусей [6]. Ограничениями применения замороженной спермы служит тот факт, что теряется генетическая информация, заложенная в митохондриях самок и W-хромоcоме.
В последнее время стали появляться оригинальные методы замораживания бластодермальных клеток кур, что вызвано возможностью отдельных стволовых клеток дать начало всем видам клеток, в том числе и половым. Актуально также использовать эмбриональные клетки редких и нужных для потребления видов сельскохозяйственных птиц с целью их сохранения в криобанках и создания химерных организмов, позволяющих оценить качество заморожено-оттаянных клеточных популяций.
Цель исследования состояла в анализе накопленного научного потенциала по проблемам сохранения разнообразных пород и популяций птиц методами криоконсервации
эмбриональных предшественников половых клеток и замораживания бластодермальных клеток двух пород кур.
Материалы, методы и объекты исследований. Во ВНИИГРЖ имеется база ЦКБ БК «Генетическая коллекция редких и исчезающих пород кур», содержащая 40 пород и популяций. В альбоме «Породы и популяции кур, разводимые в генофондном хозяйстве ГНУ ВНИИГРЖ Россельхозакадемии» [7], изданном в нашем институте, приводятся четыре типа пород и популяций: 1. Породы и популяции кур мясо-яичного типа. 2. Породы и популяции кур яичного типа. 3. Породы и популяции кур декоративного типа. 4. Породы и популяции кур, созданные во ФГУП генофонд. Следует отметить, что в каждой группе птиц даны сведения о происхождении, цели разведения, общем виде, продуктивных качествах, маркерных генах, экстерьерных признаках петухов и курочек, окраске оперения и недостатках породы. К первой группе относятся 18 пород и популяций: амрос, австралорп черный, голошейная, загорская лососевая, купчинская юбилейная, московская бойцовая, нью-гемпшир, орловская ситцевая, панциревская черная, первомайская, плимутрок полосатый, полтавская глинистая, род-айленд красный, суссекс светлый, узбекская бойцовая, ушанка, фавероль, юрловская голосистая. К породам яичного типа относятся следующие: итальянская куропатчатая, кампин, русская белая, чешская золотистая. К третьему типу пород и популяций кур декоративного типа относятся: бентамка ситцевая, брама светлая, брама палевая, гамбургская серебристо-пятнистая, голландская белохохлая, кохинхин черный, кохинхин голубой, кохинхин карликовый белый, кохинхин карликовый черный, кохинхин карликовый черно-пестрый, курчавая, русская хохлатая, султанка, шелковистая белая. Четвертую группу составляют популяции и породы, селекция которой проходила во ВНИИГРЖ. Пушкинская порода была создана в 1975-2007 гг. путем поглотительного скрещивания кур австралорп черно-пестрый с петухами леггорн и вводного скрещивания с московскими белыми и цветными петухами 4-х линейных гибридов кросса Бройлер-6. Австралорп черно-пестрый - популяция создана во второй половине XX в. при разведении в себе австралорпов черных, которым вводили кровь плимутроков полосатых. Аврора создана во ВНИИГРЖ путем отбора австралорпов черно-пестрых на высокий уровень функциональных резервов надпочечников в ответ на введение АКТГ (адренокортикотропный гомон), что привело к изменению окраски оперения. Царскосельская создана путем скрещивания полтавских глинистых кур с нью-гемпширами и с палево-полосатыми 4-линейными петухами кросса «Бройлер-6» с целью создания мясо-яичной популяции. Ленинградская ситцевая создана на основе сложного скрещивания нью-гепшир, полтавских глинистых и австралорпа черно-пестрого для сохранения декоративной стрессоустойчивой популяции с комплексом генов ситцевой окраски оперения. Павловская золотистая, павловская серебристая и павловская белая - старинная русская декоративная порода. Порода практически исчезла. В 80-х годах прошлого столетия во ВНИИГРЖ начата работа по восстановлению комплекса генов, присущих павловской породе.
У птиц для криоконсервации чаще всего используют бластодермальные плюрипотентные клетки или первично-половые клетки. Известно несколько методов получения эмбриональных клеток, которые применимы не только для криоконсервации, но и для создания химерных или трансгенных организмов [8]. В наших исследованиях объектом исследования были эмбрионы кур двух пород: русская белая и курчавая. Русская белая порода с белой окраской оперения отселекционирована на устойчивость к неоплазмическим заболеваниям и адаптирована к пониженным температурам [7]. Создана на основе скрещивания белых леггорнов с местными беспородными курицами и последующим разведением в себе. Достоинством этой породы следует считать то, что взрослых птиц и молодняк можно содержать в птичниках без подогрева. Яйценоскость за 68 недель жизни составляет 200-270 яиц. Пигментация скорлупы белая. Живая масса петухов - 2,4-3,0 кг, кур - 1,9-2,3 кг. Маркерный ген рецессивный, белой окраски (с-со1оиг). Курчавая порода относится к декоративному типу с оригинальным строением перьев, придающим птице кучерявый вид оперения, который скрывает голени [7]. Отличие фенотипа этой породы
заключается в том, что перья гривы, спины и остальные кроющие перья приподняты и загнуты в сторону головы. Согласно данным, представленным в альбоме [7], яйценоскость за 52-56 недель составляет 125-150 яиц. Пигментация скорлупы - от белого до желто-коричневого цвета. Птица имеет маркерный ген курчавости (F-Frizing). Окраска оперения черно-ястребиная. Живая масса петухов - 3,0-3,5 кг, кур - 2,0-2,5 кг.
Птицы находились в экспериментальном хозяйстве ВНИИГРЖ, были обеспечены стандартными рационами. Кур осеменяли еженедельно, чтобы обеспечить получение оплодотворенных яиц. Уход за птицами соответствовал стандартам по уходу за животными. Схема исследований показана на рисунке.
Рисунок. Схема исследований птиц
Бластодермальные клетки из бластодисков у свежеснесенных яиц (предварительно оплодотворенных) были выделены на стадии Х (по Хамильтону). Клетки отмывали от желтка, измельчали, ресуспензировали и для замораживания помещали в культуральную среду ДМЕМ (модифицированная среда Дюльбеко) (Sigma-Aldrich) с Hepes и добавлением 10% раствора фетальной сыворотки коров, раствора гентамицина и 10% ДМСО (диметилсульфоксид). Бластодермальные клетки помещали в пайетты объемом 0,25 мл и охлаждали до +4 градусов со скоростью 0,3 градуса в минуту. Замораживание осуществляли при -110 градусах, затем переносили в жидкий азот.
Результаты исследований. Криоконсервация является важным инструментом для сохранения пород животных и генетического разнообразия в них. В начале XX в. на микроорганизмах, беспозвоночных, коловратках были проведены первые работы по замораживанию организмов [9]. По мере развития криобиологии было показано, что после замораживания при оттаивании возникают аномалии, которые при недостаточном процессе репарации ДНК ведут к гибели клеток и организмов [10]. Именно поэтому важную роль играет разработка методов замораживания, таких как дефростации, режимы замораживания, состав криозащитных сред.
Ранее была доказана тотипотентность эмбриональных клеток, что указывает на их возможность быть предшественниками половых клеток [11]. У кур на стадии Х стволовые эмбриональные клетки сосредоточены в центральной части бластодермы. Прослежена лишь судьба гена VASA от начала дробления до формирования половых клеток [12]. Первичная дифференциация первично-половых клеток происходит в фазе миграции к месту локализации гонад на третьи сутки развития. Необходимо отметить, что первично-половые клетки генетических самцов могут трансформироваться в половые клетки самок, и наоборот, что было доказано экспериментально [13]. Это важно, так как отпадает необходимость определения пола при получении химер. Первично-половые клетки впервые были выделены в 2000 г. из гонад кур
в возрасте 5,5 суток [14]. Позднее авторы усовершенствовали этот метод. В 2004 г. Комитетом Европейского Регионального Центра (Steering Committee of the European Regional Focal Point (ERFP) по генетическим ресурсам сельскохозяйственных животных отмечено, что еще не созданы надежные методы по сохранению женских генетических ресурсов у куриц, поэтому необходимы дальнейшие исследования. Тем не менее во многих странах Европы и США созданы и продолжают функционировать криобанки сельскохозяйственных животных и птиц [15]. Как показывают эксперименты некоторых авторов, количество погибших бластодермальных клеток при заморозке очень велико, как при медленном замораживании, так и при мгновенном помещении клеток в жидкий азот. Процентное содержание некротических клеток после размораживания (84%) превышало таковое в контроле (8%) практически в десять раз. При ультраструктурном анализе было выяснено, что бластодермальные клетки содержат липидные гранулы, которые препятствуют замораживанию [16].
Впервые эксперименты с заморожено-оттаянными бластодермальными клетками проводили в 90-х годах XX в. Действовали по следующему протоколу. В среду DMEM с 20% содержанием эмбриональной телячьей сыворотки добавляли дополнительно 10% ДМСО. Клетки помещали в температуру -7°С, охлаждали до -35°С со скоростью 1°С в минуту, после чего погружали в жидкий азот. Оттаивали в воде при температуре 37°С в течение 3 минут. Затем центрифугировали, заменяли среду с ДМСО на среду с ДМЕМ и удаляли мертвые клетки. После чего клетки переносились в эмбрионы-реципиенты. Реципиенты предварительно были облучены для угнетения собственных клеток. Результаты показали, что использование клеток, подвергшихся процедуре криозаморозки, менее эффективно, чем использование свежих клеток, однако даже в таком случае до 11,6% полученных птиц передавали потомству признаки породы-донора - до 6,8% потомков. Это означает, что произошло успешное встраивание донорского материала в половую систему, доказывает возможность использования заморожено-оттаянных клеток для создания продуктивных химер кур [17].
В наших исследованиях получено 8 соломинок по 0,25 мл с бластодермальными клетками от куриц двух пород: русская белая и курчавая. Выживаемость и полноценность донорского материала будет проверена после создания химер птиц этих пород.
Эмбриогенез птиц значительно отличается от млекопитающих из-за наличия большого количества желтка, что требует особого подхода при создании химер. Химерные организмы реализуются только за счет внедрения генетически различающихся клеток, то есть клеток, трансплантированных от других особей. Следует отметить, что для создания химер птиц и трансгенных особей необходима трансплантация предшественников половых клеток в оплодотворенные яйцеклетки. Как правило, будут получены мозаичные организмы, и только после спаривания между собой птиц и создания потомства F1 и F2 возможно произвести полностью химерные организмы. Известны несколько типов эмбриональных клеток птиц, которые применяют для создания химер: бластодермальные, эмбрионально-стволовые и первично-половые. К сожалению, выход химер очень небольшой, что связано с большим количеством причин. Прежде всего, трансплантируется небольшое количество клеток. Клетки имеют сложный состав. Их необходимо очищать в градиенте плотности разных веществ. Надо искать разные экспериментальные подходы, чтобы уменьшить количество клеток реципиентных эмбрионов. Некоторые исследователи получают межвидовые химеры методом трансплантации зародышевой линии путем замены эмбриона хозяина на донорский эмбрион при сохранении некоторых тканей хозяина [18].
Интересные исследования были проведены специалистами Кембриджского университета, Эдинбургского университета и Ветеринарного лабораторного центра Министерства окружающей среды, пищевых продуктов сельского хозяйства Великобритании [19]. Ученые получили генетически модифицированных кур через стадию возникновения химерных организмов, почти не восприимчивых к вирусу птичьего гриппа H5N1 за счет того, что был создан участок РНК, способный связываться с полимеразой вируса птичьего гриппа и препятствовать размножению вирусного генома. Ген, кодирующий такую РНК, внедрили в
клетки зародышей птиц. Эти птицы продемонстрировали высокую устойчивость к заражению вирусом гриппа от соседей по клетке, а если и происходило заражение, то не передавали вирус дальше. Экономически целесообразно получение таких уникальных особей, так как уменьшается ущерб от заболеваний и риск заражения людей, контактирующих с больной птицей. Этим конкретные птицы предназначены пока только для исследовательских целей. Ученые планируют испытывать несколько подходов подавления вируса гриппа в клетках и свести к минимуму возможность инфицированного поголовья. Может быть, что через несколько лет в сельском хозяйстве появятся генетически модифицированные образцы, устойчивые к такой смертельной болезни, как птичий грипп. Для сохранения уникальных животных необходим метод криоконсервации как семени, так и эмбриональных предшественников половых клеток.
Выводы. Метод криоконсервации эмбриональных плюрипотентных клеток кур является уникальным методом сохранения редких и исчезающих видов птиц, позволяет дублировать ценные образцы мировых коллекций. У птиц проверить жизнеспособность замороженных эмбриональных клеток возможно только после трансплантации размороженных донорских клеток в зародышевую линию реципиентного эмбриона с получением химерного организма. В наших исследованиях выделены бластодермальные клетки птиц двух контрастных пород: русская белая и курчавая. Порода русская белая адаптирована к низким температурам, что позволяет содержать ее в птичниках без подогрева. Птицы курчавой породы имеют декоративный фенотип с оригинальным строением перьев, придающим птице кучерявый вид оперения, который скрывает голени. Бластодермальные клетки, выделенные из бластодисков свежеснесенных яиц вышеперечисленных пород, были подвегнуты процессу криоконсервации с целью сохранения предшественников половых клеток куриц и дальнейшего получения химер. Таким образом, для сохранения разнообразия современных и уникальных пород и линий птиц большое значение приобретают методы криоконсервации семени и эмбриональных плюрипотентных клеток.
*Исследование выполнено при финансовой поддержке РФФИ в рамках научного проекта № 20-016-00017.
Литература
1. Clarissa Boschiero, Gabriel Costa Monteiro Moreira, Almas Ara Gheyas, Thai's Fernanda Godoy, Gustavo Gasparin, Pilar Drummond Sampaio Correa Mariani, Marcela Paduan, Aline Silva Mello Cesar, Monica Correa Ledur, and Luiz Lehmann Coutinho. Sequence and comparative analysis of the chicken genome provide unique perspectives on vertebrate evolution // Nature, 2004. - V. 432. -P. 695-716.
2. Salehi M., Mahdavi A.H., Sharafi M., Shahverdi A. Cryopreservation of rooster semen: Evidence for the epigenetic modifications of thawed sperm // Theriogenology. - 2020. - V.142.-P. 15-25. D01:10.1016/j.theriogenology.2019.09.030.
3. FAO. The State of the World, s Animal Genetic Resources for Food and Agriculture. / ed. B.Rischkowsky and D.Pilling. - 2007. - P. 511.
4. Blackburn H.D. The National animal germplasm program: challenges and opportunities for poultry genetic resources // Poultry Science. - 2006. -V. 85. - P.210-215.
5. Woelders H., Zuidberg C., Hiermstra N. Animal genetic resources conservation in the Netherlands and Europe: Poultry Perspective // Poultry Science. -2006. - V. 85. - P. 216-222.
6. Blesbois E., Seigneurin F., Grasseau I., et al. Semen Cryopreservation for Ex Situ Management of Genetic diversity in chicken: Creation of The French Avian Cryobank // Poultry Science. -2007. -V. 86. - P.555-564.
7. Паранян И.А., Племяшов К.В., Сегал Е.Л. и др. Породы и популяции кур, разводимые в генофондном хозяйстве ГНУ ВНИИГРЖ Россельхозакадемии. - 2014. - 90 с.
8. Козикова Л.В. Химеры птиц: методы получения и перспективы использования. // Птицеводство. - 2019 - №9-10. - С.9-13.
9. Хименков А. Н., Брушков А.В. Введение в структурную криологию. -М.: Наука, 2006. - С. 406.
10. Kino K., Pain B., Leibo S.P., Cochran M., Clark M.E., Etches R.J. Production of chicken chimeras from injection of frozen-thawed blastodermal cells // Poultry Science. - 1997. - V. 7. - P. 753-760.
11. Matsui Y., Zsebo K., Hogan B.L. Derivation of pluripotential embryonic stem cells from murine primordial germ cells in culture // Cell. - 1992. - V.70 - P.841-847.
12. Tsunekawa N, et.al. Isolation of chicken vasa gomolog gene and tracing the origin of primordial germ cells // Development. - 2000. - V. 127. - Р.2741-2750.
13. Kagami H., Clark M.E., Verrinder Gibbins A.M. & Etches R.J. Sexual differentiation of chimeric chickens containing ZZ and ZW cells in the germline. - Molecular Reproduction and Development. - 1995. - V.42. - Р.379-387.
14. Park T. S and Han J.Y. Derivation and characterization of pluripotent embryonic germ cells in chicken // Molecular Reproduction and Development. - 2000. - V. 56. - Р.475-482.
15. Fulton J.E. Avian genetic stock preservation: an industry perspective // Poultry Science. - 2006. -Vol.85. - P.227-231).
16. Svoradova A., Kuzelova L., Vasicek J., Olexikova L., Chrenek P. Cryopreservation of chicken blastodermal cells and their quality assessment by flow cytometry and transmission electron microscopy // Biotechnol Prog. - 2018. - V.34(3). - P.778-783. D0I:10.1002/btpr.2615
17. Kino K., Pain B., Leibo S.P., Cochran M., Clark M.E., Etches R.J. Production of chicken chimeras from injection of frozen-thawed blastodermal cells // Poult Sci. - 1997. - V.76(5). - P.753-760. D0I:10.1093/ps/76.5.753.
18. Hee Jung Choi, Hyung Chul Lee, Kyung Soo Kang, Hyo Gun Lee, Tamao Ono, Hiroki Nagai, Guojun Sheng, and Jae Yong Han. Production of Interspecific Germline Chimeras via Embryo Replacement // BIOLOGY OF REPRODUCTION. - 2015. - V.93. - No2. - P.1-7. DOI 10.1095/biolreprod.114.127365.
19. Jon Lyall, Richard M. Irvine, Adrian Sherman, Trevelyan J. McKinley, Alejandro Nunez, Auriol Purdie, Linzy Outtrim, Ian H. Brown, Genevieve Rolleston-Smith, Helen Sang and Laurence Tiley. «Suppression of Avian Influenza Transmission in Genetically Modified Chickens» // Science. - 2011. - Vol.331. - №601. - P.223-226. DOI: 10.1126/science.1198020.
Literatura
1. Clarissa Boschiero, Gabriel Costa Monteiro Moreira, Almas Ara Gheyas, Thais Fernanda Godoy, Gustavo Gasparin, Pilar Drummond Sampaio Correa Mariani, Marcela Paduan, Aline Silva Mello Cesar, Monica Correa Ledur, and Luiz Lehmann Coutinho. Sequence and comparative analysis of the chicken genome provide unique perspectives on vertebrate evolution // Nature, 2004. - V. 432. -P. 695-716.
2. Salehi M., Mahdavi A.H., Sharafi M., Shahverdi A. Cryopreservation of rooster semen: Evidence for the epigenetic modifications of thawed sperm // Theriogenology. - 2020. - V.142.-P. 15-25. D01:10.1016/j.theriogenology.2019.09.030.
3. FAO. The State of the World, s Animal Genetic Resources for Food and Agriculture. / ed. B.Rischkowsky and D.Pilling. - 2007. - P. 511.
4. Blackburn H.D. The National animal germplasm program: challenges and opportunities for poultry genetic resources // Poultry Science. - 2006. -V. 85. - P.210-215.
5. Woelders H., Zuidberg C., Hiermstra N. Animal genetic resources conservation in the Netherlands and Europe: Poultry Perspective // Poultry Science. -2006. - V. 85. - P. 216-222.
6. Blesbois E., Seigneurin F., Grasseau I., et al. Semen Cryopreservation for Ex Situ Management of Genetic diversity in chicken: Creation of The French Avian Cryobank // Poultry Science. -2007. -V. 86. - P.555-564.
7. Paranyan I.A., Plemyashov K.V., Segal E.L. i dr. Porody i populyacii kur, razvodimye v genofondnom hozyajstve GNU VNIIGRZH Rossel'hozakademii. - 2014. - 90 s.
8. Kozikova L.V. Himery ptic: metody polucheniya i perspektivy ispol'zovaniya. // Pticevodstvo. -2019 - №9-10. - S.9-13.
9. Himenkov A. N., Brushkov A.V. Vvedenie v strukturnuyu kriologiyu. -M.: Nauka, 2006. - S. 406.
10. Kino K., Pain B., Leibo S.P., Cochran M., Clark M.E., Etches R.J. Production of chicken chimeras from injection of frozen-thawed blastodermal cells // Poultry Science. - 1997. - V. 7. - P. 753-760.
11. Matsui Y., Zsebo K., Hogan B.L. Derivation of pluripotential embryonic stem cells from murine primordial germ cells in culture // Cell. - 1992. - V.70 - P.841-847.
12. Tsunekawa N, et.al. Isolation of chicken vasa gomolog gene and tracing the origin of primordial germ cells // Development. - 2000. - V. 127. - R.2741-2750.
13. Kagami H., Clark M.E., Verrinder Gibbins A.M. & Etches R.J. Sexual differentiation of chimeric chickens containing ZZ and ZW cells in the germline. - Molecular Reproduction and Development. - 1995. - V.42. - R.379-387.
14. Park T. S and Han J.Y. Derivation and characterization of pluripotent embryonic germ cells in chicken // Molecular Reproduction and Development. - 2000. - V. 56. - R.475-482.
15. Fulton J.E. Avian genetic stock preservation: an industry perspective // Poultry Science. - 2006. -Vol.85. - P.227-231).
16. Svoradova A., Kuzelova L., Vasfcek J., Olexikova L., Chrenek P. Cryopreservation of chicken blastodermal cells and their quality assessment by flow cytometry and transmission electron microscopy // Biotechnol Prog. - 2018. - V.34(3). - P.778-783. D0I:10.1002/btpr.2615
17. Kino K., Pain B., Leibo S.P., Cochran M., Clark M.E., Etches R.J. Production of chicken chimeras from injection of frozen-thawed blastodermal cells // Poult Sci. - 1997. - V.76(5). - P.753-760. D0I:10.1093/ps/76.5.753.
18. Hee Jung Choi, Hyung Chul Lee, Kyung Soo Kang, Hyo Gun Lee, Tamao Ono, Hiroki Nagai, Guojun Sheng, and Jae Yong Han. Production of Interspecific Germline Chimeras via Embryo Replacement // BIOLOGY OF REPRODUCTION. - 2015. - V.93. - No2. - P.1-7. DOI 10.1095/biolreprod.114.127365.
19. Jon Lyall, Richard M. Irvine, Adrian Sherman, Trevelyan J. McKinley, Alejandro Nunez, Auriol Purdie, Linzy Outtrim, Ian H. Brown, Genevieve Rolleston-Smith, Helen Sang and Laurence Tiley. «Suppression of Avian Influenza Transmission in Genetically Modified Chickens» // Science. - 2011. - Vol.331. - №601. - P.223-226. DOI: 10.1126/science.1198020.
УДК 636.4.087.8:615 DOI 10.24411/2078-1318-2020-13106
Мл. науч. сотрудник Ю.Л. СИЛЮКОВА (ВНИИГРЖ - филиал ВИЖ им. Л. К. Эрнста», [email protected])
КРИТЕРИИ ОТБОРА ПЕТУХОВ ДЕКОРАТИВНЫХ ПОРОД ДЛЯ ФОРМИРОВАНИЯ
СТРАХОВЫХ РЕЗЕРВОВ КРИОБАНКА
Угроза снижения биологического разнообразия и исчезновения огромного числа пород сельскохозяйственных животных обязывает разрабатывать решения для их сохранения [1, 2]. Наиболее подвержены сокращению численности декоративные породы и популяции сельскохозяйственных птиц, созданные селекционерами прошлого как украшение приусадебного хозяйства. В настоящее время сохранение этих пород в России зависит только от возможностей частных коллекций и генетических коллекций ВНИИГРЖ и ВНИТИП.
Для сохранения пород и популяций сельскохозяйственных птиц, входящих в перечень редких и находящихся под угрозой исчезновения, во многих странах создаются генетические криобанки с образцами репродуктивных клеток и образцами тканей животных [3]. Именно они, как страховой фонд многообразия пород, позволят содействовать в будущем развитию селекционного прогресса сельскохозяйственных видов и получению животных с более высокой продуктивностью. Биоматериалы, заложенные в криобанках, могут быть использованы и в целях развития таких биотехнологических сфер, как генетическая и клеточная инженерия [4, 5].
В представляемом материале отражены основные принципы отбора самцов петухов, пород, наименее востребованных в настоящее время в отрасли разведения
