CC BY
305
УДК 616.379-008.64-092.9:616.133-004.6. DOI: 10.22141/2224-0721.13.7.2017.115747
Соколова Л.К., Пушкарев В.М., Пушкарев В.В., Ковзун Е.И., Тронько Н.Д.
ГУ «Институт эндокринологии и обмена веществ имени В.П. Комиссаренко НАМН Украины»,
г. Киев, Украина
Сахарный диабет и атеросклероз. Роль процессов воспаления в патогенезе (обзор литературы)
For cite: Mezhdunarodnyi Endokrinologicheskii Zhurnal. 2017;13(7):486-498. doi: 10.22141/2224-0721.13.7.2017.115747
Резюме. В обзоре литературы обобщен и проанализирован материал, посвященный воспалительным процессам, сопровождающим сердечно-сосудистые осложнения при сахарном диабете (СД). Показана роль эндотелиальной дисфункции, приводящей к повышению проницаемости эндотелия, накоплению в стенке сосуда липопротеинов, их. модификации, образованию и секреции молекул клеточной адгезии, что, в свою очередь, приводит к привлечению моноцитов и их дифференциации в воспалительные макрофаги. Отмечена роль рецепторов-скавенджеров в депонировании холестерина и формировании пенистых клеток. Детально рассмотрены механизмы инициации воспалительного процесса и образования инфлам-масом. Описана схема трансдукции провоспалительных сигналов в клетке и участие ключевого фактора NF-kB, интегрирующего всю поступающую информацию и контролирующего трансактивацию генов, участвующих в воспалении. Показано, что воспалительные процессы являются ключевыми в развитии заболеваний сосудов при СД, а подавление этих процессов тормозит прогрессирование болезни, уменьшая повреждения артерий и способствуя их заживлению.
Ключевые слова: сахарный диабет; атеросклероз; воспаление; NF-kB; обзор
0 ■ FJ ® Огляд лператури
/Literature Review/
International journal of endocrinology
Введение
Пациенты с сахарным диабетом (СД) характеризуются возрастанием риска развития сердечнососудистых заболеваний (ССЗ). Особенностью СД, способствующего этому, является развитие ускоренного атеросклероза (АС). Согласно эпидемиологическим расчетам, к 2020 году АС станет основной причиной смерти в мире [1].
Воспалительные процессы являются ключевыми в развитии и прогрессировании ССЗ, а повышенные уровни воспалительных маркеров, таких как С-реактивный белок и сывороточный амилоид А, являются предвестниками заболевания. Показано, что специфическое подавление этих процессов на экспериментальных моделях тормозит прогрессирование болезни, уменьшая повреждения миокарда и артерий и способствуя их заживлению [2].
Схема образования бляшки
Ключевым событием, инициирующим атероге-нез, считается эндотелиальная дисфункция (ЭД), которая может произойти в результате СД, артериальной гипертензии (АГ), в областях неламинарного сосудистого кровотока (точки ветвления и изгибы) или повышенного уровня липопротеинов низкой плотности (LDL) в плазме. Увеличение проницаемости эндотелия приводит к накоплению путем диффузии аполипопротеин В-содержащих липопротеинов (АроВ), взаимодействующих с богатым протеогликанами внеклеточным матриксом (ECM). Это взаимодействие удерживает LDL в стенке сосуда, где они подвергаются окислению с помощью активных форм кислорода (ROS). Окисленные LDL ^LDL) затем стимулируют эндо-телиальные клетки (ЭК), усиливая образование молекул клеточной адгезии, белков хемотаксиса,
© «Международный эндокринологический журнал», 2017 © «International Journal of Endocrinology», 2017
© Издатель Заславский А.Ю., 2017 © Publisher Zaslavsky O.Yu., 2017
Для корреспонденции: Пушкарев В.М., ГУ «Институт эндокринологии и обмена веществ имени В.П. Комиссаренко НАМН Украины», ул. Вышгородская, 69, г. Киев, 04114, Украина; e-mail: pushkarev.vm@gmail.com
For correspondence: V. Pushkarev, State Institution "V.P. Komisarenko Institute of Endocrinology and Metabolism of the NAMS of Ukraine", Vysh-gorodska st., 69, Kyiv, 04114, Ukraine; e-mail: pushkarev.vm@gmail.com
факторов роста и подавляя продукцию окиси азота (NO). Моноциты, происходящие из костного мозга или селезенки, рекрутируются из крови в интиму, привлекаемые хемокинами (CCL2 в первую очередь), с соответствующими рецепторами CCR2, CCR5, CX3CR1, которые экспрессируются эндотелием [2, 3]. В субэндотелиальном пространстве внутренней оболочки моноциты дифференцируются в макрофаги, которые посредством рецепторов-ска-венджеров (СР) захватывают oxLDL в стенку сосуда путем фагоцитоза. Поглощение модифицированных LDL (modLDL) приводит к накоплению капель холестерина в цитоплазме макрофага, создавая канонические пенистые клетки, которые типичны для ранних атеросклеротических образований. Т-клет-ки, в частности CD4+ Thl-клетки, также мобилизуются в ранние атеросклеротические повреждения сосудов и могут распознавать аутоантигены, в том числе oxLDL и HSP60. Thl-клетки продуцируют большое количество интерферона (IFN-y), активирующего макрофаги, что ведет к дальнейшему синтезу цитокинов и хемокинов, активации тромбоцитов и усилению воспаления. Секреция цито-кинов активированными макрофагами стимулирует пролиферацию клеток гладких мышц (ГМК) сосудов. ГМК интимы продуцируют ЕСМ, который дает начало образованию фиброзного кэпа. Такой комплекс бляшки подвержен дестабилизации, разрушению и развитию тромбоза, что может привести к острой окклюзии сосудов. Атеросклеротические бляшки при СД характеризуются усиленной каль-цификацией, образованием некротических ядер, наличием рецепторов для конечных продуктов гликозилирования (RAGE), а также усиленной инфильтрацией макрофагов и Т-клеток. Наблюдается также повышенное количество бляшек с разрывами и перестроек сосудов. Эти особенности способствуют развитию более тяжелого АС [4].
Воспалительные сигнальные механизмы клеток сосудов
Воспаление — основной механизм реализации врожденного и адаптивного иммунитета. ЭК сосудов играют важную роль в инициации, амплификации и разрешении воспалительных реакций. Хроническое воспаление — причина развития различных заболеваний, таких как АС, ожирение, СД и АГ. Сигнальные пути, опосредующие воспалительные процессы в ЭК, достаточно хорошо изучены. Макромолекулярные комплексы — ин-фламмасомы контролируют трансдукцию провос-палительных сигналов от мембранных рецепторов к ключевым факторам транскрипции, таким как NF-kB. Инфламмасомы связаны с паттерн-распознающими рецепторами (RRP) — TLR, NLR (NOD-подобные рецепторы), опосредующими реакции врожденного иммунитета. ЭК сосудов образуют интерфейс между потоком крови и стенкой сосуда и выполняют ряд важных функций в поддержании гомеостаза организма [5—7]. Эндотелий не только формирует неадгезивный и высокосе-
лективный физический барьер, контролирующий проницаемость сосудов, но и секретирует большое количество вазоактивных веществ для регулирования тонуса и ремоделирования сосудов [8]. ЭК являются важным регулятором и главной мишенью воспалительных процессов. Вследствие экспрессии ряда хемокинов и молекул клеточной адгезии эндотелий контролирует место, степень и продолжительность воспалительного процесса, обеспечивая защиту и последующее восстановление ткани после инфекции или травмы. С другой стороны, ЭК сами по себе являются объектами воспалительных реакций [6]. Воспалительная активация ЭК — одна из ключевых патофизиологических стадий при многих заболеваниях: инфекционных, аутоиммунных и нарушениях обмена веществ, таких как ожирение и СД.
Активация эндотелия и воспаление. ЭК постоянно подвергаются биологическим, химическим и механическим нагрузкам. Различные факторы в кровотоке активируют ЭК и провоцируют воспалительные реакции. Среди них — инфекционные агенты, липополисахариды (LPS), эндотоксины бактерий, нарушение кровотока [9] и TNF-a [10]. В норме ЭК поддерживают состояние покоя, выполняя антитромботическую, противовоспалительную и антипролиферативную функции. При воспалении ЭК фенотипически переходят в активированное состояние I или II типа, которое характеризуется повышенной проницаемостью, адгезией лейкоцитов и протромботической функцией. При I типе ослабляются межклеточные взаимодействия ЭК, происходит повышение проницаемости и экспорта телец Вайбеля — Паладе (экзоцитоза), а также высвобождение из гранул-хранилищ фактора VWF (von Willebrand factor) и P-селектина (CD62P), инициируя взаимодействие эндотелия с лейкоцитами и тромбоцитами. Это быстрый, но временный ответ, не зависящий от экспрессии генов de novo. Тип II активации обеспечивает более устойчивую воспалительную реакцию, стимулируя экспрессию генов различных провоспалительных цитокинов и молекул адгезии [6].
Модификация циркулирующих LDL. При АС и СД LDL сыворотки подвергаются различным химическим модификациям, нарушающим их нормальную функцию. Модификация LDL играет важную роль на начальных стадиях атерогенеза, связанных с индукцией воспаления, накоплением липидов в интиме и образованием пенистых клеток. Макрофаги отвечают за клиренс modLDL, предотвращая повреждение тканей, воспаление и нарушение обмена веществ. Они развивают сенсорный арсенал, состоящий из PRR, способных распознавать и связывать чужие или измененные объекты для их инактивации [7]. Липиды из удерживаемых в матриксе АроВ-липопротеинов поглощаются макрофагами с помощью ряда процессов, включая пиноцитоз и фагоцитоз агрегированных LDL. ModLDL могут захватываться макрофагами при помощи системы CP, из которых SR-A1, CD36 и LOX1 (lectin-type
oxidized LDL receptor 1) играют главную роль. При СД и АС липидный баланс разрегулирован, что приводит к неспособности макрофагов полностью перерабатывать modLDL, накоплению липидов и трансформации макрофагов в пенистые клетки. СР также опосредуют различные патогенные эффекты modLDL в макрофагах посредством активации внутриклеточных сигнальных сетей. Другие PRR, такие как TLR, могут также взаимодействовать с modLDL и опосредовать их эффекты независимо или вместе с СР [2].
Изучение состава LDL плазмы крови пациентов с АС выявило различные типы модификации LDL — окисление, ацетилирование, карбамилирование, десиалирование, гликирование, приобретение отрицательного электрического заряда и образование комплексов. Последнее делает модифицированные частицы LDL особенно атерогенными. Вероятно, процесс множественной модификации LDL происходит и в крови человека, и в артериальной стенке [7, 11]. Образование гликированных LDL происходит при повышенном содержании глюкозы в крови у больных СД. Модификации, влияющие на LDL, часто сосуществуют и могут происходить одновременно, что ведет к образованию, например, глико-окисленного LDL [12]. ModLDL являются цитоток-сичными и способствуют повреждению ЭК, ЭД и атерогенезу. Они усиливают окислительный стресс и снижают регенеративный потенциал эндотелия, стимулируя сенесценцию эндотелиальных клеток-предшественников в результате повреждения их ДНК [13].
Как липиды, так и белковые фрагменты LDL подвергаются модификациям, влияющим на свойства LDL и усиливающим проатерогенные эффекты. Так, изменения основного белкового компонента LDL — ApoB снижают способность LDL взаимодействовать с их рецепторами [14]. ModLDL связываются СР, которые экспрессируются на поверхности макрофагов и ЭК [15]. Инкубация LDL с культивируемыми ЭК приводит к образованию modLDL, которые распознаются и поглощаются макрофагами. Предположительно эта фракция LDL способствует накоплению внутриклеточных липидов с последующей трансформацией макрофагов, насыщенных липидами, в пенистые клетки. Показано также, что ЭК высвобождают соединения, осуществляющие конверсию LDL в oxLDL [7]. Существует множество факторов, способных опосредовать окисление LDL. ROS, продуцируемые ЭК, моноцитами, макрофагами, нейтрофилами и тучными клетками, окисляют преимущественно липидную часть LDL
[16]. Металлы (Fe3+ и Cu2+) участвуют в окислении фосфолипидов LDL. Липоксигеназы катализируют окисление жирных кислот (FA) до гидроперок-сидных аддуктов, опосредующих окисление LDL
[17]. Миелопероксидаза, специфическая для ней-трофилов, продуцирует хлорноватистую кислоту и гипотиоциановые кислоты — побочные продукты, способные присоединять кислород ко многим сайтам молекулы ApoB [18]. Частицы оxLDL содержат
меньшее количество антиоксидантов по сравнению с неокисленными LDL и подвержены дальнейшему окислению, что значительно усиливает проатеро-генные свойства LDL. Например, необходимая для образования пенистых клеток концентрация LDL в 40 раз превышает концентрацию oxLDL [7].
Субэндотелиальное удержание и накопление modLDL. Количественный анализ эндоцитотиче-ских везикул в люминальных ЭК при экспериментальной гиперхолестеринемии у кроликов показал значительное увеличение их числа в эндотелии областей аорты, где развивались ранние атеро-склеротические поражения. Вдоль люминальной поверхности эндоцитотические везикулы могут соединяться друг с другом, образуя трансэндотели-альные каналы. И LDL, и modLDL могут проходить эндотелий через ЭК путем везикулярного транспорта или непосредственно через эндотелиальный барьер [7]. В субэндотелиальном слое LDL взаимодействуют с белками ECM, такими как протеогли-каны. Положительно заряженные аминокислотные остатки ApoB взаимодействуют с отрицательно заряженными сульфатными группами протеогли-канов [19]. В ApoB имеются две протеогликан-свя-зывающие последовательности, обогащенные основными аминокислотами и расположенные на N- и С-концевых участках. ModLDL задерживаются ECM интимы сильнее, чем нативные LDL, и атерогенность LDL и modLDL прямо зависит от их аффинности к протеогликанам стенки артерии. Удержание modLDL в субэндотелиальном слое вызывает воспаление. Так, oxLDL, связанные с ECM интимы, индуцируют воспалительную активацию ЭК, опосредованную a5ß1-интегринами и связанную с продукцией эндотелием VCAM-1 [20]. Это, в свою очередь, привлекает моноциты к ЭК и способствует трансэндотелиальному траффику моноцитов в интиму, где они дифференцируются в макрофаги и интернализуют отложения modLDL, используя для клиренса СР [21].
Скавенджер-рецепторы макрофагов. СР представляют собой ряд мембранных рецепторов и растворимых изоформ, включающих внеклеточный домен. СР — поверхностные рецепторы, которые распознают многочисленные лиганды и способствуют устранению чужеродных или модифицированных объектов [22]. Рецепторы включают SR-A1, рецептор макрофагов с коллагеновой структурой SR-A2 (MARCO), CD36, SR-B1, LOX1, рецептор, экспрессируемый ЭК 1 (SREC1), SR-PSOX (CXCL16), распознающий фосфатидилсерин и охLDL [23]. Исследования in vitro показали, что деградация modLDL макрофагами опосредуется в основном SR-A1 и CD36 [78]. Дефицит этих рецепторов частично ингибировал образование пенистых клеток у ApoE—/— мышей, что указывает на существование других механизмов поглощения LDL [24, 25]. Кроме modLDL, СР могут связывать такие ли-ганды, как сложные эфиры холестерина, протеогли-каны, фосфолипиды, ферритин, углеводы и даже целые апоптотические клетки [22]. В условиях вос-
паления поглощение липидов макрофагами может быть активировано модуляторами, такими как интерферон. IFN-y активирует ERK, опосредующую поглощение modLDL [7, 26]. Ультраструктурный анализ макрофагов, инкубированных с modLDL in vitro, свидетельствует об их накоплении в лизосо-мах. Биохимические исследования показали, что после интернализации LDL деградируют в компар-тментах лизосом, высвобождая холестерин и жирные кислоты. Свободный холестерин переносится в эндоплазматический ретикулум (ER), где он подвергается повторной этерификации ацетил-коэн-зим А холестерин-ацетилтрансферазой 1 (ACAT1) [27]. Накопление холестерина в мембранах ER приводит к его дефектной этерификации с помощью ACAT1 и дополнительно увеличивает объем депо. ER-стресс, связанный с накоплением холестерина в макрофагах, также способствует прогрессированию болезни, усиливая апоптоз в бляшках. Ускорение гибели клеток и нарушение клиренса мертвых клеток приводит к образованию в развитых атероскле-ротических бляшках некротического ядра. Богатые холестерином мембранные микродомены способствуют TLR/NF-кВ-опосредованной передаче прово-спалительных сигналов [25].
Лизосомальная деградация oxLDL, поглощенных моноцитами, приводит к активации ERK1/2- и Akt-зависимых сигнальных путей и усиленной дифференциации моноцитов до провоспалительных макрофагов. Этот механизм включает в себя активацию транскрипционных факторов NF-кВ и AP-1, которые усиливают экспрессию провоспалитель-ных генов [28].
Связывание оxLDL с рецептором CD36 стимулирует в макрофагах провоспалительные сигнальные пути. Основным путем является активация NF-kB, который индуцирует транскрипцию многих провос-палительных генов. Макрофаги, лишенные CD36, демонстрируют низкий уровень NF-kB и снижение секреции провоспалительных цитокинов — интер-лейкина ip (IL-ip) и TNF-a. В макрофагах CD36 взаимодействует с другими рецепторами и поверхностными сигнальными молекулами, такими как TLR и интегрины. Так, стимуляция TLR2 приводит к усилению связывания oxLDL рецептором CD36. Соответственно, oxLDL-стимулированный CD36 способствует образованию гетеродимера TLR2/6, который активирует NF-kB, транскрипцию провоспалительных генов и высвобождение IL-ip [7]. Вместе с oxLDL и амилоидом-р CD36 участвует в индукции NLRP3-инфламмасом, опосредуя передачу oxLDL и амилоида-р в лизосомы. Амилоид-р и холестерин из деградированных oxLDL образуют кристаллы, дестабилизирующие лизосомальные мембраны, и индуцируют сборку NLRP3-инфлам-масом, активация которых стимулирует опосредованный каспазой процессинг и секрецию IL-ip [29]. OxLDL ингибируют миграцию макрофагов, способствуя их накоплению в очагах поражения. При АС хроническое воспаление постоянно поддерживается из-за сохранения провоспалительных макро-
фагов в бляшках, где они конститутивно углубляют бесконечную воспалительную реакцию.
Молекулы адгезии, посредники ЭК-лейкоцитарных взаимодействий. Считается, что ЭК в покое не адгезивны к лейкоцитам крови. Воспалительные реакции зависят от миграции лейкоцитов через ЭК. ЭК, активированные провоспалительными факторами, экспрессируют Е- и P-селектины для привлечения и роллинга лейкоцитов по воспаленному эндотелию посредством слабого связывания между селектинами и их слабоаффинными лиган-дами Sialyl-LewisX (тетрасахарид, соединенный на поверхности клетки с О-гликанами) и PSGL-1 (P-selectin glycoprotein ligand 1). ЭК и резидентные макрофаги сосудов секретируют хемокины, такие как CCL2, который действует через CCR2 (рецептор C-C типа хемокина 2) и CCR4 на моноцитах и Т-лимфоцитах, а также IL-8, который связывается с IL-8-рецептором-а и -р на нейтрофилах [6]. Перемещаемые по эндотелию лейкоциты дополнительно активируются с помощью хемокинов, экспонированных на поверхности эндотелия, что приводит к распространению и кластеризации поверхностных интегринов, таких как LFA-1 (lymphocyte function-associated antigen-1, интегрин aLP2) и VLA-4 (very late antigen-4; интегрин аД). Индуцированная воспалением экспрессия ICAM-1 и VCAM-1 на ЭК обеспечивает их взаимодействие с контр-рецепто-рами интегринов на лейкоцитах, прочную адгезию и трансмиграцию лейкоцитов в субэндотелиальное пространство стенки сосуда, инициируя их воспаление [30]. В процессе адгезии лейкоцитов: их захвате и активации, усилении адгезии, перемещения внутри сосудов, парацеллюлярной и трансцеллю-лярной миграции, участвуют ESAM (endothelial cell-selective adhesion molecule), JAM (junctional adhesion molecule), MAC1 (macrophage antigen 1), а также MAdCAM1 (mucosal vascular addressin cell-adhesion molecule 1) [6, 31].
Трансдукция сигналов через TNFR и активация NF-kB. Экспрессия цитокинов и молекул адгезии является признаком воспалительной активации эндотелия. Ядерный фактор NF-кВ — главный регулятор воспалительных реакций в ЭК, а также в других типах клеток [32, 33]. NF-кВ может быть активирован различными агонистами, такими как глюкоза, охLDL, лизофосфатидиловая кислота, липопротеины очень низкой плотности (VLDL), ангиотензин II, вирусные инфекции, нарушение кровотока. NF- кВ активирует транскрипцию генов TNF-a, IL-1, IL-8, Е-селектина, VCAM-1 и ICAM-1 путем связывания с регуляторными участками этих генов-мишеней [6].
Каскад IKK/NF-kB — основной регулятор и концентратор сигналов для различных воспалительных стимулов, которым подвергаются ЭК. TNFR-путь — прототип классического провоспа-лительного сигналинга. Связывание TNF-a с рецептором TNFR1 мобилизует белок TRADD (tumor necrosis factor receptor type 1-associated death domain protein), который вовлекает взаимодействующую с
рецептором серин-треониновую протеинкиназу 1 (RIPK1 или RIP) и TRAF2 (TNF receptor-associated factor 2) — ЕЗ-убиквитинлигазу и адаптерный белок [34, 35]. TRAF2 также присоединяет обладающие активностью ЕЗ-убиквитинлигазы клеточные белки-ингибиторы апоптоза (cIAP), которые соединяют воспалительные и сигнальные пути, связанные с выживанием клетки. Эти молекулы, TRADD, RIP, TRAF2 и cIAP, являются основными компонентами сигналосомы TNFR1, опосредующей трансдукцию сигналов TNF-a. TRAF2 катализирует убиквити-нирование RIP, что позволяет привлечь комплекс NEMO/IKK, фосфорилирующий IKK2, с последующей активацией канонического пути NF-kB и развитием воспаления. Белки cIAP, как ЕЗ-убикви-тинлигазы, не только регулируют активацию NF-kB в сигнальной цепи ниже TNFR1, но и опосредуют активацию NF-kB в ответ на сигналы врожденного иммунитета [33]. Кроме участия в контроле воспаления, трансдукция сигналов цитокинов от рецепторов мембраны к NF-kB играет важную роль в регуляции апоптоза ЭК [6].
Рецепторы, ассоциированные с врожденным иммунитетом. Собраны данные, указывающие на связь активации врожденного иммунитета с ССЗ. Так, 1Ы-клетки обладают выраженными проатероген-ными свойствами, Treg — антиатерогенными. Эффекты Th2 и Th17 в отношении АС двойственные, нуждаются в дальнейшем изучении [36]. АС — хронический воспалительный процесс, а иммунные клетки являются важными посредниками воспаления сосудов — от образования самых ранних жировых полос до поздних стадий продвинутых бляшек. Роль врожденной иммунной системы в патогенезе ССЗ была предметом особого внимания, а воздействие на иммунную функцию в экспериментальных моделях может тормозить развитие заболевания [2].
При повреждении тканей эндотелий является одной из первых линий системы обороны организма от микроорганизмов и эндогенных веществ. В защитной реакции ЭК участвует ряд PRR, включая TLR, NLR ((NOD (nucleotide-binding oligomerization-ёотат)-подобные рецепторы)), RLR ((RGI-I (RNA helicases retinoic acid inducible gene-I)-подобные рецепторы)), CDS (цитозольные сенсоры ДНК) и CLR (рецепторы лектинов С-типа). PRR распознают молекулярные модели, используемые микробами, объединенные под названием PAMP (патоген-ассоциированные молекулярные паттерны), или эндогенные молекулы из раненых и стрессирован-ных клеток — DAMP (ассоциированные с опасностью молекулярные структуры). PAMP включают различные бактериальные компоненты, такие как LPS, пептидогликан, флагеллин и вирусные двухце-почечные РНК [37]. DAMP — внутриклеточные или внеклеточные белки или их фрагменты, такие как белки теплового шока (HSP), HMGB1 (high-mobility group box 1 protein) и фрагменты гиалуронана. Среди небелковых DAMP — мочевая кислота, АТР, кристаллы холестерина и ДНК хозяина. TLR принадлежат к надсемейству IL-1/TLR рецепторов, так как
содержат домен Toll/IL-1-рецептора (TIR) [6]. Все TLR являются трансмембранными белками I типа с эктодоменом, состоящим из LRR (повторы, богатые лейцином). TLR можно разделить на две группы по их клеточной локализации. TLR1, 2, 4, 5, 6, 11 расположены на клеточной мембране. TLR3, 7, 8, 9, 10, 13 локализованы во внутриклеточных везикулах, в том числе на ER, эндосомах и лизосомах [38]. TLR клеточной поверхности распознают PAMP. TLR4 является рецептором для LPS, а также активируется вирусными белками, HSP60, охLDL и фибриногеном. Эндогенные лиганды TLR2 включают фактор транскрипции HMGB1, воспалительные цитокины, фрагменты гиалуроновой кислоты и бигликан [39]. Внутриклеточные, чувствительные к нуклеиновым кислотам TLR в основном распознают микробные нуклеиновые кислоты, такие как двухцепочечную РНК (TLR3) одноцепочечную РНК (TLR7) и двух-цепочечную ДНК (TLR9). Экспрессия TLR специфична для клеток разного типа. TLR4, TLR2 и его корецепторы TLR1 и TLR6 экспрессируются в сосудах человека. TLR3 преимущественно экспрессиру-ются в аорте, в то время как TLR7 и TLR9 минимально экспрессированы в подвздошной артерии [6, 40]. Роль TLR изучалась на мышиных моделях АС, для которых воспалительная активация эндотелия является важным шагом атерогенеза [37, 41]. TLR2/4 оказывают проатерогенный эффект у мышей с ги-перлипидемией. Активация TLR эндотелия способствует накоплению липидов и лейкоцитов в местах поражений. В частности, TLR2/4 в ЭК коронарной артерии человека опосредуют экспрессию BMP-2 (костного морфогенетического белка 2) — воспалительного цитокина, участвующего в кальцифика-ции сосудов [42]. Несколько СР, таких как CD36 и рецептор oxLDL, LOX1, служат корецепторами для TLR2, модулируя его воспалительные реакции [43, 44]. Учитывая, что АС может осложняться в присутствии ряда микроорганизмов — агонистов TLR, к которым относятся такие, как цитомегаловирус (TLR3 и TLR9), вирус Коксаки B (TLR7) и вирус простого герпеса (TLR9), эти рецепторы также могут участвовать в развитии эндотелиального воспаления и АС. Передача сигналов от большинства TLR опосредуется MyD88 (myeloid differentiation primary response gene 88)-зависимым путем, приводящим к воспалительным реакциям, в то время как TLR3 активирует TRIF (TIR-domain-containing adapter-inducing interferon-P)-зависимый путь, ведущий к активации интерферона р (IFN-P). При действии PAMP или DAMP TLR димеризуется и ассоциируется с адаптером MyD88, который привлекает IRAK (IL-1 receptor-associated kinases) к TLR. IRAK активируется путем фосфорилирования и затем связывается с E3 убиквитинлигазой TRAF6. Затем комплекс IRAK-1/TRAF6 высвобождается от TLR и связывается с TGF-p-активированной киназой 1 (TAK1) и TAK1-связывающими белками — TAB1 и TAB2. TRAF6, в свою очередь, убиквитинируется и облегчает связывание TAK1 с IKK2, что приводит к активации NF-kB [6, 35].
NLR — PRR, которые в основном распознают микроорганизмы и молекулы, продуцируемые в условиях стресса. NLR можно разделить на три подсемейства: NACHT (NOD), LRR (leucine-rich repeat) и PYD (NH2-terminal pyrin domain) домен-содержащие белки (NLRP); IPAF/NAIP (ICE-protease activating factor/neuronal apoptosis inhibitory protein); NOD. NLRP насчитывает 14 членов, содержащих PYD домен [45]. IPAF и NAIP содержат CARD (caspase recruitment domain) и BIR (baculoviral inhibitory repeat) домены соответственно. Члены подсемейства NOD содержат CARD и распознают пептидогликаны, сахар, сшитые с пептидами бактериального происхождения. NLRP распознают микробные токсины, а также опасные молекулы, такие как АТР, глюкоза, холестерин. IPAF детектирует флагеллин. Распознавание этих PAMP и DAMP является триггером олигомеризации NOD и сборки NOD-сигналосом, к которым мобилизуется CARD-содержащая серин-треониновая киназа (RIP2) (44). RIP2, в свою очередь, связывает TAK1, что приводит к активации NF-kB. Олигомеризация NLRP вызывает образование инфламмасом — высокомолекулярных белковых комплексов, которые активируют провоспалительные каспазы и цитокины IL-1 и IL-18. Комплексы включают каспазу-1, каспа-зу-5, PYCARD/ASC (apoptosis-associated speck-like protein containing a CARD) [46]. Описано несколько видов инфламмасом, в том числе NLRP1 и NLRP3. Состав инфламмасомы зависит от типа PAMP или DAMP, инициирующих сборку. Пириновый домен NLR связывается с адаптерным белком ASC. ASC содержит PYD и CARD, с помощью которого неактивная форма каспазы-1 присоединяется к NLR, инициируя ауторасщепление и активацию прокас-пазы-1. Каспаза-1 расщепляет про-IL^ß по остатку Asp116 до IL-1ß и про-IL-^ до IL-18, что приводит к секреции IFN-y, провоспалительного цитокина, играющего важную роль в реакциях врожденного иммунитета [46].
Различные типы ЭК, в том числе пупочной вены человека, аорты и микроваскулярные ЭК экспрессируют NOD1. Экспрессия NOD2 в этих клетках в обычных условиях низка, но может повышаться в присутствии провоспалительных медиаторов. В ЭК, инфицированных C.pneumoniae или L.monocytogenes, активация NF-kB и МАРК, а также секреция IL-8 зависят от NOD1 [6]. Было показано, что активация инфламмасомами IL-18 приводит к дисфункции ЭК-предшественников при системной красной волчанке, аутоиммунного заболевания, характеризующегося активацией и воспалением эндотелия [47]. Также показано, что геморрагический шок активирует NLRP3^^ фламмасомы в ЭК легких [48]. В свете последствий активации инфламмасом для метаболических заболеваний и критической роли воспаления эндотелия активация инфламмасом в ЭК в ответ на различные метаболические стрессы, а также регулирующие их механизмы остаются важными вопросами для дальнейшего исследования.
Роль макрофагов в воспалении
АС — хроническое воспалительное состояние, в котором макрофаги играют разные и важные роли. Фагоцитарные провоспалительные клетки проникают в растущие атеросклеротические поражения, активно участвуя в накоплении холестерина. Более того, макрофаги способствуют образованию сложных и нестабильных бляшек, поддерживая провоспалительную микросреду. В то же время противовоспалительные макрофаги способствуют восстановлению тканей, ремоделирова-нию и стабилизации бляшек. Поэтому макрофаги представляют собой привлекательную мишень для новых методов антиатеросклеротической терапии, которые могут быть направлены на снижение рекрутирования моноцитов в места поражения, ин-гибирование провоспалительных макрофагов, стимулирование противовоспалительных реакций и оттока холестерина [25].
Макрофаги играют важнейшую роль на всех стадиях развития АС [49]. Считается, что моноциты и макрофаги образуют неразрывную систему, которой отводится центральное место во врожденной иммунной реакции. В сайте поражения моноциты дифференцируются в макрофаги, которые активно участвуют в иммунном ответе, высвобождая про-воспалительные факторы и захватывая патогены и поврежденные клетки посредством фагоцитоза. С другой стороны, макрофаги также отвечают за разрешение воспалительного ответа и ремоделиро-вание тканей. Согласно классической схеме, макрофаги — терминально дифференцированные клетки, которые постоянно обновляются моноцитами, выводимыми из циркуляции. Новые исследования показали, что онтогенез тканевых макрофагов более сложный, и большая часть их происходит от резидентных клеток-предшественников [50]. Субэн-дотелиальный слой интимы артериальной стенки человека содержит популяцию плюрипотентных перицитоподобных клеток, которые могут дифференцироваться в различные типы клеток, включая фагоциты с маркером макрофагов CD68 [51]. Показано также, что ГМК, нагруженные холестерином, теряли маркеры дифференцировки и экспрессиро-вали маркеры макрофагов. Эксперименты in vivo согласуются с этими данными: до 40 % клеток, классифицированных как макрофаги бляшек, происходили из ГМК сосудов [2, 52].
Циркулирующие моноциты можно разделить на несколько различных типов, основанных на экспрессии поверхностных молекул и рецепторов хемокинов [4]. Наиболее распространены классические моноциты, положительные по антигенам CD14 и отрицательные по CD16. Как и мышиные провоспалительные (LY6Chi) моноциты, эти клетки экспрессируют CCR2. Моноциты, положительные по CD16, можно разделить на 2 подмножества: CD14+CD16++ (неклассический) и CD14++CD16+ (промежуточный). Хотя оба подкласса могут секретировать провоспалительные факторы, их функции в организме различны. Не-
классические моноциты, патрулирующие ткани, селективно продуцируют провоспалительные факторы в ответ на вирусы, комплексы, содержащие нуклеиновые кислоты, и, вероятно, ответственны за локальный иммунный ответ. Промежуточные моноциты в ответ на стимуляцию способны продуцировать большое количество провоспалительных молекул, таких как TNF [25].
Во время гематопоэза дифференциация моноцитов в макрофаги инициируется в основном двумя факторами роста — GM-CSF и M-SCF (гранулоци-тарно-макрофагальный и макрофагальный коло-ниестимулирующий факторы). Дифференциация циркулирующих моноцитов может быть вызвана различными стимулами, например в ответ на инфекцию или асептическое воспаление, играющее важную роль в патогенезе АС. На ранних стадиях развития АС моноциты могут рекрутироваться в жирные полоски и проникать в артериальную стенку при повышении проницаемости эндотелия, связанном с локальной ЭД. У мышей как провоспалительные, так и патрулирующие моноциты могут мобилизо-вываться в растущие атеросклеротические бляшки с помощью катализируемого P- и E-селектином рол-линга с последующей ICAM1- и VCAMl-зависимой адгезией [25]. Провоспалительная миграция моноцитов к артериальной стенке опосредуется сигна-лингом CCR2, CCR5 и CX3CR1, ингибирование которого в мышиной модели АС ApoE—/— предотвращало рекрутирование моноцитов и уменьшало размер поражений [53]. Моноциты, дифференцирующиеся в макрофаги, демонстрируют ряд морфологических и структурных изменений, включая увеличение размеров и количества органелл, усиление метаболизма и экспрессии поверхностных рецепторов, изменение чувствительности к сигнальным молекулам. В них также увеличивается активность лизосомальных ферментов, которая подготавливает клетки к активному фагоцитозу и перевариванию поглощенного материала [54].
Гетерогенность макрофагов. Классическая модель активации макрофагов определила два основных фенотипа: провоспалительный M1 и альтернативный M2 [4]. Дифференцировка М1-макрофагов происходит в ответ на TLR- и IFN-y-сигналинг и может быть вызвана PAMP, LPS и LDL. Эти клетки секретируют провоспалительные факторы, такие как TNF-a, IL-1ß, IL-12 и IL-23 и хемокины CXCL9, CXCL10 и CXCL11. М1-макрофаги продуцируют больше ROS и NO, которые способствуют развитию воспалительной реакции [55]. Противовоспалительные М2-макрофаги индуцируются в ответ на цитокины 1Ъ2-типа — IL-4 и IL-13 и секретируют противовоспалительные факторы, такие как аго-нист рецептора IL-1 и IL-10. Макрофаги, соответствующие типам М1 и М2, содержатся в атеросклеро-тических поражениях. М1-макрофагами обогащены прогрессирующие, а макрофагами М2 — регрессирующие бляшки, где они участвуют в восстановлении и ремоделировании тканей [55]. Недавно были выделены дополнительные классы макрофагов [56].
Тип M2 разделили на несколько подгрупп в зависимости от стимулов активации и характера экспрессии белков. M2а-макрофаги, индуцированные IL-4 и IL-13, экспрессируют высокие уровни CD206 — агониста рецептора IL-1 (IL1RN). M2b-макрофаги могут индуцироваться иммунными комплексами и лигандами IL-1R через TLR-сигналинг. Они продуцируют как противовоспалительные (IL-10), так и провоспалительные (IL-6, TNF-a) цитокины. M2c-макрофаги, которые индуцируются IL-10, TGF-ß и глюкокортикостероидами, обладают противовоспалительными свойствами и продуцируют пентраксин-3, TGF-ß и IL-10. Они экспрессируют рецепторную киназу Mer (MERTK) и ответственны за утилизацию апоптотических клеток. Макрофаги M2d, дифференцирующиеся в ответ на TLR-сиг-налинг через аденозин-A2A-рецептор, обладают ангиогенными свойствами и могут играть роль в прогрессировании опухолей и развитии атероскле-ротических бляшек [25].
Роль различных типов макрофагов при АС. Как указывалось выше, кроме значительных количеств провоспалительных макрофагов (М1), в бляшках также присутствуют макрофаги М2 [55, 57]. Развитие бляшки связано с увеличением обеих популяций, но клетки, экспрессирующие провоспалитель-ные маркеры, преимущественно распределены в плечевых областях бляшки, более восприимчивых к разрыву, а клетки с маркерами альтернативной активации расположены в адвентиции. Показано, что противовоспалительные макрофаги присутствуют в стабильных областях бляшек и более устойчивы к образованию пенистых клеток [25].
Кроме типичных Ml- и M2-макрофагов ате-росклеротические поражения человека содержат специфические фенотипы макрофагов с про- или антиатерогенными свойствами. Например, CDl63-экспрессирующие макрофаги могут быть найдены в геморрагических бляшках [58]. Эти клетки ответственны за клиренс гемоглобина и играют защитную роль при АС. Другим атеропротективным подтипом макрофагов является Mhem. Эти клетки также экс-прессируют CD163, а также гем-зависимый транскрипционный фактор (ATF1), который индуцирует экспрессию гем-оксигеназы 1 и LXR-ß (liver X receptor). Mhem-макрофаги участвуют в клиренсе гемоглобина через фагоцитоз эритроцитов и увеличивают отток холестерина путем экспрессии LXR-ß-зависимых генов — LXR-a и АТР-связыва-ющего кассетного транспортера 1 (ABCA1) [59]. Эти клетки продуцируют IL-10 и АроЕ. Недавно описанные M4-макрофаги могут иметь проатерогенные свойства и участвовать в формировании нестабильных бляшек, продуцируя MMP12 и способствуя дестабилизации фиброзного кэпа бляшки [55].
Влияние липидов на активацию макрофагов. LDL — основной источник липидов при развитии АС. Опыты in vitro показали, что накопление внутриклеточного холестерина происходит не от на-тивных, а от атерогенных modLDL. В отличие от нативных LDL modLDL интернализуются главным
образом через нерегулируемый фагоцитоз. Макрофаги с их хорошо развитым фагоцитарным аппаратом играют ключевую роль в этом процессе [55]. Показано, что как нативные LDL, так и modLDL способствуют провоспалительной поляризации макрофагов. Макрофаги распознают modLDL посредством TLR и СР. Так, рецептор CD36 может распознавать охLDL и, взаимодействуя с TLR, инициировать воспалительный сигналинг [44], что способствует поляризации макрофагов к фенотипу М1. Активация TLR сопровождается повышением активности протеинкиназ C и Syk, NADPH-окси-дазы 2 (gp91/Nox2) и увеличением продукции ROS. В результате макрофаги секретируют провоспали-тельные цитокины, включая IL-1ß, и CCL5. OxLDL могут индуцировать воспалительный процесс непосредственно через CD36-сигналинг [60] и сдвигать фенотип макрофагов М2 к М1, изменяя экспрессию про- и противовоспалительных генов [25].
Активация инфламмасом в макрофагах может быть результатом фагоцитоза кристаллов холестерина, которые повреждают лизосомальную систему
[61]. Эфиры холестерина, присутствующие в ли-пидном ядре бляшки, могут стимулировать макрофаги, способствовать воспалению и образованию пенистых клеток. Действие холестериновых эфиров может передаваться различными сигнальными путями. Так, 7-кетохолестерил-9-карбоксинонаноат активирует NF-kB и холестерил-линолеат-MAPK
[62]. Другим производным холестерина, присутствующим в атеросклеротических бляшках, является оксистерол. В макрофагах он может индуцировать экспрессию провоспалительного CCL2 и рецепторов CD36. Экспрессия CD36 также стимулируется окисленными эфирами холестерина. Этот рецептор играет важную роль в атерогенезе, поскольку его уменьшение посредством стимуляции aMß2-интегринов подавляет образование воспалительных макрофагов и пенистых клеток [25].
В закисленном микроокружении бляшек фос-фолипаза может гидролизовать LDL, что приводит к высвобождению свободных фосфолипидов и FA, способствующих накоплению липидов в артериальной стенке и прогрессии бляшек. Было показано, что LDL, обработанные фосфолипазой Aj, увеличивают секрецию макрофагами TNF-a, IL-6 и стимулируют образование пенистых клеток. Провоспалительный сигналинг фосфолипидов и FA опосредуется G-бе-лок-связанным рецептором G2A, который играет важную роль в патогенезе, поскольку его дефицит приводит к развитию АС и приобретению макрофагами фенотипа M1 [25]. Насыщенные FA способствуют сдвигу фенотипа макрофагов к М1 посредством TLR/NF-кВ-сигналинга [63].
Полиненасыщенные жирные кислоты (PUFA) обладают защитными свойствами при АС, что частично объясняется их противовоспалительным действием на макрофаги. Конъюгированная лино-левая кислота уменьшала экспрессию генов, участвующих в воспалительных процессах (NF-kB, CCL2, MMP9, фосфолипазы-2 и циклооксигеназы-2) в
макрофагах через PPARy (peroxisome proliferator-activated receptor у), и подавляла прогрессию АС у мышей. PUFA также могут противодействовать проатеросклеротическим эффектам насыщенных FA, например индуцированной пальмитатом экспрессии LOX1 и белка, связывающего FA [64]. Эй-козапентаеновая и дигидроаскорбиновая кислоты оказывают защитные эффекты при АС, уменьшая провоспалительную активность и улучшая функциональность макрофагов. Нитрожирные кислоты (NFA) образуются при взаимодействии активных форм азота с FA при окислительном стрессе. Показано, что NFA обладает противовоспалительными и атеропротективными свойствами, опосредуемыми Nrf2 и PPARy. Ослабление АС и стабилизация бляшек в результате повышенного депонирования коллагена наблюдалось у мышей ApoE—/—, получавших NFA [25].
HDL характеризуются атеропротекторными функциями, стимулируя отток холестерина и катаболизм [4]. У больных АС наблюдается снижение уровней HDL против LDL. Нормализация содержания HDL в сыворотке у мышей с АС приводила к уменьшению в очагах поражения количества макрофагов М1 и увеличению M2 с маркерами CD163, Arg-1 и фактором транскрипции FIZZ1. Экспрессия Arg-1 и FIZZ1 зависела от STAT6 [65]. HDL ингиби-руют провоспалительную поляризацию макрофагов, судя по маркерам TNF-a, IL-6 и CCL2, а также маркерам клеточной поверхности, но не стимулируют активацию макрофагов противовоспалительного фенотипа [4].
Формирование пенистых клеток. LDL, циркулирующие в крови здоровых лиц, обычно не вызывает накопления липидов в культивируемых макрофагах, тогда как LDL пациентов с АС в большинстве случаев является индуктором клеточного липидоза. Таким образом, LDL пациентов с АС в отличие от LDL здоровых лиц является атероген-ным. При добавлении к первичной культуре макрофагов LDL, выделенные из крови пациентов с АС, индуцируют повышенную экспрессию TNF-a и противовоспалительного хемокина CCL18. В то же время нативные LDL от здоровых лиц не влияли на экспрессию генов при добавлении к макрофагам. Следовательно, атерогенные modLDL вызывают активацию про- и противовоспалительных макрофагов. Это важный факт, учитывая значительную роль врожденного иммунитета и хронического воспаления при возникновении и развитии АС. Полученные данные согласуются с результатами исследований in situ, которые показали усиление экспрессии про- и противовоспалительных цитокинов при АС [66].
Для оценки влияния индуцированного modLDL накопления холестерина на экспрессию генов в макрофагах было проведено исследование транскрип-тома макрофагов, инкубированных с окисленными, ацетилированными и десиалированными LDL. Добавление modLDL приводило к изменениям в активности сотен генов, 26 из которых связаны с
функцией врожденного иммунитета. Следовательно, LDL-индуцированное накопление холестерина в макрофагах вызывает иммунный ответ [25].
Повышение оттока липидов может стать новым терапевтическим подходом для лечения АС. Несколько белков облегчают отток липидов из макрофагов, включая ABCA1 и ABCG1, которые опосредуют переход липидов к HDL-частицам и активируются в ответ на рост уровня холестерина в клетках, детектируемого сенсорами LXR. Их активация оказывает противовоспалительное действие. Так, активацию LXR в мышиных макрофагах с дефицитом ABCA1/G1 связывают с сильным антиате-росклеротическим эффектом и уменьшением площади поражения за счет уменьшения воспаления [67]. В настоящее время изучается возможность активации LXR для лечения АС. Другим механизмом клиренса холестерина в клетках является особый тип аутофагии — липофагия. Исследования на модели мышиного АС показали защитную роль ауто-фагии через регуляцию воспаления и гибели клеток в атеросклеротических бляшках [68].
Считается, что неоваскуляризация из vasa vasorum способствует кровоизлияниям внутри бляшек, что не только ускоряет их увеличение и воспаление, но также располагает к разрыву. Ангиогенез стимулируется VEGF — мишенью для индуцируемого гипоксией фактора (HIFla), особенно в пределах больших, богатых липидами некротических ядер, присутствующих в развитой атероме. В исследованиях in vitro гипоксия и экспрессия HIFla изменяли состояние липидов и подавляли отток холестерина через транспортеры ABCA1 в макрофагах. Более того, эксперименты in vitro и ex vivo показали, что гипоксия и HIF1a в связаны с усилением поглощения глюкозы, метаболической активности и поляризации макрофагов в атероме человека [2].
Взаимодействие макрофагов и нейтрофилов. Ранние поражения характеризуются инфильтрацией нейтрофилов и загруженных липидами макрофагов. При развитии поражений нейтрофилы и макрофаги продолжают накапливаться и рекрутируют провоспалительные IL-17-продуцирующие Т-клет-ки. Усиливается пролиферация ГМК и изменение образования матрикса [69]. Нейтрофилы стимулируют макрофаги для провоспалительных реакций в атеросклеротических бляшках. Эта инициация опосредуется внеклеточными нейтрофильными ловушками (NET) — трехмерными сетями, основу которых составляет ДНК, связанная с цитоток-сическими гистонами, и белками гранул, которые высвобождаются активированными нейтрофилами. Этот процесс, называемый нетозом, является скоординированным многоступенчатым процессом: цитруллинация гистонов, деконденсация хроматина, миграция эластазы и других ферментов гранул в ядро, дезинтеграция ядерной мембраны и высвобождение ДНК, гистонов и белков гранул во внеклеточное пространство. Высвобождение NET инициирует образование в макрофагах про-IL-ip, которые
расщепляются каспазой-1 (секретируется макрофагами в ответ на активацию NLRP3-инфламмасом) до зрелых провоспалительных IL-ip [70].
Нейтрофилы от больных СД 1-го и 2-го типа, а также диабетических мышей инициируют образование NET и характеризуются повышенной экспрессией пептидиларгининдеиминазы 4 (PAD4) — фермента, критического для опосредованной цитруллинацией гистонов деконденса-ции хроматина и образования NET [71]. Усиление транскрипции PAD4 управляется NFkB, хронически активированным при СД. Индуцированные гипергликемией ROS, вероятно, активируют также PAD4, увеличивая внутриклеточную концентрацию Ca2+. Другие последствия образования ROS, такие как активация PKC, увеличивают уровни TNF-a, подготавливающего нетоз [69]. Разрешение воспаления, вызванного инфильтрацией ней-трофилов и макрофагов, включает в себя переход от синтеза из арахидоновой кислоты простаглан-динов и лейкотриенов к синтезу липоксинов, которые останавливают рекрутирование нейтрофилов [35]. Одновременно увеличение продукции ре-золвинов и протектинов из омега-3-PUFA вызывает апоптоз нейтрофилов. Фагоцитоз нейтрофилов макрофагами вызывает их переход к фенотипу М2-макрофагов, которые выделяют противовоспалительные и репаративные цитокины [69].
Активация в макрофагах NLRI'3-шфламмасом при СД и АС. Повышенная экспрессия компонентов инфламмасом была обнаружена в моноцитах у пациентов с СД 2-го типа до лечения. Наряду с этим наблюдалась усиленная активация инфламмасом. Соответственно в сыворотке таких пациентов были значительно более высокие уровни провоспали-тельных цитокинов IL-ip и IL-18, чем у здоровых людей [72]. NF-kB, который хронически активен в мононуклеарах у пациентов с диабетом и в ЭК сосудов диабетических крыс, способствует транскрипции NLRP3, pro-IL-ip и pro-IL-18 [73]. Эти белки остаются в цитоплазме в неактивных формах. Второй сигнал активирует NLRP3-инфламмасомы, способствуя олигомеризации неактивного NLRP3, ASС и прокаспазы-1. Многие, но не все активаторы NLRP3 сходятся на избыточной продукции ROS. ROS-индуцированное снижение внутриклеточных уровней NAD+ уменьшает активность деацетила-зы SIRT2, вызывая накопление ацетилированного a-тубулина, регулирующего перенос митохондрий и способствующего эффективному взаимодействию между адаптерным белком ASС и NLRP3 [74]. ROS также активирует NLRP3-инфламмасомы, открывая кальциевые каналы клеточной мембраны TRPM2, увеличивая приток Ca2+. Митохонд-риальный мембранный фосфолипид кардиолипин активирует NLRP3-инфламмасомы после транслокации (возможно, в результате ROS-индуцирован-ного ремоделирования кардиолипина) на внешнюю митохондриальную мембрану, где он связывается с NLRP3 [75]. Активация NLRP3 в артериях больных СД может быть связана с увеличением на клеточной
поверхности количества CD36, индуцированного инсулинорезистентностью (ИР), что облегчает ин-тернализацию охLDL и внутриклеточную конверсию охLDL в кристаллы холестерина [69].
В свиной модели диабетического АС процес-синг SREBP-1 и SREBP-2 и экспрессия их генов-мишеней усиливались в ЭК и инфильтрирующихся макрофагах как в первичных жирных полосках, так и в продвинутых бляшках с фиброзными крышками, некротическими и холестериновыми ядрами. Одновременно уменьшалась активность SIRT1 и AMPK. Увеличение содержания SREBP-1a в макрофагах при АС диабетических свиней непосредственно регулирует транскрипцию NLRP3 [76]. Возросшее количество NLRP3 обнаружили как в макрофагах развитых бляшек, так и в ЭК и ГМК. Изменения, обнаруженные у свиней, также выявлены в образцах коронарного АС у пациентов с СД.
ИР повышает окисление FA в артериальных ЭК. На двух инсулинорезистентных недиабетических моделях животных показано, что ингибирование высвобождения FFA из адипоцитов либо их окисления в артериальном эндотелии предотвращало увеличение продукции ROS и его патологических эффектов. В артериальных ЭК индуцированное FFA увеличение ROS активирует те же пути, которые наблюдаются при гипергликемии: AGE, PKC, гексозаминовый путь и NFkB. Избыточное количество супероксидов также активирует множество провоспалительных сигналов, принимающих участие в индуцированном гипергликемией повре-
Рисунок 1
ждении сосудов, а также инактивирует два важных антиатерогенных фермента: простациклин-синта-зу и eNOS [77].
Аутоиммунность АС
Клетки как врожденной (макрофаги), так и адаптивной (Т- и В-лимфоциты, дендритные клетки) иммунных систем могут модулировать локальную воспалительную среду. В зависимости от среды Т-лимфоциты могут секретировать провоспалитель-ные Thl-цитокины, такие как IL-1, IL-6 и TNF, или 1Ъ2-цитокины — IL-4, IL-10 и IL-13, которые способствуют разрешению воспаления. IL-1- и TNF-сиг-налинг в основном опосредуются р38МАРК/№-кБ. Активация сигналинга IL-6 через трансдуцирующий сигнал белок gp130, который активирует JAK1 и STAT1/3, приводит к активации ЭК и макрофагов с образованием молекул адгезии и хемокинов [78].
В настоящее время собраны доказательства в пользу гипотезы о том, что АС является аутоиммунным заболеванием, обусловленным накоплением и модификацией липопротеинов в стенке сосуда и их детектированием специфическими Т-клетками и антителами.
Следующие данные подтверждают эту гипотезу:
1. Т-клетки инфильтруются в стенки аорты, накапливаются и демонстрируют ограниченный репертуар рецепторов Т-клеток.
2. Активация Т-клеток в бляшке поддерживается взаимодействием с резидентными антигенпред-ставляющими клетками и требует презентации специфических антигенов.
3. Аутоантитела к липидным антигенам и их белковым группам являются атеропротектными и связаны с ослаблением АС.
4. Развитие АС мыши можно модулировать иммунизацией против некоторых известных антигенов. Эти данные создают теоретическую основу для понимания АС как аутоиммунного заболевания [79, 80].
Выводы
Доказано, что в основе патогенеза СД и вызванного диабетом атеросклероза лежат хронические воспалительные процессы. В воспалении участвуют различные типы клеток, рецепторов, проте-инкиназ/фосфатаз, транскрипционных факторов, цитокинов/хемокинов и множество других биохимических соединений, взаимодействие которых в пространстве и времени определяет направленность процессов.
Ключевым фактором, интегрирующим в клетке поступающие извне провоспалительные сигналы и реализующим их эффект, является NF-kB (рис. 1). Изучение тонких механизмов воспаления и его разрешения, а также поиск способов воздействия на эти механизмы являются необходимыми условиями понимания патогенеза АС и разработки новых подходов для его лечения.
Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии какого-либо конфликта интересов при подготовке данной статьи.
References
1. Husain K, Hernandez W, Ansari RA, Ferder L. Inflammation, oxidative stress and renin angiotensin system in atherosclerosis. World J Biol Chem. 2015 Aug 26;6(3):209-17. doi: 10.4331/ wjbc.v6.i3.209.
2. Ruparelia N, Chai JT, Fisher EA, Choudhury RP. Inflammatory processes in cardiovascular disease: a route to targeted therapies. Nat Rev Cardiol. 2017 Mar;14(3):133-144. doi: 10.1038/nrcardio.2016.185.
3. White GE, Iqbal AJ, Greaves DR. CC chemokine receptors and chronic inflammation — therapeutic opportunities and pharmacological challenges. Pharmacol Rev. 2013 Jan 8;65(1):47-89. doi: 10.1124/pr.111.005074.
4. Sokolova LK, Pushkarev VM, Pushkarev VV, Tronko MD. Diabetes and atherosclerosis. Cellular mechanisms of the pathogenesis (review). Endokrynologia. 2017;22(2):127-138.
5. Aird WC. Phenotypic heterogeneity of the endothelium: I. Structure, function, and mechanisms. Circ Res. 2007;100:158-173. doi: 10.1161/01.RES.0000255691.76142.4a.
6. Xiao L, Liu Y, Wang N. New paradigms in inflammatory signaling in vascular endothelial cells. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2014 Feb;306(3):H317-25. doi: 10.1152/ajp-heart.00182.2013.
7. Chistiakov DA, Melnichenko AA, Orekhov AN, Bobryshev YV. How do macrophages sense modified low-density lipoproteins? Int J Cardiol. 2017 Mar 1;230:232-240. doi: 10.1016/j. ijcard.2016.12.164.
8. Tousoulis D, Kampoli AM, Papageorgiou N, et al. Pathophysiology of atherosclerosis: the role of inflammation. Curr Pharm Des. 2011;17(37):4089-4110. PMID: 22204371.
9. Dunn J, Simmons R, Thabet S, Jo H. The role of epigenetics in the endothelial cell shear stress response and atherosclerosis. Int J Biochem Cell Biol. 2015 Oct;67:167-76. doi: 10.1016/j.bio-cel.2015.05.001.
10. Brevetti G, Giugliano G, BrevettiL, Hiatt WR. Inflammation in peripheral artery disease. Circulation. 2010 Nov 2;122(18):1862-75. doi: 10.1161/CIRCULATI0NAHA.109.918417.
11. Ivanova EA, Bobryshev YV, Orekhov AN. LDL electronegativity index: a potential novel index for predicting cardiovascular disease. Vasc Health Risk Manag. 2015 Aug 28;11:525-32. doi: 10.2147/VHRM.S74697.
12. Soran H, Durrington PN. Susceptibility of LDL and its subfractions toglycation. Curr Opin Lipidol. 2011 Aug;22(4):254-61. doi: 10.1097/M0L.0b013e328348a43f.
13. Carracedo J, Merino A, Briceno C, et al. Carbamylated low-density lipoprotein induces oxidative stress and accelerated senescence in human endothelial progenitor cells. FASEB J. 2011 Apr;25(4):1314-22. doi: 10.1096/fj.10-173377.
14. Alique M, Luna C, Carracedo J, Ramirez R.. LDL biochemical modifications: a link between atherosclerosis and aging. Food Nutr Res. 2015 Dec 3;59:29240. doi: 10.3402/fnr. v59.29240. eCollection 2015.
15. Orekhov AN, Bobryshev YV, Sobenin IA, Melnichenko AA, Chistiakov DA. Modified low density lipoprotein and lipopro-tein-containing circulating immune complexes as diagnostic and prognostic biomarkers of atherosclerosis and type 1 diabetes mac-rovascular disease. Int J Mol Sci. 2014 Jul 21;15(7):12807-41. doi: 10.3390/ijms150712807.
16. Yoshida H, Kisugi R. Mechanisms of LDL oxidation. Clin Chim Acta. 2010 Dec 14;411(23-24):1875-82. doi: 10.1016/j. cca.2010.08.038.
17. Wittwer J, Hersberger M. The two faces of the 15-lipoxy-genase in atherosclerosis. Prostaglandins Leukot Essent Fatty Acids. 2007Aug;77(2):67-77. doi: 10.1016/j.plefa.2007.08.001.
18. Delporte C, Boudjeltia KZ, Noyon C, et al. Impact of myeloperoxidase-LDL interactions on enzyme activity and subsequent posttranslational oxidative modifications of apoB-100. J Lipid Res. 2014 Apr;55(4):747-57. doi: 10.U94/jlr.M047449.
19. Fogelstrand P, Boren J. Retention of atherogenic lipoproteins in the artery wall and its role in atherogenesis. Nutr Metab CardiovascDis. 2012 Jan;22(1):1-7. doi: 10.1016/j.num-ecd.2011.09.007.
20. Yurdagul AJr, Green J, Albert P, Mclnnis MC, Mazar AP, Orr AW. a5fS1 integrin signaling mediates oxidized low-density lipoprotein-induced inflammation and early atherosclerosis. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2014 Jul;34(7):1362-73. doi: 10.1161/ATVBAHA.114.303863.
21. Zani IA, Stephen SL, Mughal NA, Russell D, Homer-Vanniasinkam S, Wheatcroft SB, Ponnambalam S. Scavenger receptor structure and function in health and disease. Cells. 2015 May 22;4(2):178-201. doi: 10.3390/cells4020178.
22. Prabhudas M, Bowdish D, Drickamer K, et al. Standardizing scavenger receptor nomenclature. J Immunol. 2014 Mar 1;192(5):1997-2006. doi: 10.4049/jimmunol.1490003.
23. Moore KJ, Sheedy FJ, Fisher EA. Macrophages in atherosclerosis: a dynamic balance. Nat Rev Immunol. 2013 0ct;13(10):709-21. doi: 10.1038/nri3520.
24. Manning-Tobin JJ, Moore KJ, Seimon TA, et al. Loss of SR-A and CD36 activity reduces atherosclerotic lesion complexity without abrogating foam cell formation in hyperlipidemic mice. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2009 Jan;29(1):19-26. doi: 10.1161/ATVBAHA.108.176644.
25. Bobryshev YV, Ivanova EA, Chistiakov DA, Nikiforov NG, Orekhov AN. Macrophages and their role in atherosclerosis: pathophysiology and transcriptome analysis. Biomed Res Int. 2016;9582430:1-13. doi: 10.1155/2016/9582430.
26. Li N, McLaren JE, Michael DR, Clement M, Fielding CA, Ramji DP. ERK is integral to the IFN-y-mediated activation of STAT1, the expression of key genes implicated in atherosclerosis, and the uptake of modified lipoproteins by human macrophages. J Immunol. 2010 Sep 1;185(5):3041-8. doi: 10.4049/ jimmunol.1000993.
27. Chistiakov DA, Bobryshev YV, Orekhov AN. Macrophage-mediated cholesterol handling in atherosclerosis. J Cell Mol Med. 2016 Jan;20(1):17-28. doi: 10.1111/jcmm.12689.
28. Radhika A, Sudhakaran PR. Upregulation of macrophage-specific functions by oxidized LDL: lysosomal degradation-dependent and -independent pathways. Mol Cell Biochem. 2013 Jan;372(1-2):181-90. doi: 10.1007/s11010-012-1459-8.
29. Sheedy FJ, Grebe A, Rayner KJ, et al. CD36 coordinates NLRP3 inflammasome activation by facilitating intracellular nucle-ation of soluble ligands into particulate ligands in sterile inflammation. Nat Immunol. 2013 Aug;14(8):812-20. doi: 10.1038/ni.2639.
30. Cook-Mills JM, Deem TL. Active participation of endothelial cells in inflammation. JLeukoc Biol. 2005Apr;77(4):487-95. doi: 10.1189/jlb.0904554.
31. Ley K, Laudanna C, Cybulsky MI, Nourshargh S. Getting to the site of inflammation: the leukocyte adhesion cascade updated. Nat Rev Immunol. 2007Sep;7(9):678-89. doi: 10.1038/nri2156.
32. Rahman A, Fazal F. Blocking NF-kappaB: an inflammatory issue. Proc Am Thorac Soc. 2011 Nov;8(6):497-503. doi: 10.1513/pats.201101-009MW.
496
Mi>KHapOAHHI/l eHAOKpMHOAOrMHMI/l XypHaA, p-ISSN 2224-0721, e-ISSN 2307-1427
TOM 13, № 7, 2017
33. Pushkarev VM, Kovzun OI, Pushkarev VV, Guda BB, Tronko MD. Chronic inflammation and cancer. Role of nuclear factor NF-kB. J. NAMS Ukraine. 2015;21(3-4):287-298.
34. Silke J. The regulation of TNF signalling: what a tangled web we weave. Curr Opin Immunol. 2011 Oct;23(5):620-6. doi: 10.1016/j.coi.2011.08.002.
35. Pushkarev VM, Sokolova LK, Kovzun OI, Pushkarev VV, Tronko MD. Involvement of nuclear factor NF-kB in the patho-genesis of type 1 diabetes. Endokrynologia. 2016;21(3):225-238. (in Ukrainian)
36. Taleb S. Inflammation in atherosclerosis. Arch Car-diovasc Dis. 2016 Dec;109(12):708-715. doi: 10.1016/j. acvd.2016.04.002.
37. Tobias PS, Curtiss LK.. Toll-like receptors in atherosclerosis. Biochem Soc Trans. 2007Dec;35(Pt 6):1453-5. doi: 10.1042/ BST0351453.
38. Gay NJ, Gangloff M. Structure and function of Toll receptors and their ligands. Annu Rev Biochem. 2007;76:141-65. doi: 10.1146/annurev.biochem.76.060305.151318.
39. Kawai T, Akira S. The role of pattern-recognition receptors in innate immunity: update on Toll-like receptors. Nat Immunol. 2010 May;11(5):373-84. doi: 10.1038/ni.1863.
40. Pryshchep O, Ma-Krupa W, YoungeBR, Goronzy JJ, Wey-and CM. Vessel-specific Toll-like receptor profiles in human medium and large arteries. Circulation. 2008 Sep 16;118(12):1276-84. doi: 10.1161/CIRCULATIONAHA.108.789172.
41. Curtiss LK, Tobias PS. Emerging role of Toll-like receptors in atherosclerosis. J Lipid Res. 2009 Apr;50 Suppl:S340-5. doi: 10.1194/jlr.R800056-JLR200.
42. Su X, Ao L, Shi Y, Johnson TR, Fullerton DA, Meng X. Oxidized low density lipoprotein induces bone morphogenetic pro-tein-2 in coronary artery endothelial cells via Toll-like receptors 2 and 4. J Biol Chem. 2011 Apr 8;286(14):12213-20. doi: 10.1074/ jbc.M110.214619.
43. Seimon TA, Nadolski MJ, Liao X, et al. Atherogenic lipids and lipoproteins trigger CD36-TLR2-dependent apoptosis in macrophages undergoing endoplasmic reticulum stress. Cell Metab. 2010Nov3;12(5):467-82. doi: 10.1016/j.cmet.2010.09.010.
44. Stewart CR, Stuart LM, Wilkinson K, et al. CD36 ligands promote sterile inflammation through assembly of a Toll-like receptor 4 and 6 heterodimer. Nat Immunol. 2010 Feb;11(2):155-61. doi: 10.1038/ni.1836.
45. Ting JP, Lovering RC, Alnemri ES, et al. The NLR gene family: a standard nomenclature. Immunity. 2008Mar;28(3):285-7. doi: 10.1016/j.immuni.2008.02.005.
46. Schroder K, Tschopp J. The inflammasomes. Cell. 2010 Mar 19;140(6):821-32. doi: 10.1016/j.cell.2010.01.040.
47. Kahlenberg JM, Thacker SG, Berthier CC, Cohen CD, Kretzler M, Kaplan MJ. Inflammasome activation of IL-18results in endothelial progenitor cell dysfunction in systemic lupus erythematosus. J Immunol. 2011 Dec 1;187(11):6143-56. doi: 10.4049/ jimmunol.1101284.
48. Xiang M, Shi X, Li Y,et al. Hemorrhagic shock activation of NLRP3 inflammasome in lung endothelial cells. J Immunol. 2011 Nov 1;187(9):4809-17. doi: 10.4049/jimmunol.1102093.
49. Moore KJ, Tabas I. Macrophages in the pathogenesis of atherosclerosis. Cell. 2011 Apr 29;145(3):341-55. doi: 10.1016/j. cell.2011.04.005.
50. Ginhoux F, Jung S. Monocytes and macrophages: developmental pathways and tissue homeostasis. Nat Rev Immunol. 2014 Jun;14(6):392-404. doi: 10.1038/nri3671.
51. Orekhov AN, Bobryshev YV, Chistiakov DA. The complexity of cell composition of the intima of large arteries: focus on pericyte-like cells. Cardiovasc Res. 2014 Sep 1;103(4):438-51. doi: 10.1093/cvr/cvu168.
52. Feil S, Fehrenbacher B, Lukowski R, et al. Transdifferentiation of vascular smooth muscle cells to macrophage-like cells during atherogenesis. Circ Res. 2014 Sep 12;115(7):662-7. doi: 10.1161/CIRCRESAHA.
53. Combadiere C, Potteaux S, Rodero M, et al. Combined inhibition of CCL2, CX3CR1, and CCR5 abrogates Ly6Chi and Ly6C° monocytosis and almost abolishes atherosclerosis in hyper-cholesterolemic mice. Circulation. 2008 Apr 1;117(13):1649-57. doi: 10.1161/CIRCULATIONAHA.107.745091.
54. Novoselov VV, Sazonova MA, Ivanova EA, Orekhov AN. Study of the activated macrophage transcriptome. Exp Mol Pathol. 2015Dec;99(3):575-80. doi: 10.1016/j.yexmp.2015.09.014.
55. Chistiakov DA, Bobryshev YV, Nikiforov NG, Elizova NV, Sobenin IA, Orekhov AN. Macrophage phenotypic plasticity in atherosclerosis: the associated features and the peculiarities of the expression of inflammatory genes. Int J Cardiol. 2015 Apr 1;184:436-45. doi: 10.1016/j.ijcard.2015.03.055.
56. Murray P, Allen J, Biswas S, et al. Macrophage activation and polarization: nomenclature and experimental guidelines. Immunity. 2014Jul 17;41(1):14-20. doi: 10.1016/j.immuni.2014.06.008.
57. Cochain C, Zernecke A. Macrophages in vascular inflammation and atherosclerosis. Pflugers Arch. 2017 Apr;469(3-4):485-499. doi: 10.1007/s00424-017-1941-y.
58. Boyle JJ, Harrington HA, Piper E, et al. Coronary in-traplaque hemorrhage evokes a novel atheroprotective macrophage phenotype. Am J Pathol. 2009 Mar;174(3):1097-108. doi: 10.2353/ajpath.2009.080431.
59. Boyle JJ, Johns M, Kampfer T, et al. Activating transcription factor 1 directs Mhem atheroprotective macrophages through coordinated iron handling andfoam cell protection. Circ Res. 2012 Jan 6;110(1):20-33. doi: 10.1161/CIRCRESAHA.111.247577.
60. Jiang Y, Wang M, Huang K, et al. Oxidized low-density lipoprotein induces secretion of interleukin-1ßby macrophages via reactive oxygen species-dependent NLRP3 inflammasome activation. Biochem Biophys Res Commun. 2012 Aug 24;425(2):121-6. doi: 10.1016/j.bbrc.2012.07.011.
61. Rajamaki K, Lappalainen J, Oorni K, et al. Cholesterol crystals activate the NLRP3 inflammasome in human macrophages: a novel link between cholesterol metabolism and inflammation. PLoS One. 2010Jul23;5(7):e11765. doi: 10.1371/journal.pone.0011765.
62. Huang Z, Li W, Wang R, Zhang F, et al. 7-Ketocholes-teryl-9-carboxynonanoate induced nuclear factor-kappa B activation in J774A.1 macrophages. Life Sci. 2010 Nov 20;87(19-22):651-7. doi: 10.1016/j.lfs.2010.09.028.
63. Dasu MR, Jialal I. Free fatty acids in the presence of high glucose amplify monocyte inflammation via Toll-like receptors. Am J Physiol Endocrinol Metab. 2011 Jan;300(1):E145-54. doi: 10.1152/ajpendo.00490.2010.
64. Ishiyama J, Taguchi R, Yamamoto A, Murakami K. Palmitic acid enhances lectin-like oxidized LDL receptor (LOX-1) expression and promotes uptake of oxidized LDL in macrophage cells. Atherosclerosis. 2010 Mar;209(1):118-24. doi: 10.1016/j. atherosclerosis.2009.09.004.
65. Sanson M, Distel E, Fisher EA. HDL induces the expression of the M2 macrophage markers arginase 1 and fizz-1 in a STAT6-dependent process. PLoS One. 2013Aug 21;8(8):e74676. doi: 10.1371/journal.pone.0074676. eCollection 2013.
66. De Paoli F, Staels B, Chinetti-Gbaguidi G. Macrophage phenotypes and their modulation in atherosclerosis. Circ J. 2014;78(8):1775-1781. PMID: 24998279.
67. Kappus MS, Murphy AJ, Abramowicz S, et al. Activation of liver X receptor decreases atherosclerosis in Ldlr / mice in the absence of ATP-binding cassette transporters A1 and G1 in myeloid cells. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2014 Feb;34(2):279-84. doi: 10.1161/ATVBAHA.113.302781.
68. Liao X, Sluimer JC, Wang Y, et al. Macrophage autopha-gy plays a protective role in advanced atherosclerosis. Cell Metab. 2012Apr4;15(4):545-53. doi: 10.1016/j.cmet.2012.01.022.
69. Shah MS, Brownlee M. Molecular and cellular mechanisms of cardiovascular disorders in diabetes. Circ Res. 2016 May 27;118(11):1808-29. doi: 10.1161/CIRCRESAHA.116.306923.
70. Fadini GP, Menegazzo L, Scattolini V, Gintoli M, Al-biero M, Avogaro A. A perspective on NETosis in diabetes and cardiometabolic disorders. Nutr Metab Cardiovasc Dis. 2016 Jan;26(1):1-8. doi: 10.1016/j.numecd.2015.11.008.
71. Wong SL, Demers M, Martinod K,et al. Diabetes primes neutrophils to undergo NETosis, which impairs wound healin. Nat Med. 2015 Jul;21(7):815-9. doi: 10.1038/nm.3887.
72.. Lee HM, Kim JJ, Kim HJ, Shong M, Ku BJ, Jo EK Upregu-lated NLRP3 inflammasome activation in patients with type 2 diabetes. Diabetes. 2013 Jan;62(1):194-204. doi: 10.2337/db12-0420.
73. Guo H, Callaway JB, Ting JP. Inflammasomes: mechanism of action, role in disease, and therapeutics. Nat Med. 2015 Jul;21(7):677-87. doi: 10.1038/nm.3893.
74. Misawa T, Takahama M, Kozaki T, et al. Microtubule-driven spatial arrangement of mitochondria promotes activation of the NLRP3 inflammasome. Nat Immunol. 2013 May;14(5):454-60. doi: 10.1038/ni.2550.
75. Iyer SS, He Q, Janczy JR, Elliott EI, et al. Mitochondrial cardiolipin is requiredfor Nlrp3 inflammasome activation. Immunity. 2013Aug22;39(2):311-323. doi: 10.1016/j.immuni.2013.08.001.
76. Im SS, YousefL, Blaschitz C, et al. Linking lipid metabolism to the innate immune response in macrophages through ste-rol regulatory element binding protein-la. Cell Metab. 2011 May 4;13(5):540-9. doi: 10.1016/j.cmet.2011.04.001.
77. Du X, Edelstein D, Obici S, Higham N, Zou MH, Brownlee M. Insulin resistance reduces arterial prostacyclin synthase and eNOS activities by increasing endothelial fatty acid oxidation. J Clin Invest. 2006Apr;116(4):1071-80. doi: 10.1172/JCI23354.
78. Ait-Oufella H, Taleb S, Mallat Z, Tedgui A. Recent advances on the role of cytokines in atherosclerosis. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2011 May;31(5):969-79. doi: 10.1161/AT-VBAHA.110.207415.
79. Kimura T, Tse K, Sette A, Ley K. Vaccination to modulate atherosclerosis. Autoimmunity. 2015 May;48(3):152-60. doi: 10.3109/08916934.2014.1003641.
80. Wolf D, Zirlik A, Ley K. Beyond vascular inflammation-recent advances in understanding atherosclerosis. Cell Mol Life Sci. 2015 0ct;72(20):3853-69. doi: 10.1007/s00018-015-1971-6.
Получено 17.09.2017 ■
СоколоваЛ.К., Пушкарьов В.М., Пушкарьов В.В., Ковзун О.1., Тронько М.Д.
ДУ «Нститут ендокринологИ та обмну речовин iм. В.П. Комсаренка НАМН УкраНи», м. Кив, Украна
Цукровий дiабет i атеросклероз. Роль процеав запалення у патогенез! (огляд лператури)
Резюме. В оглядi лггератури узагальнено i проаналiзова-но матерiал, присвячений запальним процесам, що супро-воджують серцево-судинш ускладнення при цукровому дiабетi (ЦД). Показана роль ендотелiальноi дисфункци, що приводить до тдвищення проникносп ендотелш, на-копичення в сттнщ судини лшопротмшв, iх модифшаци, утворення i секреци молекул клiтинноi адгези, що, в свою чергу, призводить до залучення моноцитав i iх диферен-щаци в запальш макрофаги. Вщзначено роль рецепторiв-скавенджерiв в депонуванш холестерину i формуванш тнистих клгшн. Детально розглянуп мехашзми шшДаци
запального процесу й утворення шфламасом. Описана схема трансдукци прозапальних сигналiв у клигсш i участь ключового фактора NF-кB, штегруючого всю шформа-цш, що надходить, i контролюючого трансактиващю ге-шв, що беруть участь в запаленш. Показано, що запальш процеси е ключовими в розвитку захворювань судин при ЦД, а пригшчення цих процешв гальмуе прогресування хвороби, зменшуючи пошкодження артерш i сприяючи iх загоенню.
Ключовi слова: цукровий дiабет; атеросклероз; запалення; NF-кB; огляд
L.K. Sokolova, V.M. Pushkarev, V.V. Pushkarev, O.I. Kovzun, M.D. Tronko
State Institution "V.P. Komisarenko Institute of Endocrinology and Metabolism of the NAMS of Ukraine", Kyiv, Ukraine
Diabetes mellitus and atherosclerosis. The role of inflammatory processes in pathogenesis (literature review)
Abstract. The review of the literature summarizes and analyzes the material on inflammatory processes accompanying cardiovascular complications in diabetes mellitus. The role of endothelial dysfunction is shown leading to an increase in the permeability of the endothelium, accumulation of lipoproteins in the vessel wall, their modification, formation and secretion of cell adhesion molecules, which in turn leads to involvement of monocytes and their differentiation into inflammatory macrophages. The role of scavenger receptors in the deposition of cholesterol and the formation of foam cells was noted. The mechanisms of the inflammatory process initiation and the for-
mation of inflammasomes are considered in detail. The scheme of transduction of proinflammatory signals in the cell and participation of the key factor NF-kB integrating all incoming information and controlling the transactivation of genes involved in inflammation are described. It is shown that inflammation is key process in the development of vascular diseases in diabetes mellitus, and the suppression of these processes inhibits the progression of the disease reducing arterial damage and contributing to their healing.
Keywords: diabetes mellitus; atherosclerosis; inflammation; NF-kB; review
