CC BY
19УДК 617-089.5:619 Аксенова П. В.
РИСК РАЗВИТИЯ ПОСТАНЕСТЕЗИОННОЙ МИОПАТИИ У ЗУБРОВ
Автор выражает благодарность Всемирному фонду дикой природы за предоставленную возможность проведения исследований
Ключевые слова: зубр, анестезия, дистанционный инъектор, рабдомиолиз, агонисты а2-адренорецепторов, миопатия, гипертермия, гипоксемия, гиперкарбия, гиперкалиемия, метаболический ацидоз, миотония, ригидность мускулатуры.
Резюме: Зубры являются сложным объектом для анестезии. Острый рабдомиолиз с прогрессирующей миоглобинурией, вызывающей острую почечную недостаточность, и явлениями общей интоксикации является одним из самых тяжелых осложнений, связанных с анестезией этих животных. Риск развития постанестезионной миопатии у зубров варьирует в пределах 2,8-16,7 % в зависимости от условий обездвиживания и схемы анестезии. Синдром может возникать самостоятельно или как кульминация гипертермии. Одной из основных причин развития патологии считается гипоксемия, возникающая под действием анестетиков. Предрасполагающими факторами являются страх и увеличение мышечной активности во время манипуляций, большие размеры и вес зверя, анемические явления, возникающие из-за сдавливания сосудов конечностей под весом лежащего животного. Заболевание, как правило, злокачественно. В статье рассмотрен механизм развития миопатии. Проведен анализ анестезирующих веществ с учетом риска мио-патии. Предложены мероприятия, минимизирующие опасность возникновения патологии при анестезии зубров.
Зубр (Bison bonasus) относится к роду бизонов, куда, кроме него, входит еще американский бизон (Bison bison). Оба вида способны скрещиваться друг с другом и давать плодовитое потомство [1]. Зубр единственный дикий вид крупных быков Европы, сохранившийся до настоящего времени. Зубры были полностью истреблены в дикой природе в начале прошлого века. Содержавшиеся в зоопарках разных стран 12 животных стали родоначальниками современных зубров. Все ныне существующие природные популяции являются результатом реинтродукции животных, выращенных в центрах разведения [2-4]. В настоящее время процесс реабилитации зубров продолжается.
Особенности анестезии зубров
Зубр является чрезвычайно трудным объектом для анестезии. Иммобилизация зубров может потребоваться по ряду причин. В первую очередь это транспортировка, мечение, обследование либо плановые зооветеринарные мероприятия. К внеплановым показаниям к анестезии относятся травмы, дистоции и другие заболевания, требующие экстренного ветеринарного вмешательства [5-8].
Анестезия диких животных имеет свои
особенности:
• Наркоз вводится дистанционно, с помощью дистанционного инъектора и шприца-дротика. Соответственно, он должен быть инъекционным, вводиться внутримышечно и с большой скоростью.
• Действие наркоза должно наступать как можно быстрее, чтобы животное не успело уйти из зоны наблюдения и там травмироваться или стать жертвой агрессии других животных.
• Наркоз должен быть быстро и полностью обратимым (по той же причине).
• Так как зубры могут быть смертельно опасными для человека, наркоз должен быть достаточно надежным и прогнозируемым по времени действия.
• В связи с тем, что анестезирующее вещество в организм доставляется с помощью шприцов-дротиков, объем раствора должен быть как можно меньше, чтобы не снижалась точность выстрела.
Классические осложнения анестезии для зубров, как для всех жвачных животных, включают тимпанию рубца, регур-гитацию и гипоксемию. Зубр также чрезвычайно предрасположен к гипертермии и миопатии, которая может возникать во время или после анестезии. Если с развитием ветеринарной анестезиологии риск
классических осложнений снижается, то риск развития постанестезионной миопа-тии остается очень высоким и варьирует у зубров в пределах 2,8-14,7 % в зависимости от условий обездвиживания и схемы анестезии.
Клиническое проявление постанестезионной миопатии
Осложнение может развиться как во время наркоза, так и после него (рис.1). Клиническое проявление миопатии, помимо того, что животное не может поднять-
ся, включает мышечную ригидность, высокую температуру тела, метаболический ацидоз, гиперкалиемию и сердечную аритмию [9-11]. Иногда животное благополучно встает и убегает в стадо, однако через некоторое время ложится и подняться уже не может. Все попытки поднять животное с помощью блоков, веревок и пр. безуспешны, и только усугубляют страдания животного. Заболевание, как правило, злокачественно.
Обычно поражаются мышцы задних конечностей. Однако автор наблюдал слу-
чай постанестезионной миопатии у 1,5-летней зубрицы, когда животное было обездвижено полностью в течение нескольких суток. При этом жевательные рефлексы и руминация сохранялись. Животное получало терапию в виде инъекций глю-кокортикостероидов, препаратов селена и витамина В12. На 7-е сутки восстановились мышцы туловища и шеи, еще через несколько дней - мышцы грудной и тазовой конечностей с левой стороны. Конечности правой стороны так и не восстановились. Зубрица погибла на 34 сутки заболевания с симптомами уремической комы и интоксикации.
Механизм развития постанестезионной миопатии
Острый рабдомиолиз с прогрессирующей миоглобинурией является одним из самых тяжелых осложнений, связанных с анестезией крупных парнокопытных [12].
Синдром может возникать самостоятельно или как кульминация гипертермии. Вероятно, в случае анестезии диких зубров синдром комбинируется с фактором шоковой (сирШге) миопатии, что значительно усугубляет патологическое воздействие и делает его необратимым.
Считается, что одной из основных причин развития патологии является гипоксе-мия, возникающая под действием анестетиков. Предрасполагающими факторами являются страх и паника во время манипуляций, увеличение мышечной активности, большие размеры и вес зверя, анемические явления, возникающие из-за сдавливания сосудов в конечностях под весом лежащего животного. Имеются также предположения [13, 14], что высокая стартовая активность креатинкиназы может иметь влияние на возникновение миопатии.
Рабдомиолиз, характеризующийся разрушением мышечной ткани, индуцирует
резкое повышение уровня креатинкиназы и миоглобина в системе кровообращения. Глыбки миоглобина и гематина во множестве оседают в почечных клубочках, обту-рируют почечные канальцы, вызывая развитие острой почечной недостаточности. Кроме скелетной мускулатуры поражается также и сердечная мышца, хотя менее выражено. Под воздействием токсинов распадающейся ткани развивается токсическая дистрофия печени, в большей или
ядер, нарушение структуры и фрагментации мышечных волокон, выражена экссудация эозинофильного материала в интер-стициальную ткань. Между гиалинизиро-ванными и фрагментированными волокнами во множестве отмечают макрофаги и полиморфноядерные нейтрофилы.
Сердце без видимых изменений. При гистологическом исследовании микарди-оциты бледные, с признаками гиалиниза-ции. Ядра пикнотизированы, интенсивно окрашены, сморщенные; встречаются распавшиеся ядра.
Почки набухшие, темные, неоднородно окрашены, с сильным запахом мочи. Слизистая почечной полости утолщенная, слоистая, пропитана коллоидизированной мочой. Микроскопически в клетках и просвете канальцев отмечены множественные скопления красно-коричневого пигмента (миоглобина), сами клетки бледно окрашены, с признаками дегенерации. Имеются множественные фокусы некроза ка-нальцевого эпителия (рис. 3).
Печень дряблая, темно-вишневого цве-
меньшей степени, поражаются остальные органы и ткани.
При патологоанатомическом вскрытии пораженные мышцы темного цвета, неравномерно окрашены: темно-красная ткань пронизана крупными бледно-розовыми и бурыми полосами и пятнами. Имеются очаги некроза размером от просяного зерна до полос в несколько сантиметров длиной (рис. 2).
Микроскопически наблюдают распад
та. Капилляры расширены, переполнены кровью. При гистологическом исследовании границы клеток и очертания трабекул стушеваны, местами балочная структура разрушена, сохранившиеся гепатоциты с признаками жирового перерождения.
Легкие уплотненной консистенции, отечны. Множественные кровоизлияния, как точечные, так и охватывающие целые дольки (рис. 4). В основном поражены верхушечные и сердечные доли.
Слизистая сычуга и кишечника воспалена. В слизистом (в большей степени в сычуге) и серозном слоях на всем желудочно-кишечном тракте отмечены множественные диапедезные кровоизлияния (рис. 5).
Снижение риска развития миопатии
В настоящее время нет безопасных и надежных препаратов для иммобилизации и анестезии зубров. Поэтому, чтобы свести к минимуму отрицательные воздействия при подборе препаратов, надо стремиться к достижению надежного эффекта при
Рис. 3. Поражение почек
Рис. 4. Множественные точечные и очаговые кровоизлияния в легких
Рис. 5. Кровоизлияния в сычуге
введении возможно меньших доз анестезирующих веществ.
Миотония и связанные с ней клинические проявления обычно вызываются де-поляризационными миорелаксантами [9, 10, 15-17]. Согласно медицинским обзорам сукцинилхолин, дитилин и другие деполяризующие препараты в общей анестезии могут вызывать гиперкалиемию, сопровождающуюся фатальной желудочковой аритмией, фасцикуляцию и микротравмы мускулатуры, миотонию и злокачественную гипертермию [18-21]. Высокая смертность среди животных при применении этих препаратов связана с угнетением дыхания и постанестезионной миопатией [2224]. Другие критические побочные эффекты анестетиков характеризуются мышечными спазмами и локализованной или генерализованной ригидностью скелетной мускулатуры [9, 10, 15, 16, 18]. Распростра-
нение мышечной ригидности, связанной с гипертермией, индуцированной центральной нервной системой, может быть индуцировано также нейролептиками: бутиро-фенонами и фенотиазинами [25].
Ниже приведен список анестезирующих препаратов, которых следует избегать при анестезии склонных к миопатии животных, а также препаратов, которые считаются относительно безопасными с точки зрения провоцирования миопатии. Список составлен на основании научных обзоров, приведенных в ветеринарной и медицинской литературе [9-11, 13-17, 20-35], и практического опыта.
Препараты, с повышенным риском миопатии:
• Опиоиды / не доступны* ;
• Сукцинилхолин, дитилин и аналоги;
• Бутирофеноны / Азаперон (Стрес-
нил, Стресгард) *;
• Фенотиазины / Аминазин, Пропа-зин, Ацепромазин (Веттранквил, Комби-стресс)*.
Относительно безопасные препараты:
• Барбитураты с коротким периодом полураспада;
• Бензодиазепины/Золазепам (в составе Телазол, Золетил)*;
• Кетамин / не доступен. Схожим механизмом действия обладает Тилетамин (в составе Телазол, Золетил)*;
• Пропофол;
• Аминостероидные соединения (Ro-curonium, Vecuronium);
• Тиопентал Na / не применяется при дистанционном введении;
• Местные анестетики.
Учитывая склонность жвачных животных к гипоксемии во время анестезии аго-нисты а2-адренорецепторов, которые вызывают гипоксемию, также являются препаратами риска: как ксилазин (Ксила, Ром-пун, Рометар*) [36-38], так и детомидин (Домоседан, Детомидин и пр.*) [38] и ме-детомидин (Домитор, Медитин 1 %, Доминал, Дорбен, Седин и пр.*) [36, 38-42] в равной степени.
Именно из-за этой особенности препараты, несмотря на многие неоспоримые достоинства, не рекомендуется использовать в чистом виде при анестезии жвачных животных [24]. Однако в сочетании с диссоциативным анестетиком - тилетами-ном и бензодиазепином - золазепамом а2-агонисты дают вполне жизнеспособные комбинации.
Известны отчеты об эффективном применении комбинации медетоми-дин/золазепам/тилетамин у диких животных: шимпанзе [43], орангутанов, гиббонов, яванских макак, лапундеров [44], белых медведей [45, 46], бурых медведей [46], барибалов [46, 47], различных зоопарко-вых животных [48, 49], кошачьих лемуров, львов, ягуаров, волков, енотов, пятнистых гиен, пятнистых оленей (автор., неопубл.)
Несмотря на то, что медетомидин является более сильным и селективным аго-нистом а2-адренорецептора [36], чем кси-лазин, сочетание ксилазин/золазепам/ти-летаминтакже успешно применялось при анестезии различных животных: медведей [46], овец [50] (из 6 овец у 2-х наблюдалась обратимое апное), белохвостых оленей
* Звездочкой обозначены ветеринарные дже-нерики, разрешенные к применению в РФ
[51], вапити [52].
Исследования, проведенные на зубрах и американских бизонах (которые также можно экстраполировать на зубров) свидетельствуют, что обе эти комбинации эффективны и для обездвиживания зубров [23, 24].
N. А. СаиШви с соавт. провели исследование для сравнения эффективности этих двух комбинаций анестетиков для иммобилизации бизонов [23]. Сравнивались временные характеристики иммобилизиру-ющего эффекта и основные физиологические показатели (температура тела, рН крови, параметры сердечно-сосудистой и дыхательной деятельности).
Авторы применяли комбинацию кси-лазин/тилетамин-золазепам (Ромпун/Тела-зол) в дозе: 1,5 мг/кг ксилазина, 1,5 мг/кг золазепама и 1,5 мг/кг тилетамина и комбинацию медетомидин/тилетамин-зола-зепам (Медетомидин/Телазол) в дозах: 60 мкг/кг медетомидина, 0,6 мг/кг золазепама и 0,6 мг/кг тилетамина. Выведение из наркоза обеспечивали 3 мг/кг толазолина гидрохлорида и 180 мкг/кг атипамезола для нейтрализации действия ксилазина и меде-томидина соответственно, согласно рекомендациям [49].
При применении комбинации КЗТ (ксилазин/золазепам/тилетамин) индукция анестезии наступала быстрее (8,8 мин. против 5,5 мин.). Однако прерывание наркоза и восстановление функций после введения антагониста было значительно быстрее при использовании комбинации МЗТ (медетомидин/золазепам/тилетамин) (1,7 мин. против 11,8 мин.). Вероятно, это связано с тем, что атипамезол представляет собой более селективный препарат а2-антагониста, чем толазолин [53]. Обе комбинации вызывали гипоксемию (Ра02<60 мм рт. ст.), причем в первые 30 мин. наркоза преимущество было у комбинации МЗТ (59-52 мм рт. ст. против 53-44 мм рт. ст.). Далее у животных, иммобилизованных меде-томидином Ра02 продолжало снижаться, а при комбинации с ксилазином, наоборот, плавно росло, хотя и оставалось низким. Гиповентиляция была значительно более серьезной при использовании комбинации КЗТ (РаС02 оставался <60 мм рт. ст.), вероятно из-за более высокой дозы тилета-мина-золазепама [54]. Артериальное давление было значительно выше с МЗТ, вероятно в результате более сильной активации периферических а2-адренорецепторов [36, 39, 55], однако не выходило за пределы, опасные для жизни здоровых животных. В
обоих случаях отмечалась незначительная брадикардия (55-63 уд./мин.) и тахипноэ. pH крови был низким в начале иммобилизации (в среднем 7,18, независимо от комбинации), вероятно, в результате увеличения мышечной активности и анаэробного метаболизма зверей при отлове и повышался со временем. Температура тела не различалась и составила в среднем 40 0С, что, вероятно, тоже отражало повышенную активность животного и стресс во время отлова. Незначительная тимпания рубца отмечалась при обеих комбинациях.
В целом авторы делают выводы, что для иммобилизации вольерных животных вполне применима комбинация ксилазин/ золазепам/тилетамин, но для иммобилизации свободноживущих зубров лучше использовать комбинацию медетомидин/зо-лазепам/тилетамин, так как у этого сочетания меньший объем раствора (примерно в 2 раза), что повышает точность полета шприца, быстрое восстановление после введения антагониста и более низкие показатели гипоксемии и гиперкапнии, что снижает риск развития миопатии.
У крупных животных гипоксемия также может быть вызвана лежачим положением. Уменьшение PaO2 может быть результатом сжатия диафрагмы массой органов брюшной полости, что приводит к увеличению венозной примеси и изменение соотношения между вентиляцией и перфузией легких.
Учитывая сложность анестезии у крупных парнокопытных, рекомендуется ок-сигенотерапия во время анестезии [56, 57]. Гипоксемия может быть следствием гипо-вентиляции, увеличения венозной примеси и низкой концентрации кислорода. Нормальное артериальное давление кислорода (PaO2) у домашних животных составляет от 80 до 100 мм рт. ст. [58]. Значения PaO2 ниже 50-60 мм рт. ст. указывают на гипок-семию и являются основанием для инсуф-ляции кислорода или искусственной вентиляции легких [59].
Исследования по терапии гипоксемии (соответственно предотвращению поста-нестезионной миопатии) у диких парнокопытных в полевых условиях были проведены на вапити [60]. Животным индуцировали наркоз посредством дистанционных инъекций в комбинации ксилазин/золазе-пам/тилетамин и фиксировали в правом боковом положении. Кислород вводили через назальный инсуфляторный катетер из портативного кислородного баллона с
регулятором со скоростью 10 л/мин. в течение 5 мин. За 5 мин. инсуфляции кислорода парциальное давление артериальной крови с 27-65 мм рт. ст. (сатурация крови кислородом SpO2 при измерении пульсок-симетром 45-91 %) повышалось до 103-284 мм рт. ст. ^р02 при измерении пульсокси-метром 92-99 %). Никаких осложнений при проведении анестезии не было.
Заключение
Постанестезионная миопатия - тяжелое заболевание. Хотя отмечены редкие случаи восстановления животных, однако они не доказаны исследованиями. В целом считается, что миопатия необратима.
Поэтому, при планировании анестезии зубров, нужно свести к минимуму все предрасполагающие факторы:
• Предотвращение гипертермии - планирование мероприятий на нежаркий, несолнечный день. При температуре выше 20 0С анестезию проводить не желательно.
• Исключение всех стрессирующих факторов: элементов погони, шума, посторонних людей и животных при анестезии животных. Желательна тактика заманивания животных в ловушку и отстрел из засады. Время преследования не должно быть более 3 мин.
• Тщательное планирование обработок для того, чтобы свести время анестезиологического воздействия к минимуму.
• Выбор анестезирующих/иммобили-зирующих средств из «безопасного» списка.
• Предотвращение передавливания сосудов конечностей - выбор положения «на боку» с выпрямленными конечностями. Под конечности желательно подложить пружинящие материалы (например, тюки сена и т.п.).
• Обязательный мониторинг основных жизненно важных показателей во время анестезии: температуры, пульса, дыхания, сатурации артериальной крови кислородом.
• Профилактика гипоксемии. Следует предусмотреть возможность применения оксигенотерапии в полевых условиях при Ра02 60 мм рт. ст. (носовая инсуфляция кислорода со скоростью 10 л/мин.).
• На случай возникновения экстренных ситуаций иметь под рукой «тревожный чемоданчик» с необходимым набором лекарств для купирования развития мио-патии на стадии гипертермии и других осложнений.
Библиографический список:
1. Dotsev A. V Study of allele pool and genetic structure
of russian population of lowland-caucasian line of european bison (BISON BONASUS) / A. V Dotsev, V V Volkova, V R. Kharzinova, O. V Kostyunina, N. A. Zinovieva, P V Aksenova, R. A. Mnatsekanov // Russian Journal of Genetics: Applied Research. -2018. - Vol. 8.- №1. - S. 31-36.
2. Цибизова Е. Л. Методы регуляции половозраст-
ного состава зубров в питомнике Окского заповедника / E. Л. Цибизова, П. В. Аксенова, А. М. Ермаков // Ветеринарная патология. - 2014. - № 1 (47). - С. 49-54.
3. Цибизова Е. Л. Особенности проявления репро-
дуктивной функции у зубра европейского ^ison bonasus) при полувольном содержании в условиях питомников / Е. Л. Цибизова, П. В. Аксенова, А. М. Ермаков // Ветеринарная патология. - 2015. - № 1 (51). - С. 54-63.
4. Цибизова Е. Л. Динамика и причины смертности
зубров (Bison bonasus) в питомнике Окского государственного природного биосферного заповедника / Е. Л. Цибизова, П. В. Аксенова, А. М. Ермаков // Ветеринария. - 2015. - № 6. - С. 13-17.
5. Аксенова П. В. Опасность микоплазмоза для ди-
ких популяций зубра (Bison bonasus). Особенности эпизоотии и патогенеза / П. В. Аксенова,
A. М. Ермаков, Л. П. Миронова, Е. Л. Цибизова // Российский ветеринарный журнал. Мелкие домашние и дикие животные. - 2014. - № 3. - С. 38-42.
6. Аксенова П. В. Болезни зубров (Bison bonasus):
встречаемость и эпизоотические особенности заболеваний зубров бактериальной этиологии / П.
B. Аксенова // Ветеринарная патология. - 2014. -№ 1 (47). - С. 51-63.
7. Аксенова П. В. Встречаемость и эпизоотические
особенности заболеваний зубров паразитарной этиологии / П. В. Аксенова // Ветеринарная патология. - 2015. - № 1 (51). - С. 28-39.
8. Аксенова П. В. Болезни зубров (Bison bonasus).
Встречаемость и эпизоотические особенности заболеваний зубров вирусной этиологии / П. В. Аксенова, А. М. Ермаков // Ветеринарная патология. - 2015. - № 3 (53). - С. 22-31.
9. Tegazzin V Update on neuromuscular diseases and
anaesthesia / V Tegazzin, C. Ori // Padova (Italy): Librerialnternazionale Cortina; 2006.
10. Schmitt H. J. Anesthesia in patients with neuromuscular disorders / H. J. Schmitt, T. Muenster // Minerva Anestesiol. 2009;75:632-637.
11. Litman R. S. Malignant hyperthermia: update on susceptibility testing / R. S. Litman, H. Rosenberg // JAMA. 2005;15:2918-2924.
12. Spraker T. R. Stress and capture myopathy in artiodactylids / T. R. Spraker // In: Fowler M, ed. Zoo and Wild Animal Medicine: Current Therapy 3. Philadelphia: WB. Saunders Co., 1993: 481-488.
13. Morandi L. High plasma creatine kinase: review of the literature and proposal for a diagnostic algorithm / L. Morandi, C. Angelini, A. Prelle et al. // Neurol Sci. 2006;27:303-311.
14. Kyriakides T. EFNS guidelines on the diagnostic approach to pauci- or asymptomatic hyperCKemia / T. Kyriakides, C. Angelini, J. Schaefer et al. // Eur J Neurol. 2010;17:767-773.
15. Anaesthesia-related events in neuromuscular disease // ActaMyologica, 2002;21:3-1.
16. Klingler W. Complications of anaesthesia in neuromuscular disorders / W. Klingler, F. LehmannHorn, K. Jurkat-Rott // NeuromusculDisord. 2005;15:195-2006.
17. Benumof J. L. Anesthesia and uncommon diseases / J. L. Benumof // Philadelphia (USA): W.B. Saunders Company; 1998.
18. Hopkins P. M. Malignant hyperthermia:
pharmacology of triggering / P M. Hopkins // Br J Anaesth. 2011;107:48-56.
19. Корнюшенков Е. А. Особенности клинической фармакологии препаратов для анестезии и седа-ции мелких домашних животных. Часть 2/Е. А. Корнюшенков // РВЖ. МДЖ. - № 1, - 2013. - С. 32-39.
20. Gurnaney H. Malignant hyperthermia and muscular dystrophies / H. Gurnaney, A. Brown, R. S. Litman // AnesthAnalg. 2009;109:1043-1048.
21. Breucking E. The incidence of severe anesthetic complications in patients and families with progressive muscular dystrophy of the Duchenne and Becker types / E. Breucking, P Reimnitz, U. Schara et al. // Anaesthesist. 2000;49:187-195.
22. Thomas W D. Chemical immobilization of wild animals / W D. Thomas // J Am Vet Med Assoc1961;138:263-265.
23. Caulkett N. A. Anesthesia of wood bison with medetomidine/zolazepam/tiletamine and xylazine/ zolazepam/tiletamine combinations / N. A. Caulkett, M. R. L. Cattet, S. Cantwell, N. Cool, W Olsen // Can Vet J 2000; 41:49-53.
24. Caulkett N. Bison (Artiodactyla: Bovidae) / N. Caulkett // In: Zoological Restraint and Anesthesia, D. Heard (Ed.) Publisher: International Veterinary Information Service (www.ivis.org), Ithaca, New York, USA. (1-Aug-2001)
25. Trevisan C. P Undiagnosed myopathy before surgery and safe anaesthesia table / C. P. Trevisan, L. M. Mongini, C Angelini and V. Tegazzin // ActaMyologica, 2013 Oct; 32(2): 100-105.
26. Racca E Recommendations for anesthesia and perioperative management of patients with neuromuscular disorders / E Racca, T. Mongini, A. Wolfler et al. // Minerva Anestesiol. 2013;79:419-433.
27. Catena V. Anesthesia and myotonic dystrophy (Steinert>s syndrome). The role of total intravenous anesthesia with propofol, cisatracurium and remifentanil.Case report / V. Catena, D. D. Del Monte, A. Rubini et al. // Minerva Anestesiol. 2007;73:475-479
28. Mosing M. I.Reversal of profound rocuronium or vecuronium-induced neuromuscular block with sugammadex in isoflurane-anaesthetised dogs / M. I. Mosing, U. Auer, E. West, R. S. Jones,J. M. Hunter // Vet J.2012 Jun;192(3):467-71.
29. Veterinary Anaesthesia and Analgesia.2002 Jan;29(1):49-53.
30. Dugdale A. H. The clinical use of the neuromuscular blocking agent rocuronium in dogs / A. H. Dugdale, W. A. Adams, R. S. Jones // Veterinary Anaesthesia and Analgesia. 2002 Jan;29(1):49-53.
31. Grong K. Haemodynamic differences between pancuronium and vecuronium in an experimental pig model / K. Grong, P.-R. Salminen, L. Stangeland, G. O. Dahle// Veterinary Anaesthesia and Analgesia, 2015, 42: 242-249
32. Relaxation of the skeletal musclesIn Veterinary Anaesthesia (Eleventh Edition), 2014: 169-194
33. Sebel P. S. Propofol: a new intravenous anesthetic / P. S. Sebel, J. D. Lowdon // Anesthesiology. 1989. 71: 260-277.
34. Haigh J. C. Capture of wood bison (Bison bisonathabascae) using carfentanil-based mixtures / J. C. Haigh, C. C. Gates // J Wildl Dis 1995;31:37-42.
35. Kock M. D. Chemical immobilization of free-ranging North American bison (Bison bison) in Badlands National Park, South Dakota / M. D. Kock, J. Berger // J Wildl Dis 1987;23:625-633.
36. Saola J. M. Cardiovascular actions of medetomidine and their reversal by atipamezole / J. M. Savola // Acta Vet Scand1989;Suppl 85:39-47.
37. Mitchell B. Respiratory function changes in sheep associated with lying in lateral recumbency and with
sedation by xylazine / B. Mitchell, T. J. Williams // J Vet Anesth1976;6:30-37.
38. Celly C. S. The comparative effect of four a2 adrenoceptor agonists (xylazine, romifidine, detomidine and medetomidine) in sheep / C. S. Celly, W N. McDonell, S. S. Young, W D. Black // J Vet Phar macolTherap1997;20:464-471.
39. Caulkett N. A. Cardiopulmonary effects of medetomidine-ketamine in domestic sheep (Ovisovis) maintained in sternal recumbency / N. A. Caulkett, T. Duke, P H. Cribb // Journal of Zoo and Wildlife Medicine1996;27:217-226.
40. Caulkett N. A. Medetomidine-ketamine and carfentanil-xylazine in mule deer and mule deer hybrids / N. A. Caulkett, J. C. Haigh, P. H. Cribb // Proc Am Coll Vet AnesthAnnu Meet, Atlanta. 1995:43.
41. Caulkett N. A. Immobilization of free-ranging woodland caribou (Rangifer tarandus caribou) with medetomidineketamine and reversal with atipamezole / N. A. Caulkett, W. J. Rettie, J. C. Haigh // Proc Am Assoc Zoo Wildl Vet Annu Meet, Puerto Vallarta, Mexico. 1996:389-393.
42. Jalanka H. Chemical restraint and reversal in captive markhors (Caprafalconerimegaceros): A comparison of two methods / H. Jalanka // Journal of Zoo and Wildlife Medicine1989;20:413-422.
43. Lisa M. Naples. Comparison of the Anesthetic Effects of Oral Transmucosal Versus Injectable Medetomidine in Combination with Tiletamine-Zolazepam for Immobilization of Chimpanzees (Pan troglodytes) / Lisa M. Naples, Jennifer N. Langan, and Karen S. Kearns // Journal of Zoo and Wildlife Medicine: January 2010, Vol. 41, No. 1, pp. 50-62.
44. Fahlman A. Reversible anesthesia of southeast asian primates with medetomidine, zolazepam, and tiletamine / A. Fahlman, E. J. Bosi, G. Nyman// Journal of Zoo and Wildlife Medicine 37(4):558-561. 2006
45. Cattet M. R. L. Reversible immobilization of free ranging polar bears with medetomidine-zolazepam-tiletamine and atipamezole / M. R. L. Cattet, N. A. Caulkett, S. C. Polischuk, M. A. Ramsay // J Wildl Dis 1997;33:611-617
46. Caulkett1 N. A. Anesthesia of Bears / N. A. Caulkett1, M.R.L. Cattet // In: Zoological Restraint and Anesthesia, D. Heard (Ed.) Publisher: International Veterinary Information Service (www.ivis.org), Ithaca, New York, USA. ( 25-Mar-2002 )
47. Caulkett N. A. Physiological effects of medetomidinezolazepam-tiletamine immobilization in black bears / N. A. Caulkett1,M. R. L. Cattet //J Wildl Dis 1997;33:618-622.
48. Roken B. O. Potent anesthetic combination with low concentrated medetomidine in zoo animals / B. O. Roken // Proc Am Assoc Zoo Wildl Vet Annu Meet, Houston. 1997:134-136.
49. Jalanka H. H. The use of medetomidine, medetomidineketamine combinations, and atipamezole in nondomestic mammals: a review / H. H. Jalanka, B. O. Roeken // J Zoo Wildl Med 1990;21:259-282.
50. Lin H. C. Telazol and xylazine anesthesia in sheep / H. C. Lin, J. W. Tyler, S. S. Wallace, J. C. Thurmon, D. F Wolfe //Cornell Vet. 1993 Apr;83(2):117-124. (an-
Hoey 2 H3 6)
51. Murray S. Anesthesia in female white-tailed deer using Telazol and xylazine / S. Murray, S. L. Monfort, L. Ware, W. J. McShea, M. Bush // J Wildl Dis. 2000 Oct;36(4):670-675.
52. Millspaugh J. J. Immobilization of Rocky Mountain elk with Telazol and xylazine hydrochloride, and antagonism by yohimbine hydrochloride / J. J. Millspaugh, G. C. Brundige, J. A. Jenks, C. L. Tyner, D. R. Hustead // J Wildl Dis. 1995 Apr;31(2):259-262.
53. Klein L. V. Central a2 adrenergic and benzodiazepine agonists and their antagonists / L. V. Klein, A. M. Klide // Journal of Zoo and Wildlife Medicine 1989;20:138-153.
54. Lagutchick M. S. Cardiopulmonary effects of a tiletamine-zolazepam combination in sheep / M. S. Lagutchick, A. J. Januskiewicz, K. T. Dodd, D. G. Martin // Am J Vet Res 1991;52:1441-1447.
55. Vanio O. M. Cardiovascular effects of a ketaminemedetomidine combination that produces deep sedation in Yucatan Mini Swine / O. M. Vanio,
B. C. Bloor, C. Kim // Lab AnimSci1992;42:582-588.
56. Riebold T. W. Large Animal Anesthesia Principles and Techniques / T. W Riebold, D. R. Geiser, D. O. Goble // Iowa State Press, Ames, 1982. 154 p.
57. Clarke K. Veterinary Anesthesia / K. Clarke, C. Trim // Saunders Ltd. London 2013- 712p.
58. McDonell W. Respiratory System / W. McDonell // In: Thurmon JC, Tranquilli WJ, Benson GJ, eds. LumbandJones VeterinaryAnesthesia. 3rd ed. Baltimore: WilliamsandWilkins, 1996:115-147.
59. Haskins S. C. Monitoring the anesthetized patient / S.
C. Haskins // In: Thurmon J. C., Tranquilli W J., Benson G. J., eds. LumbandJones> VeterinaryAnesthesia. 3rd ed. Baltimore: WilliamsandWilkins, 1996: 409-424.
60. Read M. R.Treatment of hypoxemia during xylazine-tiletaminezolazepam immobilization of wapiti / M. R. Read, N. A. Caulkett, A. Symington, T. K. Shury // Can Vet J Volume 42, November 2001 Can Vot J Volume 42, November 2001: 861-864.
References:
1. Vide supra.
2. Cibizova E. L. Metody regulyacii polovozrastnogo sostava zubrov v pitomnike Okskogo zapovednika [Methods for regulating the age and sex composition of bison in the nursery of the Oksky Reserve] / E. L. Cibizova, P. V Aksenova, A. M. Ermakov // Veterinarnaya patologiya. - 2014. - № 1 (47). - S. 49-54.
3. Cibizova E. L. Osobennosti proyavleniya reproduktivnoj funkcii u zubra evropejskogo (Bison bonasus) pri poluvol>nom soderzhaniiv usloviyah pitomnikov [Particularities of manifestation of reproductive function in the European bison (Bison bonasus) with half-free content in nursery conditions] / E. L. Cibizova, P. V. Aksenova, A. M. Ermakov // Veterinarnaya patologiya. - 2015. - № 1 (51). - S. 54-63.
4. Cibizova E. L. Dinamika i prichiny smertnosti zubrov (Bison bonasus) v pitomnike Okskogo gosudarstvennogo prirodnogo biosfernogo zapovednika [Dynamics and causes of bison mortality (Bison bonasus) in the nursery of the Oka
State Natural Biosphere Reserve] / E. L. Cibizova, P
V Aksenova, A. M. Ermakov // Veterinariya. - 2015. - № 6. - S. 13-17.
5. Aksenova P V Opasnost> mikoplazmoza dlya dikih
populyacij zubra (Bison bonasus). Osobennosti ehpizootii i patogeneza [Danger of mycoplasmosis for wild bison populations (Bison bonasus). Peculiarities of epizootic and pathogenesis] / P. V. Aksenova, A. M. Ermakov, L. P. Mironova, E. L. Cibizova // Rossijskij veterinarnyj zhurnal. Melkie domashnie i dikie zhivotnye. - 2014. - № 3. - S. 38-42.
6. Aksenova P. V Bolezni zubrov (Bison bonasus): vstrechaemost> i ehpizooticheskie osobennosti zabolevanij zubrov bakterial>noj ehtiologii [Diseases of bison (Bison bonasus): incidence and epizootic features of diseases of bison of bacterial etiology] / P.
V Aksenova // Veterinarnaya patologiya. - 2014. - № 1 (47). - S. 51-63.
7. Aksenova P. V. Vstrechaemost> i ehpizooticheskie
osobennosti zabolevanij zubrov parazitarnoj ehtiologii [Incidence and epizootic features of diseases of bison of parasitic etiology] / P. V.
Aksenova // Veterinarnaya patologiya. - 2015. - № 1 (51). - S. 28-39.
8. Aksenova P. V Bolezni zubrov (Bison bonasus): Vstrechaemost> i ehpizooticheskie osobennosti zabolevanij zubrov virusnoj ehtiologii [Diseases of bison (Bison bonasus): incidence and epizootic features of diseases of bison of viral etiology] / P V Aksenova, A. M. Ermakov // Veterinarnaya patologiya. - 2015. - № 3 (53). - S. 22-31.
9-18. Vide supra.
19. Kornyushenkov E. A. Osobennosti klinicheskoj farmakologii preparatov dlya anestezii i sedacii melkih domashnih zhivotnyh [Features of the clinical pharmacology of preparations for anesthesia and sedation of small domestic animals. Part 2] / E. A. Kornyushenkov // RVZH. MDZH. - № 1. - 2013. - S. 32-39. 20-60. Vide supra.
Aksenova P. V.
RISK OF POSTANAESTHETIC MYOPATHY IN EUROPEAN BISON
Key Words: bison, anesthesia, injection rifles, a2-adrenoreceptor agonists, myopathy, rhabdomyolysis, hyperthermia, hypoxemia, hypercarbia, hyperkalemia, metabolic acidosis, myotonia, muscle rigidity.
Abstract: Bison are a difficult subject for anaesthesia. Acute rhabdomyolysis with progressive myoglobinuria, causing acute renal failure, and general intoxication is one of the most severe complications associated with anesthesia of these animals. The risk of postanaesthetic myopathy in bison varies between 2.8 % and 16.7 %, depending on the conditions of immobilization and the anaesthetic protocol. The syndrome can occur independently or as the culmination of hyperthermia. One of the general causes of the development of pathology is hypoxemia, which occurs as result of anaesthesia. Accompanying factors are fear and increase in muscle activity during manipulations, the large size and weight, and anemic phenomenon as result of compression of the extremities vessels under the weight of a lying animal. The disease is malignant usually. Pathogenesis of myopathy is described in the article. Analysis of anesthetic substances with the risk of myopathy is showed. Acts to minimize the risk of pathology during anesthesia of bison are proposed also.
Сведения об авторе:
Аксенова Полина Владимировна, доктор биологических наук, профессор кафедры «Биология и общая патология» Донского государственного технического университета; руководитель Службы здоровья животных «Василиск»; д. 1, пл. Гагарина, г. Ростов-на-Дону, Ростовская область, Россия, 344000; e-mail: vasiliskvet@ya.ru
Author affiliation:
Aksenova Polina Vladimirovna, D. Sc of Biology, Professor of the Biology and General Pathology Department, Don State Technical University; Head of the Animal Health Service «Vasilisk»; house 1, Gagarin square, Rostov-on-Don city, Rostov region, Russia, 344000; e-mail: vasiliskvet@ya.ru
УДК 636.4.033
Козликин А. В., Скрипин П. В., Тариченко А. И., Жуков Р. Б., Ярошенко А. И., Саруханян Р. М.
ПРОДУКТИВНОСТЬ И БИОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ СВИНЕЙ ИНТЕНСИВНЫХ ПОРОД
Ключевые слова: свиньи, свиноматки, мясо, убойные качества, полутуши
Резюме: : Важнейшей проблемой современного агропромышленного комплекса страны является дальнейшее наращивание производства мяса. Важную роль в решении этого вопроса отводится свиноводству, как отрасли животноводства, способной при интенсивном развитии выполнять поставленные задачи. Благодаря высоким биологическим особенностям (плодови-
