CC BY
19
DOI: 10.21055/0370-1069-2020-1-133-138
УДК 616.98:579.842.23(579)
А.м. Поршаков1, E.A. Чумачкова1, Ж.А. касьян1, Е.Г. оглодин1, лыонг Тхи мо2, Во Вьет кыонг3,
Чинь Ван Тоан3, Буй Тхи Тхань нга3
РЕЗУЛЬТАТЫ ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКОГО ОБСЛЕДОВАНИЯ НА ЧУМУ И ДРУГИЕ ЗООНОЗЫ В СЕВЕРНЫХ ПРОВИНЦИЯХ СОЦИАЛИСТИЧЕСКОМ РЕСПУБЛИКИ ВЬЕТНАМ ВЕСНОЙ 2019 г.
'ФКУЗ «Российский научно-исследовательский противочумный институт «Микроб», Саратов, Российская Федерация;
2Российско-Вьетнамский Тропический Центр (Южное отделение), Хошимин, Вьетнам;
3Российско-Вьетнамский Тропический Центр, Ханой, Вьетнам
цель работы - выявление циркуляции возбудителя чумы и других зоонозов (туляремии, псевдотуберкулеза, лептоспироза, лихорадки Западного Нила, лихорадки денге, лихорадки Чикунгунья, Крым-Конго геморрагической лихорадки, лихорадки Ку, лихорадки Ласса, хантавирусов, клещевого энцефалита, моноцитарного эрлихио-за, гранулоцитарного анаплазмоза и боррелиоза) среди мелких млекопитающих и их эктопаразитов на территории семи северных провинций Социалистической Республики Вьетнам. материалы и методы. Проведено эпизоотологическое обследование семи северных провинций Социалистической Республики Вьетнам (Дьенбьен, Лайтяу, Лаокай, Хазянг, Лангшон, Каобанг и Куангнинь). За период работы накоплено 3400 ловушко/ночей, добыто 179 экземпляров мелких млекопитающих, относящихся к 10 видам, собрано 213 блох, относящихся к семи видам, и 143 экземпляра гамазовых клещей двух видов. Собранный материал исследован методами иммунофер-ментного анализа и полимеразной цепной реакции на базе мобильной лаборатории мониторинга и диагностики. результаты и обсуждение. При двукратном исследовании 136 проб крови мелких млекопитающих выявлены антитела к фракции 1 Y. pestis в 14 (10,3 %) пробах. Исследование 158 проб суспензий легких и почек мелких млекопитающих показало, что в 22 (13,9 %) образцах содержится 16S рРНК патогенных лептоспир Leptospira spp. При анализе 60 проб мозга мелких млекопитающих на наличие Leptospira spp. в трех (5,0 %) из них обнаружен возбудитель лептоспироза. Исследовано 25 проб гамазовых клещей на наличие ДНК возбудителей лихорадки Ку, чумы, туляремии и гранулоцитарного анаплазмоза, РНК возбудителя клещевого энцефалита, моноцитарного эрлихиоза, боррелиоза. В одной (4 %) пробе от гамазовых клещей Laelaps echidninus обнаружена РНК боррелий.
Ключевые слова: Yersinia pestis, носители и переносчики возбудителя чумы, эпизоотологическое обследование, чума, зоонозы, Социалистическая Республика Вьетнам.
Корреспондирующий автор: Поршаков Александр Михайлович, e-mail: rusrapi@microbe.ru.
Для цитирования: Поршаков А.М., Чумачкова Е.А., Касьян Ж.А., Оглодин Е.Г., Лыонг Тхи Мо, Во Вьет Кыонг, Чинь Ван Тоан, Буй Тхи Тхань Нга. Результаты эпизоотологического обследования на чуму и другие зоонозы в северных провинциях Социалистической Республики Вьетнам весной 2019 г Проблемы особо опасных инфекций. 2020;1:133-138. DOI: 10.21055/0370-1069-2020-1-133-138
A.M. Porshakov1, E.A. Chumachkova1, Zh.A. Kas'yan1, E.G. Oglodin1, Luong Thi Mo2, Vo Viet Cuong3, Chin Van Toan3, Bui Thi Than Nga3
Results of Epizootiological survey on Plague and Other Zoonotic Infections in the Northern Provinces of the socialist Republic of Vietnam During spring Months of 2019
'Russian Research Anti-Plague Institute "Microbe", Saratov, Russian Federation; 2Russian-Vietnamese Tropical Center (Southern Branch), Ho ChiMinh, Vietnam; 3Russian-Vietnamese Tropical Center, Hanoi, Vietnam
Abstract. Objective of the study is to detect circulation of plague agent and agents of other zoonotic infections (tularemia, pseudotuberculosis, leptospirosis, West Nile fever, Lassa fever, Dengue fever, Chikungunya fever, Crimean-Congo hemorrhagic fever, Q fever, Hantaviruses, tick-borne encephalitis, human monocytic ehrlichiosis, granulocytic anaplasmosis, and borreliosis) among small mammals and their ectoparasites in the territory of seven northern provinces of the Socialist Republic of Vietnam. Materials and methods. We have carried out epizootiological survey of seven northern provinces of the Socialist Republic of Vietnam (Dien Bien, Lai Chau, Lao Cai, Ha Giang, Lang San, Cao Bang, and Quang Ninh). Over the period of the study, 3400 trap/nights were accumulated, 179 specimens of small mammals caught, belonging to 10 species, 213 fleas of seven different species - collected, and 143 specimens of gamaside ticks falling under two species. The material gathered was investigated using enzyme immunoassay and polymerase chain reaction at the premises of mobile laboratory for monitoring and diagnostics. Results and discussion. Two-fold testing of 136 blood samples from small mammals revealed antibodies to F1 of Y. pestis in 14 (10.3 %) of them. Investigation of 158 samples of lung and kidney suspensions of small mammals showed that 22 (13.9 %) samples contained 16S rRNA of pathogenic leptospira, Leptospira spp. Analysis of 60 brain samples for the presence of Leptospira spp. revealed three (5.0 %) positive ones. 25 samples of gamaside ticks were tested for the presence of the DNA of Q fever, plague, tularemia and granulocytic anaplasmosis agents, and for the RNA of tick-borne encephalitis, human monocytic ehrlichiosis, and borreliosis agents. One sample (4 %) of gamaside ticks, Laelaps echidninus, contained RNA of Borrelia.
Key words: Yersinia pestis, carriers and vectors of plague agent, epizootiological survey, plague, zoonotic infections, Socialist republic of Vietnam.
Conflict of interest: The authors declare no conflict of interest.
Corresponding author: Porshakov A. Mikhailovich, e-mail: rusrapi@microbe.ru.
Citation: Porshakov A.M., Chumachkova E.A., Kas'yan Zh.A., Oglodin E.G., Luong Thi Mo, Vo Viet Cuong, Chin Van Toan, Bui Thi Than Nga. Results of Epizootiological Survey on Plague and Other Zoonotic Infections in the Northern Provinces of the Socialist Republic of Vietnam During Spring Months of 2019. Problemy Osobo Opasnykh Infektsii [Problems of Particularly Dangerous Infections]. 2020; 1:133-138. (In Russian). DOI: 10.21055/0370-1069-2020-1-133-138 Received 24.01.20. Accepted 28.01.20.
Porshakov A.M., ORCID: http://orcid.org/0000-0003-3363-765X Chumachkova E.A., ORCID: http://orcid.org/0000-0001-9877-5258 Luong Thi Mo, ORCID: https://orcid.org/0000-0002-6035-5933
Чума в современном мире, несмотря на успехи медицины в лечении, диагностике и профилактике этой болезни, остается одной из серьезных угроз санитарно-эпидемиологическому благополучию населения. По литературным данным, третья пандемия чумы началась с активизации природного очага чумы Китая, а затем проникла на территорию Вьетнама [1]. На территории Социалистической Республики Вьетнам (СРВ) чуму с некоторыми перерывами регистрировали с 1898 по 2002 год [1-3]. На территории Азии в 2010-2018 гг. заболевания чумой отмечались в Китайской Народной Республике (Китай) (10 случаев), Монголии (5), Российской Федерации (3), Киргизской Республике (1) [4-6].
Предположительно на территорию Вьетнама возбудитель чумы завозился морским путем с инфицированными крысами. Хронологически прослеживалось распространение эпизоотий и заболеваний населения вдоль морского побережья с последующим их проникновением вглубь страны. С 1943 г. наблюдались эпидемические проявления в центральных провинциях на плато Тайнгуен [2, 7-9]. Самый высокий уровень заболеваемости приходился на период военных конфликтов во время Второй Индонезийской войны: в 1967 г. в стране зарегистрировано более 5 тыс. случаев. По оценкам Всемирной Организации Здравоохранения, в 1965-1975 гг. 80 % (более 29 тыс. человек) от общего количества случаев заболевания чумой в мире приходилось на Вьетнам.
В северных провинциях Вьетнама чума у людей впервые зарегистрирована в 1908 г., в городе Ханой. В период с 1909 по 1922 год на севере страны неоднократно имели место спорадические случаи заболеваний и вспышки чумы. После длительного перерыва чума, предположительно, была занесена сюда с юга и вызвала ряд эпидемий в 1978-1980 и 1986-1987 гг. С 2003 г. случаев заболеваний чумой во Вьетнаме не регистрировали [10-14].
На севере Вьетнам граничит с Китаем, на территории которого имеются активные очаги чумы, охватывающие около 1,4 млн км2 [15, 16]. В настоящее время в провинции Юньнань, граничащей с Вьетнамом, выделяют три очага чумы: антропо-ургический (Yunnan) в популяциях синантропных крыс и два природных очага (Jianchuan, Yulong) на диких мелких млекопитающих (Eothenomys miletus, Apodemus chevrieri) [17-19]. Основным носителем в Юньнаньско-Гуандун-Фуцзяньском (второе название - Юго-Восточный субтропический) антро-поургическом очаге чумы является желтогрудая крыса (Rattus flavipectus), которая приспособлена к обитанию в населенных пунктах. В эпизоотии вовлекаются и другие виды мелких млекопитаю-
щих - Rattus norvegicus, R. rattus, R. losea, R. anda-manensis, R. nitidus, Mus musculus, Micromys minutus, E. miletus, A. chevrieri, Bandicota indica, Callosciurus erythraeus, Suncus murinus и Crocidura sp. [15, 17, 18]. Синантропный образ жизни основных носителей чумы определяет высокий уровень потенциальной эпидемической опасности Юньнаньско-Гуандун-Фуцзяньского очага чумы. Переносчиками в данном очаге чумы являются блохи - Xenopsylla cheopis, Pulex irritans, Neopsylla specialis, Leptopsylla segnis, Monopsyllus anisus, Paradoxopsyllus custodis и Lentistivallius ferinus [17, 18, 20].
три провинции на севере Вьетнама - дьенбьен (Dien Biên), Лайтяу (Lai Châu) и Лаокай (Lào Cai) -сопряжены с южной частью Юньнаньско-гуандун-Фуцзяньского очага чумы и имеют однотипные с ним природные условия. Можно предположить, что на территории указанных провинций возможна циркуляция возбудителя чумы в популяциях местных мелких млекопитающих, что обусловило актуальность проведения рекогносцировочного эпизоотоло-гического обследования на чуму в северо-западной части страны. Определенный интерес представляли исследования и других северных провинций - Хазянг (Hà Giang), Лангшон (Lang Son), Каобанг (Cao Bäng), Куангнинь (Quàng Ninh) - с целью ландшафтно-экологической оценки в отношении вероятности циркуляции чумного микроба и на этих территориях. По результатам эпизоотологического мониторинга 20132014 гг., проведенного Национальным институтом гигиены и эпидемиологии Вьетнама в провинциях, граничащих с Китаем (лангшон, Куангнинь, лаокай) и портовом городе Хайфон, сделаны выводы о достаточно высокой численности грызунов R. norvegicus и R. flavipectus, а также паразитирующих на них блох X. cheopis - потенциальных носителей и переносчиков чумы. При исследовании на чуму мелких млекопитающих и эктопаразитов методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) и иммуноферментном анализом (иФА) образцов содержащих специфические антигены или антитела не обнаружено [11, 21].
Материалы и методы
В апреле-мае 2019 г. силами российско-вьетнамской группы исследователей проведено эпи-зоотологическое обследование в семи северных провинциях Вьетнама - дьенбьен, лайтяу, лаокай, Хазянг, лангшон, Каобанг и Куангнинь, граничащих с Китайской Народной Республикой. Объектами исследований являлись мелкие млекопитающие и их кровососущие эктопаразиты - предполагаемые носители и переносчики чумы и других опасных зооно-
зов. Для отлова грызунов и насекомоядных использовались живоловки, в качестве приманки - кусочки сырого батата (клубни Ipomoea batatas из семейства вьюнковых), смоченные подсолнечным маслом. Сбор эктопаразитов проводился при осмотре мелких млекопитающих. За период работы накоплено 3400 ло-вушко/ночей, отловлено и доставлено в лабораторию 179 экз. мелких млекопитающих 10 видов. Собрано и исследовано 213 экз. блох, относящихся к семи видам, и 143 экз. гамазовых клещей двух видов.
Лабораторные исследования проводили на базе мобильной лаборатории мониторинга и диагностики (МЛМД), поставленной в Российско-Вьетнамский Тропический научно-исследовательский и технологический центр в декабре 2018 г. Федеральной службой по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека при поддержке Правительства Российской Федерации.
Собранный материал исследован методом по-лимеразной цепной реакции с учетом результатов в режиме реального времени (ПЦР-РВ) на амплифика-торе Rotor-Gene Q (QIAGEN, Германия) и методом иммуноферментного анализа с учетом результатов на планшетном фотометре iMark Biorad (Австрия). пробы органов мелких млекопитающих исследованы на наличие маркеров возбудителя чумы, а также других зоонозов (туляремии, псевдотуберкулеза, лептоспироза, лихорадки Западного Нила, лихорадки денге, лихорадки Чикунгунья, Крым-Конго геморрагической лихорадки, лихорадки ку, лихорадки Ласса, хантавирусов; пробы эктопаразитов - чумы, туляремии, лихорадки Ку, клещевого энцефалита, моноцитарного эрлихиоза, гранулоцитарного анаплазмоза, боррелиоза).
Для анализа методом ПЦР использованы следующие наборы реагентов: «Ген Y pestis - индикация -РГФ», «Ген Francisella tularensis - РГФ» (ФКУЗ РосНИПЧИ «Микроб»), «АмплиСенс Coxiella Ьигпе^7-РЬ,«АмплиСенсЛПС»,«ТВЕУ,В. burgdorferi s.l., A. phagocytophillum, E. chaffeensis E. muris -FL», «АмплиСенс CCHFV - FL», «АмплиСенс Yersinia enterocolitica/pseudotuberculosis - FL» (ООО «Интерлабсервис»), «ОМ-Скрин-Ласса/Мачупо/ Хунин-РВ» (ЗАО «Синтол»). Для исследования
органов млекопитающих методом ИФА применялись наборы реагентов: «ИФАПестФ1-М» (ФКУЗ РосНИПЧИ «Микроб»), «Хантагност» (ФГУП ПИПВЭ им. М.П. Чумакова), «БиоСкрин-Чикунгунья (AG)», «БиоСкрин-Денге (Ag), БиоСкрин-ВЗН (Ag) (ЗАО БтК «Биосервис»). Пробы крови мелких млекопитающих исследованы методом ИФА с применением набора реагентов «ИФА-АТ-Ф1» (ФКУЗ РосНИПЧИ «Микроб»).
Результаты и обсуждение
эпизоотологическое обследование проводилось в северных провинциях Вьетнама, где преобладают горные ландшафты. Климат на данной территории субтропический муссонный с чертами горного. Среднегодовая температура 21-23 °C. Обследование проводилось в биотопах различного типа - природные, агроценозы и селитебные. Отлов мелких млекопитающих в населенных пунктах проводился в жилых домах, хозяйственных постройках и на примыкающих к ним территориях, а также в природных биотопах и агроценозах. Выбор мест обследования в природных биотопах и агроценозах осуществлялся в зависимости от потенциального риска заражения людей.
За период работы добыто 179 экз. мелких млекопитающих, относящихся к 10 видам: Rattus flavipectus (желтогрудая крыса), Rattus nitidus (гималайская крыса), Rattus koratensis (лесная крыса), Rattus molliculus (большая полевая крыса), Rattus norvegicus (серая крыса), Rattus argentiventer (сере-бристобрюхая крыса), Anourosorex squamipes (кротовая белозубка), Mus caroli (рюкюйская мышь), Niviventer fulvescens (каштановая крыса), Berylmys bowersi (крыса Боверса). Распределение мелких млекопитающих в обследованных районах по типам биотопов приведено в табл. 1.
При осмотре мелких млекопитающих на наличие эктопаразитов собрано 213 блох, относящихся к семи видам (табл. 2), и 143 экз. гамазовых клещей двух видов (табл. 3). Индекс обилия (ИО) блох по видам зверьков колебался от 0,08 до 4,25. Доминировали (ИД) X. cheopis (83,5 %). Остальные виды блох отмечались в единичных количествах.
Таблица 1 / Table 1
фауна и численность мелких млекопитающих по типам биотопов на территории северных провинций Социалистической Республики Вьетнам в апреле—мае 2019 г.
Fauna and the numbers of small mammals by the types of biotopes in the territory of the northern provinces of the Socialist Republic of Vietnam in April-May, 2019
Тип биотопа Type of biotope Всего (абс.) Total (Absol.) Процент попадания зверьков по видам (%) Proportion of animalcule captures by species (%)
R. norvegicus R. flavipectus R. nitidus R. koratensis R. molliculus N. fulvescens B. bowersi M. caroli A. squamipes R. argentiventer
Природные Natural 19 1,0 - 10,0 12,8 5,0 10,0 10,0 - 1,0 -
Селитебные Residential areas 87 25,6 11,9 10,7 10,0 10,0 7,5 - 6,6 - 1,0
Агроценозы Agrocoenosis 73 13,2 7,1 10,0 11,4 8,0 10,0 6,0 - 1,0 -
Итого: Grand total: 179 13,7 9,7 10,5 11,9 8,0 8,3 6,6 6,6 1,8 1,0
Таблица 2/ Table 2
фауна и численность блох мелких млекопитающих, собранных на территории северных провинций Социалистической Республики Вьетнам в апреле—мае 2019 г.
Fauna and the numbers of fleas of small mammals, collected in the territory of the northern provinces of the Socialist Republic of Vietnam in April-May, 2019
Виды зверьков Species of animalcules Виды и количество блох Species and the number of fleas
Xenopsylla cheopis Neopsylla tricata Leptopsylla segnis Stivalius aporus rectodigitus Nosopsyllus nicanus Lentistivalius klossi Ctenocephalides felis всего блох total индекс обилия abundance rates
R. nitidus 91 - 3 - - 1 - 95 3,16
R. norvegicus 63 - 10 - 1 - 1 75 1,08
B. bowersi - 16 1 - - - - 17 4,25
R. flavipectus 14 - - 1 - - - 15 0,42
R. koratensis 8 - - 1 - - - 9 0,47
R. molliculus 1 - - - - - - 1 0,08
N. fulvescens - - - - - - - - 0,0
M. caroli - - - - - - - - 0,0
R. argentiventer 1 - - - - - - 1 1,0
A. squamipes - - - - - - - - 0,0
Всего по видам Total by species 178 16 14 2 1 1 1 213 1,18
Индекс доминирования блох Index of flea dominance 83,5 7,51 6,57 0,93 0,46 0,46 0,46 100,0 -
С целью выявления антител к капсульному антигену Ф1 Y pestis 136 проб крови мелких млекопитающих двукратно исследованы методом ИФА. В результате в восьми пробах (5,9 %) выявлены антитела в титре 1:320, в шести (4,4 %) - в титре 1:640 (диагностическим титром при исследовании биологических антителсодержащих жидкостей мелких млекопитающих считают 1:320 и более). Положительный ответ получен в пробах, собранных в провинциях: Лайтяу - от R. koratensis (1) и R. molliculus (1) из природного биотопа и от R. koratensis (3) и R. molliculus
(2), отловленных на сельскохозяйственных полях; Хазянг - от R. nitidus (1), пойманную в жилом доме; Каобанг - от R. norvegicus (1), отловленную на сельскохозяйственном поле; лангшон - от R. norvegicus
(3) и R. flavipectus (2), отловленных в жилых домах и хозяйственных постройках (рисунок). Обнаружение у грызунов антител к специфическому для чумного микроба антигену - Ф1, может служить индикатором циркуляции возбудителя чумы в популяции мелких млекопитающих.
При исследовании объединенных проб печени и селезенки (158) мелких млекопитающих, а также
проб лимфатических узлов (79) ДНК возбудителей чумы, туляремии, псевдотуберкулеза не обнаружены.
Анализ 158 проб суспензий легких и почек мелких млекопитающих методом ПЦР показал наличие 16S рРНК патогенных лептоспир в 22 (13,9 %) образцах. Положительный ответ получен в пробах, собранных в провинциях: Дьенбьен - от R. nitidus (2), R. koratensis (1), N. fulvescens (1), отловленных возле жилых домов, и от N. fulvescens (1) из природного биотопа; в Лайтяу - от R. nitidus (1), пойманной на банановой плантации; в Лаокай - от R. nitidus (1), R. flavipectus (1), пойманных в жилых домах, и от R. nitidus (1), отловленной на сельскохозяйственном поле; в Хазянг - от R. flavipectus (1), отловленной в жилом доме, и R. norvegicus (1), пойманной на сельскохозяйственном поле; Лангшон - от R. norvegicus (8), R. flavipectus (1), отловленных в жилых домах и дворовых постройках, и от R. norvegicus (1), пойманной на сельскохозяйственном поле; каобанг -от B. bowersi (1), пойманной на кукурузном поле. Все пробы легких и почек исследованы на наличие ДНК Y. pestis, 64 пробы исследованы на наличие ДНК Coxiella burnetii и антигенов к хантавирусу.
Таблица 3 / Table 3
Видовой состав гамазовых клещей мелких млекопитающих, собранных на территории северных провинций Социалистической Республики Вьетнам в апреле—мае 2019 г.
Species composition of gamaside ticks of small mammals, collected in the territory of northern provinces of the Socialist Republic of Vietnam in April—May, 2019
Виды клещей Количество клещей на мелких млекопитающих The number of ticks on small mammals
Species of ticks Всего Total R. norvegicus B. bowersi R. nitidus R. koratensis R. molliculus R. flavipectus N. fulvescens
Laelaps echidninus 142 71 19 16 13 11 8 4
Eulaelaps stabularis 1 1 - - - - - -
Итого: Grand total: 143 72 19 16 13 11 8 4
Места обнаружения антител к Y. pestis у мелких млекопитающих в северных провинциях Социалистической Республики Вьетнам весной 2019 г.
' - очаг чумы в провинции Юньнань;
2 - провинции Социалистической Республики Вьетнам, обследованные весной 2019 г.: a - Дьенбьен, b - Лайтяу, c - Лаокай, d - Хазянг, e - Каобанг, f - Лангшон, g - Куангнинь;
3 - места сбора полевого материала, в котором обнаружены антитела к Y. pestis у мелких млекопитающих
Sites of detection of antibodies to Y. pestis in small mammals in northern provinces of the Socialist Republic of Vietnam in spring 2019
' - plague focus in Yunnan province, China; 2 - provinces of the Socialist Republic of Vietnam, surveyed in spring in 2019; a - Dien Bien, b - Lai Chau, c - Lao Cai, d - Ha Giang, e - Lang San, f- Cao Bang, g - Quang Ninh; 3 - sites of field material collection, in which the antibodies to Y. pestis were detected
Положительных проб не обнаружено.
При исследовании 114 проб мозга мелких млекопитающих на наличие РНК вируса Ласса, ККГЛ методом ПЦР и Аг вируса денге, ВЗН и Чикунгуньи методом ИФА положительных проб не обнаружено. Анализ 60 проб мозга мелких млекопитающих на наличие Leptospira spp. показал в трех (5,0 %) пробах маркеры возбудителя лептоспироза. Положительный ответ получен в пробах, собранных в провинциях Дьенбьен - от R. nitidus (1, возле жилого дома), Лайтяу - от R. nitidus (1, банановая плантация), Лаокай - от R. nitidus (1, жилой дом).
В ходе работы исследовано 25 проб гамазовых клещей на наличие ДНК возбудителей лихорадки Ку, чумы, туляремии, гранулоцитарного анаплазмоза, РНК возбудителя клещевого энцефалита, моноци-тарного эрлихиоза, боррелиоза. В одной пробе (4 %) от L. echidninus, собранных с B. bowersi из провинции Лайтяу, обнаружена РНК боррелий. Кроме того, 33 пробы суспензий блох и одна проба суспензии клещей исследованы на наличие ДНК возбудителей чумы, туляремии, РНК возбудителя клещевого энцефалита, моноцитарного эрлихиоза с отрицательным результатом.
В результате проведенного рекогносцировочного обследования в северных провинциях Социалистической Республики Вьетнам получены новые данные о циркуляции возбудителей чумы и других зоонозов. Обнаружение у грызунов антител к специфическому для чумного микроба антигену Ф1 на территории четырех северных провинций может служить индикатором циркуляции возбудителя чумы в популяции мелких млекопитающих. Необходимо проведение дальнейших исследований в этом регионе страны для сбора и накопления информации, более детального изучения условий и возможностей формирования здесь природных и антропоургиче-ских очагов инфекционных болезней.
Работа выполнена в рамках НИР 81-1-18 «Совершенствование эпидемиологического надзора за чумой в антропоургических очагах на территории Социалистической Республики Вьетнам». Номер государственной Регистрации НИОКТР АААА-А19-119011090017-4.
Конфликт интересов. Авторы подтверждают отсутствие конфликта финансовых/нефинансовых интересов, связанных с написанием статьи.
Список литературы
1. Dang Tuan Dat, Pham Van Hau. Benh dich hach. Dich te hoc, giam sat va phong chong. Nha xuat ban y hoc: Hanoi; 2003. 136 p.
2. Сунцов В.В., Сунцова Н.И., Матросов А.Н., Кузнецов А.А., Данг Туан Дат, Лыонг Тхи Мо, Слудский А.А., Куклев Е.В., Тарасов М.А., Касьян И.А., Майоров Н.В., Астахова Т.С. Антропоургические очаги чумы Вьетнама: прошлое и настоящее. Проблемы особо опасных инфекций. 2014; 4:29-35. DOI: 10.21055/0370-1069-2014-4-29-35.
3. Pham H.V., Dang D.T., Tran Minh N.N., Nguyen N.D., Nguyen T. V. Correlates ofenvironmental factors and human plague: An ecological study in Vietnam. Int. J. Epidemiol. 2009; 38(6):1o34-41. D0I:10.1093/ije/dyp244.
4. Kugeler K.J., Staples J.E., Hinckley A.F., Gage K.L., Mead P.S. Epidemiology of human plague in the United States, 1900-2012. Emerg. Infect. Dis. 2015; 21:16-22. DOI: 10.3201/eid2101.140564.
5. Berger S. Infectious Diseases in China. Plague. Gideon Informatics; 2017. P. 521.
6. Арутюнов Ю.И., Пичурина Н.Л., Судьина Л.В., Трухачев А.Л. Чума в Китае: эпидемиологические и эпизоотологические аспекты. Инфекционные болезни: новости, мнения, обучение. 2019; 8(3):70-77. DOI: 10.24411/2305-3496-2019-13011.
7. Conrad F.D., LeCocq F.R., Krain R. A recent epidemic of plague in Vietnam. Arch. Intern. Med. 1968; 122(3):193-8. DOI: 10.1001/archinte.1968.00300080001001.
8. Velimirovic B. Investigations on the epidemiology and control of plague in South Vietnam. Part I. Zentralbl. Bakteriol. Orig. A. 1974; 228(4):482-508. PMID: 4155201.
9. Касьян А.Ф., Li Thi Huong, Сунцов В.В., Dang Tuan Dat, Dao Huan Vinh, Nguyen Ai Phuong. Эпидемиологические особенности сезонных проявлений чумы во Вьетнаме. Сборник работ Совместного Российско-Вьетнамского Тропического научно-исследовательского и технологического центра «Тропцентр-98». 1997; 484-91.
10. Слудский А.А., Кузнецов А.А., Матросов А.Н., Бойко А.В., Куклев Е.В., Тарасов М.А. Эпидемическая активность современных антропоургических очагов чумы и факторы ее определяющие (на примере Вьетнама). Медицинский вестник Северного Кавказа. 2018; 13(4):680-4. DOI: 10.14300/ mnnc.2018.13137.
11. Nguyen Büc Thinh, Vü Trong Duoc, Pham Hüng, Phan Thi Thu Huang, Vü Ngoc Thüy, Binh Büc Thien vä Tran Nhu Duong. Giäm sät dinh ky vec to vä vat chu, trung gian lan truyen benh dich hach tai möt so cüa khau vä cäng bien trong diem khu vuc mien Bäc, 2014. Tap XXV. Tap chi Yhoc duphong. 2015; 8(168):299-305.
12. Butler T. Plague history: Yersin's discovery of the causative bacterium in 1894 enabled, in the subsequent century, scientific progress in understanding the disease and the development of treatments and vaccines. Clin. Microbiol. Infect. 2014; 20(3):202-9. DOI: 10.1111/1469-0691.12540.
13. Marshall J.D. Jr, Joy R.J., Ai N.V., Quy D.V., Stockard J.L., Gibson F.L. Plague in Vietnam 1965-1966. Am. J. Epidemiol. 1967; 86(3):603-16. DOI: 10.1Q93/oxfordjpurnals.aje.a120770.
14. Pha m , Anh Tua n, Nguyen Thi Kieu Anh. Giäm sät ,vä xäc dinh vi khuan dich hach tren bo chet, chuöt ö möt so dia diem tai Hä Nöi, näm 2015. Tap XXVII. Tap chi Y hoc du phong. 2017; 8:113-21 ' ' '
15. Yanjun Li, Erhei Dai, Yujun Cui, Min Li, Yujiang Zhang, Mingshou Wu, Dongsheng Zhou, Zhaobiao Guo, Xiang Dai, Baizhong Cui, Zhizhen Qi Zuyun Wang, Hu Wang, Xingqi Dong, Zhizhong Song, Junhui Zhai, Yajun Song, Ruifu Yang. Different Region Analysis for Genotyping Yersinia pestis Isolates from China. PLoS One. 2008; 3(5):e2166. DOI: 10.1371/journal.pone.0002166.
16. Yujiang Zhang, Tao Luo, Chao Yang, XihongYue, Rong Guo, Xinhui Wang, Mingde Buren, Yuqin Song, Ruifu Yang, Hanli Cao, Yujun Cui, Xiang Dai. Phenotypic and Molecular Genetic Characteristics of Yersinia pestis at an Emerging Natural Plague Focus, Junggar Basin, China. Am. J. Trop. Med. Hyg. 2018; 98(1):231-7cDOI: 10.4269/ajtmh.17-0195.
17. Liyuan Shi, Guirong Yang, Zhikai Zhang, Lianxu Xia, Ying Liang, Hongli Tan, Jinrong He, Jianguo Xu, Zhizhong Song, Wei Li , Peng Wang. Reemergence of human plague in Yunnan, China in 2016. PLoS One. 2018; 13(6):e0198067. DOI: 10.1371/journal. pone.0198067.
18. Peng Wang, Liyuan Shi, Fuxin Zhang, Ying Guo, Zhikai Zhang, Hongli Tan, Zhigang Cui, Yibo Ding, Ying Liang, Yun Liang, Dongzheng Yu, Jianguo ong Song. Ten years of surveillance of the Yulong plague focus in China and the molecular typing and source tracing of : the isolates. PLoS Negl. Trop. Dis. 2018; 12(3):e0006352. DOI: 10.1371/journal.pntd.0006352.
19. Zhang X., Hai R., Wei J., Cui Z., Zhang E., Song Z., Yu D. MLVA distribution characteristics of Yersinia pestis in China and the correlation analysis. BMC Microbiol; 2009; 9:205. DOI: 10.1186/1471-2180-9-205.
20. Li Y., Tan J., Shen E. The atlas ofplague and its environment in the People's Republic of China. Beijing, China: Science Press, Beijing; 2000. 221 p.
21. Koma T., Yoshimatsu K., Yasuda S.P., Li T., Amada T., Shimizu K., Isozumi R., Mai L.T., Hoa N.T Nguyen V., Yamashiro T., Hasebe F., Arikawa J. A survey of rodent-borne pathogens carried by wild Rattus spp. in Northern Vietnam. Epidemiol. Infect. 2013; 141(9):1876-84. DOI: 10.1017/S0950268812002385.
References
1. Dang Tuan Dat, Pham Van Hau. Benh dich hach. Dich te hoc, giam sat va phong chong. Nha xuat ban y hoc: Hanoi; 2003. 136 p.
2. Suntsov V.V., Suntsova N.I., Matrosov A.N., KuznetsovA.A., Dang Tuan Dat, Lyong Thi Mo, Sludsky A.A., Kouklev E.V., Tarasov M.A., Kas'Yan I.A., Mayorov N.V., Astakhova T.S. Anthropourgic Foci of Plague in Vietnam: Past and Present. Problemy Osobo Opasnykh Infektsii [Problems of Particularly Dangerous Infections]. 2014;(4):29-35. DOI: 10.21055/0370-1069-2014-4-29-35.
3. Pham H.V., Dang D.T., Tran Minh N.N., Nguyen N.D., Nguyen T. V. Correlates ofenvironmental factors and human plague: An ecological study in Vietnam. Int. J. Epidemiol. 2009; 38(6):1634-41. DOI: 10.1093/ije/dyp244.
4. Kugeler K.J., Staples J.E., Hinckley A.F., Gage K.L., Mead P.S. Epidemiology of human plague in
Emerg. Infect. Dis. 2015; 21:16-22. DOI: 10.3201/eid2101.140564.
5. Berger S. Infectious Diseases in China. Plague. Gideon Informatics; 2017. P. 521.
6. Arutyunov Y.I., Pichurina N.L., Sudina L.V., Truhachev A.L. Plague in China: the epidemiological and epizootological aspects. Infektsionney Bolezni: Novosti, Mneniya, Obuchenie [Infectious Diseases: News, Opinions, Training]. 2019; 8(3):70-7. DOI: 10.24411/2305-3496-2019-13011.
7. Conrad F.D., LeCocq F.R., Krain R. A recent epidemic of plague in Vietnam. Arch. Intern. Med. 1968; 122(3):193-8. DOI: 10.1001/archinte.1968.00300080001001.
8. Velimirovic B. Investigations on the epidemiology and control of plague in South Vietnam. Part I. Zentralbl. Bakteriol. Orig. A. 1974; 228(4):482-508. PMID: 4155201.
9. Kas'yan A.F., Li Thi Huong, Suntsov V.V., Dang Tuan Dat, Dao Huan Vinh, Nguyen Ai Phuong. [Epidemiological peculiarities
of seasonal manifestation of plague in Vietnam]. [Collection of works of the Joint Russian-Vietnamese Tropical Research and Technology Center «Tropcentr-98»]. 1997; 484-91.
10. Sludsky A.A., Kuznetsov A.A., Matrosov A.N., Boiko A.V., Kouklev E.V., Tara -sov M.A. Epidemic activity of present-day anthropourgic plague foci and the factors that determine it (by the example of Vietnam). Medicinsky Vestnik Severnogo Kavkaza [Medical Bulletin of the North Caucasus]. 2018; 13(4):680-4. DOI: 10.14300/mnnc.2018.13137.
1. Nguyen Büc Thinh, Vü Trong Duoc, Pham Hung, Phan Thi Thu Huong, Vü Ngoc Thüy, Binh Büc Thien vä Tran Nhu Duong. Giäm sät dinh ky vec to vä vat chu, trung gian, lan truyen benh dich hach tai möt so cüa khau vä cäng bien trong diem khu vuc mien Bäc, 2014. Tap XXV. Tap chi Y hoc du phong. 2015; 8(168):299-305.
12. Butler T. Plague history: Yersin's discovery of the causative bacterium in 1894 enabled, in the subsequent century, scientific progress in understanding the disease and the development of treatments and vaccines. Clin. Microbiol. Infect. 2014; 20(3):202-9. DOI: 10.1111/1469-0691.12540.
13. Marshall J.D. Jr, Joy R.J., Ai N.V., Quy D.V., Stockard J.L., Gibson F.L. Plague in Vietnam 1965-1966. Am. J. Epidemiol. 1967; 86(3):603-16. DOI: 10.1Q93/oxfordjjPurnals.aje.a120770.
14. Pha m, Anh Tua n, Nguyen Thi Kieu Anh. Giäm sät ,vä xäc dinh vi khuan dich hach tren bo chet, chuöt ö möt so dia diem tai Hä Nöi, näm 2015. Tap XXVII. Tap chi Y hoc du phong. 2017; 8:113-21. ' ' '
15. Yanjun Li, Erhei Dai, Yujun Cui, Min Li, Yujiang Zhang, Mingshou Wu, Dongsheng Zhou, Zhaobiao Guo, Xiang Dai, Baizhong Cui, Zhizhen Qi Zuyun Wang, Hu Wang, Xingqi Dong, Zhizhong Song, Junhui Zhai, Yajun Song, Ruifu Yang. Different Region Analysis for Genotyping Yersinia pestis Isolates from China. PLoS One. 2008; 3(5):e2166. DOI: 10.1371/journal.pone.0002166.
16. Yujiang Zhang, Tao Luo, Chao Yang, Xihong Yue, Rong Guo, Xinhui Wang, Mingde Buren, Yuqin Song, Ruifu Yang, Hanli Cao, Yujun Cui, Xiang Dai. Phenotypic and Molecular Genetic Characteristics of Yersinia pestis at an Emerging Natural Plague Focus, Junggar Basin, China. Am. J. Trop. Med. Hyg. 2018; 98(1):231-7cDOI: 10.4269/ajtmh.17-0195.
17. Liyuan Shi, Guirong Yang, Zhikai Zhang, Lianxu Xia, Ying Liang, Hongli Tan, Jinrong He, Jianguo Xu, Zhizhong Song, Wei Li , Peng Wang. Reemergence of human plague in Yunnan, China in 2016. PLoS One. 2018; 13(6):e0198067. DOI: 10.1371/journal. pone.0198067.
18. Peng Wang, Liyuan Shi, Fuxin Zhang, Ying Guo, Zhikai Zhang, Hongli Tan, Zhigang Cui, Yibo Ding, Ying Liang, Yun Liang, Dongzheng Yu, Jianguo ong Song. Ten years of surveillance of the Yulong plague focus in China and the molecular typing and source tracing of : the isolates. PLoS Negl. Trop. Dis. 2018; 12(3):e0006352. DOI: 10.1371/journal.pntd.0006352.
19. Zhang X., Hai R., Wei J., Cui Z., Zhang E., Song Z., Yu D. MLVA distribution characteristics of Yersinia pestis in China and the correlation analysis. BMC Microbiol; 2009; 9:205. DOI: 10.1186/1471-2180-9-205.
20. Li Y., Tan J., Shen E. The atlas ofplague and its environment in the People's Republic of China. Beijing, China: Science Press, Beijing; 2000. 221 p.
21. Koma T., Yoshimatsu K., Yasuda S.P., Li T., Amada T., Shimizu K., Isozumi R., Mai L.T., Hoa N.T., Nguyen V., Yamashiro T., Hasebe F., Arikawa J. A survey of rodent-borne pathogens carried by wild Rattus spp. in Northern Vietnam. Epidemiol. Infect. 2013; 141(9):1876-84. DOI: 10.1017/S0950268812002385.
Authors:
Porshakov A.M., Chumachkova E.A., Kas'yan Zh.A., Oglodin E.G. Russian Research Anti-Plague Institute "Microbe". 46, Universitetskaya St., Saratov, 410005, Russian Federation. E-mail: rusrapi@microbe.ru.
Luong Thi Mo. Russian-Vietnamese Tropical Center (Southern Branch). Ho Chi Minh, Vietnam. E-mail: luongmo@mail.ru
Vo Viet Cuong, Chin Van Toan, Bui Thi ThanNga. Russian-Vietnamese Tropical Center. Hanoi, Vietnam. E-mail: cuongvrtc@gmail.com.
Об авторах:
Поршаков А.М., Чумачкова Е.А., Касьян Ж.А., Оглодин Е.Г. Российский научно-исследовательский противочумный институт «Микроб». Российская Федерация, 410005,Саратов, ул. Университетская, 46. E-mail: rusrapi@microbe.ru.
Лыонг Тхи Мо. Российско-Вьетнамский Тропический Центр (Южное отделение). Вьетнам, Хошимин, район 10, ул. 3/2, 3. E-mail: luongmo@mail.ru.
Во Вьет Кыонг, Чинь Ван Тоан, Буй Тхи Тхань Нга. Российско-Вьетнамский Тропический Центр. Вьетнам, Ханой, район Кау Джай, ул. Нгуен Ван Хуен, 63. E-mail: cuongvrtc@gmail.com.
Поступила 24.01.20.
Принята к публ. 28.01.20.
