CC BY
99
УДК 612.017.1
РЕАКЦИЯ СОЕДИНИТЕЛЬНОЙ ТКАНИ РАЗЛИЧНЫХ ОРГАНОВ КРЫС НА ОСТРОЕ ЛОКАЛЬНОЕ ВОСПАЛЕНИЕ
Е.А. МУХЛЫНИНА*’**, Б.Г. ЮШКОВ***
*Институт иммунологии и физиологии УрО РАН, г. Екатеринбург **Уральский федеральный университет имени первого Президента России Б.Н.Ельцина, г. Екатеринбург [email protected]
Ответ соединительной ткани на введение скипидара (п/к 0,5 мл) носит генерализованный характер. При этом стадийность процессов соответствует классической схеме развития воспалительной реакции в месте повреждения: на ранних сроках преобладают экссудативные явления, которые на более поздних сроках сменяются клеточной реакцией. Последняя проявляется не только в активации тучноклеточного звена соединительной ткани, но и в изменении состояния фибробластического компонента. Настоящее исследование позволяет регулировать интенсивность локального воспаления.
Ключевые слова: воспаление, соединительная ткань, адаптация, фиброблас-ты, макрофаги, тучные клетки, коллаген
E.A. MUKHLYNINA, B.G. YUSHKOV. REACTION OF CONNECTIVE TISSUE OF VARIOUS ORGANS OF RAT AT ACUTE LOCAL INFLAMMATION
Connective tissue response to the turpentine injection (s/c 0,5 ml) has generalized character. At the same time stageing of processes corresponds to the classical scheme of development of inflammatory reaction in injury place: early exudative phenomena prevail which later are replaced by cellular reaction. The latter is expressed not only in connective tissue mast cell activation, but also in fibroblast component changes. The present research allows to regulate intensity of local inflammation.
Key words: inflammation, connective tissue, adaptation, fibroblasts, macrophages, mast cells, collagen
Современная физиология располагает значительными фактическими данными, отражающими разные стороны адаптации организма к действию экстремальных факторов. Детально изучена роль нервной системы, накоплены обширные сведения относительно эндокринной регуляции компенсаторных реакций. Кроме того, в последние годы широко обсуждается роль иммунной системы в этих процессах [1]. Дана детальная характеристика роли лимфоидных клеток в регуляции регенерации тканей и метаболических процессов в организме [2]. Активно изучается участие системы фагоцитирующих мононуклеаров в адаптивных реакциях [3]. Высказывается гипотеза о регуляторной роли системы тучных клеток [4]. При этом стоит отметить, что указанные клеточные элементы не изолированы друг от друга. Напротив, они находятся в тесной взаимосвязи между собой и реализуют основной спектр своей активности в составе соединительной ткани организма. Реакция организма на действие различных экстремальных факторов во многом зависит от состояния соединительной ткани. И наиболее ярким примером этого является воспаление.
В последние годы теория воспаления претерпела значительные изменения. Традиционные представления о местном характере этого типового па-
тологического процесса дополнены теорией системного воспаления [5]. Но она разделяется далеко не всеми авторами. В то же время не вызывает сомнения тот факт, что реакция соединительной ткани, составляющая основу воспаления, не ограничивается лишь местом повреждения, а охватывает всю ткань в целом. При этом следует ожидать, что выраженность реакции должна изменяться по мере удаления от места травмы. При всей очевидности такого предположения, оно оказалось недостаточно экспериментально обосновано, что и составило суть настоящего исследования. В работе проведено изучение состояния соединительной ткани различных органов крыс в условиях острого воспаления.
Материал и методы
Работа выполнена на белых беспородных крысах-самцах массой 300 - 350 г. Животных содержали в условиях лабораторного вивария на стандартном рационе. Выделяли группу контрольных животных (п=10) и экспериментальную группу (п=20). Поскольку для исследования адаптивных процессов животные в контрольной группе не должны были испытывать стрессирующих воздействий, в качестве группы сравнения были выбраны
интактные крысы. Животных всех групп забивали в одно и то же время суток под эфирным наркозом.
Традиционно для экспериментального воспроизведения гнойного асептического воспаления используют различные химические раздражающие агенты - скипидар, кротоновое масло, формалин и другие, а также инертные вещества - каолин, вату, пластик, дерево, стекло. Экссудативное воспаление моделируют с помощью декстрана и каррагинана. Чтобы избежать дальнейшего присутствия флого-генного агента в очаге, применяют модели термического или лучевого воспаления. Кроме того, существует целый ряд моделей инфекционного воспаления [6]. Скипидарное воспаление было выбрано для настоящего исследования как легко воспроизводимая, точно дозируемая и безопасная для персонала классическая модель острого локального асептического воспаления с выраженной клеточной реакцией. Воспаление вызывали однократным введением 0,5 мл скипидара под кожу спины [7]. Животных выводили из эксперимента через 6 ч (n=10) и двое суток (n=10) после введения скипидара.
Для подтверждения развития воспалительной реакции на обоих сроках проводили оценку гематологических показателей периферической крови при помощи 18-ти параметрового геманализатора Celly 70. Для гистологического исследования и изучения реакции соединительной ткани у крыс забирали тимус, надпочечники, желудок, кишечник, кожу с брюшной стороны и кожу с места воспаления. Материал фиксировали в 10%-ном нейтральном формалине, цинковом фиксаторе, фиксаторе Буэна. Стандартную гистологическую проводку выполняли при помощи автоматического тканевого процессора Leica TP1020 с последующей заливкой материала в парафин на станции Leica EG1160. Гистологические срезы толщиной 3 - 5 мкм готовили на санном микротоме Leica SM2000R.
Для оценки общей морфологической картины и количества фибробластов в органах препараты окрашивали гематоксилином и эозином. Тучные клетки визуализировали при помощи гистохимического окрашивания протеогликанов основным коричневым по Шубичу. Функциональную активность мастоцитов оценивали по средней оптической плотности клеток, определение которой проводили автоматически при помощи программы ВидеоТест Морфология 5.2. Значения средней оптической плотности представляли в условных единицах. Также осуществляли вычисление индекса грануло-лизиса, как показателя мерокриновой секреции, и коэффициента дегрануляции, как показателя апокриновой секреции [8]. При этом индекс гранулоли-зиса рассчитывали как процент мастоцитов с оптической плотностью не более 0,150 условных единиц, а коэффициент дегрануляции - как процент тучных клеток с явлениями выхода гранул за пределы цитоплазмы.
Подсчет макрофагов вели на препаратах, окрашенных иммуногистохимически при помощи первичных антител Mouse Anti-Rat Monocytes/Macrophages [CD 68] Monoclonal Antibody (Millipore) с применением энзиматической демаскировки антигенов.
Количество лейкоцитов оценивали по экспрессии CD45 (Mouse Anti-Rat CD45(BD Bioscience)). Пролиферацию клеток соединительной ткани анализировали по экспрессии Ki-67 (Mouse Anti-Human Ki-67 (BD Biosciense)). Во всех случаях в качестве вторичных антител использовали Biotin Goat Anti-Mouse Ig (Multiple Adsorption) (BD Bioscience). Иммуногистохи-мическое окрашивание производили непрямым пе-роксидазным методом по стандартным протоколам [9], визуализацию реакции антиген-антитело проводили при помощи 3,3-диаминобензидина.
Подсчет количества клеток соединительной ткани выполняли с использованием светового микроскопа Leica DM2500 при увеличении объектива 100X в 20 полях зрения с последующим пересчетом на 1 мм2.
Выраженность интерстициального отека оценивали по относительной доле сухого вещества и воды в исследуемых органах, а также путем измерения диаметра сосудов микроциркуляторного русла (прекапилляров, капилляров и посткапиллярных венул). Сухая масса органов определялась путем высушивания образцов в термостате при 37°С до постоянной массы.
Обмен коллагена в исследуемых органах оценивали по суммарному содержанию оксипроли-на методом Bergman and Loxely по реакции с пара-диметиламинобензальдегидом. Спектрофотометрическое определение концентрации оксипролина в пробах проводили при длине волны 558 нм. При этом вычислялось содержание оксипролина в мкг на 1 мг сухой массы органа, количество коллагена -на единицу сухой массы и процент коллагена в органе. Для вычисления количества коллагена применяли умножающий коэффициент 6,94 [10].
Анализ данных выполнили в пакете статистических программ STATISTICA 6.0 (StatSoft, Inc. 2001). Данные представляли в виде среднего арифметического (M) ± стандартная ошибка среднего (m). Для оценки значимости различий между группами использовали критерий Манна-Уитни. При проверке статистических гипотез использовали 5%-ный уровень значимости.
Результаты и обсуждение
Проведенные морфологические исследования свидетельствуют, что через 6 ч после подкожной инъекции скипидара в области воспаления в глубоких слоях дермы и в подкожной клетчатке наблюдаются очаги деструкции соединительной ткани с выраженным отеком (рис. 1, а). Перифокально определяются выраженная лейкоцитарная инфильтрация, диффузная миомаляция, интерстициальный отек. Все дериваты кожи сохранены. Вокруг структур дермы наблюдается диффузное гнойное воспаление (рис. 1, б).
На вторые сутки границы очага деструкции становятся более отчетливыми. В центре его усиливается отек, а с внешней стороны от сформированного лейкоцитарного вала определяются достаточно широкий слой грануляционной ткани с новообразованными капиллярами, фибробластами (рис. 1, в) и поперечно-полосатая мышечная ткань с оча-
вышение количества тромбоцитов (с 638,00±22,96х х103/мкл до 855,69±53,10х103/мкл) и тромбокрита (с 0,43±0,01% до 0,56±0,03%). Это, по-видимому, является частью неспецифической стрессорной реакции на воздействие. Ко вторым суткам содержание лимфоцитов в периферической крови продолжает находиться на пониженном относительно контроля уровне (5,99±0,43 х103/мкл). Остальные показатели белой крови и тромбоцитов возвращаются к уровню контроля.
Оценка относительного содержания сухого вещества и воды в исследованных органах свидетельствует о том, что развитие экссудативных явлений наблюдается не только в очаге воспаления, но и на удалении от него (табл. 1). Так, через 6 ч после введения скипидара относительная масса сухого вещества надпочечников, желудка, кожи с брюшной стороны и кожи в очаге воспаления становится меньше, чем в интактных органах. Это указывает на развитие отека. При этом в тимусе и кишечнике показатели не изменяются.
На вторые сутки в надпочечниках и коже с брюшной стороны относительная масса сухого вещества увеличивается в сравнении с 6-часовыми показателями и возвращается к уровню интактных животных. В тимусе, кишечнике и желудке соотношение сухого вещества и воды не отличается от интактных. При этом в коже в очаге воспаления наблюдается нарастание экссудативных явлений. Проведенные морфометрические исследования также свидетельствуют об увеличении в очаге воспаления через 6 ч после введения скипидара (табл. 1) диаметра мелких сосудов (прекапилляров, капилляров, посткапиллярных венул). Отмечается также расширение сосудов микроциркуляторного русла (МЦР) в тимусе. В надпочечниках, кишечнике, желудке и коже на удалении от очага воспаления диаметр сосудов от показателей интактных крыс не отличается.
Таблица 1
Показатели экссудации в органах крыс при воспалении (M±m)
Группа Орган Сухая масса, % Вода, % Диаметр сосудов МЦР, мкм
Интактные Надпочечники 32,68±1,81 67,32±1,81 10,74±1, 89
Тимус 24,92±0,51 75,08±0,51 10,53±1,1 5
Кишечник 20,97±1,91 79,03±1,91 11,90±1, 17
Желудок 26,77±1,80 73,23±1,80 14,21 ±1,77
Кожа с брюха 50,54±3,47 49,46±3,47 11,04±1,05
Кожа (место введения) 42,79± 1,12 57,21 ±1,12 11,04±1,05
Воспаление 6 ч Надпочечники 28,78±0,46* 71,22±0,46* 10,35±0,82
Тимус 24,97±0,82 75,03±0,82 15,05±0,37*
Кишечник 22,65±0,65 77,35±0,65 12,37±2,08
Желудок 22,84±0,28* 77,16±0,28* 16,06±2,01
Кожа с брюха 41,28±2,66* 58,72±2,66* 10,35±0,97
Кожа (место введения) 23,51 ±1,01 * 76,49±1,01* 16,99±0,91*
Воспаление 2 суток Надпочечники 33,42±1,74** 66,58±1,74** 11,79±0,94
Тимус 25,30±0,85 74,70±0,85 13,61 ±1,57*
Кишечник 22,11 ±0,40 77,89±0,40 9,85±0,29
Желудок 23,09±1,55 76,91 ±1,55 13,82±1,66
Кожа с брюха 50,61 ±1,77** 49,39±1,77** 11,74±0,91
Кожа (место введения) 19,15±2,11* 80,85±2,11* 21,93±0,80***
Примечание. * - различия с интактными достоверны (р<0,05); ** - различия с 6 ч достоверны (р<0,05).
Рис. 1. Микрофотография кожи крысы в области введения скипидара: а - перифокальная лейкоцитарная инфильтрация через 6 ч после инъекции; б - воспалительные явления в дерме через 6 ч; в -лейкоцитарный вал через двое суток после инъекции; г - дерма через двое суток. Окраска гематоксилином и эозином. Увеличение х 100.
говым воспалением без миомаляции (без некроза). Очаг деструкции отчетливо наблюдается в подкожной жировой клетчатке. В дерме отмечаются минимальные явления воспаления - инфильтрация отдельными лимфо-гистиоцитарными элементами, слабо выраженный отек (рис. 1, г).
В периферической крови после введения скипидара развивается нейтрофильный лейкоцитоз (количество нейтрофилов в крови интактных животных - 2,57±0,20х103/мкл), а через 6 ч после введения скипидара их количество увеличивается до 4,65±0,54 х103/мкл. Кроме того, относительно интактных животных достоверно снижается содержание лимфоцитов (с 7,20±0,35 х103/мкл до 5,78±0,52 х103/мкл). Помимо реакции клеток белой крови через 6 ч после введения скипидара отмечается по-
Через двое суток в тимусе диаметр сосудов МЦР остается на повышенном относительно контроля уровне (табл. 1). При этом в области воспаления в коже наблюдается увеличение показателей как относительно интактных значений, так и в сравнении с реакцией, наблюдаемой через 6 ч. В остальных изученных органах статистически значимых изменений не происходит. Таким образом, в очаге воспаления увеличивается диаметр мелких сосудов и повышается их проницаемость с развитием отека. На удалении от очага содержание воды в органах также несколько повышается. Но это не связано с изменениями просвета сосудов МЦР.
При анализе реакции клеточного компонента соединительной ткани различных органов установлено, что общее число соединительнотканных клеток через 6 ч после введения скипидара увеличивается в капсуле надпочечников по сравнению с контролем в 1,4 раза (табл. 2). В остальных органах на раннем сроке достоверных изменений не наблюдается.
При этом на вторые сутки отмечается повышение общего содержания клеток в надпочечниках и тимусе в 1,7 раза, коже - в 1,5 раза по сравнению с контролем. В то время как в желудке происходит снижение суммарного количества клеток соединительной ткани в 1,5 раза по сравнению с контролем. В кишечнике достоверных изменений нет.
Анализ экспрессии Ю-67 свидетельствует, что пролиферативная активность соединительнотканных клеток в разных органах в ответ на воспаление меняется неодинаково. Через 6 ч после введения скипидара по сравнению с контролем в 3,8 раза увеличивается количество пролиферирующих клеток соединительной ткани кожи (табл. 2). В капсуле надпочечников, напротив, отмечается снижение данного показателя в два раза.
На вторые сутки воспаления содержание Ю-67+ клеток соединительной ткани увеличивается в надпочечниках, тимусе и коже по сравнению с контролем в 6,4, 2,7 и 7,1 раза соответственно. В то же
время в желудке отмечается снижение числа делящихся клеток по сравнению с 6-часовыми показателями в 2,4 раза. В соединительной ткани кишечника уменьшается количество Кн67+ клеток по отношению к уровню интактных животных в 1,7 раза.
Известно, что стромальные клетки в физиологическом состоянии обладают невысокой пролиферативной активностью. При этом делятся преимущественно клетки фибробластического ряда. Дефинитивные формы лейкоцитов, макрофагов и тучных клеток могут пролиферировать под воздействием ряда факторов [11-13]. Однако в целом они не склонны к делению. Поэтому наблюдаемую в соединительной ткани экспрессию ядерного протеина №-67 можно связать преимущественно с фибробластами, отчасти лимфоцитами (в тканях, ассоциированных с лимфоузлами, например, в кишечнике) и малодифференцированными клетками-предшественниками.
При оценке вклада отдельных типов клеток в формирование реакции на воспаление установлено, что через 6 ч после введения скипидара в соединительнотканной капсуле надпочечников в 1,5 раза повышается количество клеток фибробласти-ческого ряда (табл. 3). Плотность лейкоцитов, напротив, снижается в 3,4 раза. Количество макрофагов и тучных клеток не меняется. При этом, однако, мастоциты активно дегранулируют. Об этом свидетельствуют повышение коэффициента дегрануляции в три раза и снижение оптической плотности тучных клеток. Активация секреции мастоцитов капсулы надпочечников в развитии адаптивных реакций организма имеет важное значение, поскольку адренальный стероидогенез напрямую регулируется вазоаактивными секретами тучных клеток [14]. Ко вторым суткам абсолютное количество фибро-бластов продолжает увеличиваться (табл. 3). При этом содержание макрофагов, лейкоцитов и тучных клеток соответствует интактным животным. Показатели функциональной активности мастоцитов возвращаются к уровню контроля.
Таблица 2
Показатели общей клеточности соединительной ткани и пролиферации в органах при воспалении (M±m)
Группа Орган Клеточность, кл./1мм2 К1-67+ клеток, кл./1мм2
Интактные Надпочечники 2178,59±174,86 44,36±5,85
Тимус 1290,27±140,65 49,80±14,37
Кишечник 4103,11 ±211,68 364,20±38,16
Желудок 5209,34±101,73 84,05±18,93
Кожа с брюха 2140,08±178,54 38,13±6,20
Воспаление 6 ч Надпочечники 3101,95±302,06* 21,79±2,54*
Тимус 1171,27±58,91 74,71±23,06
Кишечник 3609,86±192,82 308,17±47,62
Желудок 4444,62±420,33 140,22±29,99
Кожа с брюха 2497,54±105,86 145,27±28,08*
Воспаление 2 суток Надпочечники 3708,81 ±78,79* 282,23±25,66***
Тимус 2188,03±114,44*** 135,41±25,76*
Кишечник 4111,30±477,99 208,56±40,84*
Желудок 3364,46±153,28*** 57,33±10,08**
Кожа с брюха 3145,20±228,93* 270,82±33,87***
Примечание. * - различия с интактными достоверны (р<0,05); ** - различия с 6 ч достоверны (р<0,05).
Таблица 3 Показатели морфофункциональной активности соединительной ткани капсулы надпочечников у крыс при воспалении (M±m)
Надпочечники | Интактные | Воспаление 6 ч | Воспаление 2 суток
Фибробласты, кл./мм2 1949,97±130,23 2966,54±290,66* 3377,43±60,88*
Макрофаги (CD68+), кл./мм2 21,78±0,95 36,32±16,41 51,70±14,19
Тучные клетки, кл./мм2 38,52±9,32 57,07±11,72 41,55±9,30
Коэффициент дегрануляции тучных клеток, % 26,15±1, 15 77,33±9,80* 39,54±7,52**
Индекс гранулолизиса тучных клеток, % 11,02±3,85 23,20±6,05 13,81±4,79
Оптическая плотность тучных клеток, усл. ед. 0,27±0,01 0,22±0,01* 0,27±0,02
Лейкоциты (CD45+), кл./мм2 142,91 ± 14,09 42,02±11,20* 238,13±65,14**
Примечание. * - различия с интактными достоверны (р<0,05); ** - различия с 6 ч достоверны (р<0,05).
Таблица 4
Показатели морфофункциональной активности соединительной ткани трабекул тимуса у крыс
при воспалении (M±m)
Тимус
Интактные
Воспаление 6 ч
Воспаление 2 суток
Фибробласты, кл./мм2 599,22±113,60 544,75±60,53
Макрофаги ^68+), кл./мм2 302,72±69,88 221,01±14,91
Тучные клетки, кл./мм2 170,43±11,91 147,15±8,76
Коэффициент дегрануляции тучных клеток, % 54,45±2,59 73,81±3,96*
Индекс гранулолизиса тучных клеток, % 7,49±2,51 24,84±3,79*
Оптическая плотность тучных клеток, усл. ед. 0,27±0,01 0,19±0,006*
Лейкоциты (CD45+), кл./мм2______________________ 206,23±56,43 258,37±52,23
1294,94±80,78** 254,22±23,77 231,09±35,12 52,15±4,54** 19,08±2,62* 0,24±0,02 407,78±67,06*
Примечание. * - различия с интактными достоверны (р<0,05);
различия с 6 ч достоверны (р<0,05).
В отличие от капсулы надпочечников в соединительной ткани трабекул тимуса через 6 ч после введения скипидара достоверных изменений количества клеток не отмечается (табл. 4). При этом наблюдается активация тучных клеток - увеличиваются коэффициент дегрануляции (в 1,4 раза) и индекс гранулолизиса (в 3,3 раза). Средняя оптическая плотность тучных клеток снижается относительно контроля в 1,4 раза.
Через двое суток после инициации воспаления в трабекулах тимуса резко (в два раза) увеличивается плотность фибробластов по сравнению с контролем (табл. 4). В два раза относительно интактных животных повышается и количество лейкоцитов. Содержание макрофагов и мастоцитов не меняется. Коэффициент дегрануляции и оптическая плотность тучных клеток возвращаются к исходным показателям, в то время как индекс гранулолизиса остается на повышенном относительно контроля уровне.
В коже на удаленном от очага воспаления участке через 6 ч после инъекции скипидара значительно повышается плотность CD68+ макрофагов (табл. 5). По-видимому, данная реакция имеет адаптивное значение, связанное с необходимостью повышения защитных свойств пограничных тканей с высоким риском инфицирования и повреждения. Содержание других типов клеток соединительной ткани не отличается от интактных. Функциональная активность мастоцитов не изменяется. На вторые сутки воспаления количество фибробластов в дерме увеличивается в два раза по сравнению с ин-тактными животными (табл. 5). Содержание других
клеточных типов не отличается от контрольных значений. В собственной пластинке и подслизистой кишечника через 6 ч после введения скипидара резко увеличивается количество клеток фибробла-стического ряда, плотность лейкоцитов, напротив, по сравнению с контролем снижается в 1,7 раза (табл. 6). Число макрофагов и тучных клеток, также как и показатели их функциональной активности, не меняется. На вторые сутки развития воспаления количество фибробластов продолжает расти (табл. 6). При этом отмечается снижение абсолютного числа тучных клеток по сравнению с контролем в 1,9 раза. Снижается также в 1,5 раза и коэффициент дегрануляции. Количество лейкоцитов и макрофагов находится на уровне интактных значений.
Абсолютные показатели клеточного состава соединительной ткани желудка через 6 ч не отличаются от значений у интактных животных (табл. 7). При этом отмечается повышение секреторной активности тучных клеток, индекс гранулолизиса мас-тоцитов соединительной ткани желудка увеличивается в 1,7 раза, а оптическая плотность снижается. На вторые сутки содержание лейкоцитов в соединительной ткани желудка оказывается существенно ниже контрольных значений, снижается относительно 6-часовых показателей и количество макрофагов в 1,6 раза (табл. 7). Показатели функциональной активности тучных клеток возвращаются к уровню интактных животных. Полученные данные свидетельствуют о том, что при местном воспалении изменяется и состояние межклеточного вещества соединительной ткани.
Таблица 5
Показатели морфофункциональной активности соединительной ткани кожи (удаленного от области воспаления участка) у крыс при воспалении (M±m)
Кожа
Интактные
Воспаление 6 ч
Воспаление 2 суток
Фибробласты, кл./мм2 926,07±79,78
Макрофаги (CD68+), кл./мм2 196,11 ±50,89
Тучные клетки, кл./мм2 135,41 ±11,70
Коэффициент дегрануляции тучных клеток, % 34,92±2,86
Индекс гранулолизиса тучных клеток, % 17,47±5,05
Оптическая плотность тучных клеток, усл. ед. 0,21±0,007
Лейкоциты (СР45+), кл./мм2_____________________ 754,86±106,67
Примечание. * - различия с интактными достоверны (р<0,05);
854,48±52,40 470,31±31,49* 168,87±14,90 49,62±8,22 28,57±6,23 0,20±0,02 1003,89±102,03
1892,611220,80** 265,82±48,88** 171,21±39,53 52,24±8,45 18,43±6,20 0,22±0,01 815,56±101,06
различия с 6 ч достоверны (р<0,05).
Таблица 6
Показатели морфофункциональной активности соединительной ткани кишечника у крыс
при воспалении (M±m)
Кишечник
Интактные
Воспаление 6 ч
Воспаление 2 суток
Фибробласты, кл./мм2 779,77±65,64 1265,37±135,99* 1824,13±219,31**’
Макрофаги ^68+), кл./мм2 451,36±80,70 534,37±77,00 355,90±54,16
Тучные клетки, кл./мм2 390,27±29,68 357,98±31,97 209,88±47,93***
Коэффициент дегрануляции тучных клеток, % 66,72±4,30 66,26±6,37 43,28±6,35***
Индекс гранулолизиса тучных клеток, % 88,58±3,91 81,02±8,78 86,47±5,55
Оптическая плотность тучных клеток, усл. ед. 0,11 ±0,004 0,12±0,008 0,11 ±0,01
Лейкоциты (СР45+), кл./мм2_____________________ 2469,52±267,22 1452,14±153,10* 1694,94±407,50
Примечание. * - различия с интактными достоверны (р<0,05);
различия с 6 ч достоверны (р<0,05).
Таблица 7
Показатели морфофункциональной активности соединительной ткани желудка у крыс
при воспалении (M±m)
Желудок
Интактные
Воспаление 6 ч
Воспаление 2 суток
Фибробласты, кл./мм 1579,77±192,17
Макрофаги (CD68+), кл./мм2 318,29±49,50
Тучные клетки, кл./мм2 117,51 ±22,26
Коэффициент дегрануляции тучных клеток, % 61,00±5,34
Индекс гранулолизиса тучных клеток, % 52,13±2,48
Оптическая плотность тучных клеток, усл. ед. 0,15±0,008
Лейкоциты (СР45+), кл./мм2_______________________ 3125,07±171,67
1441,25±98,88 392,22±42,39 116,21±20,86 71,90±6,21 86,26±3,75* 0,12±0,001 * 2494,94±452,04
1232,69±71,22
240,73±44,89**
146,30±12,16 48,25±6,34** 59,20±5,91** 0,14±0,01** 1744,75±129,90*
Примечание. * - различия с интактными достоверны (р<0,05);
различия с 6 ч достоверны (р<0,05).
Через 6 ч в коже в месте введения скипидара отмечается повышение содержания суммарного оксипролина в 1,3 раза. В коже с брюшной стороны тела (на удаленном от области воспаления участке) количество оксипролина понижается относительно уровня контроля в 1,3 раза (рис. 2), что свидетельствует о преобладании в обмене коллагена катабо-лических процессов. В остальных исследованных органах показатели обмена коллагена не меняются по сравнению с интактными животными. Ко вторым суткам воспаления в обмене коллагена синтетические явления начинают превалировать. Содержание окси-пролина, а соответственно и коллагена, увеличивается по сравнению с контролем в надпочечниках, тимусе, желудке и коже с места введения скипидара в 1,6, 1,8, 1,4 и 1,5 раза соответственно (рис. 2). В кишечни-
ке отмечается повышение содержания оксипролина по сравнению с 6-часовым уровнем в 1,5 раза (рис. 2). В коже с брюшной стороны тела количество общего оксипролина остается на пониженном относительно контроля уровне.
Проведенные исследования содержания ок-сипролина в коже крыс через две недели после введения скипидара свидетельствуют о его повышении в коже с брюшной стороны тела до 11,35±0,89 мкг/мг сухой массы. Следовательно, на ранних сроках в удаленных от места воспаления участках кожи преобладают катаболические явления. Позднее, в продуктивную фазу воспаления на удалении от очага воспаления начинают нарастать анаболические процессы, также как и в коже в месте введения скипидара.
<3
К
<й
и
Л
О
3
о
о
<я
>К
О
X
о
ад
ад
<я
К
К
ч
о
а
20
18
16
14
12
10
* **
* **
* **
Я
Надпочечник Тимус Кишка Желудок Кожа брюхо Кожа спина □ Интактные ■ Воспаление 6 ч Н Воспаление 2 сут.
Рис. 2. Содержание общего оксипролина в органах крыс при остром асептическом воспалении: * - различия с интактными достоверны (р<0,05); ** - различия с 6 ч достоверны (р<0,05).
*
8
6
Таким образом, в ответ на локальное острое воспаление в соединительной ткани различных органов отмечается активация секреции тучных клеток, медиаторы которых вызывают повышение проницаемости сосудов. Это приводит к генерализованному отеку. Наиболее активно реагируют на воздействие мастоциты железистых эндокринных органов - надпочечников и тимуса, принимающих непосредственное участие в реализации стресс-реакции и ответе организма на введение флогоген-ного агента.
Механизм модулирующего действия мастоци-тов на процессы репарации может быть связан с торможением нейтрофилов, а также с регуляцией альтеративных явлений и активацией моноцитов-макрофагов, главным образом ответственных за раневое очищение очага воспаления. Помимо опосредованного эффекта тучных клеток через нейтро-филы и моноциты, имеет место, по-видимому, и прямое стимулирующее действие тучноклеточных медиаторов на фибробласты [15]. В ходе развития местной воспалительной реакции отмечается генерализованное увеличение количества клеток фибробласти-ческого ряда. Кроме этого, изменяется их пролиферативная активность и повышается коллагенопродукция. Это может служить патогенетической основой фиброзных изменений.На удаленном от места введения скипидара участке в соединительной ткани кожи в ответ на локальное воспаление резко увеличивается содержание макрофагов, миграция которых к местам повышенной опасности повреждения и проникновения инфекции может носить адаптивный характер. Однако высокое содержание гистиоцитов в коже, кроме того, может служить одним из звеньев развития реакций гиперчувствительности, часто возникающих при хронических стрессах.
Заключение
Фазные изменения соединительной ткани в ответ на местное повреждение носят как локальный, так и генерализованный характер. При этом стадийность процессов, происходящих в удаленных от очага органах, соответствует классической схеме развития воспалительной реакции: на ранних сроках - преобладание экссудативных явлений, которые на более поздних сроках (двое суток) сменяются клеточной реакцией. Однако, если в указанные сроки в очаге воспаления отмечается выраженный ответ со стороны клеток иммунной системы - лейкоцитов, макрофагов, тучных клеток, то в остальных исследованных органах помимо первоначального изменения функциональной активности мастоцитов наблюдаются генерализованные изменения со стороны клеток фибробластического ряда - увеличение их количества, повышение коллагенопродукции, изменение пролиферативного потенциала.
Литература
1. Черешнев ВА., Юшков Б.Г., Климин В.Г., Лебедева Е.В. Иммунофизиология. Екатеринбург: УрО РАН, 2002. 259 с.
2. Бабаева А.Г. Регенерация и система иммуногенеза. М.: Медицина, 1985. 255 с.
3. Юшков Б.Г., Абидов М.Т., Данилова И.Г., Медведева С.Ю. Неиммунологические функции макрофагов. Екатеринбург: УрО РАН, 2011. 246 с.
4. Арташян О.С., Юшков Б.Г., Мухлынина ЕА. Изучение функциональной активности тучных клеток при иммобилизационном стрессе // Цитология. 2006. Т.48. №8. С. 665 -668.
5. Гусев Е.Ю., Черешнев ВА., Юрченко Л.Н. Системное воспаление с позиции теории типового патологического процесса // Цитоки-ны и воспаление. 2007. Т.6. №4. С. 9 - 21.
6. Патофизиология: учебник в 2 т. / Под ред. В.В. Новицкого, Е.Д. Гольдберга, О.И. Ура-зовой. 4-е изд., перераб. и доп. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2009. Т. 1. 848 с.
7. Wagner DA., Young V.R., Tannenbaum S.R. Mammalian nitrate biosynthesis: incorporation of 15NH3 into nitrate is enhanced by endotoxin treatment. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1983. Vol. 80. P. 4518 - 4521.
8. Умарова БА., Шапиро Ф.Б., Струкова С.М. Участие гепарина тучных клеток в физиологических реакциях организма // Вестн. Моск. ун-та. Сер.16. Биология. 1994. №3. С. 18 - 24.
9. Эллиниди В.Н., Аникеева Н.В., Максимова Н.А. Практическая иммуногистоцитохимия (методические рекомендации). СПб.: ВЦЭРМ МЧС России, 2002. 36 с.
10. Chrishan S. Samuel. Determination of Collagen Content, Concentration and Sub-types in Kidney Tissue. // Kidney Research: Experimental Protocols. NY: A Humana Press. 2008. Chap. 16. P. 223-235.
11. Metcalfe D.D., Baram D, Mekory YA Mast cells. // Physiol. Rev. 1997. Vol. 77. P. 1033 -1079.
12. Gordon S., Taylor P.R. Monocyte and macrophage heterogeneity. // Nat. Rev.Immunol. 2005. Vol. 5. P. 953 - 964.
13. Фрейдлин И.С., Тотолян АА. Клетки имун-ной системы. СПб: Наука, 2001. Т.3. С. 1 -197.
14. Hinson J.P., Vinson G.P., Kapas S., Teja R. The relationship between adrenal vascular events and steroid secretion: the role of mast cells and endothelin. // J.Steroid Biochem Mol Biol. 1991. Vol. 40(1-3). P. 381 - 389.
15. Garbuzenko E, Nagler A, Pickholtz D, Gillery P, Reich R, Maquart FX, Levi-Schaffer F. Human mast cells stimulate fibroblast proliferation, collagen synthesis and lattice contraction: a direct role for mast cells in skin fibrosis. // Clin Exp Allergy. 2002. Vol. 32(2). P. 237 - 246.
Статья поступила в редакцию 12.09.2012.
