CC BY
32
DOI: 10.14258/jcpim.2020015172
УДК 54.052
РАЗРАБОТКА СПОСОБА ГИДРОЛИТИЧЕСКОГО РАСЩЕПЛЕНИЯ МОЛЕКУЛ ПЕНТАЦИКЛИЧЕСКИХ САПОНИНОВ - ПРОИЗВОДНЫХ КВИЛЛАЙЕВОЙ КИСЛОТЫ
© Н.В. Мироненко1 *, И.В. Шкутина2, Т.А. Брежнева1, В. Ф. Селеменев1
1 Воронежский государственный университет, Университетская пл., 1,
Воронеж, 394018 (Россия), e-mail: [email protected]
2 Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский
университет, ул. Литовская, 2, Санкт-Петербург, 194100 (Россия)
Рассмотрена возможность гидролитического расщепления гликозидов мыльного дерева Qullaja Установленыi условия относительно полного гидролиза сапонинов: смесь - соляная кислота, вода, этанол в соотношении 4 : 7.35 : 6.65, время нагревания - не менее 6 ч. Определен состав углеводной части сапонинов - во всех гидролизатах была идентифицирована ксилоза, глюкуроновая кислота, галактоза, арабиноза. Проведен анализ полученной фракции агликона - квил-лайевой кислоты физико-химическими методами. По результатам расчета хроматографических характеристик рекомендована система для элюирования агликона следующего состава: петролейный эфир-хлороформ-ацетон (20 : 20 : 5). Методом потенциометрического титрования в неводной среде растворителя определено процентное содержание агликона в выделенных фракциях - 88.23%. Проведено сравнительное исследование водного раствора агликона и сапонинов методом УФ-спектрофотометрии. Показано уменьшение интенсивности полос поглощения в области 230, 290 нм, ответственных за поглощение карбонильных структур. Проанализированы ИК-спектры сапонинов и квиллайевой кислоты, идентифицированы полосы, отнесенные к колебаниям функциональных групп агликона и углеводных остатков.
Ключевые слова: сапонины, агликон, квиллайевая кислота, экстракция, гидролиз, тонкослойная хроматография.
Введение
Многие пентациклические агликоны представляют интерес с медицинской точки зрения как в натив-ных формах, так и в качестве синтетических производных [1-4]. Поскольку в настоящее время за рубежом сапонины экстрагируются из мыльного дерева в промышленном масштабе, их сапогенины (агликоны) могут быть недорогим исходным материалом медицинского и фармакологического назначения. Квиллайевая кислота представляет собой полифункциональное соединение с широким диапазоном химических модификаций ее структуры для изменения фармакологической активности. Целью настоящей работы являлось исследование возможности получения агликона сапонинов мыльного дерева - квиллайевой кислоты и изучение его физико-химических свойств.
Экспериментальная часть
Мироненко Наталья Владимировна - кандидат химических наук, ассистент кафедры аналитической химии, e-mail: [email protected] Шкутина Ирина Викторовна - кандидат биологических наук, доцент кафедры общей и медицинской химии, e-mail: [email protected] Брежнева Татьяна Александровна - кандидат фармацевтических наук, доцент кафедры фармхимии и фармтехнологии, e-mail: [email protected] Селеменев Владимир Федорович - доктор химических наук, профессор, заведующий кафедрой аналитической химии, e-mail: [email protected]
Объектом исследования являлся образец сапонинов Quillaja saponaria производства Acrus (Бельгия). Общая структурная формула сапонинов Quillaja Saponaria приведена на рисунке 1. Агликон сапонина - квиллайевая кислота, пентациклический тритерпеноид типа Р-амирина.
Для проведения гидролиза в круглодонные колбы помещали точные навески (~1.0 г) сапонинов, приливали по 100 мл смеси следующих составов:
* Автор, с которым следует вести переписку.
он Г<о >
о__I он
Рис. 1. Общая структурная формула сапонинов
Quillaja saponaria (R1 - СэН12Оэ, R2 - C<sH12O5, R3 - C5H10O5)
1) уксусная кислота, соляная кислота, вода (35 : 10 : 55);
2) серная кислота, этиловый спирт 70%, вода (1.75 : 3 : 10);
3) 2М соляная кислота, этиловый спирт 50%, вода (4 : 7.35 : 6.65) [5].
Содержимое колбы нагревали с обратным холодильником в течение 5-8 ч. По завершении гидролиза выпавший осадок отфильтровывали, промывали на фильтре водой до нейтральной рН и экстрагировали органическими растворителями (хлороформом, этилаце-татом, 70% этанолом) трижды по 10 мл. Получали осадок, содержащий квиллайевую кислоту.
Для анализа квиллайевой кислоты (агли-
кона) и идентификации сахарных остатков методом ТСХ использовали пластины «Сорбфил» (Россия) размером 10^10 см. Пластины помещали в камеру со смесью растворителей, составы которых указаны в таблице 1 [6, 7].
В качестве проявляющего реактива использовали 30% спиртовой раствор фосфорно-молибденовой кислоты и 0.2% раствор пара-оксибензальдегида в 1 М растворе серной кислоты [8]. Для проявления зон пластину термостатировали при температуре 110 °С в течение 5 мин.
Количественное содержание квиллайевой кислоты в полученных фракциях определяли методом по-тенциометрического титрования в неводной среде [9]. В качестве титранта использовали 0.01М раствор №ОН в смеси бензол-этанол (1 : 4), стандартизованный по бензойной кислоте. Параллельно проводили контрольный опыт. Полученные фракции агликона исследовали методом УФ-спектрофотометрии. Для этого готовили водные и водно-спиртовые растворы сапонинов с концентрацией 0,08 мг/мл, и спиртовые растворы агликона с концентрацией 0.2 мг/мл. УФ-спектры снимали на спектрофотометре СФ-56 в диапазоне длин волн 200-350 нм в кварцевых кюветах с 1=1см. Сравнительный анализ образцов агликона и сапонинов методом ИК-спектроскопии проводили в виде таблеток с КВг. ИК-спектры снимали на приборе «Инфралюм ФТ-02» в интервале частот 4000-400 см-1.
Таблица 1. Составы подвижных фаз для анализа агликона и идентификации сахарных остатков
ПФ для анализа агликона
ПФ для идентификации углеводов
Хлороформ - этанол - вода - уксусная кислота (30 : 20 : 3 : 0.2) петролейный эфир - диэтиловый эфир - уксусная кислота (30 : 3.3 : 0.33)
петролейный эфир - хлороформ - ацетон (20 : 20 : 5) 40% р-р уксусной кислоты в хлороформе - этанол - вода (60 : 45 : 10)
н-бутанол - вода - уксусная кислота (4 : 5 : 1) (верхний слой)
хлороформ - этанол - вода (18 : 11: 2.7) бутанол-1 - этанол - аммиак (7 : 2 : 5)
Обсуждение результатов
Известно, что при гидролизе соединений гликозидной структуры происходит разрыв гликозидных связей с образованием сапонинов с меньшим числом сахарных остатков, на завершающем этапе - с образованием суммы сахаров и агликона. Наиболее распространенным методом гидролиза сапонинов, выделенных из различных растений, является кислотный гидролиз с использованием соляной, уксусной и серной кислот, их смесей [9, 10]. Поэтому первым этапом исследования была оценка возможности применения кислотных смесей для получения квиллайевой кислоты. По данным литературы [4, 5], квиллайевая кислота представляет собой белый кристаллический порошок без запаха и вкуса, нерастворимый в воде, легко растворимый в хлороформе, этаноле, этилацетате. В результате использования указанных смесей получили осадки от кремового до темно-желтого цвета. Оценку их состава проводили методом ТСХ в системах подвижных фаз, рекомендованных для квиллайевой кислоты (агликона) и гликозидов мыльного дерева. Результаты приведены в таблице 2.
Таблица 2. Результаты анализа полученных осадков агликона методом ТСХ в системах подвижных фаз различного состава
Уксусная кислота, соляная кислота, вода (35 : 10 : 55) 2 М соляная кислота, этиловый Серная кислота, этиловый спирт
Состав ПФ спирт 50%, вода (4 : 7.35 : 6.65) 70%, вода (1.75 : 3 : 10)
НС1 9 М НС1 12 М НС1 6 М НС1 12 М НС1 12 М (Т) Н2Б04 6 М Н2Б04 9 М Н2Б04 18 М
0.29
Хлороформ - 0.79 0.48 0.39 0.53
этанол (10 : 1) 0.89 0.88 0.82 0.89
н-бутанол - вода - 0.74 0.94 0.74 0.94
уксусная кислота (4 : 5 : 1) 0.92 0.93 0.95 0.93 0.92 0.94
Петролейный эфир 0.41 0.68 0.41 0.68 0.4 0.7 0.46
- хлороформ - ацетон (20 : 20 : 5). 0.70 0.71 0.85 0.71 0.70 0.71
Хлороформ - эти-лацетат (1 : 1) 0.81 0.97 0.98 - 0.8 0.26 0.74 0.8 0.78 - -
Выход осадка (%) 5.49 2.68 38.66 1.58 25.49 - - -
Известно, что при нагревании в смеси, содержащей уксусную кислоту, агликоны могут частично аце-тилироваться [10], о чем свидетельствует появление 2-го пятна на хроматограмме продуктов гидролиза. При этом зоны агликона и его ацетата в системе ПФ, рекомендованной для сапонинов - бутанол-уксусная кислота-вода, не разделены. Продукт гидролиза в смесях серная кислота-этиловый спирт-вода и соляная кислота-этиловый спирт-вода на хроматографической пластинке дал зону слабой интенсивности, что может свидетельствовать о частичном разрушении молекулы сапонина.
Использование 6М соляной кислоты в смеси с этиловым спиртом и водой не позволяет провести гидролиз полностью: обнаруживаются зоны недогидролизованных сапонинов (Я(=0.68, 0.48), дающие высокий процент выхода осадка. Наиболее эффективной смесью для расщепления гликозидной связи оказалась смесь: соляная кислота 12М, этиловый спирт 50%, вода (в соотношении 4 : 7.35 : 6.65) при нагревании (80 °С). На хроматограмме зона агликона наиболее интенсивная, несмотря на наличие примесей.
Для установления оптимального времени, требуемого для полного гидролитического расщепления молекул сапонинов в этих условиях, снимали кинетическую зависимость. Время, необходимое для эффективного гидролитического расщепления, составило 6-8 ч. При уменьшении времени гидролиза в осадке обнаруживаются остаточные сапонины.
Данные гидролиза позволили установить природу углеводной части сапонинов. Во всех гидролизатах была идентифицирована ксилоза ^¡=0.28), глюкуроновая кислота ^¡=0.65), галактоза ^¡=0.42), арабиноза (Я(=0.46) [11]. На основании данных о хроматографической подвижности (значениях Rf) индивидуальных сапонинов можно сделать вывод о том, что все они, скорее всего, содержат от 1 до 4 сахарных остатков, что хорошо согласуется с данными литературы [11].
В литературных источниках отсутствует информация об анализе агликона сапонинов мыльного дерева. Поэтому следующим этапом работы было исследование полученной фракции агликона физико-химическими методами.
Полученные фракции агликона хроматографировали в элюирующих системах, состав которых рекомендован [6]. В качестве оценочного критерия использовали величины Rf, Н - высоту и число теоретических тарелок N. Расчет числа N и высоты Н теоретических тарелок проводили по следующим формулам:
N = 16 ■
( щ У
№
Ч У
(1)
Н = к,
N
(2)
где L - расстояние от фронта растворителя до линии старта, мм; Rf - подвижность; W - ширина пятна, мм.
Важной характеристикой соединения в тонкослойной хроматографии является фактор Rf, называемый подвижностью. Поскольку зон сапонинов на хроматограмме было обнаружено две, в качестве одного из факторов эффективности хроматографического разделения использовали разрешающую способность, которую находили по формуле
ДХ
(Щ + Щ )/2
(3)
где АХ - расстояние между центрами пятен, мм; W - ширина пятна, мм [6].
Результаты расчетов приведенных выше характеристик разделения указаны в таблице 3.
Анализируя хроматографические характеристики, можно рекомендовать систему для элюирования агликона следующего состава: петролейный эфир-хлороформ-ацетон (20 : 20 : 5).
Количественное определение агликона в гидролизате проводили методом потенциометрического неводного титрования. Полученную из сапонинов квиллайевую кислоту определяли титриметрическим методом по методике, рекомендованной [9] для сапонинов аралии. Обработку результатов анализа проводили графически. Содержание квиллайевой кислоты в образцах в процентах (Х) вычисляли по формуле
X =
0.0486 • (V - V - Г2) -100
V
(4)
где 0.0486 - количество квиллайевой кислоты, соответствующее 1 мл 0.01М раствора натрия гидроксида, г;
V - объем 0.01М раствора натрия гидроксида, израсходованного на титрование испытуемого раствора, мл;
VI - объем 0.01М раствора натрия гидроксида, израсходованного на доведение рН титруемого раствора до 7.0, мл); V - объем 0.01М раствора натрия гидроксида, израсходованного на титрование контрольной пробы, мл; ^ - объем раствора. Содержание квиллайевой кислоты в полученном образце составило 88.23%.
Анализ спектральных характеристик сапонинов и агликона - квиллайевой кислоты. Использование УФ-спектрофотометрии для определения сапонинов возможно благодаря наличию двойной связи в структуре агликона. Метод основан на способности сапонинов и их окрашенных комплексов поглощать монохроматический свет при определенной длине волны. Поскольку большинство тритерпеновых сапонинов имеет максимум поглощения в области, типичной для этого класса соединений - 200-350 нм, нами был снят УФ-спектр спиртовых растворов сапонина и агликона в указанном диапазоне длин волн (рис. 2).
На полученных кривых наблюдаются локальные максимумы поглощения при Х=230 и Х=290 нм. Анализ литературных данных [12, 13] позволил отнести максимум при 230 нм (е=4400 л/моль-1 •см-1) к п-п*-пе-реходу в двойной связи системы колец агликона - квиллайевой кислоты (рис. 1) и к поглощению карбонильных групп в углеводных остатках. Широкая полоса поглощения в области 290 нм соответствует п-п*-пере-ходам и определяется только в областях больших концентраций, давая суммарный неразделенный максимум в общем спектре, соответствующий переходу п^-п поглощения карбонильных групп в молекуле сапонина (е=100 л/моль-1 см-1). Спектральные характеристики спиртовых растворов агликона и его гликозида представлены в таблице 4.
Таблица 3. Величины хроматографических параметров квиллайевой кислоты в подвижных фазах различного состава
Состав подвижной фазы Хроматографические характеристики
а N Н
Хлороформ - этанол (10 : 1) 0.93 0.95 1.43 0.04 5810 12527 0.001 0.006
Петролейный эфир - хлороформ - 0.75 3.37 0.42 5001 0.016
ацетон (20 : 20 : 5) 0.91 11924 0.069
Дихлорметан - этилацетат (1 : 1) 0.76 0.84 1.66 0.21 4950 6046 0.016 0.013
Рис. 2. УФ-спектр: 1 - спиртового раствора сапонина (С - 0.08 мг/мл), 2 - спиртового раствора агликона сапонина (С - 0.016
мг/мл)
190 210 230 2Е0 270 280 310 330 3E0 ЗЛ 3S0
Таблица 4. Значения молярных коэффициентов поглощения сапонина и его агликона - квиллайевой кислоты, л/моль-1 см-1
Длина волны, нм Сапонин Агликон
230 28818 22492
290 10086 1823
Снижение интенсивности поглощения в области 230 нм и широкой полосы в области 290 нм в спектре агликона является косвенным доказательством уменьшения количества в его структуре карбонильных соединений, присутствующих в молекуле сапонина.
ИК-спектроскопия при исследовании тритерпенов применяется для обнаружения и характеристики двойных связей, гидроксильных групп, О-ацильных группировок, карбонильных, карбоксильных, метиль-ных групп.
Несмотря на большой объем публикаций, отсутствуют работы, содержащие описание, а тем более детальную расшифровку ИК-спектров сапонинов мыльного дерева. Данные по анализу спектров сапонинов других растений неполны, а временами и противоречивы. Основная причина заключается в том, что спектры индивидуальных сапонинов сходны между собой и почти не имеют ярко выраженных характерных фрагментов. Сравнение их требует более детального анализа, чем для многих других классов соединений. Получение агликона позволило провести сравнительный анализ спектральных данных (рис. 3). Результаты представлены в таблице 5.
Достаточно четкая полоса обнаруживается в области спектра 2930 см-1 как для сапонина, так и для квиллайевой кислоты. По данным [12, 13], ее относят к валентным колебаниям групп -СНз, -СН2. Снижение ее интенсивности в спектре сапонина вызвано тем, что большинство указанных групп (в частности, сахарных остатков) связано с атомом кислорода, в результате чего интегральная интенсивность поглощения полос заметно уменьшается. Низкая интенсивность полосы в области 1618 см-1 в спектре агликона свидетельствует о наличии диссоциированной карбоксильной группы глюкуроновой кислоты в недогидролизованном остатке сапонина.
Рис. 3. ИК-спектры 1 - сапонина и 2 -агликона
0,08 J
0,05
0,02
0,9
3500 4000
500
1000
1500
2000
2500
3000
Таблица 5. Сравнительный анализ ИК-спектров сапонина и квиллайевой кислоты
Волновые числа в ИК-спектре сапонина, см-1 Волновые числа в ИК-спектре агликона, см-1 Отнесение полос поглощения в ИК-спектрах
3200-3400 3200-3400 (снижена интенсивность) валентные колебания ОН- групп углеводов
2800-3000 (одна нераз- 2939, 2893 симметричные и несимметричные валентные колебания -
деленная полоса) (разделенные полосы) СН2, -СН3 групп
1716 1722 (плечо) колебания альдегидной группы в структуре агликона
1618 1618 (низкая интенсивность) -С=С- в структуре агликона
1556 1300-1500 валентные колебания диссоциированной карбоксильной
(разрешенные полосы) группы глюкуроновой кислоты
1418, 1516 - колебания диссоциированной и недиссоциированной карбоксильных групп глюкуроновой кислоты соответственно
1380-1460 1384,1436 симметричные и асимметричные валентыне колебания
(широкая полоса) (разрешенные полосы) группы -СН3
1266 (расщеплена на 3 полосы) валентные колебания групп СО- в карбоксильной группе -
1236 представляет сумму валентных колебаний СО и скелетных колебаний, характерных для жирных кислот.
1236,1716,1732 - деформационные колебания гидроксильных, альдегидных и сложноэфирных групп, соответственно
1028 1120-1040 валентным колебаниям эфирной группы С-О, свойственно для глюкопираноз
Полоса 1266 см-1, отнесенная к валентным колебаниям групп СО, расщеплена на три полосы, характерные для жирных кислот, из которых 1269 см-1 - валентные колебания группы СО в карбоксильной группе, 1166 см-1 - ассиметричные валентные колебания, 1220 см-1 - скелетные колебания СН3СНСН3 групп.
Таким образом, анализируя ИК-спектры сапонина и полученной нами квиллайевой кислоты, было показано отсутствие в спектре агликона полос поглощения, относящихся к колебаниям простой и сложно-эфирной связи (1166, 1618 см-1), что является дополнительным свидетельством полноты проведенного гидролиза сапонинов [14]. Использование агликона - структурной гидрофобной составляющей сапонина для исследований процессов его поглощения сорбентами различной природы [15-17] позволит уточнить лежащие в их основе механизмы взаимодействия.
Список литературы
1. Girma M., Wolde M., Wink M. Identification and Biological Activities of Triterpenoid Saponins from Chenopodium quinoa // J. Agric. Food Chem. 2001. N49. Pp. 2327-2332.
2. Guclu-Ustundag O., Mazza G. Saponins: properties, applications and processing // Critical Reviews in Food Science and Nutrition. 2007. Vol. 3. N47. Pp. 231-258.
3. Juliane D., Kauffmann C., Spilki F., Claiton L. Adjuvant activity of Quillajabrasiliensissaponins on the immune responses to bovine herpesvirus type 1 in mice //V accine. 2006. N11. Pp. 7129-7134.
4. Rodriguez-Diaza M., Delportea С., Cartagena С. Topical anti-inflammatory activity of quillaic acid from Quillajasa-ponaria Mol. and some derivatives //Journal of farmacy and farmacology. 2011. N63. Pp. 718-724.
5. Mitra S., Dunga S.R. Micellar Properties of Quillaja Saponin. 1. Effects of Temperature, Salt, and pH on Solution Properties // Journal Agricultural and Food Chemistry. 1997. N45. Pp. 1587-1595.
6. Ван Н.Т., Мироненко Н.В., Брежнева Т.А., Селеменев В.Ф., Бережнова Т.А., Преображенская Н.С. Разработка методики качественной идентификации индивидуальных сапонинов Quillaja методом ТСХ // Вестник Воронежского государственного университета. Серия Химия. Биология. Фармация. 2018. №1. С. 15-21.
7. Мироненко Н.В., Брежнева Т.А., Селеменев В.Ф., Столповская А.А. УФ-спектрофотометрическое определение тритерпеновых сапонинов // Вестник Воронежского государственного университета. Серия Химия. Биология. Фармация. 2015. №1. С. 16-21.
8. Hostettmann K., Marston A. Saponins. London, 1995. 548 p.
9. Мальчуковский Л.Б., Тахтобаева Т.М., Копылова И.Е., Либизов Н.И. Определение аралозидов А, В, С в корнях аралии маньчжурской // Фармация. 1972. №6. С. 45-47.
10. Хорлин А.Я., Бакиновский Л.Б., Васьковский В.Е., Веньяминова А.Г., Оводов Ю.С. Распределительная хроматография тритерпеновых сапонинов // Изд. АНСССР. 1963. №12. С. 1008-1011.
11. Андерле Д. Идентификация моносахаридов тритерпеновых гликозидов в виде трифторацетатовполиолов // Химия природных соединений. 1972. №4. С. 471-472.
12. Казицина Л.А., Куплетская Н.Б. Применение УФ-, ИК-, ЯМР- и масс-спектроскопии в органической химии: учебное пособие для студентов химических специальностей университетов. М., 1979. 236 с.
13. Браун Д., Флойд А., Сейнзбери М. Спектроскопия органических веществ. М., 1992. 300 с.
14. Dalsgaard K. A study of the isolation and characterization of the saponinQuil A // Acta Vet. Scand. Suppl. 1978. N69. р. 40.
15. Мироненко Н.В., Брежнева Т.А., Бутырская Е.В., Селеменев В.Ф. Квантовохимический подход к обоснованию механизма сорбции тритерпенового сапонина высокоосновным анионообменником АВ-17-2П в хлороформе // Журнал общей химии. 2012. Т. 82, вып. 9. С. 1505-1510.
16. Мироненко Н.В., Смусева С.О., Брежнева Т.А., Селеменев В.Ф. Кинетические и равновесные характеристики сорбции сапонина Quillaja Saponaria Molina на хитозане // Журнал физической химии. 2016. Т. 90. №12. С. 1870-1875.
17. Мироненко Н.В., Смусева С.О., Брежнева Т.А., Селеменев В.Ф., Нечаева Л.С., Бутырская Е.В. Особенности кинетики сорбции сапонина Quillaja Saponaria Molina хитозаном // Коллоидный журнал. 2017. Т. 79. №2. С. 166-173.
Поступила в редакцию 14 февраля 2019 г.
После переработки 26 июня 2019 г. Принята к публикации 29 сентября 2019 г.
Для цитирования: Мироненко Н.В., Шкутина И.В., Брежнева Т.А., Селеменев В.Ф. Разработка способа гидролитического расщепления молекул пентациклических сапонинов - производных квиллайевой кислоты // Химия растительного сырья. 2020. №1. С. 149-156. DOI: 10.14258/jcprm.2020015172.
Mironenko N. V.1*, Shkutina I. V.2, Brezhneva T.A.1, Selemenev V.F.1 DEVELOPMENT OF A METHOD FOR HYDRO-LYTIC CLEAVAGE OF MOLECULES SAPONINS - DERIVATIVES OF QUILLAJA ACID
1 Voronezh State University, Universitetskayapl., 1, Voronezh, 394018 (Russia), e-mail: [email protected]
2 St. Petersburg State Pediatric Medical University, ul. Litovskaya, 2, St. Petersburg, 194100 (Russia)
The possibility of hydrolytic decomposition of glycosides soap tree Qullaja. The conditions for the complete hydrolysis of saponins: a mixture of hydrochloric acid, water, ethanol in a ratio of 4 :7.35 : 6.65, heating time - at least 6 hours. The composition of the carbohydrate part of saponins was established - xylose, glucuronic acid, galactose, arabinose were identified in all hydrolysates. The analysis of the obtained fraction of aglycone - willieboy acid physico-chemical methods. Based on the calculation results of chromatographic characteristics (mobility, number and height of theoretical plates), a system for elution of aglycone of the following composition is recommended: petroleum ether-chloroform-acetone (20 : 20 : 5). By the method of potentiometric titration in a non-aqueous solvent medium, the percentage of aglycone in the selected fractions was determined-88.23%. A comparative study of the aqueous solution of aglycone and saponins by UV spectrophotometry. A decrease in the intensity of absorption bands in the 230, 290 nm region responsible for the absorption of carbonyl structures is shown. Analyzed the IR spectra of saponins and willieboy acid identified bands assigned to the vibrations of functional groups of the aglycone and the carbohydrate residue.
Keywords: saponins, aglycone, quillic acid, extraction, hydrolysis, thin-layer chromatography.
References
1. Girma M., Wolde M., Wink M. J. Agric. Food Chem, 2001, no. 49, pp. 2327-2332.
2. Guclu-Ustundag O., Mazza G. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 2007, vol. 3, no. 47, pp. 231-258.
3. Juliane D., Kauffmann C., Spilki F., Claiton L. Vaccine, 2006, no. 11, pp. 7129-7134.
4. Rodriguez-Diaza M., Delportea C., Cartagena C. Journal offarmacy and farmacology, 2011, no. 63, pp. 718-724.
5. Mitra S., Dunga S.R. Journal Agricultural and Food Chemistry, 1997, no. 45, pp. 1587-1595.
6. Van N.T., Mironenko N.V., Brezhneva T.A., Selemenev V.F., Berezhnova T.A., Preobrazhenskaya N.S. Vestnik Voro-nezhskogo gosudarstvennogo universiteta. Seriya Khimiya. Biologiya. Farmatsiya, 2018, no. 1, pp. 15-21. (in Russ.).
7. Mironenko N.V., Brezhneva T.A., Selemenev V.F., Stolpovskaya A.A. Vestnik Voronezhskogo gosudarstvennogo universiteta. Seriya Khimiya. Biologiya. Farmatsiya, 2015, no. 1, pp. 16-21. (in Russ.).
8. Hostettmann K., Marston A. Saponins. London, 1995, 548 p.
9. Mal'chukovskiy L.B., Takhtobayeva T.M., Kopylova I.Ye., Libizov N.I. Farmatsiya, 1972, no. 6, pp. 45-47. (in Russ.).
10. Khorlin A.Ya., Bakinovskiy L.B., Vas'kovskiy V.Ye., Ven'yaminova A.G., Ovodov Yu.S. Izd. ANSSSR, 1963, no. 12, pp. 1008-1011. (in Russ.).
11. Anderle D. Khimiyaprirodnykh soyedineniy, 1972, no. 4, pp. 471-472. (in Russ.).
12. Kazitsina L.A., Kupletskaya N.B. Primeneniye UF-, IK-, YaMR- i mass-spektroskopii v organicheskoy khimii: uchebnoye posobiye dlya studentov khimimicheskikh spetsial'nostey universitetov. [The use of UV, IR, NMR and mass spectroscopy in organic chemistry: a textbook for students of chemical specialties of universities]. Moscow, 1979, 236 p. (in Russ.).
13. Brown D., Floyd A., Sainsbury M. Spektroskopiya organicheskikh veshchestv. [Spectroscopy of organic substances]. Moscow, 1992, 300 p. (in Russ.).
14. Dalsgaard K. Acta Vet. Scand. Suppl, 1978, no. 69, p. 40.
15. Mironenko N.V., Brezhneva T.A., Butyrskaya Ye.V., Selemenev V.F. Zhurnal obshchey khimii, 2012, vol. 82, no. 9, pp. 1505-1510. (in Russ.).
16. Mironenko N.V., Smuseva S.O., Brezhneva T.A., Selemenev V.F. Zhurnalfizicheskoy khimii, 2016, vol. 90, no. 12, pp. 1870-1875. (in Russ.).
17. Mironenko N.V., Smuseva S.O., Brezhneva T.A., Selemenev V.F., Nechayeva L.S., Butyrskaya Ye.V. Kolloidnyy zhurnal, 2017, vol. 79, no. 2, pp. 166-173. (in Russ.).
Received February 14, 2019 Revised June 26, 2019 Accepted September 29, 2019
For citing: Mironenko N.V., Shkutina I.V., Brezhneva T.A., Selemenev V.F. Khimiya Rastitel'nogo Syr'ya, 2020, no. 1, pp. 149-156. (in Russ.). DOI: 10.14258/jcprm.2020015172.
* Corresponding author.
