CC BY
36
pratensis, Formica cinerea. При этом ведущая роль принадлежит Formica cunicularia. Исследования проведены при финансовой поддержке Федеральной целевой программы «Научные и научно-педагогические кадры инновационной России на 2009-2013 гг.» государственный контракт №14.740110412.
Литература: 1. Акбаев М.Ш., Василевич Ф.И., Балашна Т.В., Коновалов Н.К.: Паразитология и инвазионные болезни животных. - М.: «Колос», 2001. -247 с. 2. Анохин И.А. Исследования по биологии личинок Dicrocoelium lanceatum: Автореф. дис. канд. биол. наук. - Курск, 1967. - 20 с. 3. Методы санитарно-паразитологических исследований: Методические указания. - М.: Федеральный центр гигиены и эпидемиологии Роспотребнадзора, 2011. - 63 с.
Role of ants of Formica genus in prevalence of Dicrocoelium lanceatum at the territory of the Kursk Region. Birukov A.Yu., Malisheva N.S. Kursk State University.
Summary. As a result of the carried out investigations in has been found that 3 of 10 tested ant species take part in transmission of D. lanceatum infection in the Kursk Region namely Formica cunicularia, F. pratensis and F. cinerea. F. cunicularia play the dominant role.
РАСПРОСТРАНЕНИЕ CARYOPHYLLAEUS BRACHYCOLLIS В РЫБХОЗЯЙСТВАХ УКРАИНЫ
Божик В.И.
Львовский национальный университет ветеринарной медицины и биотехнологий им. С.З.Гжицкого
На протяжении последних десятилетий в рыбных хозяйствах Западных областей Украины, при выращивании карпа и его гибридных форм, в связи с неконтролированными перевозками рыбы, не соблюдения ветеринарносанитарных условий, выявляется новый вид цестоды Caryophyllaeus brachycollis у сеголеток, годовиков, двулеток и карпов старшых возростных групп.
У карпов, зараженных кариофилезом, наблюдается вялость, нарушение координации движений, плохое поедание кормов, отставание в росте, снижение упитанности, жирности. В дальнейшем возникают нарушения в составе крови, репродуктивной системе, рыба постепенно худеет, истощается, что и становится причиной ее гибели. У переболевших рыб снижается имунитет, она плохо переносит зимовку. В последующем выращиваемая рыба отстает в развитии и росте.
68
При изучении цестод установлено, что длина молодых кариофилид, обнаруженных у карпа и его гибридных форм, не превышала 15-20 мм, а половозрелых 17-40 мм и ширина 1,5-2,5 мм.
Передний конец - сколекс расширен, гладкий, слегка конусовидной формы с боковыми выпячиваниями. Наблюдается шейное сужение, которое четко отделяет сколекс от тела паразита. На вершине сколекса расположена фиксирующая лейкообразная ямка-локуля.
Интенсивность заражения зависела от возраста рыбы, ее инвазированности в предыдущие годы, наличия и степени зараженности промежуточных хозяев, температуры, кислорода, солености и ионного состава воды, рН-среды, количества и качества корма, инфекционных и инвазионных заболеваний, сезона года и прочее.
В большинстве рыбных хозяйств в июле наблюдали значительную зараженность сеголеток карпа молодыми формами цестод, половозрелые особи появлялись в конце сентября-октября, а после откладки яиц, они постепенно покидали кишечник. Ранней весной в марте-апреле годовики опять заражались личинками кариофилид. В конце весны, начале лета - майиюнь, у годовиков выявляли молодые формы цестод вместе с единичными половозрелыми экземплярами цестод осеннего заражения. Инвазированность рыб новым поколением кариофилид увеличивалась на протяжении июля-августа.
Зараженность колебалась от единичных экземпляров до нескольких десятков и сотен кариофилид на рыбу. Особенно интенсивное заражение молоди карпа регистрировали в прудах с большым количеством инвазированых трубочников, через месяц после зарыбления прудов. В первой половине июля экстенсивность заражения рыб достигала 50 - 70%, при интенсивности инвазии от 18 до 21 экземпляров, в крупных особях рыб регистрировали до 30 паразитов. Значительное заражение наблюдали в годы с ранней дождливой весной и умеренно сухим летом. Карпы, населяющие водойомы с илистым дном, практически всегда поражены цестодами, в результате нагула в тех местах, где скапливаются зараженные олигохеты. Инвазированость трубочников личинками кариофилид-процеркоидами в отдельных местах прудов достигала 35%, а зараженность рыб 100%.
У интенсивно инвазированных карпов, которые по этой причине не редко гибнут, брюшко обычно увеличено и при нажатии на него из анального отверстия выходят цестоды. В полости тела карпов наблюдается скапливание экссудата, стенка кишечника истончена и прозрачна, в ней просматриваются цестоды. Внутренняя поверхность слизистой кишечника рыхлая, бугристая с точечными и полосчатыми кровоизлияниями, покрыта желтовато-красноватой слизью.
Цестоды локализируются в передней трети кишечника, крепко фиксируясь сколексом, а стробила в большинстве случаев свободно находится в просвете, хотя значительная ее часть прилегает к слизистой кишечника. Иногда после отторжения кариофилид остаются следы от их фиксации в виде
69
красных пятен и полосок. Часто сколекс проникает между ворсинками в глубину слизистой оболочки, а нередко в ее строму. При этом сами ворсинки истончаются и уменьшаются в несколько раз, а далее исчезают. Вторичные складки, под влиянием цестод, сглажены, цилиндрический эпителий и бокаловидные клетки полностью или частично уничтожены, десквамированы с оголенной стромой ворсинок.
В пораженных тканях кишечника розвивается ацидоз, в кровеносных и лимфатических сосудах, подслизистом и мышечном слоях, серозной оболочке наблюдаются застойные явления, миграция лейкоцтиов и образование защитного лейкоцитарного вала. Собственная пластинка гиперемирована, отечна и инфильтрирована лейкоцитами. Мышечная оболочка на границе с слизистой отечна, стенки сосудов инфильтрированы лейкоцитами.
Значительную роль в развитии патологического процесса играет механическое повреждение тканей хозяина сколексом, стробилой, а также метаболитами паразита и токсинами, которые образуются при разрушении тканей слизистой кишечника. Слизь, которая обволакивает паразитов, вмещает большое количество детрита эпителиоцитов, что связано с механизмом защиты слизистой от паразитов.
Кроме сколекса, кариофилиды крепятся также телом при помощи микротрихий тегумента, вступая в тесный контакт с микроворсинками слизистой оболочки кишечника карпа.
Для борьбы с цестодозами рыб предложен ряд антигельминтиков таких как: камала, фенотиазин, филиксан, из расчета 80-100 мг на сеголетка. Кроме того используют табачную пыль, в дозе 5% к корму на протяжении 10-ти дней. Используют также фенасал 1% к корму, а также лечебный гранулированный корм, который содержит 1% фенасала.
Нами для лечения кариофилеза предложен антигельминтик фенадек. Препарат представляет собой порошок светло-серого цвета с легким медикаментозным запахом. Фенадек не обладает кумулятивными, алергизирующими, мутагенными, эмбриотоксическими и тератогенными свойствами. Одно-двукратное скармливание гранулированных комбикормов с 0,3%, или 0,15% действующего вещества дает высокий терапевтический эффект, что приводит к резкому снижению экстенсивности инвазии и полному оздоровлению карпа от кариофилеза.
Литература: 1. Бауер О.Н. //Л.: Наука, 1987. -Т.3. -С. 11-15. 2. Божик В.Й., Шрус Р.1. // Декларацшний патент. 2006. Бюл.№°9. 3. Кулаковская О.П. // Паразитологический сборник ЗИН АН СССР.- 1961.-Т.20. - С. 339-355. .4Шрус Р.1., Шемчук В.Р. // Проблеми iхтюпатолоrii. Мат. Першо1 всеукрашсько! коференцп. Кшв, 2001. -С. 94-96. 5. Сапожников Г.И. //Ветеринария. - 1993. - №3. - С. 27-28. 6. Щербань А.П. // Киев: Урожай, 1965. -С. 45-58.
70
Caryophyllaeus brachycollis at fish farms of Ukraine. Bozhik V.I. S.Z. Gzhicky Lvov National University of Veterinary Medicine and Biotechnologies.
Summary. C. brachyocollis was recorded in carps at some fish farms of Ukraine. Application of phenadec reduced C. brachyocollis infection rate by 23 times.
ГЕЛЬМИНТОЗЫ КОШАЧЬИХ (FELIDAE) В НОВОСИБИРСКОМ ЗООПАРКЕ И ОПЫТ ИХ ЛЕЧЕНИЯ
Борцова М. С.*, Чернакова Э.С. *, Коняев С.В. **
* Новосибирский государственный аграрный университет **Институт систематики и экологии животных г. Новосибирск
Введение. Паразитологическим исследованиям диких и экзотических животных в последнее время уделяется особое внимание. Ввоз и дальнейшее содержание экзотических животных, порой чреваты последствиями виде непреднамеренной интродукции паразитических организмов. При этом диагностика и лечение заболеваний экзотических животных практически не разработаны. До сих пор, есть единичные антигельминтные средства для зоопарковых животных, применение которых оговорено инструкцией. Исследования препаратов для дегельминтизации редких и экзотических видов животных, зачастую просто экономически не выгодны для производителей, либо не возможны. Достоверное исследование эмбриотоксических, тератогенных, а также терапевтических эффектов препарата не осуществимо на малой выборке. В связи с этим, у ветеринарных врачей, работающих с экзотическими животными, в цирках, зоопарках, местах временного содержания или разведения редких видов, зачастую нет информации, какие современные средства могут быть использованы для дегельминтизации животных. Каждый случай применения новых препаратов связан с определённым риском, поэтому важен обмен доступными данными о возможности использования препаратов для борьбы с паразитарными заболеваниями экзотических животных. Целью исследования являлось определение видового состава паразитов у представителей семейства кошачьи (Felidae), содержащихся в Новосибирском зоопарке, а также возможности применения им антигельминтного комбинированного препарата нового поколения.
Материалы и методы. Всего было исследовано 73 экземпляра животных, содержащихся в Новосибирском муниципальном зоопарке, относящихся к 20 видам и подвидам семейства, в том числе: 13 барханных котов (Felis margarita), 2 лесных кота (Felis silvestris silvestris), 7 степных котов (Felis silvestris lybica), 2 камышовых кота (Felis chaus), 4 бенгальский кошки (Prionailurus bengalensis bengalensis), 7 рыжих рысей (Lynx rufus), 2 обыкновенные рыси (Lynx lynx), пума (Puma concolor), 4 ягуаранди (Puma
71
